Name: 추가 세포 매트릭스 기반 및 추가 세포 매트릭스 -Murine 고환 오르가노이드의 추가 세포 매트릭스 없는 생성 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-10-07T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 18 s
Description: 학습하세요 생쥐 고환 세포를 이용한 고환 오르가노이드 생성 방법을 ECM 및 ECM-free 환경에서 2D와 3D 배양 조건으로 수행하는 기술입니다. 이 프로토콜은 생식 생물학 연구와 체내 정자형성 연구에 활용됩니다.

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이 작품은 국립 보건원, 국립 아동 보건 및 인간 개발 연구소 (NICHD) F31 HD089693, 국립 환경 보건 과학 연구소 / 국립 환경 보건 센터 (NIEHS / NCATS) UH3TR01207 및 4UH3ES029073-03, 그리고 토마스 Jkin의 기념 교수에 의해 지원되었다.
저자는 전송 전자 현미경 검사법에 그들의 도움을 에릭 W. 로스 감사 하 고 싶습니다. 이 작품은 노스 웨스턴 대학의 NUANCE 센터의 BioCryo 시설을 사용, 이는 소프트 및 하이브리드 나노 기술 실험 (SHyNE) 자원 (NSF ECCS-1542205)의 지원을받고있다; 재료 연구 센터에서 MRSEC 프로그램 (NSF DMR-1720139); 국제 나노 기술 연구소 (IIN); 그리고 일리노이 주, IIN을 통해. 또한 MRI 프로그램(NSF DMR-1229693)의 지원을 받은 CryoCluster 장비를 사용했습니다. 그림 1의 그래픽은 BioRender.com 사용하여 설계되었습니다.

