Name: 설치류를 위한 통합 저유량 마취 기화기, 인공호흡기 및 생리적 모니터링 시스템 사용 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-07-09T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 57 s
Description: 학습하세요 생쥐 마취를 위한 통합 저유량 기화기, 인공호흡기 및 생리적 모니터링 시스템 설정 방법을. 이 일체형 시스템은 공간이 제한된 연구 시설에서 안전하고 효율적인 마취를 가능하게 합니다.

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모든 동물 연구는 Purdue 동물 관리 및 사용 위원회에 의해 승인되었다.
1. 저유유 기화기 의 설치
<ol><li>이소플루란 또는 세보플루란 배달<ol>
<li>캐리어 가스 소스를 선택합니다. 내부 공기 펌프를 활용하려면 시스템 뒷면의 입구 포트에서 빨간색 캡을 제거하여 시스템이 실내 공기를 섭취할 수 있도록 합니다. 압축 가스를 사용하려면 15 PSI로 설정된 압력 조절기 또는 압력 감속기를 사용하고 시스템 뒷면의 압축 가스 포트에 연결합니다.</li>
		<li>숯 통을 배기 포트에 연결합니다.</li>
		<li>액세서리 커넥터를 시스템 전면의 피망 및 만료 포트에 연결합니다. 유도 챔버를 파란색 클립과 코 콘으로 나뭇가지에 연결하고 흰색클립(그림 1)을나뭇가지에 연결합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>기계적 환기용<ol>
<li>관착 커넥터 튜브를 노란색 코딩 클립(그림2)에연결합니다.</li>
		<li>데드스페이스 교정을 수행하여 인공호흡기를 교정합니다. 벤트 실행 화면에서터치 설정,다음 칼리브 & 테스트. 데드스페이스 교정을 선택하고 다이얼 B를누릅니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>맥박 산소 측정을 위해<ol>
<li>마우스STAT라는 레이블이 붙은 시스템 뒷면의 포트에 센서를 연결합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>온난화용<ol>
<li>시스템 전면의 '패드 파워' 포트에 데워밍 패드를 연결합니다.</li>
		<li>하나의 센서를 '바디 센서' 포트에 연결하고 다른 센서를 '패드 센서' 포트에 연결합니다. 패드 센서를 데밍 패드에 고정합니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. 설정 구성
<ol><li>마취용<ol>
<li>마취 시스템에 전원. Anest 실행 화면에서터치 업.</li>
		<li>마취제를 선택합니다. 터치 타입 Anest,다음 이소플루란 또는 세보플루란을선택 다이얼 B를 켭니다.</li>
		<li>주사기 크기를 설정합니다. 주사기 크기를터치한 다음 다이얼 B를 돌려 크기를 선택합니다.</li>
		<li>Anest 실행 화면으로돌아가려면 다시 터치합니다.</li>
		<li>병 상단 어댑터를 사용하여 주사기를 마취제로 채웁니다.</li>
		<li>주사기를 마취 시스템에 연결합니다. 필요한 경우 푸셔 블록을 뒤로 이동하려면 제거를 터치합니다.</li>
		<li>주사기를 프라임. 푸시어 블록이 주사기 플런저 의 상단에 닿을 때까지 푸시어 블록을 앞으로 이동하려면 프라임을 터치하고 누를 수 있습니다. 프라임 버튼을 누르는 동안 B를 돌리면 푸셔 블록 속도가 조절됩니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>기계적 환기용<ol>
