Name: 엔도누블레스 기반 사이트 별 DNA 손상을 시각화하고 정량화 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-08-21T13:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 59 s
Description: 학습하세요 형광 면역염색과 염색질 면역침전법을 활용한 DNA 손상 부위 단백질 모집의 시각화 및 정량화 방법을. U2OS 세포에서 DNA 복구 메커니즘을 연구하는 데 필수적인 기술입니다.

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이 연구는 국가 연구 개발 및 혁신 사무소 보조금 GINOP-2.3.2-15-2016-00020, GINOP-2.3.2-15-2016-00036, GINOP-2.2.1-15-2017-00052, EFOP 3.6.3-VEKOP-16-2017-00009, NKFI-FK 132080, 헝가리 과학 BO/27/20의 자노스 볼라이 연구 장학금, ÚNKP-20-5-SZTE-265, EMBO 단기 펠로우십 8513, 템퍼스 재단 8513.

1. 특정 단백질의 면역 검출
<ol><li>세포 배양 및 실험 설정 준비
	<ol>
<li>10% 태아 송아지 혈청, 2mM 글루타민, 1% 항생제 항마이코틱 용액으로 보충된 DMEM 배양 배지의 단층층에서 U2OS 세포를 유지한다. 참고: 엔도누클로스 기반 DNA 손상 유도의 경우, 시스템 누출을 방지하기 위해 숯 처리 또는 스테로이드가 없는 매체를 사용하십시오.</li>
		<li>가습된 5%CO2 환경에서 37°C에서 80%의 수렴까지 세포를 성장시키고, 매 2-3일마다 배지를 갱신한다.</li>
		<li>배지를 흡인하고 1x PBS로 셀을 세척합니다. 트립신-EDTA 용액으로 세포를 분리합니다. 세포가 분리되면, 세포에 배양 배지를 추가하여 트립신 활성을 중지하여 세포 현탁액을 산출한다.</li>
		<li>셀 카운팅 챔버를 사용하여 셀을 계산합니다. 플레이트 2 x 104 셀/mL/웰 24웰 플레이트에 멸균 12mm 원형 커버립을 양호한 플레이트.</li>
		<li>가습 5%CO2 분위기에서 37°C에서 24시간 동안 세포를 배양하여 커버립에 부착할 수 있도록 한다.</li>
		<li>손상된 에이전트를 배양 된 배지로 직접 파이프하여 네오카르지노스타틴 (NCS)의 10 ng /mL로 세포를 치료합니다. 15 분 동안 NCS 함유 배지로 세포를 배양 한 다음 1 x PBS로 세척하고 세포에 신선하고 보충 된 배양 배지를 추가하십시오. 그렇지 않으면,중간(22)을새로고하지 않고 엔도누리스 기반 시스템을 통해 DSB를 유도하기 위해 적절한 에이전트(즉, 4-OHT)를 사용한다. 참고: 대안적으로, 2-20 Gy23사이의 중성자 플럭스를 사용하여 30분에서 8h의 회복 시간까지 DNA 손상을 유도하기 위해 조사를 사용한다.</li>
		<li>DNA 수리의 역학을 따르는 가습 된 5 % CO2 분위기에서 37 °C에서 1-8 h의 세포를 배양한다.</li>
	</ol></li>
	<li>셀 고정 참고: 300-500 μL의 솔루션/웰은 모든 세포를 적절하게 커버하기 위해 다음 단계(1.2-1.5 단계)에 사용해야 합니다. 각 배양 및 세척 단계 (항체 배양을 제외하고)는 부드러운 동요가있는 궤도 셰이커에서 수행되어야한다.<ol>
<li>DSB 유도 및 세포의 인큐베이션에 따라 부착 된 세포에서 배지를 제거하고 1 x PBS로 한 번 세포를 씻으신다.</li>
		<li>25°C에서 20분 동안 포름알데히드-PBS 용액을 4% 고정합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>세포의 투과성
	<ol>
<li>고정 용액을 제거하고 각각 5 분 동안 1 x PBS로 셀을 세 번 세척하십시오.</li>
		<li>PBS를 제거하고 PBS에 용해된 0.2% 트리톤 X-100을 추가합니다. 샘플을 20분 동안 배양합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>비특이적 바인딩 사이트 차단
	<ol>
<li>1x PBS로 셀을 세 번 씻으시면 됩니다.</li>
		<li>PBST(1x PBS가 0.1% Tween-20으로 보충됨)에서 희석된 5% BSA(소혈분획 V 알부민)를 가진 비특이적 결합 부위를 차단하고, 퍼메아빌화된 샘플을 최소 20분 동안 배양한다.</li>
	</ol></li>
	<li>면역형광 염색
	<ol>
<li>1% BSA-PBST 용액으로 희석된 1차 항체(즉, 안티γH2AX, 안티 DNA-PKcs)의 적정량을 첨가한다. 각 커버슬립을 희석된 γH2AX 항체의 10 μL 액적 위에 파라핀 필름에 거꾸로 놓습니다. 참고: 공존면역스테인링의 경우 동일한 1% BSA-PBST 용액에서 두 항체를 적절히 희석한다.</li>
		<li>4°C에서 1.5시간 동안 습도 챔버에서 샘플을 배양한다. 참고: 인큐베이션은 하룻밤 사이에 4°C에서 수행될 수도 있습니다.</li>
		<li>커버립을 24웰 플레이트에 다시 올려 놓고 1x PBS로 5분 동안 세 번 씻습니다.</li>
		<li>1% BSA-PBST에서 희석된 이차 항체의 적당한 양을 추가합니다. 각 커버슬립을 희석된 항체의 10 μL 액적 위에 파라핀 필름에 거꾸로 놓습니다.</li>
		<li>1h에 대한 4 °C에서 습도 챔버에서 샘플을 배양.</li>
		<li>커버립을 24웰 플레이트에 다시 올려 놓고 1x PBS로 5분 동안 세 번 씻습니다.</li>
		<li>마지막 PBS 세척 용액을 제거하기 전에 트위저와 바늘을 사용하여 커버립을 부드럽게 꺼낸 다음 장착 매체의 액적(DAPI로 보완)이 있는 유리 슬라이드에 거꾸로 놓습니다. 참고: 기포형성을 피하십시오. 마운팅 매체가 건조하면 샘플의 수축을 방지하기 위해 매니큐어로 커버립의 가장자리를 밀봉하는 것이 좋습니다.</li>
