Name: DNA 단백질 상호 작용을 연구하는 CD 분광법 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-02-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 48 s
Description: 배우세요 ATP 의존성 크로마틴 리모델링 단백질에 의해 유도된 DNA 구조 변화를 CD 분광법으로 시각화하는 방법을. 이 기술은 전사 조절 메커니즘 연구에 높은 감도와 정확성을 제공합니다.

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저자는 CD 분광계에 대한 고급 계측 연구 시설, JNU에 감사드립니다. V.J.와 A.D.는 CSIR의 펠로우십에 의해 지원되었습니다.

1. 반응 성분의 작동 농도
<ol><li>CD 및 기타 반응 구성 요소에 대한 버퍼의 작업 농도를 신선하게 준비( 표 1 참조)하고 반응을 설정하기 전에 4°C에서 유지합니다. 참고: 본 논문에 기재된 CD 반응의 경우, 성분의 작동 농도는 다음과 같습니다: 나트륨 인산염 버퍼(pH 7.0) 1 mM, ATP 2 mM, DNA 500 nM, 단백질 1 μM, MgCl2 10mMM, EDTA 50mM, ADAADiN 5 μM.</li>
</ol>2. ATPase 활동
<ol><li>CD 분광법 이전에, CD 분광법에 사용되는 단백질이 활성화되어 있는지 확인하고 ATP 가수 분해를 유도하는 데 최적으로 효과적인 DNA 분자를 식별하기 위해 DNA 분자의 존재에서 단백질의 ATPase 활성을 확립한다.</li>
	<li>다음 두 반응으로 구성된 NADH 결합 산화 분석체에 의해 다른 DNA 분자의 존재에서 단백질의 ATPase 활성을 측정한다.<ol>
<li>0.1 μM ADAAD, 2mM ATP, 10nM DNA 및 1x REG 버퍼를 96웰 플레이트에 혼합하여 250 μL의 최종 부피로 혼합합니다. 참고: 피루바테 키나제 효소는 ADP와 Pi를 사용하여 인포에놀피루바테를 피루바테로 변환하여 ATP를 재생합니다. 이것은 ATP가 반응에 있는 포화 농도에 항상 있다는 것을 보장합니다. 두 번째 반응에서, 피루바테 키나제의 작용에 의해 형성된 피루바테는 젖산 탈수소효소에 의해 젖산으로 전환된다. 이 반응에서, 하나의 NADH 분자는 NAD+로 산화된다. NADH의 소비는 340 nm에서 분자의 흡수도를 측정하여 측정됩니다.</li>
		<li>인큐베이터에서 37 °C에서 30 분 동안 배양하십시오.</li>
		<li>마이크로 플레이트 판독기를 사용하여 340 nm에서 NAD+ 의 양을 측정합니다.</li>
		<li>NAD+의 양을 측정하려면 마이크로 플레이트 판독기와 함께 제공된 소프트웨어를 사용합니다.<ol>
<li>NADH 분석기를 클릭하여 340 nm에서 흡광도를 측정합니다.</li>
			<li>96웰 플레이트를 플레이트 홀더에 놓습니다. 흡광도를 기록하려면 읽기 플레이트 버튼을 클릭합니다. 참고: NAD+의 농도는 EQ(1)를 사용하여 NADH의 어금니 소멸 계수를 6.3mM-1로 사용하여 계산됩니다. A = θcl (1) 여기서, A = 흡광도 ε = 몰 멸종 계수 c = 몰농도 l = cm의 광학 경로 길이</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. CD 큐벳의 선택 및 준비
<ol><li>투명도가 높은 쿼츠 큐벳에서 CD 스펙트럼을 수집합니다. 직사각형 또는 원통형 큐벳을 사용합니다. 참고: CD 석영 큐벳(명목 부피 0.4mL, 경로 길이 1mm)은 이 논문에 설명된 모든 반응에 사용되었다.</li>
	<li>큐벳 세정 용액을 사용하여 큐벳을 청소하십시오. 물에 1% 큐벳 세정 용액을 추가하여 용액의 400 μL을 만들고 큐벳에 붓고 1h에 37°C로 배양합니다.</li>
	<li>큐벳을 수분으로 여러 번 씻고 큐벳을 청소하십시오. 큐벳에서 물이나 버퍼를 스캔하여 깨끗한지 확인하십시오. 참고: 물 또는 버퍼는 0에서 1 mdeg 범위에서 판독값을 제공해야 합니다.</li>
</ol>4. 단백질 과 DNA 올리고뉴클레오티드 의 준비
<ol><li>단백질의 부피를 50 μL 이하로 유지하여 때로는 모호한 피크의 형성을 일으키는 완충 성분의 양을 최소화합니다. 저하를 피하기 위해 실험 전반에 걸쳐 얼음 에 단백질을 유지합니다.</li>
	<li>반응에 페이지 정제 DNA 올리고뉴클레오티드를 사용합니다. 참고: 여기에 설명된 반응에서 DNA는 원어민뿐만 아니라 열 냉각 형태(빠른 냉각(FC) 및 느리게 냉각된(SC)에서 모두 사용되었다. 빠른 냉각은 DNA의 분자 내 결합을 촉진하여 더 많은 이차 구조를 산출합니다. 대조적으로, 느린 냉각은 DNA에 있는 분자 간 결합을 승진시켜, 더 적은 이차 구조물의 결과로.</li>
	<li>빠른 냉각을 위해, 가열 블록에 3 분 동안 94 °C에서 DNA를 가열하고 즉시 얼음에 냉각. 느린 냉각의 경우 DNA를 94°C에서 3분 동안 가열하여 분당 1°C의 속도로 실온으로 냉각할 수 있습니다.</li>
</ol>5. 기준선 스펙트럼을 기록하기 위해 제어 실험을 설정
<ol><li>모든 반응에서 반응 볼륨을 300 μL로 유지합니다. 1.5 mL 원심분리기 튜브에 총 5개의 기준반응을 하나씩 설정합니다. ii) 버퍼 + MgCl2 + ATP + 물; iii) 버퍼 + MgCl2 + ATP + 단백질 + 물; iv) iii + EDTA 또는 ADAADiN; v) 버퍼 + 단백질 + 물.</li>
</ol>6. CD 스펙트럼을 기록하기 위해 실험 설정
<ol><li>다음과 같이 1.5 mL 원심분리기 튜브에서 총 5 개의 반응을 하나씩 설정하십시오 : i) 버퍼 + DNA + 물; ii) 버퍼 + DNA + MGCl2 + ATP + 물; iii) 버퍼 + DNA + MGCl2 + ATP + 단백질 + 물; iv) iii + EDTA 또는 ADAADiN; v) 버퍼 + DNA + 단백질 + 물.</li>
</ol>7. 녹화 스캔
<ol><li>가스를 켜고 CD 분광기를 켭니다.</li>
	<li>10-15분 후에 램프를 켭합니다. 수조를 켜고 홀더 온도를 37°C로 설정합니다.</li>
	<li>CD 스펙트럼 소프트웨어를 엽니다.<ol>
<li>온도를 37°C로 설정합니다.</li>
		<li>파장 범위를 180-300 nm로 설정합니다.</li>
		<li>포인트당 시간을 0.5s로 설정합니다.</li>
		<li>스캔 번호를 5로 설정합니다.</li>
		<li>프로 데이터 뷰어를 클릭하고 새 파일을 만들고 실험 및 날짜에 대한 세부 정보로 이름을 바꿉니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>모든 반응 성분을 얼음 위에 두어 분해를 방지합니다. 원심분리기 튜브에서 기준선과 반응을 하나씩 만들고 파이펫팅으로 혼합합니다. 반응 믹스를 큐벳에 조심스럽게 전달하여 기포가 없도록 합니다.</li>
	<li>시간 과정 실험을 수행하는 경우, 필요한 시간 동안 37°C에서 반응을 배양하고 스캔을 수행한다. ATP 가수분해를 중지하기 위해 DNA, ATP, Mg+2 및 단백질을 포함하는 완충제에 EDTA를 추가합니다.</li>
	<li>EDTA의 농도와 ATPase 활동을 완전히 억제하는 배양 시간을 증가시면 됩니다.</li>
	<li>소프트웨어의 해당 반응에서 기준선을 뺍니다(예: 기준선 1에서 반응 1을 뺍니다). CD 스펙트럼 소프트웨어 또는 데이터 플로팅 소프트웨어에서 데이터를 부드럽게 합니다. 데이터 플로팅 소프트웨어의 데이터를 플롯합니다. 참고: 해당 반응에서 기준선을 빼면 DNA만 의 순 CD 스펙트럼을 얻을 수 있습니다.</li>
</ol>8. 데이터 분석 및 해석
<ol><li>eq (2)에 의해 주어진 공식을 사용하여 잔류성 을 의미하는 밀리도에서 얻은 값을 변환합니다. <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/63147/63147eq01.jpg">(2) 여기서, S는 밀리도에서 CD 신호이고, c는 mg/mL의 DNA 농도이고, mRw는 평균 잔류물 질량이며, l은 cm의 경로 길이이다.</li>
	<li>데이터 플로팅 소프트웨어를 사용하여 파장 및 평균 잔류물 타원형에 대한 그래프를 플롯하고 피크를 분석합니다.</li>
	<li>그래프를 플롯하려면 X축의 Y축 및 파장의 평균 잔류물 타원형성을 선택하고 직선 그래프를 플롯합니다. 참고 : 이 그래프는 다른 형태의 DNA의 특성 피크를 제공합니다. 봉우리에 대응하는 DNA의 형태는 기존 문헌6을 사용하여 확인할 수 있다.</li>
</ol>

저자는 선언할 이해상충이 없습니다.