<li>벤트 실행 화면 탭을 터치한 다음 설정합니다.</li>
		<li>체중을 터치하고 동물의 무게를 입력합니다.</li>
		<li>볼륨 또는 압력 제어 환기를 선택하려면 우선 순위를 터치합니다. 바디 웨이트 설정은 자동으로 적절한 호흡 속도와 조수 량을 설정합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>맥박 산소 측정을 위해<ol>
<li>Oxi 실행 화면 탭을 터치한 다음 설정합니다.</li>
		<li>HR을 터치하고 다이얼 B를 돌려 최소 허용 심박수 판독값을 설정합니다. 사전 설정을 사용할 수 있습니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>온난화용<ol>
<li>따뜻한 실행 화면에서터치 설정. 온난화 방법 및 대상 온도 설정을 선택합니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. 마취 전달 시작
<ol><li>마우스 마취<ol>
<li>Anest 실행 화면에서터치 유도를 시작하여 공기 흐름을 시작합니다. 기본 유도 유량은 500mL/min입니다. 터닝 다이얼 A는 필요에 따라 유량을 조정합니다.</li>
		<li>마우스를 유도 실에 놓고 뚜껑을 단단히 닫습니다. 마취제 농도 다이얼을 이소플루란의 경우 3%로 조정합니다.</li>
		<li>마우스가 원하는 마취 평면에 도달 할 때까지 모니터링, 호흡 속도의 감소와 챔버가 기울어질 때 오른쪽 반사의 손실에 의해 결정. 필요에 따라 마취제 농도 다이얼을 조정합니다.</li>
		<li>동물이 오른쪽 반사를 잃고 충분히 마취되면, 터치 정지 유도.</li>
		<li>원하는 경우 플러시 챔버를 터치하여 잔류 마취 가스의 챔버를 비웁웁입니다.</li>
		<li>코 콘으로 이어지는 클램프를 열고 챔버로 이어지는 클램프를 닫습니다.</li>
		<li>터치 시작 코 콘. 바디 웨이트 설정은 다이얼 A를 돌려 수동으로 조정할 수 있지만 코 콘 유량을 결정합니다.</li>
		<li>즉시 코 콘에 맞고 적외선 온난화 패드에 동물을 중심으로 합니다.</li>
		<li>동물 센서를 직장 프로브로 삽입합니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. 기계 환기 시작
<ol><li>동물을 삽관합니다.<ol>
<li>동물을 마취시키면서 삽관 단계로 옮기는 다.</li>
		<li>수직 관착 단계에 고정된 실을 사용하여 위절개에서 동물을 일시 중단합니다(도3).</li>
		<li>동물의 혀를 옆으로 부드럽게 변위시키고 삽관 키트에 제공된 조명을 사용하여 기관지 시각화합니다.</li>
		<li>기관관을 조심스럽게 삽입하고 작은 공기 방광을 튜브에 연결하고 폐가 팽창하는지 확인하여 올바른 배치를 확인하십시오.</li>
	</ol>
</li>
	<li>내막 튜브를 환기 튜브에 연결합니다.</li>
	<li>터치 스톱 코 콘,다음 터치 시작 인공 호흡기. 참고: 바디 웨이트 설정은 자동으로 적절한 호흡 속도와 조수 볼륨을 결정합니다. 압력 제어 환기를 수행하기 위해 수술 프로토콜에 따라 필요에 따라 인공호흡기 설정을 조정하여 15-18cm H2O. 사이의 표적 피망 압력을 설정합니다.</li>
</ol>5. 생리적 모니터링 시작
<ol><li>동물의 뒷발에 센서를 놓습니다(그림4). 펄스 옥시미터는 HR 및 SpO2를 자동으로 읽기 시작합니다. Oxi 실행 화면 탭을 터치하여 펄스 산소 측정 데이터를 봅니다.</li>
</ol>