	</ol></li>
</ol>2. 크로마틴 면역 침전
<ol><li>세포 수집, 교차 연결, 세포 및 핵 리시스 및 DNA 단편화
	<ol>
<li>각 샘플에 대해 150mm 접시에 약 5 x 106 셀/mL을 배양합니다.</li>
		<li>배양 배지를 제거하고 얼음차가운 1x PBS로 세포를 두 번 씻으시다.</li>
		<li>1% 포름알데히드-PBS 용액으로 세포를 고정하고, 플레이트를 궤도 셰이커에 놓고, 20분 동안 부드럽게 교반합니다. 참고: 포름알데히드는 휘발성입니다. 항상 새로운 작업 솔루션을 준비합니다. 경우에 따라 포름알데히드 용액은 메탄올을 함유하여 안정화하지만, 다운스트림 반응과의 간섭을 피하기 위해 메탄올이 없는 솔루션을 사용하는 것이 좋습니다.</li>
		<li>125m 글리신으로 고정을 중지하고 25 °C에서 5 분 동안 부드러운 교반궤도 셰이커에 배양하십시오.</li>
		<li>접시를 얼음 위에 놓고 얼음으로 차가운 1x PBS로 두 번 씻으시면 됩니다.</li>
		<li>얼음 차가운 1x PBS에서 세포를 긁어 15 mL 원추형 튜브로 옮춥춥시다.</li>
		<li>4°C에서 5분 동안 2,500 x g의 세포원심분리기.</li>
		<li>셀 리시스 버퍼 [5mM PIPES pH 8.0, 85m KCl, 0.5% NP-40, 1x PIC(프로테아제 억제제 칵테일)] 및 10분 동안 얼음에 배양하여 2mL의 셀 리시스 버퍼에서 펠릿을 조심스럽게 흡인하고 재보종한다.</li>
		<li>4°C에서 5분 동안 2,500 x g의 세포 현탁액을 원심분리합니다.</li>
		<li>핵용 리시스 버퍼(50m Tris-HCl pH 8.0, 10mM EDTA pH 8.0, 0.8% SDS, 1x PIC)로 상체를 조심스럽게 폐기하고 펠릿을 30-60분 동안 얼음에 배양한다. 용양을 초음파 처리에 적합한 폴리스티렌 원내 튜브로 옮기십시오. 참고: 핵 용해 버퍼에는 SDS가 포함되어 있으므로 얼음에 침전되고 솔루션이 흰색으로 바뀝니다. 솔루션은 초음파 처리 다음 투명하게 설정해야합니다.</li>
		<li>300-1,000 bp의 평균 단편 크기로 DNA를 전단하기 위해 용액을 초음파 처리합니다. 참고: 적절한 초음파 처리 주기 및 조건은 셀 유형 및 초음파 처리 장비에 따라 설정해야합니다. 200 bp 보다 작은 단편은 핵-DNA 상호 작용이 중단될 수 있기 때문에 ChIP에 적합하지 않습니다.</li>
	</ol></li>
	<li>교차 연결의 반전, 초음파 조각 크기의 결정
	<ol>
<li>초음파 처리된 샘플의 100 μL을 꺼내 초음파 염색체의 조각 크기를 확인합니다. 나머지 크로마틴은 -80 °C에 저장해야합니다.</li>
		<li>샘플의 각 100 μL에 0.5 mg/mL RNase A를 추가하고 RNase를 활성화하기 위해 20 분 동안 37 °C에서 배양하십시오.</li>
		<li>하룻밤 사이에 65°C에서 샘플을 배양합니다.</li>
		<li>다음 날, Proteinase K의 500 μg/mL과 0.5% SDS를 추가하고 샘플을 50°C에서 3시간 동안 배양합니다.</li>
		<li>각 샘플에 페놀 0.5부피와 0.5부부클로로폼-이소아밀 알코올 믹스(24:1)를 첨가한다.</li>
		<li>1 분 동안 소용돌이.</li>
		<li>13,000 x g에서 10 분 동안 원심 분리기.</li>
		<li>상부 수성 상면을 새로운 미세 원심 분리기 튜브로 옮기십시오.</li>
		<li>각 샘플에 1부클로로폼 이소아밀 알코올 믹스(24:1)를 추가합니다.</li>
		<li>1 분 동안 소용돌이.</li>
		<li>13,000 x g에서 10 분 동안 원심 분리기.</li>
		<li>상부 수성 상면을 새로운 미세 원심 분리기 튜브로 옮기십시오.</li>
		<li>에탄올 96%, M Na-아세테이트 pH 5.2의 0.1권으로 2.5권 추가한다.</li>
		<li>-80°C에서 최소 20분 동안 배양하십시오.</li>
		<li>4°C에서 10분 동안 13,000 x g의 샘플을 원심분리합니다.</li>
		<li>에탄올을 제거하고 70% 에탄올의 400 μL로 펠릿을 세척합니다.</li>
		<li>4°C에서 10분 동안 13,000 x g의 샘플을 원심분리합니다.</li>
		<li>에탄올을 제거하고 펠릿을 공기 건조시다.</li>
		<li>10 μL의 TE로 펠릿을 다시 중단합니다.</li>
		<li>0.8% 아가로즈 젤로 샘플을 실행합니다. 초음파 처리 된 크로마틴 크기는 약 500 bp여야합니다. 참고: 브로모페놀 블루 프리 로딩 버퍼를 사용했는데, 이는 이 염료의 크기가 약 500bp이므로 크로마틴 조각의 적절한 검출을 방해할 수 있습니다. 대신 약 3,000bp인 자일렌-시아놀로 보완된 적재 버퍼를 사용하는 것이 좋습니다.</li>
		<li>크로마틴 크기가 허용되는 경우, 2.1 단계에서 냉동 크로마틴 샘플을 희석시. 3부권에서 희석 버퍼(10m Tris-HCl pH 8.0, 0.5mM EGTA pH 8.0, 1% 트리톤 X-100, 140mM NaCl, 1x PIC)에서 4°C에서 10분 동안 회전을 통해 샘플을 혼합한다. 참고: 이 단계는 크로마틴 농도의 측정을 포함하여 다운스트림 반응과의 간섭을 피하기 위해 핵 리시스 버퍼에 존재하는 SDS를 희석하는 것이 필요하다.</li>
		<li>분광계를 사용하여 260/280 nm에서 크로마틴 샘플의 DNA 농도를 측정합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>구슬 준비, 사전 정리 및 면역 침전
	<ol>