이 문서의 목적은 ATP 의존 염색질 리모델링 단백질의 존재에 DNA에서 발생하는 형성 변화를 연구하고 유전자 발현에 이러한 형태 변화를 연결하는 접근법으로 CD 분광법을 도입하는 것입니다. CD 분광법은 DNA의 형성 변화를 연구하는 빠르고 쉽게 접근 할 수있는 방법을 제공합니다.

이 기술에 대 한 고려 될 중요 한 포인트는 DNA와 단백질의 순도. DNA와 단백질이 모두 >95% 순수하다는 것을 확인하는 것이 좋습니다. 페이지 정제 된 올리고뉴클레오티드는 분석에서 사용되어야하며, 단백질은 바람직하게는 친화성 -정제되어야>95% 순도. 다른 중요한 매개 변수는 기준선 판독값이 1 mdeg를 초과하지 않도록 큐벳을 깨끗하게 해야한다는 것입니다. 버퍼는 오토클레이브 된 물을 사용하여 이루어져야하며 버퍼의 기준선 판독값이 1 mdeg를 초과해서는 안됩니다. 프로모터의 형성을 연구하기 위해서는 단백질이 결합되는 영역을 식별하는 것이 필수적입니다. 따라서, 이 과정이 단백...

원형 이색성(CD)은 오른손잡이와 왼손잡이 원형 편광광의 차동 흡수로 이어지는 생물학적 거대 분자의 고유치랄성에 의존하는 분광 기술입니다. 이 차동 흡수는 원형 이분해증으로 알려져 있습니다. 따라서 이 기술은 단백질 및 DNA와 같은 생물학적 거대 분자의 형성을 묘사하는 데 사용될 수 있으며, 둘 다 키랄 센터를 포함1,2.
전자파에는 전기 및 자기 구성 요소가 모두 포함되어 있습니다. 전기및 자기장은 모두 파도 전파 방향에 수직으로 진동합니다. 편광되지 않은 빛의 경우, 이 필드는 여러 방향으로 진동합니다. 빛이 원형으로 편광되면 두 개의 전자기장이 서로 90° 위상 차이로 얻어집니다. 키랄 분자는 원형 광학 회전(birefringence)을 보여 주어 오른손잡이 원형 편광광과 왼손잡이 원형 편광광을 다른 범위3로 흡수합니다. 결과 전기장은 파장의 함수인 타원으로 추적됩니다. 따라서 CD 스펙트럼은 타원형(q)으로 기록되며, 데이터는 파장의 함수로서 평균 잔류물 타원형으로 제시된다.
단백질의 경우, 아미노산의 Cα(글리신 제외)는 치랄이며, 이는 이러한 거대 분자4의 이차 구조를 결정하기 위해 CD 분광법에 의해 이용된다. 단백질 분자의 CD 스펙트럼은 전형적으로 극UV 범위에서 기록됩니다. α-헬리칼 단백질은 222nm와 208nm에서 2개의 네거티브 밴드와 193 nm4에서 1개의 긍정적인 피크를 가지고 있습니다. 항병렬 β 시트 이차 구조를 가진 단백질은 218 nm에서 음수 피크와 195 nm4에서 양수 피크를 보여줍니다. 무질서한 구조물을 가진 단백질은 210 nm 의 가까운 낮은 타원형및 195 nm4에서 음성 피크를 보여줍니다. 따라서, 상이한 이차 구조물을 위한 잘 정의된 피크/대역은 CD를 데만리간 결합뿐만 아니라 데칭 하는 동안 단백질의 이차 구조에서 발생하는 형태 변화를 해명하는 편리한 도구이다.
핵산에는 설탕 분자, 이차 구조의 헬리콥터, 환경에서 DNA의 장거리 삼차 순서의 세 가지 소스가 있습니다5,6. 핵산의 CD 스펙트럼은 전형적으로 190 nm 범위에서 기록된다5,6. 단백질과 마찬가지로 DNA의 각 형태는 특징적인 스펙트럼을 제공하지만 피크/밴드는 용매 조건 및 DNA 서열의 차이로 인해 다소 다양할 수 있습니다7. B-DNA, 가장 일반적인 형태, 주위 긍정적인 피크 주위 260-280 nm와 주위 부정적인 피크 245 nm6 특징. B형 DNA의 피크/밴드는 일반적으로 작기 때문에 기본 쌍은 이중 나선에 수직이되어 분자에 약한 키랄성을 부여합니다. A-DNA는 260 nm에서 지배적 인 긍정적 인 피크와 210 nm6 주위에 음수 피크를 제공합니다. 왼손잡이 나선 인 Z-DNA는 290 nm에서 음수 밴드와 260 nm6 정도의 긍정적 인 피크를 제공합니다. 이 DNA는 또한 205 nm6에서 극단적으로 부정적인 피크를 줍니다.
