Name: 배아의 날 12.5 및 8 주 된 마우스의 혀 상피 및 메센키메 / 결합 조직에서 세포 해리 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-01-21T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 56 s
Description: 배우세요 마우스 혀 상피와 메센키메에서 고품질 단일 세포 분리 방법을. 타이로드 용액과 효소 처리를 활용한 이 프로토콜은 세포 생존율 95% 이상의 우수한 결과를 제공합니다.

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이 연구는 건강의 국가 학회에 의해 지원되었다, HXL에 R01DC012308 및 R21DC018089를 부여 번호. 우리는 브렛 마샬 (조지아 대학, 아테네, GA) 및 에곤 랑히니 (10 X 게놈, 플레전턴, 캘리포니아)에게 세포 해리에 관한 기술 적 지원 및 상담에 감사드립니다. 프란시스카 깁슨 번리 (조지아 대학, 아테네, 조지아) 영어 편집에 대한.

동물 사용 (연구 전반에 걸쳐 C57BL/6 마우스) 조지아 대학 기관 동물 관리 및 사용 위원회에 의해 승인 되었고 연구에 대 한 동물의 치료 및 사용에 대 한 건강 지침의 국가 학회에 따라 했다.
1. 동물 사용
참고: 마우스는 12시간/야간 주기하에서 조지아 대학의 동물 및 유제품 과학 부서의 동물 시설에서 사육되고 유지되었습니다.
<ol><li>배아 (E) 일 0.5로 마우스에서 질 플러그 검출의 날 정오를 지정합니다. 다음 실험을 위해 8주에 E12.5 및 산후 마우스에서 배아를 사용하십시오.</li>
</ol>2. 실험 전 준비
참고: 이 프로토콜에 필요한 계측기는 재료 표에나열됩니다.
<ol><li>실험 전에 자동 클라이브 계측기. 실험 중에 비드 멸균제를 사용하여 기기를 살균합니다.</li>
	<li>70% 에탄올 물티슈를 사용하여 수술 부위, 해부 현미경 및 생물 안전 캐비닛을 청소하십시오. 생물 안전 캐비닛의 자외선을 켜고 실험 절차 전에 20 분 동안 유지하십시오.</li>
	<li>1:1 디스파제(5.0 mg/mL)와 콜라게나아제(2.0 mg/mL)의 효소 혼합물을 각각 2.5 및 1.0 mg/mL의 최종 농도로 준비하고 0.22 μm 주사기 필터7을사용하여 용액을 필터링한다.<ol>
<li>성인 혀용 효소 혼합물 1mL 또는 특정 혀 부위(예: 후방 또는 전방 혀)를 위해 0.5mL를 준비합니다.</li>
		<li>배아 혀를 위해 효소 혼합물 2mL를 준비합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>0.1 M PBS에서 2.5 % BSA의 10 mL을 만들고 1 mL 주사기 및 0.22 μm 주사기 필터를 사용하여 용액을 필터링하십시오.</li>
	<li>DMEM/F12에서 5%의 FBS 500 μL을 만듭니다.</li>
	<li>10% FBS 및 1% BSA를 포함하는 DMEM/F12의 3mL을 만들고 1mL 주사기 및 0.22 μm 주사기 필터를 사용하여 용액을 필터링합니다.</li>
</ol>3. 중간 엽/기본 결합 조직에서 혀 상피의 분리
<ol><li>E12.5 마우스 혀의 중간에서 상피의 분리<ol>
<li>E12.5 배아를 운반하는 시간 초과 임신 한 여성 마우스를 CO2 챔버에 배치한 다음 자궁 경부 탈구를 합니다. 참고: E12.5의 마우스 배아는 임신한 암컷 마우스의 질 플러그를 발견한 후 12일 오후 12시(오후) 이후에 수집됩니다.</li>
		<li>수술 부위로 마우스를 이송합니다. 70% 에탄올을 사용하여 마우스 복부를 적시어 모피가 수술 부위에 들어가지 않도록 하십시오.</li>
		<li>배아를 운반하는 자궁 뿔을 노출하기 위해 해부 가위를 사용하여 복부를 엽니 다. 해부 가위를 사용하여 자궁 뿔을 해부하고 100mm 문화 접시에 신선한 티로드의 용액 15mL로 전송합니다.</li>
		<li>배아(도1A1)를해부하는 현미경으로 자궁 뿔에서 미니 가위와 미세포셉을 사용하여 해부한다.</li>
		<li>미세한 집게를 사용하여 입 구멍을 넓게 조심스럽게 열고 미니 가위를 사용하여 하악에서 혀를 해부합니다(그림1A2).</li>
		<li>100mm 배양 접시에 신선한 멸균 티로드의 용액 15mL를 사용하여 혀를 씻으시다.</li>
		<li>디스파제(2.5 mg/mL)와 콜라게나아제(1.0 mg/mL)의 효소 혼합물을 35mm 배양 접시에 넣고 주걱과 미세포셉을 생체안전 캐비닛에 전달한다. 37 °C에서 20 분 동안 배양하십시오.</li>
		<li>혀를 신선한 멸균 티로드용 액액을 100mm 배양 접시에 옮기고 미세한 집게를 사용하여 복부 측의 상피에서 메센키메를 부드럽게 제거합니다. 참고: 상피 시트는 인큐베이션 중에 기계적 힘없이 분리될 수 있습니다.</li>
		<li>100mm 배양 접시에 신선한 멸균 티로드의 용액의 15mL에 분리 된 상피와 메센키메를 두 번 세척하십시오. 참고: 디스파제 및 콜라게나아제의 활동은 세포 해리 절차(4.1단계)에서 EDTA에 의해 억제된다.</li>
	</ol></li>
	<li>성인 마우스의 기본 결합 조직에서 혀 상피의 분리<ol>
<li>8주에 마우스를CO2 챔버에 배치하여 안락사합니다. 마우스가 호흡없이 안락사되어 있는지 확인하고 앞포 핀치 응답.</li>
		<li>마우스를 수술 부위로 이송합니다. 70% 에탄올을 사용하여 마우스 머리를 적시면 모피가 구강안으로 들어가는 것을 방지합니다.</li>
