Name: 인 비보 큰 동물의 망막 신경 세포 및 시신경 기능 및 구조를 평가하는 방법 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-02-26T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 18 s
Description: 학습하세요 염소와 원숭이에서 망막 신경 세포 및 시신경 기능을 평가하는 FVEP, PERG, OCT 방법을. 이 기술은 시각 신호 전달 및 시신경 질환 치료 연구에 중요한 통찰을 제공합니다.

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이 연구는 다음과 같은 보조금에 의해 지원되었다: 중국의 국가 키 R&D 프로그램 (2021YFA10101200); 원저우 의학 연구 프로젝트 (Y20170188), 중국의 국가 키 R&D 프로그램 (2016YFC1101200); 중국 국립 자연 과학 재단 (81770926;81800842); 저장성 주요 R&D 프로그램 (2018C03G2090634); 원저우안과 병원(YNZD1201902)의 주요 R&D 프로그램. 스폰서 또는 자금 조달 조직은 이 연구의 설계 또는 수행에 아무런 역할을 하지 않았습니다.

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</ol>

저자는 공개 할 이해 상충이 없습니다.

이 연구에서는 염소와 rhesus 원숭이에 VEP, PERG 및 OCT의 프로토콜을 제시합니다. 이러한 생체 내 방법은 녹내장, 허혈성 또는 외상성 시신경병증 및 광학 신경염과 같은 다양한 시신경병증의 대형 동물 모델에 적용될 수 있다.
PVEP는 FVEP17보다 더 안정적이고 민감합니다. 그러나 염소9에서는 유도될 수 없습니다. 이와 같이, FVEP는 염소에서 수행되고 PVEP는 망막 -geniculo-피질 통로의 무결성을 평가하기 위해 우리의 실험실에서 rhesus 마카크에서 수행됩니다. PVEP가 아닌 PERG가 염소에서 유도될 수 있다는 관측의 근본적인 메커니즘은 우리의 지식에 따라 여전히 불분명합니다. 염소로부터 의 시신경 기능과 구조가 인간과 다를 수 있습니다.
FVEP의 진폭...

망막 신경절 세포 (RGC)에서 축으로 구성된 시신경 (ON)은 망막에서 뇌로 시각적 신호를 전달합니다. 녹내장, 외상성 또는 허혈성 신경병증과 같은 질병은 종종 돌이킬 수없는 ON / RGC 변성과 파괴적인 시각 손실을 일으켰습니다. 현재 설치류 모델에서 ON 재생 및 RGC 보호에 많은 돌파구가 있지만1,2,3,4,5,6, ON 질병의 대부분에 대한 임상 치료는 만족스럽지 못한 결과와 지난 반세기 동안 본질적으로 동일하게 유지7,8 . 기본 연구와 임상 실습 사이의 격차를 메우기 위해 ON 질병의 큰 동물 모델을 사용하는 번역 연구는 설치류 모델보다 인간과의 해부학적 유사성 때문에 종종 필요하고 유익합니다.
염소와 rhesus 원숭이는 인간의 ON 질병을 모델링하기 위해 우리의 실험실에서 사용되는 두 개의 큰 동물 종입니다. 염소의 안구, ON 및 인접한 구조(궤도 및 비강, 두개골 기지 등)의 크기는 두개골 CT 스캔9을 기반으로 한 사람의 크기와 유사합니다. 따라서 염소 모델은 인간에서 사용하기 전에 치료 장치 또는 수술 절차를 평가하고 정제 할 수있는 기회를 제공합니다. 비인간 영장류 (NHP)로 rhesus 원숭이는 다른 종10,11에 존재하지 않는 인간과 같은 독특한 시각 시스템을 가지고 있습니다. 또한, NHP에서 부상과 치료에 대한 병리학적 반응은 인간12에서와 훨씬 유사합니다.
ON 및 RGC의 구조와 기능을 세로적으로 평가하는 생체 내에서 는 큰 동물 연구에서 중요합니다. 패턴 전기 전세노그램(PERG)은 RGC 기능을 평가하는 데 사용되어 왔다. 플래시 비주얼 은 전위 (FVEP)는 시각 시스템에서 망막 제니큘로 피질 경로의 무결성을 반영합니다. 따라서, FVEP와 결합된 PERG는 ON 기능을 반영할 수 있다9,13,14. 망막 광학 일관성 단층 촬영(OCT) 이미징은 망막 신경절 복합체(GCC)9,15의 두께를 측정할 수 있는 높은 측두및 공간 해상도로 망막 구조를 보여줄 수 있다. 이 연구에서 전기 생리학적 검사의 경우, 이러한 매개 변수가 안구 혈류에 강력한 영향을 미치고 따라서 시각 시스템의 기능에 강력한 영향을 미치기 때문에 테스트 전에 활력 징후 (열속도, 위반 속도, 혈압) 및 산소 포화 수준 (SpO2)을 모니터링하는 것이 중요합니다. 그러나, 우리는 단순성을 위해 OCT 망막 화상 진찰을 수행할 때 생명 징후를 감시하지 않았습니다. 우리의 이전 연구에 따르면9, OCT 망막 이미징에 의해 측정 된 GCC 두께는 매우 안정적이다, 3 %에 가까운 변화의 세션 계수와. 염소와 rhesus 원숭이에서 생체 내 시험은 우리의 이전 연구에서 자세히 설명되었습니다9. 여기서 우리는 실험적 투명성과 재현성을 높이기 위해 이러한 방법을 제시합니다.