이러한 적합성 외에도 DNA는 트리플엑스, 쿼드러플렉스 및 헤어핀을 형성할 수 있으며, 이 모든 것은 CD 분광학으로 구별될 수 있습니다. 평행 G 쿼드러플렉스는 260nm에서 지배적인 포지티브 밴드를 제공하며, 반병렬 G-쿼드루플렉스는 260nm에서 음수 대역과 290nm의 양수 피크를 제공하므로 두 형태의 쿼드러플렉스 구조를 쉽게 구별할 수 있습니다6. 트리플렉스는 특징적인 스펙트럼을 제공하지 않습니다8. 예를 들어, Na+ 의 존재에서 G.G.C 및 T.A.T 염기 쌍을 포함하는 분자 내 삼중 나선을 형성할 수 있는 잠재력을 가진 36개의 뉴클레오티드 길이 DNA의 스펙트럼은 240 nm및 넓은 양성 피크에서 강한 음수 대역을 나타낸다. 광범위한 긍정적 인 피크는 266, 273 및 286 nm의 기여를 보여줍니다. Na+ 및 Zn+ 의 존재에 동일한 올리고뉴클레오티드는 네 개의 네 개의 네거티브 밴드 (213, 238, 266 및 282 nm)와 258 nm에서 긍정적 인 피크를 보여줍니다. 따라서, 트리플렉스 DNA의 스펙트럼은 염조건에 따라 달라질 수 있다8.
이러한 적합성 외에도 CD 스펙트럼은 X-DNA라는 또 다른 형태의 DNA를 식별할 수 있게 되었습니다. X-DNA는 DNA 서열에 대체 아데닌 및 티민 잔류물이 포함될 때 형성됩니다. X-DNA의 CD 스펙트럼은 250 및 280 nm에서 두 개의 네거티브 피크를 포함합니다. 아주 작은 정보는 X-DNA에 관하여 유효합니다, 긍정적인 supercoiling6,9를 위한 싱크로 작동하기 위하여 추측되고 있더라도. CD 스펙트럼의 변화는 또한 리간드 단백질 상호 작용에 대한 세부 사항을 밝힐 수 있고, 그러므로, 약물 단백질 상호 작용을 검출하기 위한 분자 방법의 무기고에 추가되었습니다10,11,12,13,14. CD 스펙트럼은 또한 접이식 과정 동안 단백질의 이차 구조의 변화를 모니터링하는 데 사용되어 왔다15. 유사하게, CD 스펙트럼은 또한 리간드 DNA 상호 작용을 탐구하기 위해 사용될 수 있습니다16,17.
따라서 CD 분광학은 저렴하지 않은 장비 및 소프트웨어에 대한 액세스가 제공되므로 다양한 형태의 DNA 형태를 구별하는 쉽고 저렴한 방법입니다. 이 방법은 매우 민감하고 빠를 수 있습니다. 소량의 DNA만 필요하므로 핵 자기 공명(NMR) 분광법의 대체 기술에 우위를 부여합니다. 리간드 및 기판의 적정도 쉽게 수행할 수 있습니다. 주요 제약 조건은 DNA가 매우 순수해야한다는 것입니다. 폴리아크릴아미드 젤 전기포고증(PAGE)-정제 DNA를 사용하는 것이 좋습니다.
CD 스펙트럼에 의해 얻은 정보는 주로 단백질 구조적 특징을 추론하고 뚜렷한 DNA 순응자를 식별하는 데 사용되었습니다. 본 연구에서, CD 스펙트럼은 관심/예측 전사 인자의 단백질이 그 이펙터 유전자의 프로모터 영역에서 형성 변화를 가져올 수 있는지 여부를 규명하기 위해 생체 내 크로마티면역 침전(ChIP) 실험에서 얻은 결과를 통합하는 데 사용되어 왔다. 이러한 협업은 프로모터의 전사 시작 부위(TSS) 전후에 예측된 전사 계수에 의한 전사 조절 메커니즘을 예측함으로써 전통적인 CD 분광 기술의 진행을 지원합니다.
크로마티닌 리모델링은 전사 인자, DNA 복제 성분 또는 손상 수리 단백질과 같은 다양한 조절 요인에 단단히 포장된 크로마틴을 가능하게 함으로써 DNA 대사 과정을 조절하는 것으로 알려진 잘 정의된 메커니즘이다. 또한 단백질의 SWI/SNF 가족으로 알려진 ATP 의존적인 크로마틴 리모델링제는 진핵 세포에 존재하는 주요 리모델링 단백질18,19입니다. 필로유전 적 클러스터링은 SWI/SNF 단백질 제품군을 6하위 그룹으로 분류했습니다: Snf2 유사, Swr1 유사, SSO1653 유사, Rad54 유사, Rad5/16 유사, 먼. SMARCAL1, 이 연구에 관심있는 단백질, 먼 하위 그룹에 속한다20. 이 단백질은 CD 분광법을 사용하여 전사 조절의 그것의 모드를 조사하기 위하여 이용되었습니다.