<ol><li>El-Attar, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guided+isoflurane+injection+in+a+totally+closed+circuit%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">Guided isoflurane injection in a totally closed circuit.</a> Anaesthesia. 46 (12), 1059-1063 (1991).</li>
<li>Lockwood, G., Chakrabarti, M. K., Whitwam, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+computer-controller+closed+anaesthetic+breathing+system%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">A computer-controller closed anaesthetic breathing system.</a> Anaesthesia. 48 (8), 690-693 (1993).</li>
<li>Lowe, H. J., Cupic, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dose-regulated+automated+anesthesia+%28Abstract%29%5BTitle%5D)+AND+%22British+Journal+of+Clinical+Pharmacologyl%22%5BJournal%5D)">Dose-regulated automated anesthesia (Abstract).</a> British Journal of Clinical Pharmacologyl. 12 (2), 281-282 (1971).</li>
<li>Walker, T. J., Chackrabarti, M. K., Lockwood, G. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Uptake+of+desflurane+during+anaesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">Uptake of desflurane during anaesthesia.</a> Anaesthesia. 51 (1), 33-36 (1996).</li>
<li>Weingarten, M., Lowe, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+circuit+injection+technic+for+syringe-measured+administration+of+methoxyflurane%3A+a+new+dimension+in+anesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22Anesthesia+%26+Analgesia%22%5BJournal%5D)">A new circuit injection technic for syringe-measured administration of methoxyflurane: a new dimension in anesthesia.</a> Anesthesia & Analgesia. 52 (4), 634-642 (1973).</li>
<li>Enlund, M., Wiklund, L., Lambert, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+device+to+reduce+the+consumption+of+a+halogenated+anaesthetic+agent%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">A new device to reduce the consumption of a halogenated anaesthetic agent.</a> Anaesthesia. 56 (5), 429-432 (2001).</li>
<li>Kelly, J. M., Kong, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accuracy+of+ten+isoflurane+vaporisers+in+current+clinical+use%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesia%22%5BJournal%5D)">Accuracy of ten isoflurane vaporisers in current clinical use.</a> Anaesthesia. 66 (8), 682-688 (2011).</li>
<li>Matsuda, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NARCOBIT+-+A+newly+developed+inhalational+anesthesia+system+for+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Animals%22%5BJournal%5D)">NARCOBIT - A newly developed inhalational anesthesia system for mice.</a> Experimental Animals. 56 (2), 131-137 (2007).</li>
<li>Soro, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+accuracy+of+the+anesthetic+conserving+device+%28Anaconda%29+as+an+alternative+to+the+classical+vaporizer+in+anesthesia%5BTitle%5D)+AND+%22Anesthesia+%26+Analgesia%22%5BJournal%5D)">The accuracy of the anesthetic conserving device (Anaconda) as an alternative to the classical vaporizer in anesthesia.</a> Anesthesia & Analgesia. 111 (5), 1176-1179 (2010).</li>
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<li>Thomas, J., Lerche, P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aThomas%2C+J+%22Anesthesia+and+Analgesia+for+Veterinary+Technicians%2C+4th+ed%22">Anesthesia and Analgesia for Veterinary Technicians, 4th ed</a>. 335, Mosby. St. Louis, MI. (2011).</li>
<li>McKelvey, D. H. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMcKelvey%2C+DH+%22Veterinary+Anesthesia+and+Analgesia%22">Veterinary Anesthesia and Analgesia</a>. , Mosby. St. Louis, MI. (2003).</li>
<li>Tranquilli, W. J., Thurmon, J. C., Grimm, K. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aTranquilli%2C+WJ+%22Lumb+and+Jones%27+veterinary+anesthesia+and+analgesia%22">Lumb and Jones' veterinary anesthesia and analgesia</a>. , John Wiley & Sons. Hoboken, NJ. 23-86 (2013).</li>
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<li>Garber, J., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGarber%2C+J+%22Guide+for+the+Care+and+Use+of+Laboratory+Animals.+8th+edn%22">Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. 8th edn</a>. , The National Academic Press. Washington DC. (2011).</li>
<li>Zarndt, B. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+a+far-infrared+active+warming+device+in+Guinea+pigs+%28Cavia+porcellus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Association+for+Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Use of a far-infrared active warming device in Guinea pigs (Cavia porcellus).</a> Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 54 (6), 779-782 (2015).</li>
<li>Wolforth, J., Dyson, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flushing+induction+chambers+used+for+rodent+anesthesia+to+reduce+waste+anesthetic+gas%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Animal%22%5BJournal%5D)">Flushing induction chambers used for rodent anesthesia to reduce waste anesthetic gas.</a> Lab Animal. 40 (3), 76-83 (2011).</li>
</ol>