		<li>해부 가위를 사용하여 뺨을 따라 입의 모서리를 잘라 구강을 엽니다. 하악(그림 1B1)으로혀를 해부하고 플라스틱 랩층이있는 플라스틱 접시에 놓습니다.</li>
		<li>외과 용 집게를 사용하여 해부 현미경으로 혀를 잡고, 후부 혀의 절삭 날(도 1B1,화살표)을 통해 혀의 하위 상피 공간에 해부 (2.5 mg /mL)와 콜라게나아제 (1.0 mg /mL)의 효소 혼합물을 주입합니다.<ol>
<li>전방 및 후방 혀에서 조직 수집을 위해 전체 혀에 1mL의 효소 혼합물을 고르게 주입하십시오.</li>
			<li>혀 팁에서 조직 수집을 위해 전방 혀에 국소적으로 효소 혼합물 0.5 mL을 주입하거나 주위 유두 조직 수집을 위한 후면 혀에 넣습니다. 참고 : 효소가 축적될 때 혀가 부풀어 오게됩니다(그림 1B2). 효소의 부드러운 주입은 압력을 손상으로부터 방지하고 혀에 가능한 한 많은 효소를 유지할 수 있습니다.</li>
		</ol>
</li>
		<li>혀를 플라스틱 랩으로 감싸고 37°C에서 30분 동안 혀를 배양합니다.</li>
		<li>미니 가위를 사용하여 혀 팁 및/또는 둘레 유두를 해부하고 주걱과 미세 한 집게를 사용하여 100mm 배양 접시에 15mL의 신선한 멸균 티로드 용액으로 조직을 전송하십시오.</li>
		<li>미니 가위를 사용하여 효소 소화 하위 상피 공간에서 기본 결합 조직으로부터 상피를 분리합니다. 다운스트림 실험의 요구 사항에 따라 조직을 적절한 크기로 다듬습니다.</li>
		<li>분리된 상피와 기본 결합 조직을 15mL의 신선한 멸균 티로드 용액을 100mm 배양 접시에 담아 두 번 씻으시다. 참고: 디스파제 및 콜라게나아제의 활동은 세포 해리 절차(4.1단계)에서 EDTA에 의해 억제된다.</li>
	</ol></li>
</ol>4. 세포 해리
참고: 여기서 설명된 세포 해리 프로토콜은 E12.5 배아와 8주 된 마우스 모두에서 혀 상피 및 중간/결합 조직에 적용될 수 있다. 세포 현탁액의 동요 및 전송 중에 세포 손실을 줄이기 위해, pH 7.48에서0.1 M PBS에서 2.5 %의 BSA와 상용 낮은 보존 파이펫 팁 또는 미리 코팅 된 파이펫 팁을 사용합니다.
<ol><li>37°C에서 30분 동안 새로운 35mm 배양 접시에 0.25%의 트립신-EDTA의 3mL에 주걱 및 미세 집게를 사용하여 조직을 전송합니다. 1 mL 파이펫 팁으로 5 분마다 조직을 부드럽게 교반합니다. 참고: 절삭날이 해리된 세포를 물리적으로 손상시킬 수 있으므로 파이펫 팁을 잘라지 마십시오.</li>
	<li>DMEM/F12에 5% FBS의 500 μL을 추가하여 반응을 멈추고 배지를 5mL 저결합 원심분리기로 이송합니다.</li>
	<li>원심분리기 세포 현탁액은 실온에서 8분 동안 200 x g로 정지하고 상체를 제거합니다.</li>
	<li>1mL 파이펫 팁을 사용하여 10% FBS 및 1% BSA를 함유한 DMEM/F12의 3mL에서 세포를 부드럽게 다시 중단하고 70 μm 세포 스트레이너를 사용하여 세포를 필터링한 다음 35 μm 셀 스트레이너를 사용한다.</li>
	<li>원심분리기 세포 현탁액은 실온에서 8분 동안 200 x g로 현탁액. 대부분의 배지를 제거하고 50-300 μL을 세포를 다시 일시 중단하는 최종 부피로 둡니다. 참고: 단일 셀 현탁액의 최종 부피를 변경하여 다운스트림 실험의 요구 사항에 따라 셀 농도를 조정합니다.</li>
</ol>5. 혈종계를 이용한 세포 계산 및 생존 가능성 테스트
참고: 측정 정확도를 향상시키기 위해 각 샘플에 대해 3개의 기술적 복제가 권장됩니다.
<ol><li>단일 셀 서스펜션의 5-10 μL을 동일한 볼륨의 Trypan blue로 부드럽게 혼합하고 혈류계에 추가합니다. 참고: 사용하기 전에 70% 에탄올을 사용하여 혈종계를 철저히 청소하십시오. 혈종계의 먼지 입자는 진한 파란색으로 염색되어 생존 가능성 테스트의 정확도에 영향을 미칩니다. 현미경의 밑에 혈구계를 확인하십시오.</li>
	<li>총 세포 수, 라이브 셀 수(흰색) 및 Trypanblue(그림 2,화살표)에 의해 염색된 죽은 세포(dark blue)의 수를 각각 4제곱으로 16개의그리드(그림 2)로계산하여 이미징 시스템을 사용하여 반전된 현미경을 사용한다.</li>
	<li>셀 농도 계산: 세포 농도 = <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/62163/62163eq01v2.jpg"><ol>
<li>생존 가능성을 계산합니다. 생존 가능성 = <img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/62163/62163eq02.jpg">
</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Grada, A., Weinbrecht, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Next-generation+sequencing%3A+methodology+and+application%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+investigative+dermatology%22%5BJournal%5D)">Next-generation sequencing: methodology and application.</a> The Journal of investigative dermatology. 133 (8), 11(2013).</li>