<table><tbody><tr><td>47.6 x 26.8cm 모니터</td><td>DELL Inc.</td><td>E2216HV</td><td>콘트라스트 반전 흑백 바둑판의 시각적 자극이</td></tr><tr><td>6.0mm 기관 튜브</td><td>Henan Tuoren Medical Device Co., Ltd</td><td>PVC 6.0</td><td>기도</td></tr><tr><td>악어 클립</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>아트로핀</td><td>Guangdong Jieyang Longyang Animal pharmaceutical Co., Ltd.에</td> 표시되었습니다.<td></td><td>기관지 분비물을 줄이고 미주신경 활성화로부터 심장을 보호하십시오</td></tr><tr><td>Carbomer Eye Gel</td><td>Fabrik GmbH Bausch & Lomb</td><td></td><td>은 각막을 적시고 기록 전극을 안정화</td></tr>합니다 <tr><td>ERG-Jet 기록 전극</td><td>Roland Consult Stasche& Finger GmbH</td><td>2300 La Chaux-De-Fonds</td><td>ERG 기록</td></tr><tr><td>눈 검경</td><td>Shanghai Jinzhong Medical Device Co., Ltd</td><td>ZYD020</td><td>개방형 구개 열구</td></tr><tr><td>하이델베르크 스펙트랄리스 OCT 시스템</td><td>하이델베르크 엔지니어링</td><td></td><td>OCT 시스템</td></tr><tr><td>이미징</td><td></td><td></td><td>( https://www.heidelbergengineering.com/media/e-learning/Totara-US/files/pdf-tutorials/2238-003_Spectralis-Training-Guide.pdf)</td></tr> <tr><td>이소 플루란</td><td>RWD 생명 과학 유한 공사</td><td>R510-22</td><td>이소 플루란 마취</td></tr><tr><td>남성 Saanen 염소</td><td>Caimu Livestock Company, 국가 (항저우, 중국)</td><td></td> <td>수컷 Saanen 염소, 4 개월에서 6 개월까지 체중 19&ndash; 23kg</td></tr><tr><td>바늘 전극</td><td>Roland Consult Stasche& Finger GmbH</td><td>U51-426-G-D</td><td>FVEP 접지 전극 및 PERG 참조 전극</td></tr><tr><td>주변 정맥 카테터</td>에 사용 <td>BD shanghai Medical Device Co., Ltd</td><td>383019</td><td>아트로핀 및 프로포폴</td></tr><tr><td>프로포폴</td><td>Xian Lipont Enterprise Union Management Co., Ltd.에</td> 대한 정맥 주사 접근.<td></td><td>염소에 있는 Isoflurane 마취를 유도</td></tr>하십시오 <tr><td>Tropicamide 페닐에프린 안약</td><td>SANTEN OY, 일본</td><td></td><td>5% 트로피카미드와 5% 페닐에프린 염산염</td></tr><tr><td>시각적인 전기생리학 장치</td><td>Gotec Co., 주식 회사</td><td>GT-2008V-III</td><td>FVEP를 위한 사용 & PERG</td></tr><tr><td>xylazine</td><td>Huamu 동물 건강 제품 Co., 주식 회사.</td><td></td><td>자일라진 마취: 자일라진 3mg/kg</td></tr><tr><td>zoletil50</td><td>Virbac</td><td></td>의 근육 주사는 <td>원숭이에서 Isoflurane 마취를 유도</td></tr></tbody></table>합니다.