이 프로젝트는 켄트 과학 공사에 의해 장비와 자금으로 지원되었다. 저자 크리스타 비기렐리와 데이브 피츠밀러는이 문서에 사용되는 장비를 제조 켄트 과학 공사의 직원입니다. 이 문서의 오픈 액세스 출판은 켄트 과학 공사에 의해 후원된다.

이 디지털 저유량 마취 시스템은 마취, 환기, 온난화 및 생리 적 모니터링 시스템을 단일 장비에 통합합니다. 또한 시스템에는 내부 펌프가 포함되어 있어 캐리어 가스로 사용하기 위해 주변 공기를 끌어들이므로 압축 가스공급원이 필요하지 않습니다.
이 절차에서 시스템은 마취 기화기, 기계 식 인공 호흡기, 펄스 산소계 및 온난화 패드를 대체하는 유일한 장비로 사용됩니다. 우리는 이전에 100mL /min2의유량으로 마취 전달을 시연했습니다. 유량 설정은 유량이 사용되는 액체 마취제의 양을 직접 제어하기 때문에 이 마취 전달 기술에 매우 중요합니다. 우리는 또한 이전에 낮은 유량을 사용하여 마취액1,2를저장하는 방법을 시연했다. 전통적인 기화기가 기계 식 인공호흡기에 연결되어 있는 경우, 기화기는 가스 스트림의 인공 호흡기 입구 샘플을 연속적으로 실행해야 합니다. 통합 인공호흡기를 사용하는 디지털 기화기의 경우 환기에 필요한 가스만 인공호흡기에 의해 출력됩니다. 이를 통해 마취액, 담체 가스 및 숯 필터와 관련된 비용이 줄어듭니다.
저유동 디지털 기화기를 사용하는 데는 많은 장점이 있지만 한계도 있습니다. 이 시스템은 설치류 및 기타 작은 포유류에 이상적인 낮은 유량으로 작동하도록 설계되었지만 1000 mL /min의 유량 위의 마취를 제공하지 않습니다. 따라서 이 특정 시스템은 작은 동물 종에만 적합합니다. 통합 펄스 산소계에는 발 만 사용하기 위한 센서가 포함되어 있습니다. 센서는 특정 수술 절차에 제한이 있을 수 있는 꼬리에 사용하기 위해 권장되지 않습니다. 또한, 발 센서를 통해 이 시스템을 통해 호흡 속도를 모니터링할 수 있지만, 장기간 에 걸쳐 일관된 호흡 기록을 얻기어려울 수 있다. 마지막으로, 기존의 기화기와는 달리,이 디지털 시스템은 전기가 필요합니다. 배터리는 정전시 또는 정전 시 전력을 사용할 수 없으며 몇 시간 동안 사용하여 시스템에 전원을 공급할 수 있습니다.
이 설치 및 프로토콜은 통합 인공 호흡기 및 생리 모니터링 모듈이 있는 디지털 저유량 마취 시스템의 안전하고 효과적인 사용을 보여줍니다. 이 설정은 제한된 벤치 공간이있는 실험실또는 여러 개의 장비와 외과 필드 근처에 튜브를 보관하는 것이 불가능하지 않은 실험실에 유용합니다. 압축 가스 탱크및 별도의 생리 모니터링 장비의 제거를 포함하여 올인원 시스템에는 많은 이점이 있습니다. 전반적으로, 이 통합 시스템은 전통적인 기화기의 사용이 이상적이지 않은 그룹에 의해 고려될 수 있었습니다.

동물 모델과 관련된 연구에는 종종 특수 데이터 수집 장비가 필요합니다. 작은 동물 수술에 일반적으로 사용되는 마취 기화기의 두 가지 일반적인 유형이 있습니다. 전통적인 마취 기화기는 대기압 및 가스 흐름1,2,3,4,5,6,7,8,9,10에기초한 휘발성 마취제의 수동기화에의존한다. 0.5L/min에서 10L/min의 유량으로 작동하도록 설계되어 대형 동물모델(11)에이상적입니다.
우리는 최근에 기존의 기화기(12) 및13에비해 저유동 디지털 기화기의 효과를 입증했다. 저유동 디지털 마취 시스템은 동물의 분부14,15,16의매우 낮은 유량으로 코 콘에 동물을 유지하는 데 사용할 수 있습니다.
디지털 마취 시스템을 사용하는 데는 많은 이점이 있습니다. 캐리어 가스로 사용하기 위해 주변 공기를 끌어들이는 내장 펌프가 내장되어 있습니다. 이를 통해 사용자는 압축 가스를 사용하지 않고 마취를 투여할 수 있습니다. 최근 연구17,18 캐리어 가스로 산소 대신 공기를 사용 하 여 많은 절차에 도움이 될 수 있습니다 제안 했다.
생리적 모니터링 및 온난화 기능은 디지털 저유량 마취 시스템에설치할 수도 있습니다. 대부분의 기관에서동물 온난화 및 생리적 모니터링은 기관 동물관리및 이용위원회(19,20,21,22)에의해 요구된다. 마취제의 생리적 효과를 비교한 연구는 체온, 심장 기능 및 호흡기기능(23,24,25)의급격한우울증을보였다. 동물을 온난화 패드에 배치하여 정상 체온을 모니터링하고 유지하려면 종종 필요합니다. 따뜻한 온수기, 전기 난방 패드 및 열등과 같은 동물 온난화 방법은 많지만 각각에는 상당한 단점이 있습니다. 동물 온난화의 다른 방법을 비교 하는 연구에서, 원 적외선 온난화 가장 유익한 것으로 나타났습니다26. 디지털 기화기는 특정 동물 체온을 유지하기 위해 가정용 원적외선 온난화에 내장되어 있습니다. 이렇게 하면 추가 온난화 패드 컨트롤러에 대한 요구가 제거됩니다.
맥박 산소측정은 체온을 모니터링하는 것 외에도 동물의 심박수와 산소 포화도를 모니터링하는 인기 있는 방법입니다. 이 비침습적 방법은 간단하고 정확하며, 혈액 산소화 수준을 조절하는 동물의 능력에 대한 전반적인 평가를 제공합니다. 펄스 암소측정을 위한 발 센서는 이전에2를시연한 바와 같이 마취 시스템에 연결할 수 있다.
기계적 환기는 동물이 마취기간이 길거나 동물의 호흡 패턴을 제어해야 할 때 종종 필요합니다. 저유동 디지털 기화기는 압력 또는 볼륨 제어에서 제어된 호흡을 전달할 수 있는 능력을 가지고 있습니다. 통합 된 인공 호흡기는 외부 인공 호흡기 및 과도한 튜브 설정 요구 사항에 대한 필요성을 제거합니다.
이러한 모든 일반적인 모니터와 기능이 단일 장비로 결합되므로 튜브 설정이 실질적으로 간소화됩니다. 이 프로토콜의 목적은 올인원 디지털 마취 시스템의 설정 및 사용을 입증하는 것입니다.