<li>사전 개간 및 면역 침전 단계를 위해 구슬(양 안티래빗 또는 마우스 IgG)을 준비합니다. RIPA 버퍼 (50 mM Tris-HCl pH 8.0, 1 mM EDTA pH 8.0, 1 % 트리톤 X-100, 0.1 % Na-DOC, 0.1 % SDS, 150m M NaCl 및 1X PIC)로 4 °C에서 10 분 동안 두 번 구슬을 씻으시다.</li>
		<li>2.3.1 단계와 동일한 RIPA 버퍼볼륨으로 구슬을 다시 일시 중지합니다.</li>
		<li>4°C에서 1-2h의 회전을 통해 구슬의 4 μL을 가진 각 시료의 25-30 μg 크로마틴을 미리 치우게 한다. 참고: 각 크로마틴 샘플에 RIPA 버퍼를 최대 500μL의 최종 부피로 추가하여 샘플이 회전 하에서 제대로 섞일 수 있도록 합니다. 각 샘플 세트의 경우 NAC(항체 제어 없음) 및 TIC(총 입력 제어)에 대한 크로마틴을 꺼내는 것을 잊지 마십시오. TiC는 최대 200μL의 최종 부피만 필요합니다.</li>
		<li>자석으로 구슬을 침전시키고 상체를 새로운 미세 원심 분리기 튜브로 옮기십시오.</li>
		<li>각 크로마틴 샘플(NAC 및 TIC 제외)에 적절한 양의 항체를 추가하고 4°C에서 하룻밤 동안 회전합니다.</li>
		<li>다음 날, 각 샘플 (TIC 제외)에 40 μL의 세척 구슬을 추가하고 4 ° C에서 회전, 하룻밤 인큐베이션.</li>
	</ol></li>
	<li>세탁
	<ol>
<li>저염 완충제 300μL(20m Tris-HCl pH 8.0, 150m NaCl, 2mM EDTA pH 8.0, 1% 트리톤 X-100, 0.1% SDS, 1x PIC)로 한 번 4°C에서 회전하여 10분 간 세척합니다.</li>
		<li>고염 버퍼 300 μL(20m Tris-HCl pH 8.0, 300mM NaCl, 2mM EDTA pH 8.0, 1% 트리톤 X-100, 0.1% SDS, 1x PIC)로 한 번 세척하여 4°C에서 회전을 통해 10분 간 세척합니다.</li>
		<li>LiCl 버퍼 300 μL(250m LiCl, 1% NP-40, 1% Na-DOC, 1mM EDTA pH 8.0, 10mM Tris-HCl pH 8.0, 1x PIC)로 한 번 세척하여 4°C에서 회전을 통해 10분 간 세척합니다.</li>
		<li>300 μL의 TE(10m Tris-HCl pH 8.0, 1mM EDTA pH 8.0)로 회전을 통해 10분 간, 첫 번째 세척은 4°C에서, 두 번째 세척은 25°C에서 세척한다.</li>
	</ol></li>
	<li>용출
	<ol>
<li>용출 버퍼(1% SDS 및 100m NaHCO3)의200μL을 구슬에 넣고 65°C에서 연속 흔들림(약 400 RPM)으로 열 셰이커에 인큐베이트합니다. 200μL의 용출 버퍼에서 상체를 새로운 튜브로 옮기고 다시 엘루트 구슬로 옮김합니다. 용출액(400 μL 최종 부피)을 결합합니다.</li>
		<li>각 샘플에서 200mMMM의 최종 농도에 NaCl을 추가합니다. 200 μL의 용출 버퍼로 TIC 샘플을 보완하고 NaCl도 추가합니다. 참고: 이 단계에서 TIC는 다른 샘플과 동일한 조건에서 처리해야 합니다.</li>
		<li>적어도 6 h에 대한 65 °C (흔들림없이)에서 샘플을 배양.</li>
		<li>각 샘플에 1mL의 감기 100% 에탄올을 추가하고, 튜브를 두 번 회전하여 혼합하고, -80°C에서 하룻밤 사이에 DNA를 침전시합니다.</li>
		<li>다음 날, 원심분리기는 4°C에서 13,000 x g에서 30분 동안 원심분리기를 합니다.</li>
		<li>상체를 버리고 70 % EtOH로 펠릿을 씻으십시오.</li>
		<li>4°C에서 10분 동안 13,000 x g의 샘플을 원심분리합니다.</li>
		<li>상체를 버리고 펠릿을 건조시합니다.</li>
		<li>100 μL의 TE로 펠릿을 다시 중단하고 각 샘플에 RNase A의 0.5 mg/mL을 추가합니다. RNase를 활성화하기 위해 20 분 동안 37 °C에서 배양하십시오.</li>
	</ol></li>
	<li>교차 연결의 반전
	<ol>
<li>Proteinase K의 500 μg/mL과 0.5% SDS를 추가한 다음 샘플을 50°C에서 2시간 동안 배양합니다. 참고: ChIP-seq로 진행하는 경우, 하류 NGS 공정을 저해하므로 페놀 클로로폼 추출을 피하십시오. 대신, 시판되는 키트를 사용하는 것이 좋습니다 (재료의 표참조).</li>
		<li>각 샘플에 페놀 0.5부와 클로로폼 이소아밀 알코올 믹스(24:1)를 0.5부 더넣습니다.</li>
		<li>1 분 동안 소용돌이.</li>
		<li>13,000 x g에서 10 분 동안 원심 분리기.</li>
		<li>상부 수성 상면을 새로운 미세 원심 분리기 튜브로 옮기십시오.</li>
		<li>각 샘플에 클로로폼 이소아밀 알코올 믹스(24:1)를 1부 추가합니다.</li>
		<li>1 분 동안 소용돌이.</li>
		<li>13,000 x g에서 10 분 동안 원심 분리기.</li>
		<li>상부 수성 상면을 새로운 미세 원심 분리기 튜브로 옮기십시오.</li>
	</ol></li>
	<li>DNA 추출
	<ol>
<li>에탄올 96%, M Na-아세테이트 pH 5.2의 0.1권으로 2.5권 추가한다.</li>
		<li>-80°C에서 최소 20분 동안 배양하십시오.</li>
		<li>4°C에서 10분 동안 13,000 x g의 샘플을 원심분리합니다.</li>
		<li>에탄올을 제거하고 70% 에탄올의 400 μL로 펠릿을 세척합니다.</li>
		<li>4°C에서 10분 동안 13,000 x g의 샘플을 원심분리합니다.</li>
		<li>에탄올을 제거하고 펠릿을 공기 건조시다.</li>
		<li>50 μL의 TE로 펠릿을 다시 중단합니다.</li>
	</ol></li>
</ol>