ATP 의존형 크로마틴 리모델링 단백질의 대부분의 구성원은 ATP 의존식 방식으로 뉴클레오좀을 재배치하거나 퇴거시키거나 히스톤 변이체 교환을 중재하는 것으로 나타났다21,22. 그러나, 이 가족의 몇몇 일원은 뉴클레오좀, 예를 들면, SMARCAL1를 리모델링하기 위하여 나타나지 않았습니다. 비록 연구 SMARCAL1 폴리텐 염색체와 연결, 뉴 클레 오 좀 을 리모델링 하는 능력에 관한 실험적인 증거는 부족 23. 따라서, SMARCAL1은 DNA24의 변형을 변경하여 전사를 조절할 수 있다고 가정하였다. CD 분광법은 이 가설을 검증하는 쉽고 접근 가능한 방법을 제공했습니다.
SMARCAL1은 ATP 의존성 크로마틴 리모델링 단백질로, 주로 아닐링 헬리케이스25,26,27로 기능합니다. DNA 형성을 리모델링하여 전사를 조절하도록 가정하였다24. 이러한 가설을 시험하기 위해 독소루비신 유발 DNA 손상 중 유전자 전사 조절에서 SMARCAL1의 역할이 연구되었다. 이러한 연구에서, SMARCAL1 생체 내 분석 및 ADAAD에서 체외 분석에 대 한 사용 되었다28,29. 이전 연구는 ADAAD구조 의존적이지만 서열 독립적 인 방식으로 DNA를 인식 할 수 있음을 보여 주었다30,31. 단백질은 줄기 루프 DNA와 유사한 단일 가닥 전이 지구에 이중 가닥을 소유한 DNA 분자에 최적으로 결합하고, ATP 30,31을 가수분해합니다.
생체 내 실험에서 SMARCAL1은 프로모터 영역에 결합하여 MYC, DROSHA, DGCR8 및 DICER의 발현을 조절하는 것으로 나타났다28,29. 상호 작용영역은 ChIP 실험28,29에 의해 확인되었다. ChIP 기술은 세포 내의 cognate DNA를 가진 단백질의 상호 작용을 분석하기 위하여 이용됩니다. 그것의 목표는 프로모터 또는 그밖 DNA 결합 사이트에 전사 요인과 같은 특정 단백질이 특정 게놈 지역에 묶는지 결정하는 것입니다. DNA에 결합된 단백질은 포름알데히드를 사용하여 처음으로 교차 연결됩니다. 그 다음에는 크로마틴의 격리가 뒤따릅니다. 분리된 크로마틴은 초음파 처리 또는 핵소화에 의해 500bp 단편으로 전염되고, DNA에 결합된 단백질은 단백질에 특이적인 항체를 사용하여 면역침전화된다. 교차 연결은 반전되고, DNA는 중합효소 연쇄 반응(PCR) 또는 정량적 실시간 PCR을 사용하여 분석된다.
ChIP 결과는 SMARCAL1이 이 유전자의 발기인 지구에 있는 형성 변경을 유도해서 전사 적 규정을 중화할 가능성이 있다는 가설로 이끌어 냈습니다. QGRS 매퍼 및 Mfold 소프트웨어는 이러한 프로모터 영역의 잠재력을 식별하여 이차 구조를 형성하는 데 사용되었습니다28,29. QGRS 매퍼는 G-쿼드러플렉스32를 예측하는 데 사용되며 Mfold33은 서열의 능력을 분석하여 줄기 루프와 같은 보조 구조를 형성합니다.
이차 구조 분석 후, 추가 체외 실험은 재조합 6X 그의 태그활성 DNA 의존ATPase A 도메인(ADAAD), SMARCAL1의 소 호모로, 에스케리치아 대장균34로부터 정제하였다. ATPase assays는 확인된 DNA 순서가 effectors28,29로 작동할 수 있다는 것을 확립하기 위하여 ADAAD를 사용하여 수행되었습니다. 마지막으로, CD 분광법은 ADAAD28,29에 의해 DNA 분자에서 유도된 형성적 변화를 모니터링하기 위해 수행되었다.
단백질의 ATPase 활성이 DNA 분자의 형태 변화를 유도하는 데 필수적이었다는 것을 증명하기 위해, 에틸렌디아민 테트라아세아세트산(EDTA)을 Mg+2 또는 활성 DNA 의존성 ATPase 도메인 억제제 네오마이신(ADAADiN)에 첨가하였으며, SWI/SNF 단백질의 특정 억제제, 3655추가되었다. . 이러한 CD 분광 기술은 ChIP 또는 다른 관련 분석체가 프로모터의 예측된 게놈 영역에 결합하기 위해 입증된 정제된 단백질과 함께 활용할 수 있다.