<li>Whitley, S. K., Horne, W. T., Kolls, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Research+techniques+made+simple%3A+methodology+and+clinical+applications+of+RNA+sequencing%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Investigative+Dermatology%22%5BJournal%5D)">Research techniques made simple: methodology and clinical applications of RNA sequencing.</a> Journal of Investigative Dermatology. 136 (8), 77-82 (2016).</li>
<li>Schaum, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-cell+transcriptomics+of+20+mouse+organs+creates+a+Tabula+Muris%3A+The+Tabula+Muris+Consortium%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Single-cell transcriptomics of 20 mouse organs creates a Tabula Muris: The Tabula Muris Consortium.</a> Nature. 562 (7727), 367(2018).</li>
<li>Sukumaran, S. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole+transcriptome+profiling+of+taste+bud+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+reports%22%5BJournal%5D)">Whole transcriptome profiling of taste bud cells.</a> Scientific reports. 7 (1), 1-15 (2017).</li>
<li>Ren, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcriptome+analyses+of+taste+organoids+reveal+multiple+pathways+involved+in+taste+cell+generation%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Transcriptome analyses of taste organoids reveal multiple pathways involved in taste cell generation.</a> Scientific Reports. 7 (1), 1-13 (2017).</li>
<li>Ren, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single+Lgr5-or+Lgr6-expressing+taste+stem%2Fprogenitor+cells+generate+taste+bud+cells+ex+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Single Lgr5-or Lgr6-expressing taste stem/progenitor cells generate taste bud cells ex vivo.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 111 (46), 16401-16406 (2014).</li>
<li>Venkatesan, N., Boggs, K., Liu, H. -X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Taste+bud+labeling+in+whole+tongue+epithelial+sheet+in+adult+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering+Part+C%3A+Methods%22%5BJournal%5D)">Taste bud labeling in whole tongue epithelial sheet in adult mice.</a> Tissue Engineering Part C: Methods. 22 (4), 332-337 (2016).</li>
<li>Nguyen-Ngoc, K. -V., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aNguyen-Ngoc%2C+K-V+%22Tissue+Morphogenesis%22">Tissue Morphogenesis</a>. , Springer. 135-162 (2015).</li>
<li>Okubo, T., Clark, C., Hogan, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+lineage+mapping+of+taste+bud+cells+and+keratinocytes+in+the+mouse+tongue+and+soft+palate%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Cell lineage mapping of taste bud cells and keratinocytes in the mouse tongue and soft palate.</a> Stem Cells. 27 (2), 442-450 (2009).</li>
</ol>