<ol><li>Borsos, B. N., Majoros, H., Pankotai, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ubiquitylation-Mediated+Fine-Tuning+of+DNA+Double-Strand+Break+Repair%5BTitle%5D)+AND+%22Cancers+%28Basel%29%22%5BJournal%5D)">Ubiquitylation-Mediated Fine-Tuning of DNA Double-Strand Break Repair.</a> Cancers (Basel). 12 (6), (2020).</li>
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</ol>

DNA 수리는 비교적 최근의 연구 분야이지만, 우리의 지식은 다양한 생화학 적 및 현미경 방법의 도움으로 급속하게 확장되고 있습니다. 유전 정보를 보존하는 것은 복구 프로세스에 관련되나는 유전자에서 생기는 돌연변이가 종양 발생의 주요 원인 중 하나이기 때문에 세포에 중요하고 그러므로 DNA 복구 통로의 중요한 단계를 해명하는 것은 필수적입니다.
생화학 적 기술 (즉, 서양 얼룩, 면역 침전, 질량 분석 등)은 많은 수의 세포를 필요로하며 연구 된 수리 과정은 원하는 세포 집단의 스냅 샷을 나타냅니다. ChIP 실험을 수행하는 것은 가공, 번거롭고 DSB 수리 과정을 연구하기 위해 특정 실험을 설계할 때 고려해야 합니다. 다음 단계는 몇 가지 예입니다: (I) 세포는 제대로 lysed해야; 크로마티틴 분획(II) 크로마틴에 대한 접근성이 높을 수 있도록 별도의 세포 및 핵 용해 버퍼를 사용하여 2단계 용해 방법을 적용하는 것이 매우 좋습니다. 초음파 처리의 적절한 조건은 사전에 각...

우리의 게놈은 다양한 DNA 손상 에이전트에 의해 끊임없이 도전되고 있습니다. 이러한 공격은 자외선 이나 조사와 같은 환경 공급원뿐만 아니라 산화 스트레스 또는 복제 오류1,2로인한 대사 부산물과 같은 내인성 소스에서 유래할 수 있다. 이러한 병변은 하나 또는 두 DNA 가닥의 무결성에 영향을 미칠 수 있으며, 생성된 오류가 지속되면 자주 전좌 및 게놈 불안정으로 이어지며 종양 발생3,4가발생할 수 있습니다. 게놈 무결성을 유지하기 위해 진화 중에 여러 수리 시스템이 개발되었습니다. DNA 손상의 특정 유형의 화학 적 및 물리적 특성에 따르면, 여러 복구 메커니즘을 활성화 할 수있다. 불일치, 기본 부위, 단일 가닥 휴식 및 8-oxoguanine(8-oxoG)은 불일치 수리 또는 기본 절제 수리 경로5,6에의해 제거될 수 있다. UV 유도 광제품에 의한 병변 및 부피가 큰 부피가 큰 유도체는 뉴클레오티드 절제 수리(NER) 또는 DNA 이중 가닥 파손 수리(DSBR) 공정7,8에의해 수리될 수 있다. NER는 전사 결합 NER(TC-NER)와 글로벌 게놈 NER(GG-NER)의 두 가지 주요 하위 경로로 구성됩니다. 세포 주기 단계에 관해서는, DNA 이중 가닥 침입 유도에 따라, 2개의 하위 통로가 활성화될 수 있습니다: 비동상화 끝 결합 (NHEJ) 및 상동성 재조합 (HR)1,9. 휴식 세포에서 지배적인 통로인 NHEJ는 모든 세포 주기 단계에서 활성화될 수 있으며, 이는 더 빠르지만 오류가 발생하기 쉬운통로(10)를나타내는 다. 한편, HR은 자매 크로마티드의 서열-상동성 검색에 기초하여 DSB를 수리하는 오류 없는 통로이며, 따라서 주로 S 및 G2 세포 주기11상에존재한다. 더욱이, 미세혼모톨로지 매개 엔드 결합(MMEJ)은 이전에 절제된 미세homologous 서열의 재구성 방법을 기반으로 앞서 언급한 것과 구별되는 또 다른 DSB 수리 메커니즘으로, 깨진 DNA 끝을 측면에 두고 있다. 따라서 MMEJ는 오류가 발생하기 쉽고 매우 돌연변이가 있는것으로 간주됩니다.12. DNA 수리 중, DSB는 DNA 손상 반응(DDR)을 유도할 수 있으며, 이는 수리13,14,15동안 세포 주기를 중단시키는 검사점 키나아제의활성화를초래한다. DDR은 병변 주위의 수리 과정의 입회기 키 플레이어의 채용 및 광범위한 확산에 대한 응답으로 활성화되어 수리 초점의 형성에 기여합니다. 이 초기 신호 캐스케이드에서 ATM(아크로바 텔란지엑시아 돌연변이) 키나제는병변(16)의주위에 Ser139(γH2AX라고 함)에서 히스톤 변종 H2AX의 인산화를 촉매하여 중추적인 역할을 한다. 이 초기 이벤트는 추가 수리 요인의 모집과 다운스트림 수리 프로세스의 개시에 대한 책임이 있습니다. 수리 초점에서 모집 된 단백질의 정확한 기능은 아직 완전히 특성화되지 않았지만, 수리 foci의 형성과 역학은 여러 실험실에서 조사되었습니다. 이러한 마커는 수리 운동학을 따르는 데 광범위하게 사용되지만 수리 과정에서 정확한 역할은 여전히 애매합니다. DNA 수리 관련 세포 과정의 중요성이 크지만 이해가 좋지 않았기 때문에 DDR을 유도하고 시각화하기 위해 지금까지 여러 가지 방법이 개발되었습니다.
원하는 유형의 DNA 손상을 유도하기 위해 다양한 방법 및 시스템이 설립되었습니다. 예를 들어, 일부 에이전트 [네오카르지노스타틴 (NCS), 플레오마이신, 블로마이신, γ 조사, UV]는 비예측 게놈 위치에서 많은 수의 무작위 DNA 브레이크를 유도할 수 있으며, 다른 사람(아시시, I-PpoI 또는 I-SceI, 레이저 스트라이프)과 같은 다른 사람(내시경)은 알려진 게놈 로시17,18,19,20,201에서DNA 절연을 유도할 수 있다. 여기에서, 우리는 포유류와 효모 세포에 있는 DDR를 공부하는 데 현재 이용된 엔도뇌리스 기지를 둔 기술에 집중합니다. 이러한 기술의 원리를 강조하는 것 외에도, 우리는 그들의 장점과 단점을 모두 강조합니다.