<table><tbody><tr><td>2-메르캅토에탄올</td><td>Fisher scientific</td><td>O3446I-100</td><td></td></tr><tr><td>아데노신 5&프라임;-트리포스페이트 디소듐 염 수화물</td><td>시그마알드리치</td><td>A2383</td><td></td></tr><tr><td>CD 석영 큐벳</td><td>STARNA</td><td>21-Q-1</td><td></td></tr><tr><td>Chirascan V100 CD 분광계</td><td>응용 광물리학</td><td>사용할 수</td><td></td>없음</tr><tr><td>EDTA 디소듐 염 이수화물</td><td>SRL</td><td>43272</td><td></td></tr><tr><td>글루타티온 세파로스 4B</td><td>GE 헬스케어</td><td>17-0756-01</td><td>글루타티온 친화성 크로마토그래</td></tr>피 <tr><td>Hellmanex III 세척 용액</td><td>Hellma</td><td>9-307-011-4-507</td><td></td></tr><tr><td>L-락틱 탈수소효소</td><td>Sigmaaldrich</td><td>&nbsp; L2625</td><td></td></tr><tr><td>마그네슘 아세테이트 테트라하이드레이트</td><td>Fisher scientific</td><td>BP215-500</td><td></td></tr><tr><td>마그네슘 클로라이드 헥사하이드레이트</td><td>Fisher Scientific</td><td>M33-500</td><td></td></tr><tr><td>NADH 디소듐 염</td><td>시그마알드리치</td><td>10107735001</td><td></td></tr><tr><td>포스포에노피루베이트 모노시클로헥실암모늄 염</td><td>SRL</td><td>40083</td><td></td></tr><tr><td>칼륨 아세테이</td>트 <td>Fisher scientific</td><td>P178-3</td><td></td></tr><tr><td>피루브산 키나아제</td><td>시그마알드리치</td><td>P1506</td><td></td></tr><tr><td>인산나트륨 이염기성 무수</td><td>Fisher scientific</td><td>S374-500</td><td></td></tr><tr><td>인산나트륨 일염기성 일수화물</td><td>Fisher scientific</td><td>S369-500</td><td></td></tr><tr><td>Synergy HT 마이크로플레이트 리더</td><td>BioTek</td><td>사용할 수</td><td></td>없음</tr><tr><td>Tris Base</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP152-500</td><td></td></tr></tbody></table>