<table><tbody><tr><td>삽관 키트</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>ETM-MSE</td><td>삽관 단계, 삽관 튜브, LED 조명</td></tr><tr><td>포함 이소플루란 액체 흡입 99.9%</td><td>Henry Schein, Inc.</td><td>1182097</td><td>유리병 250mL</td></tr><tr><td>MouseSTAT 맥박 산소 농도계</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SS-03</td><td>SomnoSuite</td></tr><tr><td>산소 탱크</td>에 통합 <td>Indiana Oxygen Company</td><td>23-160246</td><td>의료용 O2 99%</td></tr><tr><td>RoVent 자동 인공호흡기</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SS-04</td><td>SomnoSuite에 통합</td></tr><tr><td>SomnoSuite 저유량 디지털 마취 시스템</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SS-01</td><td>포함 RightTemp Homeothermic Warming control, pad, and temperature sensors</td></tr><tr><td>SomnoSuite 마우스 스타터 키트</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SOMNO-MSEKIT</td><td>노즈 콘, 주사기, 유도 챔버 및 숯 캐니스터 포함</td></tr></tbody></table>

설치류를 위한 통합 저유량 마취 기화기, 인공호흡기 및 생리적 모니터링 시스템 사용

Use of an Integrated Low-Flow Anesthetic Vaporizer, Ventilator, and Physiological Monitoring System for Rodents

저유동 디지털 기화기는 일반적으로 주사기 펌프를 사용하여 휘발성 마취제를 반송가스 스트림으로 직접 관리합니다. 동물 복지 권고에 따라 동물은 마취를 요구하는 시술 중에 따뜻해지고 모니터링됩니다. 일반적인 마취 및 생리 적 모니터링 장비에는 가스 탱크, 마취 기화기 및 스탠드, 온난화 컨트롤러 및 패드, 기계 환기기 및 맥박 산소계가 포함됩니다. 컴퓨터는 데이터 수집 및 장비 소프트웨어를 실행하는 데도 필요합니다. 작은 공간에서 또는 현장 작업을 수행할 때 제한된 공간에서 이 모든 장비를 구성하는 것이 어려울 수 있습니다.
이 프로토콜의 목표는 압축 산소와 실내 공기를 모두 사용하는 저류 디지털 기화기의 사용 모범 사례를 시연하는 것이며, 통합 기계식 인공호흡기, 맥박 산소계 및 원적외선 온난화를 설치류에 이상적인 올 인클루시브 마취 및 생리적 모니터링 제품군으로 사용하는 것입니다.