<table><tbody><tr><td>4-OHT</td><td>시그마 Aldrich</td><td>H7904</td><td></td></tr><tr><td>Agarose</td><td>Lonza</td><td>50004</td><td></td></tr><tr><td>항생제-항진균 용액(100&times;), 안정화</td><td>시그마 Aldrich</td><td>A5955</td><td></td></tr><tr><td>항감마 H2A. X (phospho S139) 항체</td><td>Abcam</td><td>ab26350</td><td></td></tr><tr><td>소 혈청 분획 V 알부민</td><td>Biosera</td><td>PM-T1725</td><td></td></tr><tr><td>TrackIt&trade; 시안/노란색 로딩 버퍼</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>10482035</td><td></td></tr><tr><td>Dem, 1.0 g/L 포도당, L-글루타민 없음</td><td>Lonza</td><td>12-707F</td><td></td></tr><tr><td>Doxycycline</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D9891</td><td></td></tr><tr><td>Dynabeads&trade; M-280 양 안티-마우스 IgG</td><td>Invitrogen</td><td>11202D</td><td></td></tr><tr><td>Dynabeads&trade; M-280 양 안티 토끼 IgG</td><td>Invitrogen</td><td>11204D</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>시그마 Aldrich</td><td>E6758</td><td></td></tr><tr><td>EGTA</td><td>시그마 Aldrich</td><td>E3889</td><td></td></tr><tr><td>에탄올</td><td>어금니 화학 물질</td><td>02910-101-340</td><td></td></tr><tr><td>소 태아 혈청(남미 원산지), EU 승인</td><td>Gibco</td><td>ECS0180L</td><td></td></tr><tr><td>포름알데히드 37% 용액 무산</td><td>시그마 알드리치</td><td>1.03999</td><td></td></tr><tr><td>글루타맥스&트레이드; 보충제</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>35050038</td><td></td></tr><tr><td>글리신</td><td>시그마 알드리치</td><td>50046</td><td></td></tr><tr><td>IPure kit v2</td><td>Diagenode</td><td>C03010015</td><td></td></tr><tr><td>이소 아밀 알코올</td><td>시그마 알드리</td>치 <td>W205702</td><td></td></tr><tr><td>LiCl</td><td>시그마 알드리치</td><td>L9650</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>시그마 알드리치</td><td>S5886</td><td></td></tr><tr><td>Na-DOC</td><td>시그마 알드리치</td><td>D6750</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>시그마 알드리치</td><td>S5761</td><td></td></tr><tr><td>스트렙토마이세스 카지노스테틱스의 네오카르지노스타틴</td><td>시그마 알드리치</td><td>N9162</td><td></td></tr><tr><td>NP-40</td><td>시그마 알드리치</td><td>I8896</td><td></td></tr><tr><td>Ca2+, Mg2+가 없는 PBS 분말</td> 알<td>드리치</td><td>L182-50-BC</td><td></td></tr><tr><td>페놀</td><td>시그마 알드리치</td><td>P4557</td><td></td></tr><tr><td>파이프</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P1851</td><td></td></tr><tr><td>Polysorbate 20 (Tween 20)</td><td>몰 화학물질</td><td>09400-203-190</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P5405</td><td></td></tr><tr><td>ProLong&trade; DAPI Thermo</td><td>Fisher Scientific</td><td>P36935</td><td></td></tr><tr><td>프로테아제 억제제 칵테일 세트 I</td><td>Roche</td><td>11873580001</td><td></td></tr><tr><td>Proteinase K</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P2308</td><td></td></tr><tr><td>P-S2056 DNAPKcs 항체</td><td>Abcam</td><td>ab18192</td><td></td></tr><tr><td>RNase A</td><td>Roche</td><td>10109169001</td><td></td></tr><tr><td>CH3COONa</td><td>시그마 알드리치</td><td>S2889</td><td></td></tr><tr><td>SDS</td><td>시그마 알드리치</td><td>L3771</td><td></td></tr><tr><td>트리스 아세테이트-EDTA 버퍼</td><td>시그마 알드리치</td><td>T6025</td><td></td></tr><tr><td>트리스-HCl</td><td>시그마 알드리치</td><td>91228</td><td></td></tr><tr><td>TRITON X-100</td><td>어금니 화학 물질</td><td>09370-006-340</td><td></td></tr><tr><td>돼지 췌장에서 추출한 트립신</td><td>시그마 알드리치</td><td>T4799</td><td></td></tr><tr><td>트립신-EDTA (0.5%), 페놀 레드</td><td>Gibco</td><td>15400054</td><td></td> 없음</tr></tbody></table>