dna 단백질 상호 작용을 연구하는 cd 분광법

CD Spectroscopy to Study DNA-Protein Interactions

원형 이색성 (CD) 분광법은 생체 분자의 이차 구조 및 상호 작용을 조사하는 간단하고 편리한 방법입니다. CD 분광기의 최근 발전은 생체 내 전사 조절에 대한 이해를 위해 다양한 미세 환경에서 DNA 단백질 상호 작용 및 변형 역학에 대한 연구를 가능하게 했습니다. 잠재적인 전사 영역 주위 영역이 전사가 발생하기 위해 풀려나야 합니다. 이것은 히스톤 수정, DNA에 전사 인자의 결합 및 기타 크로마틴 리모델링 활동의 조정을 요구하는 복잡한 과정입니다. CD 분광학을 사용하여 ATP 의존 성 크로마틴 리모델링기와 같은 규제 단백질에 의한 프로모터 영역의 형성 적 변화를 연구하여 전사를 촉진할 수 있습니다. 단백질에서 발생하는 형성 적 변화는 또한 모니터링 될 수있다. 또한, 표적 DNA를 향한 단백질의 친화성 및 서열 특이성에 관한 질의는 표적 DNA에 돌연변이를 통합하여 해결할 수 있다. 요컨대, 이 민감하고 저렴한 방법의 고유 한 이해는 크로마틴 역학의 변화를 예측하여 전사 조절의 이해를 향상시킬 수 있습니다.