10주 된 남성, 야생형 C57Bl6j 마우스의 무게는 25.41± 0.8g의 마우스가 이 연구에 사용되었다. 마우스는 마취및 코 콘에 유지되거나 삽관하였으며 심박수와 산소 포화도를 모니터링하는 동안 1.5-2.5%의 이소플루란을 가진 통합 기계 식 인공호흡기에서 유지관리되었다. 동물들은 미세 절연 조정에 그룹 수용되었고, 병으로 표준 설치류 차우와 물에 무료로 접근할 수 있었습니다.
심박수 및 SpO2는 맥박 산소측정을 통해 유지 보수 중에 모니터링하였다(도5, 도 6,및 도 7,). 체온은 적외선 가열 패드 및 열램프를 통해 36.5-37.5 °C에서 유지되었습니다. 환기 동물은 통합 코 콘을 가진 삽관 스탠드를 통해 삽관 절차 도중 이소플루란의 연속납품을 수신했습니다. 각 마우스는 15분 동안 실내 공기(RA) 또는 산소(O2)의 141mL/min을 초과하지않는 낮은 유량으로 코 콘에 성공적으로 환기 또는 유지관리되었다. 동물의 심박수와 혈액 산소 포화도는 모든 그룹에 대한 측정에서 몇 가지 중요한 변화와 함께 안정적으로 유지되었습니다. SpO2는 모든 그룹에 대해 82-99 % 사이로 유지되었으며 체온은 36.5-37.5 ° C 사이에서 유지되었습니다. 우리는 펄스 옥시미터와 체온의 두 위치가 SpO2 측정에 영향을 미치는 것을 관찰했습니다. 우리는 펄스 옥시미터에서 무효 판독을 관찰하는 경우, 우리는 코어 체온을 안정적으로 유지하기 위해 센서및 가열 수준의 배치를 조정했다.
본페로니 보정을 하는 양방향 ANOVA는 도 5, 도 6및 도 7에서데이터의 중요성을 결정하기 위해 수행되었다. p-값0.05 미만은 중요한 것으로 간주되었습니다. 
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61311/61311fig01.jpg"> 그림 1: 마취 유도 및 코 콘 유지 보수를 위한 튜브 설정 다이어그램. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61311/61311fig01large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61311/61311fig02.jpg"> 그림 2: 마취 유도, 삽관 및 환기를 위한 튜브 설정 다이어그램. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61311/61311fig02large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61311/61311fig03.jpg"> 도 3: 마우스는 통합 코 콘을 가진 관착 스탠드를 통해 관관 절차 도중 이소플루란의 연속 납품을 수신하였다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61311/61311fig03large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61311/61311fig04.jpg"> 그림 4: 뒷발 위에 통합 펄스 산소계 센서 배치. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61311/61311fig04large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61311/61311fig05.jpg"> 그림 5: 15분 이상 평균 심박수 ± 실내 공기(RA) 또는 100%산소(O2)가코 콘을 통해 전달되거나 기관관(n=5/그룹)을 통해 환기됩니다. 그룹 간에 는 큰 차이가 관찰되지 않았습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61311/61311fig05large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61311/61311fig06.jpg"> 그림 6: 저유질 마취 시스템으로 초기 마취 유도 후 기록된 심박수 값(bpm). 평균 심박수 값은 15분 동안 30초 간격으로 계산됩니다. 각 데이터 포인트는 각 그룹의 모든 동물의 ± SD(n=5)를 나타냅니다. 심박수에 있는 중요한 변경은 어떤 단에 있는 15 분 기간 동안 관찰되지 않았습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61311/61311fig06large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61311/61311fig07.jpg"> 그림 7: 조직 산소 포화 수준 (%) 낮은 유량 마취 시스템으로 초기 마취 유도 후. 평균 SpO2 값은 15분 동안 30초 간격으로 계산됩니다. 각 데이터 포인트는 각 그룹의 모든 동물의 ± SD(n=5)를 나타냅니다. SpO2의 중요한 변화는 어떤 그룹에서도 15분 동안 관찰되지 않았다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61311/61311fig07large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

여기서, 우리는 통합 된 인공 호흡기 및 생리 모니터링 모듈을 갖춘 디지털, 저류 마취 시스템을 사용하여 마우스에게 마취 가스를 안전하고 효과적으로 투여하는 프로토콜을 제시합니다.

Low-flow digital vaporizers commonly utilize a syringe pump to directly administer volatile anesthetics into a stream of carrier gas. Per animal welfare ...