모든 마우스 실험은 노스웨스턴 대학의 기관 동물 관리 및 사용 위원회 (IACUC)에 의해 승인되었으며, 모든 절차는 IACUC 승인 프로토콜에 따라 수행되었습니다.
1. 효소 조직 해리 솔루션의 준비
<ol><li>기저 배양 배지 솔루션(BM)을 사용하여 만들어진 두 가지 효소 솔루션(솔루션 1 및 솔루션 2)을 사용합니다.</li>
	<li>BM을 준비하려면 혈청과 페니실린 연쇄 절제술을 최소 필수 매체에 각각 10%와 1%의 최종 농도에 추가합니다(특정 시약의 재료 표 참조). 그런 다음 0.22 μm 필터를 통해 BM을 걸레로 멸균하십시오. 세포와 사용하기 전에, 배양 접시에 분배하고 가습, 5 % CO2 인큐베이터 내에서 배치하여 중성 pH에 멸균 BM을 최소 1 h의 최소 37 ° C로 평형. 참고 : BM은 신선한 BM을 만들어야 하는 후 최대 1 주일 동안 4 °C에서 저장할 수 있습니다.</li>
	<li>콜라게나아제 1주식용액을 제조하기 위해 먼저 1mL의 콜라게나아제 1mL를 멸균배등급H2O(최종농도 10% m/v)로 녹이고, 반전 또는 소용돌이를 녹이고, 20μL 알리코를 -20°C에 저장하여 나중에 사용한다. 알리쿼트는 한 번만 해동해야 합니다.</li>
	<li>deoxyribonuclease I (DNase I) 스톡 솔루션을 준비하려면, 멸균 배아 등급 H2O (최종 농도 2 % m / v), 반전 또는 소용돌이 (소용돌이하지 않음) 1 mL에 DNase I 20 mg을 추가하고 나중에 사용하기 위해 -20 μL 알리코트20을 저장합니다. 알리쿼트는 한 번만 해동해야 합니다.</li>
	<li>히알루로니다제 스톡 솔루션의 경우, 30 mg을 멸균 인산염 완충식 식염수(PBS; 최종 농도 3% m/v 히알루로니다아제)에 Ca++/Mg+++가함유된 PBS에 넣고, 반전 또는 소용돌이를 해소하고, 100μL 알리코트(-20°C)를 저장하여 나중에 사용할 수 있도록 -200°C에 저장하십시오.++ 알리쿼트(Aliquots)는 효소 활동을 잃지 않고 여러 번 해동및 재냉동할 수 있습니다.</li>
	<li>해리용액 1을준비하려면 10 μL 콜라게나아제 I 및 10 μL DNase I를 멸균, 미리 평형된 BM 1mL에 추가하십시오(최종 농도: 1 mg/mL 콜라게나아제 I 및 5 μg/mL DNase I). 파이펫으로 부드럽게 삼중하여 용액을 혼합하고 조직과 사용하기 전에 37°C로 미리 데우십시오. 참고: 용액 2는 용액 1mL당 33 μL(37°C로 예열)을 추가하여 제조됩니다(1 mg/mL의 최종 농도). 이것은 아래 단계 2.5에서 고환 조직의 효소 해리를 통해 중간 방법으로 발생합니다.</li>
</ol>2. 고환 조직 해리
참고: 모든 마우스는 폴리프로필렌 케이지 내에 보관되었고 음식과 물 광고 리비툼을 제공했습니다. 동물은 식물성 에스트로겐을 포함하지 않는 조사 차우를 공급했다. 청소년 CD-1 마우스, 5일 산후(dpp)는 이소플루란 기포화기(O2에서 2.5 L/min)에 부착된 마취챔버 내에서 안락사 및 조직 수집 전에 모든2실험및 마취에 사용되었다. 마우스는 발가락 찌르기에 대한 반응의 부재를 통해 전체 마취를 위해 확인되었으며, 그 후 마우스는 참수를 통해 안락사되었다.
<ol><li>이소플루란 챔버에서 마우스를 마취하고 발가락 찌르기를 통해 마취를 보장한 다음 날카로운 가위를 사용하여 마우스를 참수합니다. 안락사 마우스 수핀을 해부 매트에 놓고 70 %의 에탄올로 복부를 살균하십시오. 집게로 하복부의 피부를 텐트와 가위로 복부를 엽니다.</li>
	<li>복부의 왼쪽 아래 및 오른쪽 잉구 부위에 있는 고환을 찾아내다. 꽃병 연기 및 모든 고정 결합 조직에 그들의 연결을 잘라, 다음 전체 고환을 들어 올립니다 (epididymis 여전히 부착) 동물에서. 미리 평형된 BM의 페트리 접시에 고환을 놓습니다.</li>
	<li>해부 현미경과 멸균 필드 내에서, 작은 미세 절제 가위로 또는 두 개의 미세 포셉을 사용하여 부드럽게 찢어각 고환의 한쪽 끝에 튜니카 알부진에 작은 절개를합니다.<ol>
<li>그런 다음 절개 반대쪽 끝에서 고환을 들고 있는 동안, 미세한 집게로 고환을 부드럽게 짜내고 튜니카의 구멍을 향해 부드럽게 스위핑 동작을 밀어 넣습니다. 이것은 하나의 응집력 조각으로 고환 조직을 풀어 놓을 것입니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>고환을 더 작은 조각(≤ 2mm3)으로자르고 1mL의 사전 따뜻하게(37°C) 해리용액 1에 넣습니다.<ol>
<li>37°C에서 10분 동안 배양합니다.</li>
		<li>10개 이상의 고환의 경우, 총 해리 용액 볼륨을 1mL로 늘려 10개의 고환당 최소 1mL의 해리 용액(예: 20고트용 2mL, 30개의 고환용 3mL 등)을 보장한다.</li>
		<li>P1000 파이펫을 사용하여 용액 1에서 50배(50배)의 고환 조각을 부드럽게 세리라세이트합니다. 튜블러가 서로 분리되어 이 시점에서 간질 조직으로부터 분리되는지 확인하십시오. 덩어리가 남아 있으면 5분 추가로 배양하고 다시 한 번(50배)을 세리하게 삼중시합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>용액 1mL당 33 μL의 히알루로니다제 스톡 용액(37°C에서 미리 데워져 1.5단계)을 1mL당 추가합니다(부분적으로 해리된 고환 조직 및 튜블러 포함). 히알루로니다아제를 추가한 후 이를 용액 2라고 합니다.<ol>
<li>P1000을 이용하여 삼위일체(50x)를 5분 동안 37°C에서 배양한다.</li>
		<li>P200 파이펫을 사용하여 삼위율(50배).</li>
		<li>이 시점에서 눈에 보이는 튜블이나 세포의 덩어리가 존재하지 않는지 확인합니다. 덩어리가 지속되면 P200 파이펫(50x)을 사용하여 추가 트리튜레이션을 사용하여 최대 5분 동안 배양합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>태아소 혈청(FBS)을 용액 2의 총 부피의 10%에 추가하여 해리 효소를 담금질한다. P200 파이펫을 사용하여 여러 번 세리라테스하여 덩어리가 남지 않도록 하고 40 μm 셀 스트레이너를 통과하여 단일 셀 서스펜션을 생성합니다.</li>
	<li>원심분리기 세포는 7분 동안 100 x g로, 상신을 버리고, 신선한 BM에서 세포를 다시 분리한다.</li>
	<li>혈종계에서 트라이판 블루 제외를 사용하여 총 및 실행 가능한 세포 농도를 계산합니다. 1:1 희석, 셀 서스펜션의 10 μL추가: 트라이판 블루 용액, 혈전계 세포 계수 챔버에 (재료의 표참조).<ol>
<li>7 분 동안 100 x g에서 다시 원심 분리기 세포와 신선한 BM에서 다시 중단. 참고: 셀 농도 및 수를 계산하기 위해 실행 가능한 셀만 사용합니다. 유기체 생성을 위한 ≥ 80%의 생존가능성의 세포 현탁액만 사용하십시오.</li>
		<li>제3항에서 아래 프로토콜특이단계에 사용된 부피를 감안할 때 280,000개의 세포를 알리쿼트하기 위해 설명된 바와 같이 단일 세포 현탁액을 세포 농도로 준비: 2D ECM-Free – 0.56 x 106 세포/mL, 2D ECM – 0.56 x 106 셀/mL, 3D ECM-Free – 4.66 x 106 셀/mL, 3D ECM – 2.8 x 106 셀/mL. 참고: 여기에 제시된 모든 배양 실험은 배양당 280,000개의 세포로 시작됩니다. 이 숫자는 도 1, 그림 2, 도 3 및 그림 4의대표 데이터와 일치합니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. 오르가노이드 배양 요리 준비 및 세포 파종
