Name: 자기 공명 영상(MRI)과 결합된 Subarachnoid 출혈에 대한 혈관 내 천공 모델 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-12-16T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 30 s
Description: 배우세요 혈관 내 천공 모델과 MRI를 결합한 쥐의 지막하 출혈 유도 방법을. T2 가중 MRI로 출혈 부위를 검증하고 출혈량을 정량화하여 병태생리학 연구에 활용할 수 있습니다.

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SL은 중국 장학금위원회의 지원을 받았다. KT는 베를린보건원과 소넨펠트-스티프퉁의 BIH-MD 장학금의 지원을 받았다. RX는 BIH-Charité Clinician Scientist Program의 지원을 받으며, Charité -Universitätsmedizin Berlin과 Berlin Institute of Health가 자금을 지원합니다. 우리는 독일 연구 재단 (DFG)과 Charité - Universitätsmedizin Berlin의 Open Access Publication Fund의 지원을 인정합니다.

실험은 Landesamt fuer Gesundheit und Soziales (LaGeSo), Berlin, Germany (G0063/18)에 의해 규정된 지침 및 규정에 따라 수행되었다. 본 연구에서, 체중이 25 ± 0.286 g (평균 ± s.e.m.)인 C57Bl/6J 수컷 (8-12주령) 마우스를 사용하였다.
1. 동물 준비
<ol><li>케타민 (70 mg / kg)과 자일라진 (16 mg / kg)을 복강 내로 주사하여 마취를 유도하십시오. 정상 체온을 유지하여 깊은 마취의 빠른 유도에 기여합니다. 발가락 꼬집음과 같은 통증 자극으로 적절한 진정 작용을 테스트하고 반응이 없는지 확인하십시오.</li>
	<li>면도기로 마우스의 목 머리카락을 조심스럽게 면도하고 베타 딘 / 클로르헥시딘을 70 % 에탄올로 닦은 다음 피부 표면에 1 % 리도카인을 바르면 국소 통증 조절이 가능합니다.</li>
	<li>마우스를 수핀 위치에 놓습니다. 테이프를 사용하여 팔다리와 꼬리를 고정시키고 목의 피부를 수술의 반대쪽으로 부드럽게 스트레칭하십시오. 동시에 목을 약간 들어 올립니다.</li>
	<li>수술 중 눈의 탈수를 방지하기 위해 안과 연고 (예 : 5 % dexpanthenol)를 사용하십시오.</li>
</ol>2. SAH 유도
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63150/63150fig01.jpg"> 그림 1 : 수술 기술의 단계별 이미지. (A) 노출 된 오른쪽 경동맥 해부학의 묘사 : CCA와 ICA 및 ECA로의 분기는 ECA (OA 및 STA)의 작은 가지뿐만 아니라 식별됩니다. (B) ECA는 주변 조직에서 동원되어 절단하기 전에 두 개의 봉합사로 결찰됩니다. 세 번째 결찰은 분기를 막지 않고 분기 근처에 느슨하게 배치해야합니다. (C) ICA와 CCA는 ECA가 조심스럽게 절개될 때 과도한 출혈을 방지하기 위해 일시적으로 (결찰 또는 클립 포함) 폐색됩니다. (D) 필라멘트가 ECA에 삽입되고 CCA로 진행된다. 혈액 유출이 발생하지 않도록 미리 배열 된 결찰을 조심스럽게 조여야하지만 필라멘트를 전진시키는 것은 가능합니다. (E) ICA와 CCA가 다시 열리고, ECA 그루터기는 두개골 방향으로 조정되어야 한다. 필라멘트를 ICA로 ~ 9mm 앞으로 밀어 넣으면 ACA-MCA 분기에 도달하고 필라멘트를 ~ 3mm 더 밀어 용기를 천공합니다. (F) 필라멘트는 CCA의 시간적 재결찰을 보장한 후에 철회된다. ECA의 미리 배열된 라이게이션은 신속하게 폐색되고, CCA는 재관류를 허용하도록 다시 개방된다. 약어: ACA = 전방 대뇌 동맥, CCA = 일반 경동맥, ECA = 외부 경동맥, MCA = 중간 대뇌 동맥, ICA = 내부 경동맥, OA = 후두 동맥, PPA = 익상편 동맥, STA = 우수한 갑상선 동맥. 배율 막대 = 2mm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63150/63150fig01large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<ol><li>턱에서 가슴뼈의 위쪽 가장자리 (1.5cm)까지 멸균 메스로 목 피부를 열고 타액선을 주변 결합 조직에서 무뚝뚝하게 분리하십시오.</li>
	<li>기관의 한쪽 [이 경우 오른쪽]을 따라 근육 그룹을 분리하여 영양 혈관과 정맥으로 덮인 일반적인 경동맥 (CCA) 외피를 노출시킵니다. CCA와 미주 신경은 서로 근접하게 위치합니다.</li>
	<li>CCA를 분리하고 무료 8-0을 남겨 둡니다. CCA 주위에 실크 봉합사를 미리 붙이지 않고 봉합합니다. 미주 신경이 쉽게 손상되기 때문에 미주 신경의 보호에주의를 기울이십시오 (그림 1A).</li>
	<li>CCA, ICA 및 ECA의 삼중 분기는 디아스타시스의 하부 후부 세 번째를 따라 볼 수 있습니다. ECA의 원위 단부를 해부하고 가능한 한 두 배나 멀리 떨어진 선박을 절제하십시오.</li>
	<li>두 번 결찰 된 세그먼트의 중간 지점에서 ECA를 분리하여 용기 그루터기를 만듭니다.</li>
	<li>ECA 그루터기 주위의 필라멘트에 대한 하나의 결찰을 미리 배열하고, 필라멘트 삽입이 성공할 때까지 닫지 마십시오.</li>
	<li>봉합사 또는 마이크로 클립을 사용하여 ICA 및 CCA를 일시적으로 차단합니다(그림 1B).</li>
	<li>미세 혈관 가위를 사용하여 ECA에서 작은 절개 (ECA 직경의 약 절반)를 만드십시오. 5-0 (대안으로 4-0) 프롤렌 필라멘트를 ECA에 삽입하고 CCA로 전진시킵니다.</li>
	<li>ICA 및 CCA의 마이크로 클립을 풀면서 ECA의 합자를 약간 닫습니다(그림 1C).</li>
	<li>필라멘트를 부드럽게 뒤로 당기고 ECA 그루터기를 두개골 방향으로 조정하여 ICA로의 분기를 통해 필라멘트를 질화합니다 (그림 1D).</li>
	<li>필라멘트 팁을 기관 중앙선에 ~30°, 수평면에 ~30°의 각도로 중앙으로 가리킵니다. ICA 내부에서 필라멘트를 앞으로 밀어 넣습니다. ACA-MCA 분기에 도달하면 저항이 발생합니다 (~ 9mm).</li>