엔도누블레스 기반 사이트 별 dna 손상을 시각화하고 정량화

Visualizing and Quantifying Endonuclease-Based Site-Specific DNA Damage

세포는 다양한 DNA 손상 제에 지속적으로 노출되어 다른 세포 반응을 유도합니다. 생화학적 및 유전적 접근을 적용하는 것은 DNA 손상의 사이트에 있는 DNA 복구 단지의 모집 그리고 조립과 관련되었던 세포 사건을 드러내는 데 필수적입니다. 지난 몇 년 동안, 몇 가지 강력한 도구는 사이트 특정 DNA 손상을 유도 하기 위해 개발 되었습니다. 더욱이, 새로운 정액 기술은 우리가 고정및 살아있는 세포를 둘 다 사용하여 단세포 분해능 수준에서 이 프로세스를 공부할 수 있게 합니다. 이러한 기술은 다양한 생물학적 과정을 연구하는 데 사용되었지만, 본원에서 우리는 DNA 수리 분야에서 가장 널리 사용되는 프로토콜을 제시, 형광 면역 스테인링 (IF) 및 크로마티닌 면역 침전 (ChIP), 이는 엔토뇌 기반 사이트 별 DNA 손상과 함께 DNA 의 유전 적 점유 및 DNA 의 결합을 시각화하고 정량화 할 수 있도록 DNA 수리 요소의 유전 적 점유율을 정량화 할 수 있도록 각각. 이 기술은 DNA 수리 도중 그들의 미세 조정 규칙에 필요한 그들의 번역 후 수정뿐만 아니라 손상된 게놈 궤적에 묶인 새로운 단백질을 확인하기 위하여 연구원을 위한 강력한 공구를 제공합니다.

세포에서 사이트 지향 DSB 유도 수리 프로세스를 연구하는 것은 안정적이거나 일시적인 과도 성 전도를 통해 달성 될 수있다. 그러나, 안정적인 형질전환이 균일하고 안정적인 세포 집단을 보장한다는 점에 유의해야 하며, 이는 통일되고 따라서 더 신뢰할 수 있는 세포 반응을 제공합니다. 일시적인 과도의 경우, 세포 인구의 극히 비율만이 실험에 다양성을 도입하는 플라스미드를 차지하고 유지합니다. ER-I-PpoI 또는 ER-AsiSI 엔도누셀 기반 세포 시스템을 확립하려면 50% 컨실릭 세포 집단이 필요하며, 이는 엔도나클로리스를 코딩하는 플라스미드로 보다 효과적으로 연관됩니다. 형질 전환의 경우, 시판되는 트랜스페트 시약 또는 바이러스 감염 기반 방법도 사용될 수 있다. 현미경 시각화 기술이 적용되고 과도 성 과도 형질이 필요한 경우, 지시된 DSB는 ER-융합 엔도넬리스에 결합하고 핵 전좌 및 DSB 유도를 허용하는 트랜스퍼션 후 24h4H에 의해 유도될 수 있다. 가장 적합한 시간 점을 결정하기 위해 4-OHT 처리 에 이어 다른...

이 기사에서는 면역 염색 및 크로마틴 면역 침전의 필수적인 단계를 소개합니다. 이 프로토콜은 일반적으로 DNA 손상 관련 세포 프로세스를 연구하고 DNA 복구에 연루된 단백질의 모집을 시각화하고 정량화하기 위하여 이용됩니다.

엔도누블레스 기반 사이트 별 DNA 손상을 시각화하고 정량화

Cells are continuously exposed to various DNA damaging agents, inducing different cellular responses. Applying biochemical and genetic approaches is ...