참고: 동질적인 ECM을 보장하기 위해 실험 전에 밤새 ECM의 냉동 알리쿼트를 미리 해동하십시오. ECM 알리쿼트(ECM aliquots)는 느리고 점진적인 온도 증가를 보장하기 위해 4°C 냉장고 또는 콜드룸 내에 얼음 양동이 내에 침수되어야 합니다. 모든 ECM은 BM에서 1:1 최종 희석에서 배양에 사용됩니다. 해동 된 ECM과 1:1 희석 ECM을 사용 직전까지 얼음에 보관하면 ECM이 조기에 중합 될 수 있습니다.
<ol><li>2D ECM 프리 배양의 경우, 특별한 준비가 필요하지 않으며, 플레이트 단세포 서스펜션(BM에서 0.56 x 106 셀/mL의 500 μL)을 4웰 챔버 슬라이드에 직접 배치하고 배양을 위한 35°C 인큐베이터에 배치한다. 참고: 세포는 배양의 처음 24 시간 내의 배양 접시의 바닥을 준수해야하며,이 같은 시간 내에 몇 가지 작은 3D 세포 클러스터를 나타낼 수 있습니다.</li>
	<li>2D ECM 배양의 경우, 100 μL의 차가운 1:1 희석된 세포외 외외 매트릭스 배지를 4웰 챔버 슬라이드에 분배하여 젤이 접시 바닥 전체를 덮도록 합니다.<ol>
<li>ECM이 젤로 중합할 수 있도록 챔버 슬라이드를 35°C 인큐베이터에 최소 30분 동안 배치합니다.</li>
		<li>세포 현탁액(BM에서 0.56 x 106 셀/mL의 500 μL)을 2D 젤 의 상단에 직접 추가하면 중합된다. 참고: 셀은 함께 클러스터링하여 배양의 처음 24h 내에서 작은 3D 클러스터를 형성해야 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>3D ECM 프리 배양을 위해 세포 배양을 시작하기 전에 아가로즈 3D 페트리 접시 인서트를 준비하십시오.<ol>
<li>먼저, 100mL 비커에 1.5g아가로즈 파우더를 넣고 75mL 멸균, 증류수 및 전자레인지를 추가하여 3D 페트리 접시 주조를 위해 용융 2% 아가로즈를 생산합니다.</li>
		<li>멸균 작업 공간 내에서 반월상 연골이 곰팡이의 측면과 수평이 될 때까지 3D 페트리 접시 금형에 용융 아가로즈를 분배합니다.</li>
		<li>아가로즈가 식히고 굳어지도록 합니다. 단단하면, 금형을 거꾸로 뒤집어 아가로즈 3D 페트리 접시가 곰팡이에서 벗어날 때까지 부드럽게 반복적으로 구부립니다. 참고:이 시점에서, 하나는 많은 아가로즈 3D 페트리 요리를 준비하고 한 달 이상 4 ° C에서 멸균 H2O 또는 DPBS에 저장할 수 있습니다.</li>
		<li>배양하기 전에 아가로즈 3D 페트리 요리를 24개의 웰 컬처 디쉬에 넣고 BM 1mL로 덮습니다. 3D 페트리 요리가 BM에서 37°C 배양 인큐베이터 내에서 최소 30분 동안 평형화하게 하십시오. BM을 버리고 1mL 의 신선한 BM으로 다시 한 번 평형을 반복하십시오. BM에서 3D 페트리 요리를 평형 한 후, 그들은 BM (즉, 분홍색)과 같은 색상으로 나타납니다.</li>
		<li>세포 시딩을 준비하려면 모든 BM을 우물에서 제거하고 신선한 BM의 200 μL을 분배하지만 3D 페트리 접시의 중앙 오목 내부는 빼지 않습니다. 또한, 마이크로웰 인서츠의 중앙 세포 파종 오목 내부에서 남은 BM을 수집한다.</li>
		<li>단일 세포 현탁액(BM의 60 μL에서 4.66 셀/mL)을 아가로즈 3D 페트리 접시의 중앙 오목으로 분배한다. 세포를 혼합하고 배양 시작 시 단일 세포 현탁액을 보장하기 위해 위아래로 부드럽게 세번째화합니다.</li>
		<li>가습 된 35 °C 인큐베이터에 배치하여 문화를 위해 하십시오. 다음 날, 마이크로웰 인서틀 주위에서 BM의 200 μL을 제거하고 신선한 BM 1mL로 대체하십시오. 이것은 전체 배양을 침수, 삽입의 평면 위의 액체 수준을 가져올 것이다.</li>
		<li>아가로즈 3D 페트리 접시 의 외부에서 천천히 조심스럽게 제거 / 추가. 오르가노이드는 하룻밤 동안 압축되어 바닥에서 휴식을 취할 수 있게 하고 미디어 변경으로 인해 오르가노이드를 방해받지 않게 해야 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>3D ECM 배양을 위해, BM의 세포 현탁액을 차갑고 사전 해동된 ECM(최종 농도 = 2.8 x 106 셀/mL)과 결합하여 단일 세포 현탁액을 준비한다.<ol>
<li>즉시 세포-ECM 혼합물을 4웰 챔버 슬라이드에 분배하여 혼합물이 플레이트의 전체 바닥을 덮도록 합니다.</li>
		<li>챔버 슬라이드를 인큐베이터에 35°C로 배치하고 그 내용이 중합되도록 합니다. 이 경우 최소 30분이 소요됩니다. 중합 후, 배양의 상단에 BM의 500 μL을 추가합니다. 참고: 세포는 배양의 처음 24시간 내에 작은 3D 골재를 형성하기 위해 함께 클러스터링해야 합니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. 오르가노이드 유지 보수
<ol><li>35 °C에서 모든 오르가노이드 모델 유형을 배양합니다. 모든 문화 유형의 경우 2일마다 미디어의 절반을 신선한 BM으로 교환합니다. 매체를 교환하는 동안 오가노이드가 실수로 수집되지 않도록 하려면 챔버 슬라이드 접시의 모서리와 아가로스 3D 페트리 접시 외부의 외부 지점에서 천천히 미디어를 수집하십시오. 모든 매체는 면역 분석 또는 기타 분석(즉, 분비 생식 호르몬 또는 사이토카인의 정량화)과 함께 사용하기 위해 -20°C에 저장될 수 있다.</li>
	<li>문화에서 7 일 후, 여포 자극 호르몬을 포함하는 BM을 사용 (최종 농도 20 mIU/mL) 및 인간의 chorionic 생식선 (최종 농도 4.5 IU/mL). 이는 모든 오르간성 배양 유형에 적용됩니다.</li>
	<li>시간이 지남에 따라 자기 조립, 개발 및 성장의 오르간 형성및 정량화 메트릭을 특성화하기 위한 모든 오르가노이드 배양(예: 시간 경과 이미징)을 일상적으로 이미지화합니다.</li>
</ol>5. 오르가노이드 컬렉션
참고: 모든 오르가노이드는 다운스트림 면역 라벨링 및 조직학적 분석을 위해 PBS에서 4% 파라포름알데히드로 고정할 수 있습니다. 회전시 실온에서 2시간 또는 4°C에서 하룻밤을 고정합니다.
<ol><li>2D ECM 이없는 배양물의 경우 먼저 샘플을 신선한 PBS로 헹구고 부착된 구문 위에 고정을 추가합니다.</li>
	<li>ECM(2D 및 3D) 배양 방법의 경우, PBS로 한 번 헹구고 ECM-오가노이드 샘플 의 상단에 직접 고정을 추가하거나(ECM 젤과 오르가노이드를 함께 고정하기 위해) 또는 오르가노이드를 위아래로 부드럽게 피펫하여 주변 ECM에서 자유롭게 하고, 별도의 튜브로 이송하여 수정을 위해 별도의 튜브로 옮김합니다.</li>
	<li>3D ECM 프리 문화의 경우 아가로즈 3D 페트리 접시의 중앙 오목 내에서 오르가노이드를 위아래로 부드럽게 피펫합니다. 이렇게 하면 오가노이드가 파이펫으로 쉽게 컬렉션을 용이하게 합니다. 그런 다음 고정을 위해 별도의 튜브로 오가노이드를 옮기십시오.</li>
	<li>파라핀으로 가공하기 전에, 조직 처리 젤의 소량(~30 μL) 내에 많은 오르가노이드(≥ 20)를 포함; 이렇게 하면 파라핀 블록 내의 작은 영역으로 오르가노이드를 방향을 지정하고 농축하여 파라핀 섹션 내에서 단면과 쉽게 시각적 식별을 할 때 보다 쉽게 관찰할 수 있습니다. 참고: 오가노이드는 파라핀을 포함시키고 마이크로토메에 절개한 후 식별하기가 어려울 수 있습니다.</li>
</ol>