	<li>필라멘트를 3mm 더 전진시켜 오른쪽 ACA에 구멍을 뚫습니다. 필라멘트를 ECA 그루터기로 즉시 철수시켜 지주막하 공간으로 혈류를 허용합니다.</li>
	<li>필라멘트를 약 10초 동안 이 위치에 두십시오(그림 1E). 근육 떨림, 동측성 흉막증, 호흡 헐떡거림, 심장 리듬 변화 및 요실금의 존재는 성공적인 수술의 증거를 뒷받침 할 수 있습니다.</li>
	<li>과도한 혈액 손실을 피하기 위해 CCA를 일시적으로 닫으십시오. 필라멘트를 즉시 꺼내 미리 배열 된 봉합사로 ECA를 리게이트하십시오. CCA를 다시 열고 재관류 및 지주막하 공간으로의 혈액의 추가 삼출을 허용하십시오 (그림 1F).</li>
	<li>출혈 누출을 확인한 후 수술 후 피부 감염을 방지하기 위해 상처 주위의 피부를 소독하고 비 흡수성 4-0 폴리 에스테르 섬유 봉합사로 상처를 봉합합니다.</li>
	<li>의식이 회복 될 때까지 마우스를 열 상자에 넣으십시오. 동물이 완전히 깨어날 때까지 기다렸다가 흉골 잔해를 유지하기에 충분한 의식을 회복했는지 확인하십시오. 완전히 회복 될 때까지 동물을 다른 생쥐의 회사로 돌려 보내지 마십시오.</li>
	<li>수술 후 통증 완화를 위해 200-300 mg / kg 체중 파라세타몰을 투여하십시오.</li>
	<li>수술 후 매일 마우스를 확인하십시오.</li>
</ol>3. MRI 측정
<ol><li>수술 후 24 시간 후, 설치류 스캐너 (재료 표)와 전용 마우스 머리 공진기를 사용하여 MRI를 수행 - 여기에서, 20mm 전송 / 수신 직교 볼륨 공진기가 사용되었습니다.</li>
	<li>마우스를 가열된 순환수 담요 위에 올려 놓고 ~37°C의 일정한 체온을 보장한다. O2 / N2O 혼합물 (30 % / 70 %)에서 2.5 % 이소 플루란으로 마취를 유도하고 연속 환기 모니터링하에 안면 마스크를 통해 1.5-2 % 이소 플루란으로 유지하십시오.</li>
	<li>먼저 3개의 직교 슬라이스 패키지를 획득하는 빠른 참조 스캔을 수행합니다(트라이파일럿 멀티, 반복 시간 TR/에코 시간 TE = 200ms/3ms, 평균 1개, 플립 각도 FA = 30°, 시야각 FOV = 28mm x 28mm, 매트릭스 MTX = 256 x 256, 슬라이스 두께 1mm, 총 획득 시간 TA = 30초).</li>
	<li>그런 다음 이미징을 위해 고해상도 T2 가중치 2D 터보 스핀 에코 시퀀스를 사용하십시오 (이미징 매개 변수 TR / TE = 5505 ms / 36ms, RARE 요소 8, 6 평균, 전체 뇌를 덮기 위해 0.35 mm의 슬라이스 두께를 가진 46 개의 연속 축 슬라이스, FOV = 25.6 mm x 25.6 mm, MTX = 256 x 256, TA = 13 분).</li>
	<li>결과가 불분명하면 T2w 스캔과 동일한 등거리(2D FLASH, TR/TE = 600ms/6.3ms, FA = 30°, 평균 1개, 두께가 0.35mm인 축방향 슬라이스 20개, FOV 및 MTX가 T2w와 동일함, 호흡률에 따라 TA = 5-10분)를 추가로 호흡 트리거한 T2*가중 그라디언트 에코 시퀀스를 사용합니다.</li>
	<li>데이터를 DICOM 이미지 형식으로 전송하고 혈전의 SAH 등급 및 체적 측정을 위해 ImageJ 소프트웨어를 사용하십시오. 정량화에 대한 자세한 내용은 보충 자료에 단계별 가이드로 나열되어 있습니다 (보충 그림 1).</li>
</ol>

<ol><li>Macdonald, R. L., Schweizer, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spontaneous+subarachnoid+haemorrhage%5BTitle%5D)+AND+%22The+Lancet%22%5BJournal%5D)">Spontaneous subarachnoid haemorrhage.</a> The Lancet. 389 (10069), 655-666 (2017).</li>
<li>van Gijn, J., Kerr, R. S., Rinkel, G. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subarachnoid+haemorrhage%5BTitle%5D)+AND+%22The+Lancet%22%5BJournal%5D)">Subarachnoid haemorrhage.</a> The Lancet. 369 (9558), 306-318 (2007).</li>
<li>Abraham, M. K., Chang, W. -T. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subarachnoid+hemorrhage%5BTitle%5D)+AND+%22Emergency+Medicine+Clinics+of+North+America%22%5BJournal%5D)">Subarachnoid hemorrhage.</a> Emergency Medicine Clinics of North America. 34 (4), 901-916 (2016).</li>
<li>Schertz, M., Mehdaoui, H., Hamlat, A., Piotin, M., Banydeen, R., Mejdoubi, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Incidence+and+mortality+of+spontaneous+subarachnoid+hemorrhage+in+martinique%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+ONE%22%5BJournal%5D)">Incidence and mortality of spontaneous subarachnoid hemorrhage in martinique.</a> PLOS ONE. 11 (5), 0155945(2016).</li>
<li>Okazaki, T., Kuroda, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aneurysmal+subarachnoid+hemorrhage%3A+intensive+care+for+improving+neurological+outcome%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Intensive+Care%22%5BJournal%5D)">Aneurysmal subarachnoid hemorrhage: intensive care for improving neurological outcome.</a> Journal of Intensive Care. 6 (1), 28(2018).</li>