인 비보 큰 동물의 망막 신경 세포 및 시신경 기능 및 구조를 평가하는 방법

In Vivo Methods to Assess Retinal Ganglion Cell and Optic Nerve Function and Structure in Large Animals

시신경은 망막 신경절 세포에서 축축절 신호를 수집하고 뇌에 시각적 신호를 전송합니다. 시신경 상해의 큰 동물 모형은 크기와 해부학에 있는 인간에 그들의 가까운 유사성 때문에 설치류 모형에서 임상 응용에 새로운 치료 전략을 번역하기 위해 필수적입니다. 여기서우리는 시각 유발 전위(VEP), 패턴 전백소(PERG) 및 광학 일관성 단층 촬영(OCT)을 포함하여 큰 동물에서 망막 신경절 세포(RGC) 및 시신경(ON)의 기능 및 구조를 평가하는 생체내 방법을 설명한다. 염소와 비 인간 영장류 모두이 연구에서 사용되었다. 생체 내 방법을 단계적으로 제시함으로써, 우리는 다른 실험실 중 실험 재현성을 높이고 시신경병증의 대형 동물 모델의 사용을 용이하게 할 수 있기를 바랍니다.

그림 1A 는 염소에서 FVEP의 대표적인 결과를 보여줍니다. 동일한 플래시 강도의 파형은 상대적인 유사성을 가지고 있지만 파형을 두 번 검사하는 것이 좋습니다. 전자 기기에 의해 생성된 전자파는 수집된 전기 신호를 방해하여 높은 기준 소음과 파형의 반복성이 떨어집니다. 따라서, 이러한 간섭을 피하기 위해 전기 생리학적 검사 중에 주변 환경에 연결된 중복 전자 장치가 없는지 확인하는 것이 좋습니다, 실험 결과의 안정성과 반복성을 결정하기 위해 적어도 두 개의 측정을 반복하는 것이 좋습니다. 두 눈을 패치 할 때, 파형은 두 눈에 완전히 평평하며, 이는 파형이 확실히 우리의 플래시 자극에서 생성된다는 것을 보여줍니다. 그림 1B 는 염소에서 PERG의 대표적인 결과를 보여줍니다. 안정성과 높은 신호로 인해 각 공간 주파수에서 단 한 번만 측정하여 신뢰할 수 있는 파형을 얻습니다. 공간 주파수가 증가함에 따라 바둑판의 크기는 ...

여기에서 우리는 시신경과 그 뉴런의 구조와 기능을 이해하기 위하여 염소와 rhesus 원숭이에서 생체 내 시험 (플래시 시각적 으로 불러일으킨 잠재력, 패턴 전기 전세노그램 및 광학 일관성 단층 촬영)에서 몇몇을 염판합니다.

The optic nerve collects axons signals from the retinal ganglion cells and transmits visual signal to the brain. Large animal models of optic nerve injury ...