저자는 공개 할 것이 없습니다.

이 organoid 생성 프로토콜이 완료되면 사용자는 ECM 또는 ECM이 없는 환경에서 고환 구조 및 오르가노이드를 조립할 수 있는 네 가지 문화 기술을 사용할 수 있습니다. 중요한 것은, 4가지 방법 모두를 통해 연구원은 시간 경과 화상 진찰 또는 비디오 기록을 통해 시간이 지남에 따라 비침습적으로 기관지 자기 조립을 관찰하고, 문화 도중 조직을 방해하지 않고, 분비한 호르몬과 사이토카인의 분석을 위해 조건부 된 미디어를 비침습적으로 수집할 수 있습니다. 모든 방법에서, 24h의 과정을 통해, 실험자는 세포 수가 허용하는 것처럼 수백 개의 오르가노이드 / 고환 구조를 생성할 수 있다. 이러한 방법은 다른 크기와 형태와 구조로 조직 자체 조립을 촉진; 오르가노이드 크기는 다른 오르가노이드보고서(34)에서볼 수 있듯이 배양에 사용되는 세포 수 및 농도에 따라 달라집니다. 오르가노이드 크기 나 직경을 줄이면 때로는 더 큰 오르가노이드에 있는 괴사의 내부 영역의 개발을 줄이는 데 도움이 될...

고환 오르간노이드는 시험관 내 고환 발달, 정자 발생 및생리학을연구하기 위한 선구적인 기술이다1,2,,3,,4. 몇 가지 방법은 오르가노이드 생성을 위해 탐구되었습니다; 여기에는 2차원(2D) 및 3차원(3D) 방향 모두에서 다양한 세포외 매트릭스(ECM) 및 ECM 프리 배양 시스템이 포함됩니다. 다른 세대 방법은 별개의 세포 조립 전략을 촉진 할 수있다; 이로 인해 게시된 오르가노이드 모델 간의 높은 수준의 형태학적 및 기능적 가변성을 초래합니다. 이 문서의 목적은 시험관 내 고환 모델의 현재 상태를 논의하고 고환 오르가노이드 실험을 설계 할 때 미래의 조사자를위한 템플릿 역할을하는 것입니다. 본 연구에서는, 4개의 상이한 배양 시스템 원형이 실험 과정 및 생물학적 결과로 정의되고 특징지입니다. 여기에는 2D ECM-Free, 2D ECM, 3D ECM-Free 및 3D ECM 배양 방법이 포함됩니다. 여기에 제시된 전략은 다른 실험실과 연구 그룹 간에 간단하고 접근 가능하며 매우 재현할 수 있도록 하기 위한 것입니다.
역사적으로 고환에 대 한, 지정 "시험관", 고환 조직 및 세포의 몇 가지 다른 문화 방법에 대 한 사용 되었습니다. 이들 로는 조직/장기 배양 방법(즉, 절제배)5,분리된 반열성 관배기 배양6,고환 세포 배양7,및 드노보 조직 형태발생(즉, 생물학적 구조 및 오르가노이드)1을포함한다. 체외 정자 발생에 대한 첫 번째 조사는 약 100년 전에 수행되었으며, 1920년8년에토끼 고환의 배양, 그리고 1937년 후반에는 마우스 이식9로수행되었다. 이러한 초기 실험 내에서 정자는 문화의 첫 주에 걸쳐 크게 퇴화하는 것으로 관찰되었다, 일부 메이오티분스 분화 세포가 확인되었지만. 이러한 역사적 보고서를 연상시키는 고환 절제 문화는 2011년에 부활하여 최적화되어 testis10을연구할 수 있는 가능한 기술이 되었습니다. 2011년부터, 절제문화는다중 보고11,,12,13에서불임 유능한정자를생산하고 있다. 그러나, 기존의 네이티브 고환 튜블러에 대한 절제 문화의 의존으로 인해, 이러한 최근의 발전은 "ex vivo"고환 기능 및 정자 발생, 유기체의 신체에서 제거 시 유지되거나 재개된 조직 기능의 예로 보다 정확하게 설명된다. 문학에 그것의 보급에도 불구하고, 고환 이질 내의 장기 세균 세포 유지 및 분화는14,,15,,16,,17,,18,특히 완전히 체외 정자 발생 (인간20에서마우스19 및 74에서 35 일)에서 완전히 관찰하기에 충분한 기간 동안 복제하기 어렵다. 100년 전에 경험한 많은 도전들이 오늘날에도 전 생체 내 정자 발생에서 여전히 경험된다는 사실에 흥미롭습니다.
전 생체 내 접근법과 는 달리, 고환 오르가노이드는 세포 공급원(즉, 1차 고환 세포)으로부터 시험관내에서 완전히 생성된 데 노보 조립 마이크로티슈이다. 고환 오르가노이드는 기존의 토착 조직에 대한 필드의 역사적 의존을 회피하고 시험관 내에서 고환 생물학을 완전히 재구성하는 창의적인 전략을 제공합니다. 대부분의 오르가노이드 조직 모델에 의해 공유 되는 여러 요구 사항이 있다; 이들(1)은 생체-모방 조직 형태 또는 건축, (2) 전이 조직의 다중 주요 세포 유형, (3) 자체 조립 또는 자가 조직 생성, (4) 표현된 조직의 기능 및 생리학의 어느 수준을 시뮬레이션하는능력(21,,22,,23,,24)을포함한다. 고환의 경우, 이것은 4가지 주요 특징에서 포착될 수 있습니다: (1) 주요 고환 세포 모형의 포함, 세균, 세르톨리, 레이디그, 관류 및 기타 간질 세포, (2) 세포 지향 조직 조립, (3) 적절한 구획화된 세포 유형이 별도의 관구구체(세균 및 세르톨리) 및 간질 영역(다른 모든 세포 유형), 및 (4) 조직 기능(예를 들어, 생식 호르몬 비결 반응 및 조직 유지 관리)의 어느 정도. 생식 세포 분화 전 생체 외및 시험관 내의 역사적 과제를 고려하여, 생체 내 모방 고환 아키텍처(즉, 반전류 관과 유사한 구조)의 재구성은 고환 생리학의 시뮬레이션(예: 내분비 기능)을 생성하는 데 우선순위가 될 수 있습니다.
공표된 고환 오르가노이드 방법의 대부분은 시판되는 ECM(예를 들어, 콜라겐 또는 독점 ECM 제형)25,,26,,27 또는 맞춤형 C롬(즉, 탈세포화된 고환 ECM 유래 하이드로겔)28,,29,,30을이용한다. 외인성 ECM은 조직 생성을 위한 조립 지원 발판을 제공함으로써 드 노보 조직 형성을 촉진한다. ECM 방법은 일부 생식 세포 존재 및 조직 모방 형태25, 28을,포함하여 조직 형성의 인상적인 수준을부여하고있다. 그러나, 이들이 사용하는 EM은 항상 보편적으로 이용가능한 것은 아니며(즉, 세포제거 ECM 유래 하이드로겔) 및 일부 방법은 정교한 젤 및 세포 파종(예: ECM 및 3D 프린팅의 3층 그라데이션)을25,,,31,32로필요로 한다. 스캐폴드 없는 방법(예: 매달려 있는 드롭 및 비부착 배양 판)33,,34,,35도 ECM 젤이나 스캐폴드 없이 견고하고 재현성이 높은 오르가노이드를 생성하였다. 그러나, 이러한 비계없는 오르가노이드의 조직 형태는 종종 생체 내 고환과 유사하며, 이들 보고서의 대부분은 조직 형성을 촉진하기 위해 생화학 ECM 첨가제를통합33,,34,,36,또는 대안적으로, 강제 세포 집계 및 다짐에 대한 원심분리에 의존34, 세포 지향 적 이주 조직을 연구하는 데 덜 이상적으로 만들기.34
이 원고에 제시된 4개의 organoid 생성 방법은 세포 중심 의 오르가노이드 자기 조립을 가능하게 하는 간단한 세포 파종을 사용하여 각각 ECM 의존성 및 독립적인 전략을 둘 다 포함합니다. 모든 4가지 기술은 동일한 세포 현탁액에서 수행될 수 있거나 사용자 지정 및 세포 형 농축 된 집단을 사용할 수 있습니다. 이러한 방법의 강점은 오르가노이드가 실시간으로 자체 조립되는 것을 관찰하고 고환 구조가 다른 배양 마이크로환경 사이에서 어떻게 자체 조립되는지 직접 비교할 수 있는 능력입니다. 이 4개의 문화 방법 사이 현상 차는 연구 질문 또는 조사자의 주제에 그들의 영향에 대 한 고려 되어야 한다. 각 방법은 24시간 이하 의 생물학적 구조 또는 오르가노이드를 생성합니다. 결론적으로, 여기에 제시된 방법은 시험관 내 고환 기관지 조립, 조직 발달 및 고환 생리학을 연구하기 위한 오르가노이드 조립 기술의 툴킷을 제공한다.