이해 상충이 선언되지 않았습니다.

현재까지, 혀 상피 및 기본 중간 엽/결합 조직에서 세포 해리에 사용할 수 있는 상세한 프로토콜이 없습니다. 이 현재 세포 해리 프로토콜은 높은 세포 생존가능성(>90%)을 가진 단일 세포 현탁액을 생성하는 재현 가능한 절차를 제공합니다. E12.5및 성인 마우스에서 고립된 세포가 크기가 다르더라도 태아 및 산후 단계에서 상피 시트 및 중간 엽/결합 조직을 포함한 마우스 혀 조직에서. 예를 들어, E12.5 마우스 혀의 상피 및 중간부에서 분리된 세포는 8주 된 마우스 혀에서 세포의 큰 가변성(작은 에서 큰 것)과 는 대조적으로 일관되고 작습니다. 높은 생존율(>90%)의 장점으로 분리된 세포의, 항복된 단세포 현탁액은 실행 가능한 세포의 고품질을 요구하는 다운스트림 실험을 용이하게 할 수 있다(예를 들어, 단세포 RNA 시퀀싱 및 1차 세포 배양).
세포의 높은 생존가능성을 보장하기 위해 주의 해야 합니다. 디스파제 와 콜라게나아제 혼합물을 가진 적절한 소화 시간은 실행 가능한...

포유류 혀는 맛, 말하기 및 식품 가공에 중요한 복잡한 기관입니다. 그것은 메센키메 / 결합 조직에 의해 구획및 맛 유두와 미각을 포함하는 계층화 상피 시트에 의해 덮여 고도로 조직 된 조직의 여러 유형으로 구성되어 있습니다. 혀 상피와 중간엽/결합 조직 모두에서 세포 인구는 이질적이다. 혀에 있는 세포의 특정 모형의 기능 그리고 분포를 더 잘 이해하기 위하여는, 해리된 세포를 이용한 연구 결과가 필요합니다. 예를 들어, 단세포 RNA 시퀀싱은 개별 세포에서 전사 프로파일링을 위한 강력하고 높은 처리량 방법이며, 이는 단일 세포 해상도1,2,3,4에서복잡한 조직의 전사를 이해하도록 설계된다. 1차 세포 배양은미각5,6에대한 줄기/전구 세포의 기능 및 분화를 연구하는 유용한 도구로 입증되었다. 이러한 연구는 고품질 의 격리 된 세포 집단의 대량을 필요로 (예를 들어, 적절한 농도와 높은 생존력을 가진 충분한 총 세포 수).
따라서, 언어 조직의 다른 영역과 다른 발달 단계에서 세포를 분리 할 필요가있다. 현재, 혀 상피 및 기본 중간 엽/결합 조직에서 세포 해리에 사용할 수 있는 상세한 프로토콜이 없습니다. 여기서, 우리는 단세포 RNA 염기서열 분석 및 1차 줄기 세포 배양과 같은 살아있는 세포의 고품질을 요구하는 실험을 위해 세포를 준비하는 최적화된 세포 해리 방법을 보고합니다. 우리는 효소 소화 완충제, 부드러운 파이펫팅, 재서스펜션 배지 선택, 최적의 원심분리 시간 및 속도의 선택이 이러한 대량의 고품질 셀을 생성하는 데 중요하다는 것을 발견했습니다.