이 프로토콜은 저유량 전자 기화기, 통합 인공호흡기, 맥박 산소 측정기 및 원적외선 온난화 패드를 포함하는 모든 것을 포함하는 마취 및 생리학적 모니터링 제품군의 최상의 용도를 강조합니다. 이 방법론은 벤치 또는 실험실 공간이 제한된 모든 시설에 유용합니다. 또한 올인원 시스템을 사용하면 압축 가스 탱크와 별도의 생리학적 모니터링 장비가 필요하지 않습니다.이 절차를 시연하는 사람은 퍼듀 대학교(Purdue University)의 의생명공학 박사 과정 학생인 루크 쉐퍼스(Luke Schepers)입니다. 저유량 기화기를 설정하려면 운반 가스 소스를 선택하고 시스템 뒷면의 흡입구에서 빨간색 캡을 제거하여 시스템이 실내 공기를 흡입할 수 있도록 합니다. 압축 가스 공급원을 사용하는 경우 제곱인치당 15파운드로 설정된 압력 조절기와 감압기를 사용하십시오.그리고 장치를 시스템 뒷면의 압축기 가스 포트에 연결합니다. 숯 캐니스터를 배기구에 연결합니다. 그리고 액세서리 커넥터를 시스템 전면의 흡기 및 호기 포트에 연결합니다.유도 챔버를 파란색 클립으로 나뭇가지에 연결하고 노즈 콘을 흰색 클립으로 가지에 연결합니다. 통합 인공호흡기를 설정하려면 삽관 커넥터 튜브를 노란색 클립이 있는 가지에 연결합니다. Vent Run Screen에서 인공호흡기 데드 스페이스를 보정하려면 설정 및 보정 및 테스트를 터치한 다음 데드 스페이스 측정을 선택하고 다이얼을 눌러 통합 맥박 산소 농도계를 설정하고 시스템 뒷면에 있는 마우스 stat 포트의 센서를 연결합니다 B.To 연결합니다.원적외선 보온 패드를 설정하려면 보온 패드를 시스템 전면의 패드 전원 포트에 연결합니다. 그런 다음 한 센서를 본체 센서 포트에 연결하고 다른 센서를 패드 센서 포트에 연결하고 패드 센서를 보온 패드에 고정합니다. Anest Run Screen에서 마취 전달을 위한 시스템 설정을 구성하려면 설정을 터치하고 마취제를 선택합니다.터치하고 anest를 입력한 다음 다이얼 B를 돌려 isoflurane 또는 sevoflurane을 선택합니다. 이 주사기 크기를 설정하려면 주사기 크기를 터치하고 다이얼 B를 돌려 크기를 선택합니다. 뒤로를 터치하여 Anest Run Screen으로 돌아가 보틀 탑 어댑터를 사용하여 주사기에 마취제를 채웁니다.주사기를 마취 시스템에 연결하고 제거를 터치하여 필요에 따라 푸셔 블록을 뒤로 이동합니다. 주사기를 프라이밍하려면 프라임을 길게 눌러 블록이 주사기 플런저 상단에 닿을 때까지 푸셔 블록을 앞으로 이동합니다. 기계적 환기를 설정하려면 Vent Run Screen 탭을 열고 Setup을 누릅니다.체중을 누르고 동물의 체중을 입력합니다. 그런 다음 Priority를 눌러 볼륨 또는 압력 제어 환기를 선택합니다. 적절한 호흡수와 일회 호흡량이 자동으로 설정됩니다.맥박 산소 측정 매개변수를 설정하려면 Oxy 실행 화면 탭을 열고 설정을 누릅니다. Minimum HR을 누르고 다이얼 B를 돌려 허용되는 최소 심박수 판독값을 설정합니다. 웜 런 화면에서 워밍 매개변수를 설정하려면 설정을 누르고 워밍 방법과 목표 온도 설정을 선택합니다.Anest Run Screen에서 마우스를 마취하려면 인덕션을 터치하여 공기 흐름을 시작합니다. 기본 유도 유량은 분당 500밀리리터입니다. 다이얼 A를 돌려 필요에 따라 유량을 조정합니다.마우스를 인덕션 챔버에 넣고 뚜껑을 단단히 닫습니다. 이소플루란의 경우 마취제 농도 다이얼을 3%로 조정합니다. 기본 유도 유량은 분당 500밀리리터입니다.다이얼 A를 돌려 필요에 따라 유량을 조정합니다. Deliver(전달)를 눌러 마취 전달을 시작합니다. 동물이 충분히 마취되면 인덕션을 다시 터치한 다음 챔버를 플러시하여 챔버에 남아 있는 마취 가스를 줄입니다.노즈콘으로 이어지는 클립을 열고 챔버로 이어지는 클립을 닫습니다. 노즈콘을 터치하여 공기 흐름을 시작하고 즉시 노즈콘을 동물에 맞춥니다. 적외선 보온 패드에 동물을 중앙에 놓고 동물 센서를 직장 프로브로 삽입하여 체온을 제어합니다.기계적 환기를 시작하려면 마취된 동물을 삽관 스테이지에 놓고 수직 삽관 스테이지에 고정된 실을 사용하여 동물을 위쪽 앞니에 매달아 놓습니다. 동물의 혀를 부드럽게 옆으로 보여주고 혁신 키트에 제공된 조명을 사용하여 기관을 시각화합니다. 기관내관을 조심스럽게 삽입합니다.올바른 배치는 작은 공기 주머니를 튜브에 연결하고 폐 팽창을 확인하여 확인할 수 있습니다. 스톱 노즈콘을 터치하여 공기 흐름을 멈추고 노즈콘에 있는 클립을 닫고 환기 튜브에 있는 클립을 엽니다. 기관내관을 인공호흡 튜브에 연결하고 인공호흡기 시작을 터치하여 인공호흡을 시작합니다.생리학적 모니터링을 시작하려면 센서를 동물의 한쪽 뒷발에 가볍게 끼우면 맥박 산소 측정기가 자동으로 심박수와 혈중 산소 포화도를 읽기 시작합니다. Oxy 실행 화면 탭을 터치하여 view 맥박 산소 측정 데이터. 심박수와 혈중 산소 포화도는 펄스 출력 대칭을 통해 유지 보수 중에 모니터링할 수 있습니다.이 대표적인 분석에서 동물의 심박수와 혈중 산소 포화도는 안정적으로 유지되었으며 모든 그룹에 대한 두 측정 모두에서 유의미한 변화가 거의 관찰되지 않았습니다. 그리고 혈중 산소 포화도가 82%에서 99% 사이로 유지되는 이 기술을 통해 연구원들은 압축 가스 없이 더 낮은 유속으로 마취를 전달할 수 있습니다. 유량이 낮을수록 가스 낭비가 줄어들고 연구 인력에 대한 노출이 줄어듭니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