<li>Kilbourn, K. J., Levy, S., Staff, I., Kureshi, I., McCullough, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+characteristics+and+outcomes+of+neurogenic+stress+cadiomyopathy+in+aneurysmal+subarachnoid+hemorrhage%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Neurology+and+Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">Clinical characteristics and outcomes of neurogenic stress cadiomyopathy in aneurysmal subarachnoid hemorrhage.</a> Clinical Neurology and Neurosurgery. 115 (7), 909-914 (2013).</li>
<li>de Oliveira Manoel, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+critical+care+management+of+spontaneous+intracranial+hemorrhage%3A+a+contemporary+review%5BTitle%5D)+AND+%22Critical+Care%22%5BJournal%5D)">The critical care management of spontaneous intracranial hemorrhage: a contemporary review.</a> Critical Care. 20 (1), 272(2016).</li>
<li>Schneider, U. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microglia+inflict+delayed+brain+injury+after+subarachnoid+hemorrhage%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Neuropathologica%22%5BJournal%5D)">Microglia inflict delayed brain injury after subarachnoid hemorrhage.</a> Acta Neuropathologica. 130 (2), 215-231 (2015).</li>
<li>Delgado, T. J., Brismar, J., Svendgaard, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subarachnoid+haemorrhage+in+the+rat%3A+angiography+and+fluorescence+microscopy+of+the+major+cerebral+arteries%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Subarachnoid haemorrhage in the rat: angiography and fluorescence microscopy of the major cerebral arteries.</a> Stroke. 16 (4), 595-602 (1985).</li>
<li>Piepgras, A., Thomé, C., Schmiedek, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+an+anterior+circulation+rat+subarachnoid+hemorrhage+model%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Characterization of an anterior circulation rat subarachnoid hemorrhage model.</a> Stroke. 26 (12), 2347-2352 (1995).</li>
<li>Suzuki, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heme+oxygenase-1+gene+induction+as+an+intrinsic+regulation+against+delayed+cerebral+vasospasm+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Investigation%22%5BJournal%5D)">Heme oxygenase-1 gene induction as an intrinsic regulation against delayed cerebral vasospasm in rats.</a> Journal of Clinical Investigation. 104 (1), 59-66 (1999).</li>
<li>Dudhani, R. V., Kyle, M., Dedeo, C., Riordan, M., Deshaies, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Low+mortality+rat+model+to+assess+delayed+cerebral+vasospasm+after+experimental+subarachnoid+hemorrhage%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">A Low mortality rat model to assess delayed cerebral vasospasm after experimental subarachnoid hemorrhage.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (71), e4157(2013).</li>
<li>Iuliano, B. A., Pluta, R. M., Jung, C., Oldfield, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endothelial+dysfunction+in+a+primate+model+of+cerebral+vasospasm%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">Endothelial dysfunction in a primate model of cerebral vasospasm.</a> Journal of Neurosurgery. 100 (2), 287-294 (2004).</li>