ADAAD는 MYC 프로모터의 구조와 같은 줄기 루프를 안정화시합니다. 이전 실험 증거는 SMARCAL1MYC29의 부정적인 레귤레이터는 것으로 나타났습니다. QGRS 매퍼에 의한 MYC 유전자의 159bp 장기 프로모터 영역을 분석한 결과, 전방 가닥이 G-쿼드러플렉스(표 2)를 형성할 수 있는 잠재력을 가지고 있음을 보여주었다. Mfold는 MYC DNA의 두 가닥이 줄기 루프와 같은 구조를 형성 할 수 있음을 보여 주었다 (표 2). G-쿼드러플렉스(GECE)를 포함하는 34bp 긴 DNA 서열을 합성하였다. GECE 올리고뉴클레오티드의 전방 및 역시퀀스의 Mfold 구조는 <stron...

DNA 리간드를 이용한 ATP 의존형 크로마틴 리모델링기의 상호 작용은 CD 분광법을 사용하여 설명된다. 생성된 봉우리에 의해 분석된 유전자 프로모터에 대한 유도된 변형 변화는 전사 조절의 메커니즘을 이해하는 데 사용될 수 있다.

DNA 단백질 상호 작용을 연구하는 CD 분광법

Circular dichroism (CD) spectroscopy is a simple and convenient method to investigate the secondary structure and interactions of biomolecules. Recent ...

이 프로토콜을 통해 ATP 의존성 크로마틴 리모델링 단백질에 의해 유도된 DNA의 두 번째 재구성의 변화를 시각화할 수 있습니다. DNA 구조의 변화는 전사 조절과 상관관계가 있을 수 있다. 이것은 올리고뉴클레오티드의 구조적 변화를 기록하기 위해 매우 적은 양의 순수 DNA를 사용하는 쉽고 매우 민감한 기술입니다.이 방법은 ATP 의존크롬질 단백질에 의해 중재된 전사 조절에 대한 통찰력을 제공할 수 있다. 시작하려면, 완충및 기타 반응 성분의 작업 농도를 신선하게 준비하고 반응을 설정하기 전에 섭씨 4도에서 보관한 다음 NADH 결합 산화 분석기를 사용하여 다른 DNA 분자의 존재시 단백질의 ATPase 활성을 측정합니다. 0.1 밀리몰러 ADAAD, 2개의 밀리몰러 ATP, 10 나노몰러 DNA 및 1X REG 버퍼를 96웰 플레이트에 혼합하여 250 마이크로리터의 최종 부피로 혼합합니다.다음으로, 37도 인큐베이터에서 30분 동안 반응을 배양한 다음 마이크로플레이트 판독기와 함께 제공된 소프트웨어를 사용하여 NAD+의 양을 측정합니다. 340 나노미터에서 흡광도를 측정하려면 NADH 분석기를 클릭하고 96웰 플레이트를 기기의 플레이트 홀더에 놓고 판독 플레이트 버튼을 클릭하여 흡광도를 기록합니다. 투명도가 높은 쿼츠 큐벳에서 CD 스펙트럼을 수집합니다.직사각형 또는 원통형 큐벳을 사용합니다. 큐벳을 청소하려면 물로 여러 번 씻은 다음 큐벳의 물 이나 버퍼스캔을 통해 깨끗한지 확인하십시오. 반응을 위해, PAGE 정제 된 DNA 올리고 뉴클레오티드를 사용합니다.빠른 냉각을 위해 가열 블록에서 3 분 동안 94섭씨에서 DNA를 가열하고 얼음위에서 즉시 식힙니다. 느린 냉각을 위해, 3 분 동안 섭씨 94도에서 DNA를 가열 한 후 분당 섭씨 1도의 속도로 실온으로 냉각 할 수 있습니다. 기준선 스펙트럼을 기록하려면 1.5 밀리리터 원심분리기 튜브에서 하나씩 총 5개의 대조군 반응을 설정합니다.모든 반응에서 300 마이크로 리터의 반응 볼륨을 유지합니다. CD 스펙트럼을 기록하려면 1.5 밀리리터 원심분리기 튜브에서 하나씩 총 5개의 실험 반응을 설정합니다. 스캔을 기록하려면 가스를 켜고 CD 분광기를 켭니다.10~15분 후 램프를 켜고 수조를 켜고 홀더 온도를 섭씨 37도로 설정합니다. 다음으로, CD 스펙트럼 소프트웨어를 열고 온도를 섭씨 37도로 설정하고, 파장 범위는 180~300나노미터로 설정하고, 포인

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Research

연구

JoVE Journal

Biochemistry

생화학

이 비디오에서는 방사선 조사된 세포핵의 이중 가닥 DNA 절단 부위에서 DNA 복구 단백질 γH2AX 및 53BP1의 국소화를 시각화하기 위한 면역형광 방법에 대해 설명합니다.