안녕 여러분. 원저우안과병원 이쿠이 장입니다. 상부 신경은 오렉스신 신경절 세포에서 엑손이 부족하고, 그 후 뇌에 시각적 신호를 전송합니다.상부 신경 상해의 더 큰 모형은 로봇 모형에서 림프 응용으로 새로운 처리를 번역하기 위하여 필수적입니다. 여기서, 우리는 큰 동물에서 상부 신경에서 orexin 신경절 세포의 구조 와 기능을 평가하는 생체 내 방법을 설명합니다. 이 방법을 단계별로 제시함으로써 실험적 생식 장애를 증가시키고 더 큰 신경증 모델의 사용을 용이하게 할 수 있기를 바랍니다.전자 면도기로 면도하십시오. 그리고, 피부를 청소하고 피하 정맥을 노출하기 위해, 세 번 70 %의 알코올로 준비. 주변 정맥 캐스터를 정맥으로 삽입합니다.그런 다음 아트로핀과 프로포폴을 드립. 6mm 기관관으로 염소를 삽관하고 인공 호흡보호구에 연결합니다. 마취는 일정한 2리터 관리 유량으로 산소에서 3.5%의 이소플루란으로 유지되었다.온도 센서를 염소의 혀 아래에 놓습니다. 산소 포화도 를 염소 귀의 근위 쪽 끝으로 잘라냅니다. 혈압 커프를 허벅지 바닥에 묶습니다.전자선 클램프는 팔다리에 순서대로 갈라놓습니다. 그런 다음 염소의 중요한 지표를 모니터링 할 수 있습니다. 모발을 면도하고 전두엽 뼈의 중앙에서 베타딘과 70%의 알코올로 피부를 소독합니다.가위와 손톱이 들어 있는 멸균기 가방을 엽니다. 가위로 두개골을 노출하기 위해 피부 절개를 합니다. 정면 뼈의 중앙에 이식용 강철 나사.모발을 면도하고 베타딘으로 피부를 소독하고 후두 뼈에 있는 두 개의 귀의 중간 지점에서 70%의 알코올을 세 번 소독합니다. 피부 절개를 합니다. 후두 뼈에 두 개의 귀의 중간 지점에 이식하기위한 강철 나사.지상 바늘 전극은 전두엽 두개골 나사 아래에 피하로 삽입됩니다. 활성 전극 및 기준 전극은 전극 발기 부전을 줄이기 위해 악어 클립과 함께 각각 전두엽 및 후두 나사에 연결됩니다. 한쪽 눈을 패치합니다.안구 표면에 국소 마취 점안액을 적용합니다. 양쪽의 동공은 mydriasis 점안액에 의해 넓혀집니다. 염소의 머리를 가스로 채워진 자극기에 배치하여 외음광을 조준합니다.자극기와 염소 머리 위에 검은 담요를 5분간 조정합니다. 눈꺼풀 관은 동공을 완전히 노출하는 데 사용됩니다. 전극 조직 접촉 발기 부전을 확인하십시오.발기 부전이 같은 방에있는 다른 전기 장치에서 전자기 간섭을 피하기 위해 각각 10 킬로미터 미만인지 확인하십시오. 빛 자극 없이 베이스라인 노이즈를 확인합니다. FVEP 레코딩을 시작합니다.각 광 강도에서 FVEP 레코딩이 두 번 수행됩니다. 마른 것처럼 보이는 경우 인공 눈물로 각막을 촉촉하게 합니다. 반대되는 눈을 위한 단계에 대해 반복합니다.다른 빛 강도에서 FVEP 레코딩을 연속적으로 시작합니다. 각 레코딩에 대해 64개의 추적이 평균으로 되어 하나의 파 형태를 생성합니다. FVEP 파형의 첫 번째 양성 및 활성 피크는 P1 및 N1로 지정되었습니다. 멸균 된 접지 전극은 귓불에 배치됩니다.멸균 활성 및 기준 전극은 각각 중간선및 전두엽 및 후두 뼈를 따라 피하적으로 삽입됩니다. 눈꺼풀 관은 동공을 완전히 노출하는 데 사용됩니다. 한쪽 눈을 패치합니다.다른 눈의 VEP 응답을 연속적으로 다른 공간 주파수에서 기록합니다. 악어 클립으로 접지 전극에 연결합니다. 두 개의 멸균 된 바늘 참조 전극은 양쪽에 측면 캔투스 뒤에 1 센티미터 피부 아래에 배치됩니다.눈꺼풀 관은 동공을 완전히 노출하는 데 사용됩니다. 소독된 ERG 기록 전극 2개는 인공 눈물의 국소 적용 후 두 각막을 중심으로 한다. 