<li>Barry, K. J., Gogjian, M. A., Stein, B. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+animal+model+for+investigation+of+subarachnoid+hemorrhage+and+cerebral+vasospasm%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Small animal model for investigation of subarachnoid hemorrhage and cerebral vasospasm.</a> Stroke. 10 (5), 538-541 (1979).</li>
<li>Bederson, J. B., Germano, I. M., Guarino, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cortical+blood+flow+and+cerebral+perfusion+pressure+in+a+new+noncraniotomy+model+of+subarachnoid+hemorrhage+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Cortical blood flow and cerebral perfusion pressure in a new noncraniotomy model of subarachnoid hemorrhage in the rat.</a> Stroke. 26 (6), 1086-1092 (1995).</li>
<li>Veelken, J. A., Laing, R. J. C., Jakubowski, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Sheffield+model+of+subarachnoid+hemorrhage+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">The Sheffield model of subarachnoid hemorrhage in rats.</a> Stroke. 26 (7), 1279-1284 (1995).</li>
<li>Sugawara, T., Ayer, R., Jadhav, V., Zhang, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+grading+system+evaluating+bleeding+scale+in+filament+perforation+subarachnoid+hemorrhage+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">A new grading system evaluating bleeding scale in filament perforation subarachnoid hemorrhage rat model.</a> Journal of Neuroscience Methods. 167 (2), 327-334 (2008).</li>
<li>Egashira, Y., Shishido, H., Hua, Y., Keep, R. F., Xi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+grading+system+based+on+magnetic+resonance+imaging+in+a+mouse+model+of+subarachnoid+hemorrhage%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">New grading system based on magnetic resonance imaging in a mouse model of subarachnoid hemorrhage.</a> Stroke. 46 (2), 582-584 (2015).</li>
<li>Mutoh, T., Mutoh, T., Sasaki, K., Nakamura, K., Taki, Y., Ishikawa, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Value+of+three-dimensional+maximum+intensity+projection+display+to+assist+in+magnetic+resonance+imaging+%28MRI%29-based+grading+in+a+mouse+model+of+subarachnoid+hemorrhage%5BTitle%5D)+AND+%22Medical+Science+Monitor%22%5BJournal%5D)">Value of three-dimensional maximum intensity projection display to assist in magnetic resonance imaging (MRI)-based grading in a mouse model of subarachnoid hemorrhage.</a> Medical Science Monitor. 22, 2050-2055 (2016).</li>
<li>Kothari, R. U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+ABCs+of+measuring+intracerebral+hemorrhage+volumes%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">The ABCs of measuring intracerebral hemorrhage volumes.</a> Stroke. 27 (8), 1304-1305 (1996).</li>
<li>Leclerc, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+of+pathophysiology+in+humans+and+rodent+models+of+subarachnoid+hemorrhage%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Molecular+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">A comparison of pathophysiology in humans and rodent models of subarachnoid hemorrhage.</a> Frontiers in Molecular Neuroscience. 11, 71(2018).</li>