DNA 복구 단백질 상호 작용의 면역형광 기반 시각화

이 비디오는 ATP 의존성 염색질 리모델링 단백질이 있는 상태에서 DNA에서 발생하는 구조적 변화를 연구하기 위한 원이색성(CD) 분광학 기술을 보여줍니다. ATP 가수분해의 유무에서 측정된 CD 스펙트럼의 변화는 결합된 DNA에서 구조적 변화를 유도하는 리모델링자의 능력에서 ATP의 중요성을 나타냅니다.

DNA와 단백질의 상호작용을 연구하기 위한 원이색성 분광법(Circular Dichroism Spectroscopy) 기법

시차 주사 형광 측정법은 단백질과의 상호 작용을 위해 작은 분자의 라이브러리를 스크리닝하는 데 널리 사용되는 방법입니다. 여기에서는 이러한 분석을 확장하여 작은 분자와 단백질 파트너 사이의 해리 상수를 추정하는 간단한 방법을 제시합니다.

시차 주사 Fluorimetry를 사용하여 단백질 - 리간드 상호 작용의 결정

여기, 선물이 총 내부 반사 형광 현미경 (TIRFM) site-specifically 수정된 λ DNA 기판 및 양자 점 단백질 분류를 사용 하 여 DNA 단백질 상호 작용을 공부 하는 프로토콜.

Qdot 표시 된 단백질과 단일 분자 수준에서 Site-specifically 수정된 λ DNA 사이 상호 작용을 시각화

우리는 현대 형광 라벨링 기술을 사용하여 살아있는 세포에서 멤브레인 수용체 역학을 연구하기 위해 Förster 공명 에너지 전송 (FRET)과 결합 된 라이브 셀 이중 색 형광 교차 상관 분광법 (FCCS)을 수행하기 위해 실험 프로토콜 및 데이터 분석 워크플로우를 제시합니다.

살아있는 세포에서 단백질 단백질 상호 작용 및 단백질 역학을 연구하기 위한 이중 색 형광 교차 상관 분광법

고처리량 단일 분자 이미징 기술인 DNA 커튼은 다양한 단백질-DNA 상호 작용의 실시간 시각화를 위한 플랫폼을 제공합니다. 본 프로토콜은 DNA 커튼 기술을 활용하여 Schizosaccharomyces pombe bromodomain-containing AAA+ ATPase인 Abo1의 생물학적 역할과 분자 메커니즘을 조사합니다.

DNA 커튼 기법에 의한 히스톤 조립의 분자 메커니즘 해독

이 논문에서는 스트렙타비딘 기반 생물층 간섭계(BLI) 시스템을 사용하여 DNA-단백질 상호 작용을 연구하기 위한 프로토콜에 대해 설명합니다. 상호 작용의 평형 결합 친화도(KD)를 결정하기 위해 기본 또는 고급 결합 역학을 활용하기 위한 필수 단계와 고려 사항을 간략하게 설명합니다.

스트렙타비딘 기반 생물층 간섭계를 사용한 DNA-단백질 상호작용 분석

이 프로토콜은 화합물과 단백질 분자 간의 결합을 검출하는 고유한 방법을 설명하며, 단백질 샘플 손실을 최소화하고 데이터 정확도가 높다는 이점을 제공합니다.

Differential Scanning Fluorescence를 통한 CD40 단백질-Umbelliferone 상호작용 검출

이 프로토콜은 형광 현미경 기반 단일 분자 DNA 복제 분석의 개요를 설명하여 DNA 중합효소와 G-4중 구조와 같은 장애물 간의 상호 작용을 실시간으로 시각화할 수 있습니다.

G-Quadruplexes에서 DNA 중합효소 역학의 단일 분자 형광 시각화

이 프로토콜은 DNA 고유 형광 스펙트럼의 샘플 준비, 데이터 수집 및 분석에 대한 상세한 작업을 제공합니다.

내재 대비를 이용한 DNA 분광학적 초해상도 영상

배우세요 ATP 의존성 크로마틴 리모델링 단백질에 의해 유도된 DNA 구조 변화를 CD 분광법으로 시각화하는 방법을. 이 기술은 전사 조절 메커니즘 연구에 높은 감도와 정확성을 제공합니다.

DNA 단백질 상호 작용을 연구하는 CD 분광법

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