<table><tbody><tr><td>0.22 um 매체 메마른 여과</td>기 <td>Millipore 시그마</td><td>scgpu05re</td><td>메마른 거르는 매체를 위해</td></tr><tr><td>3&beta; HSD 일차 항체</td><td>Cosmo Bio Co</td><td>K0607</td><td>Leydig 세포 마커, 1:500 희석</td></tr><tr><td>AlexaFluor 568 &-마우스</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>A-21202</td><td>형광 태그 2차 항체</td></tr><tr><td>AlexaFluor 568 &-Rabbit</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>A10042</td><td>형광 태그 2차 항체</td></tr><tr><td>알파 최소 필수 매체</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>11-095-080</td><td>배양 매체의 기초</td></tr><tr><td>Collagenase I</td><td>Worthington Bio</td><td>LS004197</td><td>해리 용액 1</td></tr><tr><td>Corning Matrigel Membrane Matrix, LDEV-free</td><td>Corning</td><td>354234</td><td>2D 및 3D ECM 배양 젤 주조에 사용되는 세포 외 매트릭스</td></tr><tr><td>Countess Cell counter Thermo</td><td>Fisher Scientific</td><td>C10227</td><td>Autmated cell counter (혈구 측정기)</td></tr><tr><td>Countess 세포 계수 챔버 슬라이드</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>C10228</td><td>백작 자동 카운터와 함께 사용하기 위한 혈구계 슬라이드</td></tr><tr><td>DDX4 일차 항체</td><td>Abcam</td><td>138540</td><td>정자 마커, 1:500 희석</td></tr><tr><td>Deoxyribonuclease I (2,280 u/mgDW)</td><td>Worthington Bio</td><td>LS002140</td><td>해리 용액 1</td></tr><tr><td>DPBS 1X, + CaCl + MgCl</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>14040182</td><td>히알루로니다아제 재구성</td></tr>용 <tr><td>Dulbecco's Phosphate Buffered Saline +Ca/+Mg</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>14040117</td><td>PBS</td></tr><tr><td>Embryo Grade H2O</td><td>MIllipore Sigma</td><td>W1503</td><td>Collagenase I 및 Dnase I</td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>16000044</td><td>소변 담금질 용액</td></tr><tr><td>Follicle 재구성용 자극 호르몬</td><td>Abcam</td><td>ab51888</td><td>장기 오가노이드 배양용</td></tr><tr><td>인간 융모성 성선 자극 호르몬</td><td>Millipore Sigma</td><td>C1063</td><td>장기 오가노이드 배양용</td></tr><tr><td>Hyaluronidase, 소 고환</td><td>Millipore Sigma</td><td>H4272</td><td>해리 용액 2</td></tr><tr><td>Inhibin B 효소 결합 면역흡착 분석</td><td>Ansh Labs</td><td>AL-107</td><td>Inhibin B ELISA 키트</td></tr><tr><td>KnockOut 세럼 교체용</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>10828-028</td> 기초 매체 MicroTissues<td>용 혈청 소스</td></tr><tr><td>3D 페트리 접시 마이크로 몰드 스페로이드(24-35, 5x7 어레이)</td><td>Millipore Sigma</td><td>Z764051</td><td>3D ECM-Free 오가노이드 제조용</td></tr><tr><td>Nunc, Lab Tek II 챔버 슬라이드 시스템, 4-well</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>12-565-7</td><td>2D ECM-free 및 2D, 3D ECM 배양용</td></tr><tr><td>페니실린/스트렙토마이신</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15-140-122</td><td>미디어용 항생제</td></tr><tr><td>Richard-Allan Scientific; Histogel, 검체 처리 젤</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>HG-4000-012</td><td>파라핀 매립 보조용</td></tr><tr><td>SOX9 일차 항체</td><td>Millipore Sigma</td><td>AB5535</td><td>Sertoli Marker, 1:500 희석</td></tr><tr><td>Tedklad Global Mouse Chow (Breeder)</td><td>Teklad Global</td><td>2920</td><td>식물성 에스트로겐이 없는 마우스 식품</td></tr><tr><td>Tedklad Global Mouse Chow (유지 보수)</td><td>Teklad Global</td><td>2916</td><td>식물성 에스트로겐이 없는 쥐 음식</td></tr><tr><td>테스토스테론 효소 연결 면역흡착 분석</td><td>Calbiotech</td><td>TE373S</td><td>테스토스테론 ELISA 키트</td></tr><tr><td>Trypan 블루 솔루션, 0.4%</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15250061</td><td>세포 계수</td></tr><tr><td>&알파;SMA 주요 항체</td><td>Millipore Sigma</td><td>A2547</td><td>주위 마커, 1:500 희석</td></tr><tr><td>&베타; 카테닌 1차 항체</td><td>BD Biosciences</td><td>610154</td><td>Sertoli 세포질 마커, 1:100 희석</td></tr></tbody></table>