<li>Titova, E., Ostrowski, R. P., Zhang, J. H., Tang, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+models+of+subarachnoid+hemorrhage+for+studies+of+cerebral+vasospasm%5BTitle%5D)+AND+%22Neurological+Research%22%5BJournal%5D)">Experimental models of subarachnoid hemorrhage for studies of cerebral vasospasm.</a> Neurological Research. 31 (6), 568-581 (2009).</li>
<li>Marbacher, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systematic+review+of+in+vivo+animal+models+of+subarachnoid+hemorrhage%3A+Species%2C+standard+parameters%2C+and+outcomes%5BTitle%5D)+AND+%22Translational+Stroke+Research%22%5BJournal%5D)">Systematic review of in vivo animal models of subarachnoid hemorrhage: Species, standard parameters, and outcomes.</a> Translational Stroke Research. 10 (3), 250-258 (2019).</li>
<li>Marbacher, S., Fandino, J., Kitchen, N. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Standard+intracranial+in+vivo+animal+models+of+delayed+cerebral+vasospasm%5BTitle%5D)+AND+%22British+Journal+of+Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">Standard intracranial in vivo animal models of delayed cerebral vasospasm.</a> British Journal of Neurosurgery. 24 (4), 415-434 (2010).</li>
<li>Thompson, J. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+cerebral+aneurysm+models%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgical+Focus%22%5BJournal%5D)">In vivo cerebral aneurysm models.</a> Neurosurgical Focus. 47 (1), 1-8 (2019).</li>
<li>Frontera, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prediction+of+symptomatic+vasospasm+after+subarachnoid+hemorrhage%3A+The+modified+fisher+scale%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">Prediction of symptomatic vasospasm after subarachnoid hemorrhage: The modified fisher scale.</a> Neurosurgery. 59 (1), 21-26 (2006).</li>
<li>Fisher, C. M., Kistler, J. P., Davis, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relation+of+cerebral+vasospasm+to+subarachnoid+hemorrhage+visualized+by+computerized+tomographic+scanning%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">Relation of cerebral vasospasm to subarachnoid hemorrhage visualized by computerized tomographic scanning.</a> Neurosurgery. 6 (1), 1-9 (1980).</li>
<li>Wilson, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+and+quantitative+method+to+predict+symptomatic+vasospasm+after+subarachnoid+hemorrhage+based+on+computed+tomography%3A+Beyond+the+fisher+scale%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">A simple and quantitative method to predict symptomatic vasospasm after subarachnoid hemorrhage based on computed tomography: Beyond the fisher scale.</a> Neurosurgery. 71 (4), 869-875 (2012).</li>
<li>Schüller, K., Bühler, D., Plesnila, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+murine+model+of+subarachnoid+hemorrhage%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">A murine model of subarachnoid hemorrhage.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (81), e50845(2013).</li>
</ol>

이해 상충 없음

요약하면, 혈관 내 필라멘트 천공 조작에 의해 유도된 표준화된 SAH 마우스 모델은 경미한 침윤, 짧은 수술 시간, 및 허용가능한 사망률로 제시된다. MRI는 올바른 출혈 부위와 다른 관련 두개내 병리를 배제하기 위해 수술 후 24 시간 동안 수행됩니다. 또한, 우리는 다른 SAH 출혈 등급을 분류하고 출혈량을 측정하여 출혈 등급에 따라 추가 하위 그룹 분석을 가능하게했습니다.