<table><tbody><tr><td>소 혈청 알부민(BSA)</td><td>Gold Biotechnology</td><td>A-420-100</td><td></td></tr><tr><td>C57BL/6 마우스(C57BL/6J)</td><td>잭슨 연구소</td><td>000664</td><td></td></tr><tr><td>콜라겐분해효소(콜라겐분해효소 A)</td><td>시그마-알드리치</td><td>10103586001</td><td></td></tr><tr><td>배양 접시(직경 35mm)</td><td>Genesee Scientific</td><td>32-103G</td><td></td></tr><tr><td>배양 접시(직경 100mm)</td><td>Genesee Scientific</td><td>32-107G</td><td></td></tr><tr><td>dispase (Dispase II)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>04942078001</td><td></td></tr><tr><td>해부 가위 (Student Fine Scissors)</td> <td>찾기과학 도구</td><td>91460-11</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12</td><td>Gibco</td><td>11320033</td><td></td></tr><tr><td>소 태아 혈청 (FBS)</td><td>Hyclone</td><td>C838U82</td><td></td></tr><tr><td>fine typs (Dumount #3 Forceps)</td><td>과학 도구 찾기</td><td>11293-00</td><td></td></tr><tr><td>혈구계</td> 이미징 시스템이 있는 <td>Hausser Scientific</td><td>3520</td><td></td></tr><tr><td>도립 현미경(EVOS XL Core Cell Imaging System)</td><td>Life Technologies</td><td>AMEX1000</td><td></td></tr><tr><td>저유지 피펫 팁</td><td>METTLER TOLEDO</td><td>17014342</td><td></td></tr><tr><td>미니 가위(Evo Spring Scissors)</td><td>Fine Science Tool</td><td>15800-01</td><td></td></tr><tr><td>플라스틱 워프</td><td>VWR</td><td>46610-056</td><td></td></tr><tr><td>주걱 (Moria Spoon)</td><td>Fine Science Tool</td><td>10321-08</td><td></td></tr><tr><td>수술용 집게 (Dumount #2 Laminectomy 집게)</td><td>Fine Science Tool</td><td>11223-20</td><td></td></tr><tr><td>Trypan blue</td><td>Gibco</td><td>15250061</td><td></td></tr><tr><td>Tyrode ' S 용액</td><td>: Sigma-Aldrich</td><td>T2145-10L</td><td>, Tyrode의 염,</td></tr><tr><td>0.25 % typsin-EDTA</td><td>Gibco</td><td>25200056</td><td></td></tr><tr><td>0.1 M 인산염 완충 식염수 (PBS)</td> <td>Hoefer</td><td>33946</td>, <td>1 M PBS로 만든</td></tr><tr><td>0.22-&mu; m 주사기 필터</td><td>Genesee Scientific</td><td>25-243</td><td></td></tr><tr><td>70% 에탄올</td><td>Koptec</td><td>233919</td><td>100% 에탄올로 제작</td></tr><tr><td>1-mL 주사기</td><td>BD</td><td>8194938</td><td></td></tr><tr><td>5-mL 저결합 마이크로 원심분리기 튜브</td><td>Eppendorf</td><td>30122348</td><td></td></tr><tr><td>30-G 바늘</td><td>BD</td><td>9193532</td><td></td></tr><tr><td>35-&mu; m 세포 여과기</td><td>Falcon</td><td>64750</td><td></td></tr><tr><td>70-&mu; m 셀 스트레이너</td><td>팔콘</td><td>64752</td><td></td></tr></tbody></table>