시야거리가 50cm인 각 눈 앞에 두 개의 자극기가 배치됩니다.발기 부전이 10킬로미터 미만인지 확인합니다. 빛 자극 없이 베이스라인 노이즈를 추적합니다. 외래 의 빛을 목표로합니다.다양한 공간 주파수에서 두 눈에서 동시에 패턴 ERG 레코딩을 연속적으로 시작합니다. 마지막으로 화면으로 돌아와 시각적 자극기와 능동 제어 없이 패턴 ERG를 기록합니다. 밴드패스 필터는 세 개의 CPD 패턴 ERG에 대해 1개에서 75 헤르츠까지 다양하게 설정됩니다.밴드패스 필터는 1~50 헤르츠까지 진폭에 영향을 주지 않고 모양을 부드럽게 합니다. 파형의 첫 번째 양성 및 활성 피크는 P1 및 N1로 지정됩니다. N1에서 측정된 ERG 진폭은 전극 발기 부전을 P1.To 감소시키고, 멸균된 바늘 기준이 전두엽 피부 아래에 배치된다. 그리고 멸균된 바늘 기준 전극은 한쪽면에 측면 캔투스 뒤에 1센티미터 의 피부 아래에 배치된다.소독된 ERG 기록 전극은 인공 눈물의 국소 적용에 각막에 배치된다. 한쪽 눈을 패치합니다. 디스플레이는 50cm의 시야 거리에 배치됩니다.눈꺼풀 관은 동공을 완전히 노출하는 데 사용됩니다. 그런 다음 염소는 턱 받침대위에 놓입니다. 염소를 카메라와 정렬하여 머리 위치를 수정하여 공초점 스캔 레이저 안과 이미지에서 시신경 머리를 보냅니다.시작 버튼을 클릭하여 검색 종료 단계를 입력합니다. 기기가 로딩을 완료할 때까지 기다립니다. 노란색 시작 버튼을 눌러 형식 이미징을 시작합니다.조이스틱을 조정하여 적외선 이미지를 고르게 비추어 이미지 품질을 향상시킵니다. 오른쪽 상단 화면에 수직 망막 OCT 이미지가 표시될 때까지 카메라를 앞으로 밉드합니다. 조이스틱을 수정하여 수평 망막 OCT 이미지에서 균일하게 춤을 추세요.조이스틱의 버튼을 눌러 이미지를 자동으로 잡습니다. 이 조이스틱을 잡고 이미지 실행이 완료될 때까지 라이브 이미지 화면에서 이미지 품질을 유지합니다. 그런 다음 획득을 누릅니다.고품질 초기 사진을 선택합니다. 마우스 오른쪽 단추를 클릭하고 참조 를 설정합니다. 후속 버튼을 눌러 프로그램이 현재 스캔을 베이스라인 검사와 자동으로 일치시킬 수 있도록 합니다.일치하면 조이스틱의 버튼을 눌러 자동 실시간 추적을 활성화했습니다. 측정 버튼을 클릭하여 측정 플랫폼을 입력합니다. 지우개 도구를 선택하고 자동으로 컴퓨터에 레이블이 지정되는 RFL 라인을 지웁울 수 있습니다.IPL과 INL 사이의 경계를 수동으로 윤곽을 그리려면 선 그리기 도구를 선택합니다. 빨간색과 파란색 선 사이에는 GCC 복합체가 있습니다. rhesus 원숭이에서 망막 변경 된 이미징은 염소에 사용되는 것과 동일한 장비와 절차를 사용하여 수행됩니다.그림 A는 염소에서 대표적인 FVEP를 보여줍니다. 도 B는 염소에서 대표적인 패턴 ERG 파형을 나타낸다. 도면 C는 rhesus 원숭이에서 대표적인 패턴 FVEP를 나타낸다.그리고, 도면 D는 rhesus 원숭이에 대표적인 패턴 ERG 파형태를 나타낸다. 그림 2는 시신경 헤드 와 염소와 rhesus 원숭이의 다른 주변 지역에서 GCC 복합체의 두께 를 중심으로 대표적인 망막 OCT 이미지를 보여줍니다. 대형 동물 모델은 번역 연구에서 중요한 역할을 합니다.많은 경우에, 작은 동물 모형에 있는 유망한 치료 효력은 인간적인 환자에게 번역되지 못했습니다. 이 연구에서는, 우리는 염소와 rhesus 원숭이FVEP, PERG 및 OCT의 비디오 프로토콜을 제시했습니다. 이러한 생체 내 방법은 녹내장 허혈성 또는 외상성 신경병증 및 광학 신경염과 같은 다양한 광학 신경증의 더 큰 모델에 적용될 수 있다.