추가 세포 매트릭스 기반 및 추가 세포 매트릭스 -murine 고환 오르가노이드의 추가 세포 매트릭스 없는 생성

Extra Cellular Matrix-Based and Extra Cellular Matrix-Free Generation of Murine Testicular Organoids

고환 오르간노이드는 시험관 내 고환 발달, 정자 발생 및 내분비학을 연구하기위한 도구를 제공합니다. 고환 오르가노이드를 만들기 위해 여러 가지 방법이 개발되었습니다. 이러한 방법의 대부분은 세포외 매트릭스에 의존 (ECM) 드 노보 조직 조립을 촉진하기 위해, 그러나, 생물 모방 형태와 조직의 기능 측면에서 방법 사이에 차이가있다. 또한 게시된 메서드에 대한 직접 비교는 거의 없습니다. 여기서, 직접적인 비교는 제공된 결과와 함께 오르가노이드 생성 프로토콜의 차이를 연구함으로써 이루어집니다. 4개의 고풍화 생성 방법: (1) 2D ECM 프리, (2) 2D ECM, (3) 3D ECM 프리, 및 (4) 3D ECM 배양이 설명된다. 3개의 1차 벤치마크는 고환 오르간성 생성을 평가하기 위하여 이용되었습니다. 이들은 세포 자기 조립, 주요 세포 모형의 포함 (세르톨리, Leydig, 세균 및 peritubular 세포), 및 적당하게 구획조직 건축입니다. 테스트된 4개의 환경 중, 2D ECM 및 3D ECM 없는 배양은 관과 간질 세포 유형의 드 노보 구획화, 튜블러 유사 구조의 개발 및 확립된 장기 내분비 기능을 포함하여 네이티브 고환과 가장 유사한 내부 형태와 함께 오르가노이드를 생성했습니다. 모든 방법은 분류되지 않은, 1 차적인 골린 고환 세포 현탁액을 활용하고 일반적으로 접근 가능한 배양 자원을 이용했습니다. 이러한 고환 기관지 생성 기술은 시험관 내 고환 기관발생 및 생리학에 대한 연구 이니셔티브를 위한 매우 접근가능하고 재현 가능한 툴킷을 제공합니다.

오르가노이드 생성은 고환 세포가 배양의 72 h 이내에 자가 조립하지 않으면 실패한 것으로 간주되었지만, 여기에 제시된 모든 방법은 청소년 (5 dpp) 뮤린 세포를 사용할 때 24 시간 이내에 조립됩니다. 생물학적 구조 생성의 실패는 확장 배양(72h)이 후에도 자유롭게 중단된 세포(도 1에서0h 컬럼)의 연속으로 제시된다. 조직 자체 조립이 없는 경우, 모든 명백한 세포 클러스터는 부드러운 조작(즉, 파이펫팅)에도 따라 개별 세포로 쉽게 분산됩니다. 성공적으로 생성된 조직은 처음에 3D 셀 "클러스터"(그림 1의6h 열에 있는 노란색 화살표)로 관찰되었습니다. ECM이 없는 환경(2D 및 3D) 내에서, 이러한 구조는 특히 3D 아가로즈 페트리요리(그림 1A, C)에서문화의 처음 24h를 가로질러 "컴팩트"한 것으로 나타났습니다. ECM...

여기서, 1차 신생아 골린 고환 세포로부터 고환 오르가노이드를 발생시키는 네 가지 방법은 즉, 세포외 매트릭스(ECM) 및 ECM-없는 2D 및 3D 배양 환경으로 기술된다. 이러한 기술은 여러 연구 응용 프로그램을 가지고 있으며 시험관 내고 발달 및 생리학을 연구하는 데 특히 유용합니다.

추가 세포 매트릭스 기반 및 추가 세포 매트릭스 -Murine 고환 오르가노이드의 추가 세포 매트릭스 없는 생성

Testicular organoids provide a tool for studying testicular development, spermatogenesis, and endocrinology in vitro. Several methods have been developed ...