이 방법론 비디오는 DNA 손상 관련 세포 과정을 연구하고 DNA 수리에 연루 된 단백질의 모집을 시각화하고 정량화하는 데 정기적으로 사용되는 면역 염색 및 크로마티닌 면역 침전 프로토콜의 중요한 단계를 소개합니다. 이 기술은 DNA 수리 도중 미세 조정된 규칙에 필요한 그들의 번역 후 수정뿐만 아니라 손상된 게놈 궤적에 묶인 새로운 단백질을 확인하기 위하여 연구원을 위한 강력한 공구를 제공합니다. 이러한 기술은 다른 세포 프로세스를 공부하기 위해 적용될 수 있기 때문에, 레이저 미세 방사선 조사 또는 핵 기지를 둔 DNA 손상 유도 시스템을 사용하는 경우에 잠재적인 관련성이 있습니다.최근에는 DNA 수리에 대한 이해를 확장하는 데 사용할 수 있는 사이트별 DNA 손상을 유도하기 위해 몇 가지 강력한 도구가 개발되었습니다. 생화학적 및 유전적 접근을 적용, 이 기구는 DNA 손상의 사이트에 DNA 복구 단지의 모집 그리고 조립과 관련되었던 세포 사건을 드러내는 데 필수적입니다. 더욱이, 이러한 기술은 고정 및 살아있는 세포를 모두 사용하여 단세포 해상도에서 이러한 프로세스의 연구를 허용합니다.10%의 태아 종아리 혈청, 2 밀리몰러 글루타민, 1%항생제 항마이코스 용액으로 보충된 DMEM 배양 배지의 단층층에서 U2OS 세포를 유지한다. 가습된 5%의 이산화탄소 환경에서 세포를 37도에서 80%의 합류가 달성할 때까지 성장하여 2~3일마다 배지를 갱신합니다. 매체를 흡인하고 PBS로 세포를 씻으세요.트립신-EDTA 용액으로 세포를 분리합니다. 세포가 분리되면, 세포에 배양 배지를 추가하여 트립신의 활성을 중지하여 세포 현탁액을 산출한다. 셀 카운팅 챔버를 사용하여 셀을 계산합니다.플레이트 20, 000 셀 당 밀리 리터 당 잘 24 잘 접시에 멸균 12 밀리 미터 둥근 커버 슬립 각 우물에. 가습 된 5 %의 이산화탄소 환경에서 37도에서 24 시간 동안 세포를 배양하여 커버 슬립에 부착 할 수 있습니다. 밀리리터 네오카르지노스타틴당 10나노그램으로 세포를 치료하거나 내핵사용 기반 시스템을 통해 이중 가닥 휴식을 유도하는 적절한 방법을 사용한다.DNA 수리의 운동학을 따르기 위해 가습된 5% 이산화탄소 환경에서 37도에서 1~8시간 동안 세포를 배양한다. 4% 포름알데히드 PBS 용액으로 셀을 25도에서 20분 동안 수정합니다. 고정 용액을 제거하고 PBS로 셀을 각각 5 분 동안 세 번 씻습니다.PBS를 제거하고 PBS에 용해된 0.2%트리톤 X를 추가합니다. 샘플을 20분 동안 배양합니다. PBS로 셀을 세 번 씻으시면 됩니다.BSA-PBST에서 희석된 5%BSA로 비특이적 결합을 차단하고 샘플을 최소 20분 동안 배양합니다. 1%BSA-PBST 용액에서 희석된 1차 항체의 적당량을 추가한다. 각 커버를 파라필름 또는 희석 된 항체의 10 마이크로 리터 액적에 거꾸로 놓습니다.4도에서 1 시간 반 동안 습도 챔버에서 샘플을 배양합니다. 커버 슬립을 24웰 플레이트에 다시 올려 놓고 PBS로 세 번 세척합니다. 1%BSA-PBST에서 희석된 이차 항체의 적당한 양을 추가합니다.각 커버를 희석 된 항체의 10 마이크로 리터 액적 위에 파라필름에 거꾸로 놓습니다. 한 시간 동안 4도에서 습도 챔버에서 샘플을 배양합니다. 24웰 플레이트에 다시 세워지는 커버 슬립을 놓고 PBS로 세 번 씻습니다.마지막 PBS 세척 용액을 제거하기 전에, 부드럽게 트위저와 바늘의 절반으로 커버 슬립을 꺼내, 다음 장착 매체의 방울유리 슬라이드에 거꾸로 넣어. 크로마틴 면역 침전은 DNA에 단백질의 결합 패턴을 식별하는 널리 사용되는 기술이다. DSB 주위의 욕망 수리 단백질의 점유율을 밝히기 위해, 특정 항체는 결합되는 DNA 영역과 함께 크로마틴 제제로부터 관심 있는 단백질을 면역침전증하는 데 사용된다.더욱이, ChIP는 일반적으로 주어진 게놈 궤적에서 DSB에 의해 사용에 특정 번역 후 수정의 존재를 매핑하기 위해 적용되었습니다. 밀리리터당 약 2천만 개의 세포가 각 샘플에 대해 15센티미터 의 접시로 배양되어야 합니다. 배양 배지를 제거하고 얼음 차가운 PBS로 세포를 두 번 씻으시면 됩니다.1% 포름알데히드-PBS 용액으로 셀을 수정합니다. 플레이트를 궤도 셰이커에 놓고 20분 동안 부드럽게 교반합니다. 글리신으로 고정을 중지하여 125 밀리몰러의 최종 농도에 도달하고 25도에서 5 분 동안 부드러운 동요와 궤도 셰이커에 배양하십시오.접시를 얼음 위에 놓고 얼음 차가운 PBS로 두 번 씻으시면 됩니다. 얼음 차가운 PBS에서 세포를 긁어 15 밀리리터 원추형 튜브로 옮춥춥시게 합니다. 4도에서 5 분 동안 5, 000 rpm에서 세포를 원심 분리합니다.조심스럽게 슈퍼나탄을 흡인하고 2밀리리터 셀 리시스 버퍼로 펠릿을 재보간 후 10분 동안 얼음에 배양합니다. 원심분리기 5, 000 rpm에서 5분 동안 4도. 상체를 조심스럽게 버리고 500 에서 1, 500 마이크로 리터 핵 용해 버퍼로 펠릿을 재연하고 30 ~ 60 분 동안 얼음에 배양하십시오.용양을 초음파 처리에 적합한 폴리스티렌 원내 튜브로 옮기십시오. 300 ~ 1000개의 염기 쌍의 평균 단편 크기로 DNA를 전단하기 위해 lysate을 초음파 처리합니다. 사전 세척 및 면역 침전 단계에 다이나비드를 준비합니다.RIPA 버퍼로 4도에서 구슬을 10분 간 두 번 씻으시다. 3.1 단계에서 원래 재고 솔루션에서 꺼낸 것과 동일한 RIPA 버퍼로 다이나비즈를 다시 일시 중지합니다. 4마이크로리터 다이나비드4개와 함께 각 시료의 25~30마이크로그램 크로마틴을 4도에서 1~2시간 동안 회전시 사전 클리어합니다.자석으로 다이나비드를 침전시키고 상체를 새로운 엡펜도르프 튜브로 옮기다. 각 크로마틴 샘플에 적절한 양의 항체를 추가하고 4도에서 하룻밤 동안 회전합니다. 다음 날, 각 샘플에 세척 된 Dynabeads 40 마이크로 리터를 추가하고 4도에서 하룻밤 회전을 인큐베이션합니다.300 마이크로리터 저염 버퍼로 한 번 씻고 4도 회전하여 10분간 세척합니다. 300 마이크로리터 고염 버퍼로 한 번 씻고 4도 회전하여 10분간 씻습니다. 300 마이크로리터 리튬 염화물 버퍼로 한 번 세척하여 4도회전으로 10분간 세척합니다.300 마이크로리터 TE로 10분간 2회 세척하고, 첫 번째 세척은 4도, 두 번째 세척은 25도에서 세척합니다. 구슬에 200 마이크로리터 용출 버퍼를 추가하고 연속 흔들림으로 15 분 동안 열 셰이커에 65도에서 배양하십시오. 200 마이크로리터 용출 버퍼에서 상체를 새로운 튜브로 옮기고 다시 엘테 구슬을 엘테비드로 옮기습니다.밀리리터 단백질아스-K당 500 마이크로그램과 SDS의 절반을 추가하고 샘플을 2시간 동안 50도에서 배양합니다. 클로로폼 추출을 수행하고 새로운 Eppendorf 튜브에 상부 수성 단계를 전송합니다. 절대 에탄올과 0.1 부피 3 개의 어금니 산 나트륨 아세테이트 pH 5.2의 2 개 반 볼륨을 추가합니다.마이너스 80도에서 적어도 20 분 동안 배양하십시오. 에탄올을 제거하고 펠릿을 공기 건조시다. 50 마이크로 리터 TE에서 펠릿을 다시 중단합니다. DNA에 그들의 특별한 분포를 공부하기 위하여는, 크로마틴 면역 침전을 적용되어야 합니다.ChIP-qPCR에 의해 얻어진 전형적인 실험 결과는 I-PpoI 유도된 DNA 손상에 대한 응답으로 감마 히스톤 AX의 시간적 농축을 보여주는 이 그림에 제시된다. 이미지의 왼쪽 부분에, 적시에 검출된 감마 히스톤 AX 신호는 브레이크 측에 표시되고, 오른쪽 부분에는 감마 히스톤 AX 분포가 입증된 파손이 유도되지 않은 대조군 유전자 부위에 제시된다. DNA 수리는 비교적 최근의 연구 분야이지만 생화학적 및 현미경 방법의 도움으로 우리의 지식은 급속히 증가하고 있습니다.그럼에도 불구하고, 서양 얼룩, 면역 침전 및 질량 분광법과 같은 생화학 적 기술은 다량의 세포를 필요로한다. 연구 복구 프로세스는 원하는 세포 집단의 스냅샷을 나타냅니다. 현미경 분야는 뉴클레오소피 수준에서 DNA 손상 유도 세포 과정의 시각화를 가능하게 하고 단백질 공동 국소화의 정확한 매핑을 보장하는 초해상도 현미경과 같은 고해상도 기술에 의해 혁명을 일으켰습니다.한편, 크로마틴 면역 침전은 특히 코마틴 또는 이종학 영역에서 원하는 DNA 수리 관련 단백질및 이중 가닥 의 게놈 전체 결합 패턴을 시각화하는 시퀀싱 방법과 결합함으로써 강력한 도구입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