배아의 날 12.5 및 8 주 된 마우스의 혀 상피 및 메센키메 / 결합 조직에서 세포 해리

Cell Dissociation from the Tongue Epithelium and Mesenchyme/Connective Tissue of Embryonic-Day 12.5 and 8-Week-Old Mice

세포 해리는 개별 세포 수준 및/또는 세포 집단 수준에서의 연구를 위한 필수적인 절차였습니다(예를 들어, 단세포 RNA 염기서열 분석 및 1차 세포 배양). 가능한, 다량에 있는 건강한 세포를 산출하는 것은 중요합니다, 이렇게 하기 위하여 최적 조건은 조직에 달려 있습니다. 혀 상피 및 기본 중간 엽/결합 조직에 있는 세포 인구는 이질적이고 조직 구조물은 다른 지구및 다른 발달 단계에서 변화합니다. 우리는 초기 발달 [배아 일 12.5 (E12.5)] 및 젊은 성인 (8 주) 단계에서 마우스 혀 상피 및 중간/ 결합 조직에서 세포를 격리하기위한 프로토콜을 테스트했습니다. 상피와 근본적인 메센키메/결합 조직 사이의 깨끗한 분리는 쉽게 달성할 수 있었습니다. 그러나 세포를 추가처리 및 분리하고, 가능한 건강한 세포를 대량으로 산출하고, 효소 소화 완충제, 인큐베이션 시간 및 원심 분리 속도와 시간을 신중하게 선택하는 것이 중요합니다. 분리된 상피 또는 기본 메센키메/결합 조직의 배양은 37°C에서 30분 동안 트립신-EDTA0으로, 8분 동안 200 x g에서 원심분리로 이어져 높은 생존율(>90%)으로 세포의 높은 수율을 초래했습니다(>90%) 마우스 단계와 혀 부위에 관계없이. 더욱이, 우리는 배아와 성인 방언에서 해리된 상피 및 중간엽/결합 조직 세포 둘 다 세포 생존성의 유의한 감소 없이 적어도 3 시간 동안 세포 배양 기지를 둔 매체에서 살아남을 수 있었다는 것을 것을을 발견했습니다. 프로토콜은 초기 발달 (E12.5) 및 다른 조직 구획에서 세포 해리를 요구하는 젊은 성인 (8 주) 단계에서 마우스 혀에서 격리 된 세포의 준비를 필요로하는 연구에 유용 할 것이다.

기본 메센키메/결합 조직으로부터 혀 상피의 분리 배아 마우스 혀에서, 적당한 효소 소화 후에 하위 상피 공간에 있는 간격이 보입니다. 일부 혀의 상피 시트는 인큐베이션 중에 기계적 힘없이 분리됩니다.
성인 마우스 혀에서, 성공적인 효소 주입은 주입 된 영역(도 1B2)에서붓기에 의해 표시되며, 이는 효소가 혀에 의해 유지 될 수 있음을 시사한다. 바늘에 의한 중간및/또는 혀 상피 침투에 대한 불충분한 효소 및/또는 깊은 바늘 삽입은 주입 부위의 부분적 부종또는 전혀 붓지 유발하지 않습니다. 효소 소화 후, 적절한 효소 소화를 가진 근본적인 결합 조직은 느슨해지고 끈적거리게 됩니다. 상피 시트의 가장자리를 부드럽게 들어 올릴 때 상피 공간의 간격이 표시됩니다.
총 세포 수 및 생존...

우리는 배아와 성인 마우스 혀의 상피 및 중간/ 결합 조직에서 대량의 고품질 단일 세포를 해리시키는 일반화 프로토콜을 개발했습니다.

Cell dissociation has been an essential procedure for studies at the individual-cell level and/or at a cell-population level (e.g.,&#160;single cell RNA ...