이러한 프로토콜을 통해 사용자는 2D 또는 3D 배양 조건에서 ECM 및 DCM 이없는 환경에서 많은 수의 구조적 모방 및 내분비 기능성 고환 오르가노이드를 생성할 수 있습니다. 이러한 기술은 매우 재현 가능하며 표준 생물학적 실험실 설정에 쉽게 적용되며 일반적인 도구와 재료만 활용합니다. 고환 오르간노이드는 체외에서 정자 발생 및 생식 내분비학을 시뮬레이션하기위한 새로운 도구이며, 언젠가 체외 게임 발생의 연구를 가능하게 할 수 있습니다.먼저 안락사 마우스 수핀을 해부 매트에 놓고 70%에탄올로 복부를 살균하는 것으로 시작합니다. 집게로 하복부의 피부를 텐트로 하고 가위로 엽니다. 복부의 왼쪽 아래 및 오른쪽 잉구인 영역에서 고환을 찾아 꽃병 연기 및 모든 고정 결합 조직에 그들의 연결을 잘라.그런 다음 동물에서 전체 고환을 들어 올립니다. 미리 평형된 BM의 페트리 접시에 놓습니다. 해부 현미경의 밑에, 작은 마이크로 해부 가위로 각 고환의 한쪽 끝에 튜니카 알부진에 있는 작은 절개를 하거나 2개의 미세 한 집게로 부드럽게 찢어서. 절개 반대쪽 끝에서 고환을 들고 있는 동안, 부드럽게 미세한 집게로 짜내고 튜니카의 구멍을 향해 스위핑 모션을 밀어 내고, 이는 고환 조직을 하나의 응집력 있는 조각으로 방출합니다.조직을 작은 조각으로 자른다. 조각을 예동 전열 용해 용액 1 밀리리터에 넣고 섭씨 37도에서 10분 동안 배양합니다. 인큐베이션 후 P1000 파이펫으로 고환 조각을 50회 부드럽게 세리라세이션합니다.튜블러가 서로 분리되어 있는지, 그리고 간질 조직으로부터 분리되는지 확인합니다. 덩어리가 남아 있으면 5분 동안 배양하고 다시 세리라울 수 있습니다. 해리 혼합물의 1 밀리리터당 33마이크로리터의 히알루로니다제 스톡 용액을 추가합니다.그런 다음 P1000 파이펫으로 50회 세리라기하고 샘플을 섭씨 37도에서 5분간 배양합니다. 인큐베이션 후 P200 파이펫으로 50회 세리라위드합니다. 눈에 보이는 튜블러 나 세포의 덩어리가 존재하지 않도록 한 후, 샘플의 총 부피의 10 %에 FBS를 추가하여 해리 효소를 담금하고 P200 파이펫으로 여러 번 세례합니다.40 마이크로미터 셀 스트레이너의 중앙을 미디어로 적시고 흡인한 다음 미리 젖은 여조기에 샘플을 추가하고 필터링하여 단일 셀 서스펜션을 생성합니다. 7분 동안 100배 g의 서스펜션을 원심분리합니다. 상체를 버리고 신선한 BM에서 세포를 다시 중단합니다. 트라이판 블루 제외를 사용하여 혈종계에서 실행 가능한 세포를 계산한 다음 원심 분리기를 다시 원심분리기를 다시 사용하여 신선한 BM에서 다시 중단하십시오. 2D ECM 프리 배양의 경우, 플레이트 단일 셀 서스펜션을 4웰 챔버 슬라이드에 직접 플레이트하고 슬라이드를 섭씨 35도 인큐베이터에 넣습니다.2D ECM 배양의 경우, 차가운 일대일 희석 세포 외 매트릭스 배지 100 마이크로리터를 4웰 챔버 슬라이드에 분배하여 젤이 접시 바닥을 덮도록 합니다. ECM이 젤로 중합할 수 있도록 최소 30분 동안 인큐베이터에 슬라이드를 넣은 다음 위에 셀 서스펜션을 추가합니다. 3D ECM 프리 문화를 원해보려면 아가로즈 3D 페트리 요리를 24웰 문화 요리에 넣고 BM 1밀리리터로 덮습니다. 요리는 35도 섭씨 인큐베이터에서 적어도 30 분 동안 BM에서 평형화 한 다음 BM을 버리고 신선한 BM의 1 밀리리터로 다시 한 번 평형을 반복하십시오. 모든 BM을 우물에서 제거하고 3D Petri 접시의 중앙 오목 내부가 아닌 신선한 BM의 200 마이크로 리터를 분배한 다음 마이크로 웰 인서트의 중앙 셀 파종 내부에서 남은 BM을 수집합니다.단일 셀 서스펜션을 중앙 오목으로 분배하고 위아래로 부드럽게 세트리튜트합니다. 문화를 위해 가습섭 씨 35도 인큐베이터에 접시를 넣습니다. 다음 날, 아가로즈 3D 페트리 접시 주변에서 기존 미디어를 천천히 조심스럽게 제거하고 신선한 BM1 밀리리터로 대체하십시오. 오르가노이드는 하룻밤 동안 압축되어 바닥에서 휴식을 취할 수 있어야합니다.3D ECM 배양의 경우, BM내 세포 현탁액의 동일한 부분을 차가운 사전 해동 ECM과 결합하여 단일 셀 서스펜션을 준비한다. 잘 혼합되어 있는지 확인하기 위해 여러 번 세리라위. 그런 다음 즉시 혼합물을 4웰 챔버 슬라이드에 분배하여 플레이트의 전체 바닥을 덮습니다.챔버 슬라이드를 섭씨 35도에서 배양하고 내용물들이 적어도 30분 동안 중합되도록 합니다. 중합 후, 배양 위에 BM의 500 마이크로 리터를 추가합니다. 문화는 섭씨 35도에서 모든 오르가노이드 모델 유형.모든 문화 유형의 경우 미디어의 절반을 2일마다 신선한 BM으로 교환하십시오. 이 프로토콜은 청소년 골린 고환 세포를 사용하여 24 시간 이내에 오르가노이드 생성을 달성하는 데 사용되었습니다. 성공적으로 생성된 조직은 처음에 3D 세포 클러스터로 관찰되었다.ECM 환경에서 셀 클러스터는 클러스터와 주변 환경 사이에 명확한 여백을 가지고 있습니다. 세포 클러스터는 또한 ECM을 통해 마이그레이션하고 함께 융합하는 것을 관찰했습니다. 3D ECM 배양은 다른 모든 문화 방법보다 드 노보 구조를 조립하는 데 훨씬 더 많은 시간이 필요했습니다.그리고 3D ECM 프리 문화는 3D 아가로즈 페트리 접시의 각 우물 내에서 하나의 크고 컴팩트한 클러스터로 가장 큰 클러스터를 생산했다. 오르가노이드 모델이 토착 조직과 유사한지 여부를 평가하기 위해 생물학적 구조는 세포 별 마커를 위해 프로브되고 면역 형광으로 시각화되었습니다. 2D ECM 및 3D ECM 프리 방법은 고환 구획화의 매우 모방내형태가 있는 오르가노이드를 생산했습니다.3D ECM 이없는 조립 된 오르가노이드에서 장기 분석을 수행했습니다. 오르가노이드는 14 일 동안 배양 된 다음 세포 및 구조 별 마커를 조사했습니다. 튜블러 와 같은 구조물이 관찰되었다.3D ECM 없는 오르가노이드는 또한 생식선 자극을 가진 12 주 문화에 있는 내분비 기능을 위해 공부되었습니다. 테스토스테론과 인히빈 B는 모두 오르가노이드 조절 배지에서 정량화되었다. 후 12 주, gonadotropins에 대 한 제거 되었다 48 시간, 남성 호르몬과 inhibin B 농도 감소 원인.생식선 호르몬 반환 될 때, 두 호르몬 농도 크게 증가, 적절 한 내 분 비 응답성을 보여주는. Organoid 어셈블리는 실행 가능한 미성숙 고환 세포의 자율적 행동을 활용합니다. 창의적인 실험은 맞춤형 셀 정렬 또는 하이브리드 세포 혼합물을 사용하여 쉽게 고안될 수 있습니다.세포 파종 에 이어, 라이브 비디오 이미징 또는 시간 경과 이미징은 오르가노이드 자체 조립을 정량화하는 데 사용할 수 있습니다. 문화 전반에 걸쳐, 오르가노이드 및 상태 배지는 조직학 및 아미노 분석 분석을 위해 수집될 수 있다.