우리는 DNA glycosylase 및 세포 핵 lysates의 에이피 endonuclease 활동의 양적, 실시간 측정을위한 방법을 설명합니다. 분석은 운동 분석 의무의 DNA 복구 활동의 속도를 얻을 조직과 종양의 lysates 또는 정화 단백질과 DNA를 복구 활동의 부량에 대한 적응이다.

병변 특정 분자 비콘을 활용 세포 Lysates의 기본 절단 복구 활동의 양적, 실시간 분석

전자 분광 이미징은 나노미터 해상도로 핵산과 단백질을 이미지화하고 구별할 수 있습니다. 이 시스템은 투과 전자 현미경 샘플에서 태그가 지정된 단백질을 특이적으로 라벨링할 수 있는 miniSOG 시스템과 결합할 수 있습니다. 이중 가닥 파단 복구 초점을 예로 들어 이러한 기술의 사용을 설명합니다.

전자 분광 이미징과 결합 miniSOG 태그 DNA 복구 단백질의 시각화 (ESI)

이 프로토콜의 목표 레이저 microirradiation를 사용 하 여 다른 유형의 DNA 손상, 비교적 간단한 가닥 나누기 등 복잡 한 손상, DNA 손상 신호 및 복구 요소에서 어셈블리 피해 사이트 vivo에서 공부를 유도 하는 방법을 설명 하는 것입니다. .

간단 하 고 복잡 한 DNA 손상에 세포질 응답 Vivo에서 공부 레이저 Microirradiation

공초점 형광 현미경 검사 법 및 레이저 마이크로 조사 제공 도구 DNA 손상 유도 및 선택한 하위 핵 분야에서 DNA 수 선 단백질의 응답을 모니터링. 이 기술은 크게 손상 감지, 신호, 및 채용의 우리의 지식의 전진 했다. 이 원고에서는 단일 및 이중 가닥 브레이크 수리 검사 이러한 기술을 보여 줍니다.

단일의 검사 및 포유류 세포에서 이중 가닥 브레이크 수리에 대 한 레이저 마이크로-방사선의 응용

DNA 손상 복구 속도 론을 공부 하 고 정의 된 하위 핵 지역에서 병 변 유발 하는 시스템이 필요 합니다. 레이저 검사 confocal 현미경 405 nm 레이저 장비를 사용 하 여 지역화 된 이중 가닥 나누기를 만들고 이러한 병 변에서 수리 요인의 역학을 계량 하는 자동화 된 절차를 제공 하는 방법을 설명 합니다.

단백질 DNA 장애 405 Nm 레이저 마이크로 방사선 조사를 사용 하 여 채용의 조사

이 프로토콜의 목표는 플라스 미드 DNA에 정의 된 DNA-단백질 crosslinks의 수리 계량. Lesioned 플라스 미드는 받는 사람 포유류 세포 선 및 여러 시간 포인트 후 transfection에 수확 하는 저 분자 무게에 페. DNA 복구 속도 스트랜드 특정 뇌관 연장 정량 뒤를 사용 하 여 정량.

간단 하 고 빠른, 양적 분석 결과에 플라스 미드 DNA-단백질 Crosslinks의 측정 수리에 포유류 세포로 페

이중 가닥 DNA 틈의 수리 후 병 변 해결 뿐만 아니라 휴식, 하지만 또한 그들의 해상도에 선 단지의 형성을 필요로 역동적인 과정 이다. 여기, 사용 면역 형광 검사 현미경 검사 법 과도 하 고 오래 견 딘 더블-좌초 휴식을 위한 도구로 서이 게놈 유지 관리 메커니즘을 해 부 합니다.

면역 형광 검사 현미경 검사 법에 의해 변이 및 긴-지속 이중 가닥 DNA 틈에 DNA 복구 과정을 특성화

DNA 손상에 따라 인간 세포는 게놈의 무결성을 회복하기 위해 필수적인 수리 경로를 활성화합니다. 여기서, 우리는 DNA 복구 단백질을 검출하고, 그들의 공간 및 측두모집을 분석하고, DNA 손상의 사이트에서 단백질 단백질 상호 작용을 심문하는 것을 돕는 수단으로 간접적인 면역 형광의 방법을 기술합니다.

면역형광에 의한 DNA 수리 단백질 상호작용의 시각화

여기에 제시된 것은 CD4 프로모터 근처의 이중 가닥 파단 복구와 관련된 돌연변이를 확인하는 데 사용할 수있는 sgRNA/CAS9 엔도뉴클레아제 및 차세대 시퀀싱 프로토콜입니다.

차세대 시퀀싱을 사용하여 CD4 프로모터 근처의 CAS9 유도 이중 가닥 파단의 복구와 관련된 돌연변이 확인

여기에서는 DNA 손상 부위에서 단백질 상호 작용을 검출하기 위한 간단하고 신속한 프로토콜을 제시합니다.

DNA 손상 부위의 단백질을 국소화하기 위한 Proximity Ligand Assay

학습하세요 형광 면역염색과 염색질 면역침전법을 활용한 DNA 손상 부위 단백질 모집의 시각화 및 정량화 방법을. U2OS 세포에서 DNA 복구 메커니즘을 연구하는 데 필수적인 기술입니다.

엔도누블레스 기반 사이트 별 DNA 손상을 시각화하고 정량화

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