쥐 호흡 생리학과기도 염증 세포의 샘플링의 반복 측정이 바람직하지만, 일반적으로 가능하지 않습니다. 여기 구두기도 염증 세포의기도 기능 항 진성과 샘플링의 반복 측정을 허용 쥐를 intubating에 대한 반복 방법을 설명합니다.

에어웨이 저항 측정 및 마우스에 Bronchoalveolar 세척 유체 샘플링에 대한 가역, 비침습 방법

SCIREQ Inc의 몬트리올, 품질 관리, 현재의 프로토콜은 호흡 역학의 측정​​뿐만 아니라 강제 진동 기술을 사용하여 마우스의 흡입 메타 콜린에 대한기도 응답의 평가 (flexiVent을 실행하는 데 필요한 절차에 대한 자세한 단계별 설명을 제공합니다 , 캐나다).

강제 진동 기술을 사용하여 마우스의 호흡기 시스템 역학의 평가

복원력 반사 손실이 긴 동물 실험에서, 또한 최면이라는 의식을위한 표준 행동 대리 역임했다. 약리학 적 개입으로 인한 휘발성 마취제 감도의 변화는 흡입 치료제의 전달을 위해 적응 될 수있다 신중하게 제어 높은 처리량 평가 시스템으로 검출 될 수있다.

로컬 또는 전신 약물 개입 후 마우스의 휘발성 전신 마취 감도의 변화를 평가

생체 외 관류 폐 (EVLP)은 인간의 폐 이식 더욱 쉽게 이용할 공여체 풀 장기를 평가하고 확장 할 수 있도록함으로써 될 수있다. 여기서는 쥐 EVLP 프로그램 및 미래의 확장을위한 재현성있는 모델을 허용 세목의 개발을 기술한다.

고립의 방법<em&gt; 전의 VIVO</em쥐 모델에서&gt; 폐 관류 : 쥐 EVLP 프로그램 개발에서 교훈을

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여기에서는 주사기 구동 직접 분사 기화기를 사용하는 디지털 저유량 마취 시스템을 사용하여 마우스에 마취 가스를 보다 안전하고 효율적으로 투여하는 프로토콜을 제시합니다.

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우리는 흡입 집중 치료 포화에 사용되는 장치를 통해 할로겐화 제, 이소플루란 및 세보플루란으로 체레이션을 받는 돼지에서 염산 유발 급성 호흡 곤란 증후군 (ARDS)의 모델을 설명합니다. 이 모형은 폐 상해 및 수리에 할로겐화한 에이전트의 생물학 기계장치를 조사하기 위하여 이용될 수 있습니다.

중환자실 유형 장치를 통해 급성 호흡 곤란 증후군의 돼지 모델에서 할로겐화 에이전트 납품

목표는 EVLP 전반에 걸쳐 4시간 동안 일관된 폐 기능을 유지할 수 있는 쥐에서 새로운 생체 외 폐 관류(EVLP) 모델을 개발하고 설치류 모델에 EVLP를 적용하기 위한 견고한 방법을 제공할 구현 세부 사항을 업계에 제공하는 것입니다.

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제안된 설정은 쥐와 쥐의 3D 흉부 움직임에 대한 제어된 기계적 환기 및 자기 공명 영상을 허용합니다. 우리는 이 설정을 사용하여 기계적 환기로 인한 호흡근 기능 장애의 기저에 있는 병태생리학을 연구했습니다.

기계 환기된 마우스와 쥐의 호흡 운동에 대한 3D Cine 자기 공명 영상

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기계적으로 환기된 쥐의 발관에 대한 구조화된 접근 방식

학습하세요 생쥐 마취를 위한 통합 저유량 기화기, 인공호흡기 및 생리적 모니터링 시스템 설정 방법을. 이 일체형 시스템은 공간이 제한된 연구 시설에서 안전하고 효율적인 마취를 가능하게 합니다.

설치류를 위한 통합 저유량 마취 기화기, 인공호흡기 및 생리적 모니터링 시스템 사용

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