extra-cellular-matrix-based-extra-cellular-matrix-free-generation

Research

연구

JoVE Journal

Developmental Biology

발생생물학

여기에 제시된 것은 전립선 상피 오르가노이드의 약리학적 반응을 연구하는 프로토콜이다. 오르가노이드는 생체 생물학과 밀접하게 유사하며 환자 유전학을 재현하여 매력적인 모델 시스템을 만듭니다. 전립선 오르가노이드는 야생형 전립선, 유전자 조작 마우스 모델, 양성 인간 조직 및 고급 전립선암에서 확립될 수 있습니다.

약리학적 반응에 유전형과 돌연변이 단면도를 번역하는 공구로 전립선 오르가노이드 문화

상피 및 기질 세포로 구성되는 인간 1 차 자궁내막 오르가노이드를 생성하고 네이티브 자궁내막 조직의 특성을 유지하는 프로토콜이 제시된다. 이 프로토콜은 자궁 조직 획득에서 자궁 내막 오르가노이드의 조직학적 처리에 이르는 방법을 설명합니다.

다세포 인간 1 차 자궁 내막 오르가노이드의 생성

여기서, 우리는 시판되는 마이크로웰 배양 시스템을 사용하여 고환 특이적 조직 구조를 가진 돼지 고환 오르가노이드의 재현 가능한 생성을 위한 프로토콜을 제시한다.

마이크로웰 배양을 이용한 고환 특이적 구조를 이용한 돼지 고환 오르가노이드 생성

유방 동맥은 외부 근상피 및 내부 발광 상피 세포를 포함하는 이중 층 구조입니다. 제시된 것은 차동 트립시니화를 이용하여 오르가노이드를 준비하는 프로토콜이다. 이 효율적인 방법은 연구원이 별도로 유선 양식 및 기능에 있는 그들의 역할에 관하여 질문을 탐구하기 위하여 이 2개의 세포 모형을 조작하는 것을 허용합니다.

차동 시도에 의한 모자이크 유방 오르가노이드 생성

이 프로토콜은 차등 원심분리를 통해 원발성 정상 및 종양 유방 조직에서 상피 오가노이드를 생성하는 접근 방식에 대해 논의합니다. 또한 3차원 배양 및 포매된 오가노이드의 면역형광 이미징에 대한 지침이 포함되어 있습니다.

계대증 없이 정상 및 종양 유방 조직에서 마우스 및 인간 상피 오가노이드 생성 및 이미징

성인 인간의 심장에서 분리된 섬유아세포를 배양하여 젤라틴 코팅된 접시에 합류시켜 심근 특이적 세포외 기질을 생성했습니다. 탈세포화 후, 이 기질은 다른 심장 세포 및 세포-기질 상호 작용의 배양 및 연구에 사용할 수 있습니다.

Culture Dish Coating을 위한 성인 인간 섬유아세포의 심장 세포외 기질 생산

오가노이드는 질병 모델링을 위한 유용한 도구가 되었습니다. 세포외 기질(ECM)은 오가노이드 생성 중 세포의 운명을 안내하며, 자연 조직과 유사한 시스템을 사용하면 모델 정확도를 향상시킬 수 있습니다. 이 연구는 동물 유래 ECM과 무이종 하이드로겔에서 유도만능줄기세포 유래 인간 장 오가노이드의 생성을 비교합니다.

인간 줄기세포 유지와 장 오가노이드 생성을 위한 기저막 매트릭스의 비교 연구

이 기사에서는 반고체 기저막 매트릭스 내에서 비장 세포를 응집하고 캡슐화하기 위한 프로토콜에 대해 설명합니다. 기저막 매트릭스 구축물은 오가노이드 발달 연구 또는 생체 내 이식 및 조직 재생 연구를 위한 3차원 배양에 사용할 수 있습니다.

쥐 비장 조직 형성을 조사하기 위한 Basement Membrane Matrix Encapsulated Cell Aggregation

이 프로토콜은 시험관 내 및 생체 내에서 고급 장액성 난소 암종(HGSOC) 마우스 모델의 개발을 자세히 설명합니다. 쥐 나팔관 오가노이드의 파생, 인간 HGSOC 유전학을 요약하기 위한 유전자 변형, 종양의 생체 내 발달을 위한 동계 마우스의 난소 활액낭에 도입.

고급 장액성 난소 암종 모델링을 위한 나팔관 상피 세포의 마우스 유래 오가노이드 라인 개발

이 프로토콜은 통제된 3차원 배양 시스템에서 유선의 형태형성의 주요 특징을 재현하는 인간 유방 오가노이드를 생성하는 정의된 하이드로겔 기반 방법을 설명합니다.

유방 형태 형성을 재현하는 3차원 인간 유방 오가노이드를 생성하는 정의된 하이드로겔 기반 방법

학습하세요 생쥐 고환 세포를 이용한 고환 오르가노이드 생성 방법을 ECM 및 ECM-free 환경에서 2D와 3D 배양 조건으로 수행하는 기술입니다. 이 프로토콜은 생식 생물학 연구와 체내 정자형성 연구에 활용됩니다.

추가 세포 매트릭스 기반 및 추가 세포 매트릭스 -Murine 고환 오르가노이드의 추가 세포 매트릭스 없는 생성

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