복잡한 조직에서 세포의 높은 수율 과 품질은 일반적으로 사용되는 실험 분석에 필수적이다, 단일 세포 RNA 염기서열 분석 및 1 차 줄기 세포 배양과 같은. 이 프로토콜은 혀 상피 및 결합 조직을 포함하여 포유류 혀의 다른 지역 및 조직 구획에서 높은 수율과 품질에 건강한 세포를 생성합니다. E 12.5 마우스 혀의 중간부메에서 상피를 분리하려면 안락사된 임산부 마우스를 수술 부위로 옮기고 마우스 복부를 70%에탄올로 적시어 수술 부위로 들어가는 것을 방지한다.배아를 운반하는 자궁 뿔을 노출하고 자궁 뿔을 해부하고 100mm 배양 접시에 신선한 티로드의 용액 15 밀리리터로 옮기기 위해 해부 가위를 사용하여 복부를 엽니다. 해부 현미경에서 미니 가위와 미세 한 집게를 사용하여 자궁 뿔에서 배아를 해부하십시오. 미세한 집게로 입 구멍을 열고 미니 가위를 사용하여 하악에서 혀를 해부합니다.100mm 배양 접시에 신선한 멸균 티로드의 용액 15 밀리리터로 혀를 씻어. 그런 다음 35mm 배양 접시에 디스파스와 콜라주누스의 효소 혼합물의 2 밀리리터로 조직을 전송하고 섭씨 37도에서 20 분 동안 배양합니다. 혀를 신선한 멸균 티로드의 용액 15밀리리터로 옮기고, 미세한 집게를 사용하여 중간과 상피를 복부 측에서 부드럽게 분리합니다.분리된 상피와 메센키메를 신선한 멸균 티로드용 15밀리리터로 두 번 씻으시다. 혀 상피를 성인 마우스의 기본 결합 조직으로부터 분리하려면 안락사 된 마우스를 수술 부위로 옮기고 70 %에탄올을 사용하여 마우스 머리를 적시어 모피가 구강안으로 들어가는 것을 방지합니다. 해부 가위를 사용하여 뺨을 따라 입의 모서리를 잘라 구강을 엽니다.혀를 하악한 것으로 해부하고 씻고 플라스틱 랩으로 플라스틱 접시에 놓습니다. 혀를 잡기 위해 외과 용 집게를 사용하여 후방혀의 절삭 날을 통해 혀의 하위 공간에 디스파스와 콜라게나아제의 효소 혼합물을 주입하십시오. 조직 수집을 위해 전체 혀에 효소 혼합물 1 밀리리터를 고르게 주입한 다음, 혀 끝에서 조직 수집을 위해 전방 혀에 국소적으로 효소 혼합물 0.5 밀리리터를 주입하거나 주위 유두 조직 수집을 위한 후면 혀에 주입합니다.혀를 플라스틱 랩으로 감싸고 섭씨 37도에서 30분 동안 배양합니다. 미니 가위를 사용하여 주위 유두와 혀 팁을 해부하십시오. 그런 다음 조직을 신선한 멸균 티로드용 15 밀리리터로 옮기습니다.미니 가위를 사용하여 소화된 효소의 기본 결합 조직으로부터 상피를 분리하고 다운스트림 실험의 요구 사항에 따라 조직을 적절한 크기로 다듬습니다. 분리된 상피와 기본 결합 조직을 100mm 배양 접시에 신선한 멸균 티로드의 용액 15 밀리리터로 두 번 씻으시다. 새로운 35 밀리미터 배양 접시에 0.25 %의 트립신 EDTA의 세 밀리리터에 조직을 전송합니다.37°C에서 30분간 요리를 배양하고, 5분마다 1밀리리터 파이펫 팁으로 조직을 부드럽게 교반합니다. DMEM F12에 5%FBS의 500 마이크로리터를 추가하여 반응을 멈추고 배지를 5밀리리터 저결합 원심분리기로 전송합니다. 실온에서 8분 동안 200배 G의 세포 현탁액을 원심분리하고 상체를 제거합니다.10%FBS 및 1%BSA를 포함하는 DMEM F12의 3밀리리터에서 세포를 부드럽게 재일시 중단하고, 70 마이크로미터 세포 스트레이너로 세포를 필터링한 다음 35마이크로미터 세포 스트레이너가 뒤따릅니다. 실온에서 8분 동안 200배 G의 세포 현탁액을 원심분리한 다음 대부분의 배지를 제거하여 50~300마이크로리터를 최종 부피로 남겨 세포를 재보습합니다. 배아 마우스 혀에서, 적절한 효소 소화 후 피상적 공간의 간격이 보입니다.성인 마우스 혀에서, 성공적인 효소 주입은 주입 된 영역에서 붓기에 의해 표시되며, 이는 효소가 혀에 의해 유지 될 수 있음을 시사한다. E12.5 혀의 상피 시트와 메센키메의 얇은 층을 풀링 한 후, 수동 세포 계수는 프로토콜이 상피 시트에서 95.2 %의 생존력을 가진 총 63, 917 세포를 산출하고, 294, 333 세포의 생존력을 가진 총 96.3 %의 생존력을 보였다. 8주에 10명의 성인 혀를 사용했을 때, 프로토콜은 혀 끝의 상피 시트에서 95.4%의 생존력을 가진 187, 333개의 세포를 산출하고, 544, 000세포의 생존율을 가진 세포는 둘레 의 상피 시트에서 96.3%, 그리고 150, 500의 세포가 93%의 생존력을 가진 세포를 산출하였다.이러한 프로토콜에 따라, 해리된 세포는 언어 상피 하에서 인식되지 않는 시험 전구 세포를 정의하기 위해 단세포 RNA 시퀀싱 및 3D 테스트 오르가노이드 배양에 사용될 수 있다.