in-vivo-methods-to-assess-retinal-ganglion-cell-optic-nerve-function

Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

망막 신경절 세포는 눈의 작업 잠재력의 시퀀스와 뇌로 영상 정보를 전송. 여기, 우리는 하나의 신경절 세포의 활동 잠재력을 기록하는 방법을...

단일 유닛 생체내에서</em암흑의 광학 Chiasm에서> 레코딩

이 동영상은 순진 마우스 시각 투사의 조영 증강 자기 공명 영상과 급성 시신경 압박 손상 및 만성 시신경 변성과 관련된 시신경 변성의 반복 및 종 생체 내 연구에, 임상 3 T 스캐너를 사용하는 방법을 보여줍니다 녹아웃 마우스 (P50 KO).

마우스의 조영 증강 MRI에 의한 시신경 섬유 무결성의 생체 내 이미징

미세 아교 세포의 활성화 및 microgliosis 만성 신경 퇴행의 핵심 반응이다. 여기, 우리는 생체 내, 공 초점 검안경으로 망막 CX3CR1-GFP + 미세 아교 세포의 장기 시각화를위한 방법을 제시하고, 임계 값 및 형태 계측 학적 대한 식별과 활성화를 정량화 분석한다. 우리는 연령과 관련된 녹내장의 초기 단계 소교 변경 사항을 모니터링 할 수 있습니다.

마우스 녹내장에 공 촛점 안저 이미징 및 세포 형태 계측 : 신경 퇴행 중 망막 미세 아교 활성화의 생체 역학

Ex vivo ERG는 동물 또는 인간의 분리된 온전한 망막에서 직접 망막 세포의 전기 활동을 기록하는 데 사용할 수 있습니다. 여기에서는 망막 세포의 전기적 활동을 해부하기 위해 생체 외 ERG 기록에 일반적인 생체 내 ERG 시스템을 적용할 수 있는 방법을 보여줍니다.

동시<em&gt; 생체</em두 망막의&gt; 기능 테스트로<em&gt; 생체</em&gt; 전위도 시스템

녹내장은 망막 신경절 세포의 손상이 특징입니다. 동물 모델에서 녹내장을 유도하면 이 질병에 대한 연구에 대한 통찰력을 제공할 수 있습니다. 여기에서는 생체 내 쥐 모델에서 망막 신경절 세포의 소실을 유도하고 분석을 위한 전체 마운트 망막의 준비를 보여주는 절차를 간략하게 설명합니다.

녹내장 유도 절차<em&gt; 생체</em&gt; 쥐 모델 및 전체 마운트 망막 준비

이 원고는 고해상도 스펙트럼 도메인 광학 일관성 단층 촬영 (SD-10 월)와 마우스 망막의 비보에 이미징에 대 한 프로토콜을 설명합니다. 그것은 몇 가지 검색 및 측정 방법 설명 peripapillary 지역에서 망막 신경 절 세포 (RGC)에 초점을 맞추고.

광학 일관성 단층 촬영: 마우스 망막 신경 절 세포에서 Vivo에서 화상 진 찰

이 프로토콜 스펙트럼 도메인 광학 일관성 단층 촬영 등 어떻게 고해상도 이미징 기술을 설명 하 고 스캐닝 레이저 ophthalmoscopy에 정보를 얻기 위해 안과 이미징 플랫폼 시스템을 사용 하 여 작은 설치류에 이용 될 수 있다 망막 두께 microglial 각각 유통, 셀.

Vivo에서 스펙트럼-도메인 광학 일관성 단층 촬영 스캐닝 레이저 Ophthalmoscopy와 Cx3cr1gfp/gfp 기자 쥐의 이미징

여기에서는 망막 변성, 녹내장, 당뇨병 성 망막증 및 근시 모델에서 생체 내 망막 및 안구 구조를 시각화하기 위해 스펙트럼 도메인 광학 간섭 단층 촬영 (SD-OCT)을 사용하는 방법을 설명합니다.

광학 간섭 단층 촬영을 사용한 설치류 모델에서 안구 질환의 생체 내 구조 평가

생체 내 이미징은 건강 및 질병 생물학 연구를위한 강력한 도구입니다. 이 프로토콜은 표준 2 광자 현미경으로 마우스 망막의 경공 영상을 설명합니다. 또한 망막의 여러 세포 코호트를 형광으로 표지하는 다양한 생체 내 이미징 방법을 보여줍니다.

경동공 이광자 마우스 망막의 생체 내 이미징

이 프로토콜은 성인 마우스로부터 수득한 망막 외식편의 분리, 해부, 배양 및 염색을 위한 단계를 제시하고 설명한다. 이 방법은 당뇨병 성 망막증과 같은 다양한 망막 신경 혈관 질환을 연구하기위한 생체 외 모델로서 유익합니다.

망막 신경혈관 질환 연구를 위한 생체 외 모델로서의 성인 마우스 망막의 망막 외 이식편

학습하세요 염소와 원숭이에서 망막 신경 세포 및 시신경 기능을 평가하는 FVEP, PERG, OCT 방법을. 이 기술은 시각 신호 전달 및 시신경 질환 치료 연구에 중요한 통찰을 제공합니다.

인 비보 큰 동물의 망막 신경 세포 및 시신경 기능 및 구조를 평가하는 방법

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