cell-dissociation-from-tongue-epithelium-mesenchymeconnective-tissue

Research

연구

JoVE Journal

Developmental Biology

발생생물학

두개골 mesenchyme 가능성이 신경 주름 상승을위한 원동력을 제공 극적인 morphogenic의 움직임을...

두개골 Mesenchyme의 셀룰러 행동을 평가하기위한 Explant 분석

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Isolation and Culturing of Cells from Mouse Embryo Dorsolateral Telencephalons(쥐 배아에서 세포 분리 및 배양)

태아 얼굴 외배엽과 mesenchyme의 분리를위한 프로토콜이 설명되어 있습니다. 우리는 먼저 전체 배아를 취급하는 전체 얼굴 프로미넌스 prominences을 해부하기 위해 Dispase II를 사용하고 얼굴 외배엽과 mesenchyme 구분합니다.

마우스 배아 얼굴 외배엽과 Mesenchyme의 분리

지속적으로 성장 마우스 앞니는 치아 상피 줄기 세포 (DESCs)에서 치아 조직의 재생을 연구하기위한 모델을 제공합니다. 일관되고 안정적으로 앞니에서 이러한 세포를 획득하고 체외에서 그 확장을위한 강력한 시스템은 여기에보고됩니다.

성인 마우스 앞니의 치아 상피 줄기 세포의 분리 및 문화

여기, 우리는 공 촛점 현미경을 사용하여 마우스 보조 입천장 융합의 라이브 영상을위한 프로토콜을 제시합니다. 이 프로토콜은 다양한 형광 기자 마우스 라인과 기계적 통찰력을위한 경로 억제제와 함께 사용할 수 있습니다. 이 프로토콜은 다른 발달 시스템의 라이브 이미징에 적용 할 수 있습니다.

Mouse Secondary Palate Fusion의 라이브 이미징

우리는 2차원 (2D) 성장 및 상처 복구 분석의 시간 경과 화상 진찰을 위한 1 차적인 마우스 배아 성 구형 중간엽 세포의 격리 그리고 문화를 위한 프로토콜을 제시합니다. 우리는 또한 세포 스트림 형성 및 방향 운동성을 결정하기 위하여 시간 경과 화상 진찰 데이터의 분석을 위한 방법론을 제공합니다.

집단 운동 특성을 분석하기 위해 1차 마우스 배아 성 성 메센키메 세포의 격리 및 시간 경과 이미징

이 프로토콜은 성인 마우스의 후미 유두로부터 분리된 맛 줄기 세포로부터 추출한 언어 오르가노이드를 배양하고 가공하는 방법을 제시한다.

성인 마우스 맛 줄기 세포에서 파생 된 언어 오르가노이드의 생성 및 배양

배우세요 마우스 혀 상피와 메센키메에서 고품질 단일 세포 분리 방법을. 타이로드 용액과 효소 처리를 활용한 이 프로토콜은 세포 생존율 95% 이상의 우수한 결과를 제공합니다.

배아의 날 12.5 및 8 주 된 마우스의 혀 상피 및 메센키메 / 결합 조직에서 세포 해리

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