마우스의 적절한 위치는 올바른 천공의 성공에 영향을 미칩니다. 마우스의 목은 수술의 반대쪽으로 약간 뻗어 있어야하며 머리는 약간 상승해야합니다. 이것은 삼중을 노출시키고 펑크 경로를 더 쉽게 접근 할 수있게합니다. 필라멘트의 전진이 실패하면, 필라멘트를 삼격으로 약간 당기고 저항없이 전진이 가능할 때까지 머리의 위치를 조정하는 것이 도움이 될 수 있습니다.
수술 중 신경 보호가 중요합니다. 미주 신경과 자궁 경부 신경총의 교란은 호흡 및 심장 리듬의 변화를...

Subarachnoid 출혈 (SAH)은 두개내 동맥류의 파열로 인해 발생하며 뇌졸중 1,2의 약 5 %를 차지하는 상당한 이환률 및 사망률과 관련하여 생명을 위협하는 응급 상황을 초래합니다. SAH 환자는 심한 두통, 신경 학적 기능 장애 및 의식의 진행성 장애를 가지고 있습니다3. SAH 환자의 약 30 %가 초기 출혈 사건4 후 처음 30 일 이내에 사망합니다. 임상적으로, 환자의 50 %는 초기 뇌 손상 후 지연 뇌 손상 (DBI)을 경험합니다. DBI는 지연된 뇌 허혈 및 지연된 신경학적 결핍을 특징으로 한다. 현재의 연구에 따르면 여러 가지 요인의 상승 효과는 혈액 - 뇌 장벽의 파괴, 작은 동맥의 수축, 미세 순환 기능 장애 및 혈전증 5,6을 포함한 신경 기능의 상실로 이어진다는것을 보여주었습니다.
SAH의 한 가지 독특한 측면은 병인이 실질 외 위치에서 유래하지만 실질 내부의 해로운 캐스케이드로 이어진다는 것입니다 : 병리학은 지주막하 공간에 혈액이 축적되어 신경 염증, 신경 및 내피 세포 아폽토시스, 피질 확산 탈분극 및 뇌 부종 형성과 같은 많은 사각 부근 효과를 유발합니다7, 8.
임상 연구는 여러 가지 요인에 의해 제한되며, 동물 모델은 질병의 pathomechanistic 변화를 일관되고 정확하게 모방하는 데 중요한 요소입니다. 상이한 SAH 모델 프로토콜, 예를 들어, 시스테르나 마그나(ACM)로의 자가 혈액 주입이 제안되었다. 또한, 시스테르나 마그나 및 시신경 치아즘 수조(APC)에 자가 혈액을 각각 9,10개로 이중 주사하는 변형된 방법이다. 자가 혈액 주입은 지주막하 출혈 후 혈관 경련 및 염증 반응의 병리학 적 과정을 시뮬레이션하는 간단한 방법이지만, 두개내 압력 (ICP)의 다음과 같은 상승은 상대적으로 느리고 혈액 뇌 장벽의 투과성에 주목할만한 변화는 유도되지 않습니다11,12. 또 다른 방법은, 큰 SAH 모델(예를 들어, 원숭이 및 개)에서 일반적으로 사용되는 동맥주위 혈액 배치는 항응고된 자가 혈액 또는 유사한 혈액 생성물을 혈관 주위에 배치하는 것을 포함한다. 동맥의 직경 변화는 현미경으로 관찰 할 수 있으며 SAH13 이후 뇌 혈관 경련의 지표 역할을합니다.
Barry et al. 먼저 1979년에 두개골을 제거한 후 바질라 동맥이 노출되는 혈관 내 천공 모델을 기술하였다; 동맥은 그 후 미세한 입체 전술 기술(14)을 사용하여 텅스텐 미세전극으로 구멍을 뚫는다. 1995년, 베더슨과 벨켄은 뇌허혈의 Zea-Longa 모델을 수정하고 혈관 내 천공을 확립하였으며, 이는15,16년 이래 지속적으로 개선되고 있다. 이 방법은 생쥐와 인간이 윌리스의 원으로 알려진 유사한 두개내 혈관 네트워크를 공유한다는 사실에 기초합니다.
마우스 모델에서 SAH의 수술 후 평가 및 등급을 매기기 위해 다양한 접근법이 제안되었습니다. Sugawara et al.은 200817 이후 널리 사용 된 등급 척도를 개발했습니다. 이 방법은 형태학적 변화에 기초하여 SAH의 심각도를 평가한다. 그러나이 방법의 경우 마우스의 뇌 조직 형태를 직접 시력으로 검사해야하므로 평가를 위해 마우스를 희생해야합니다. 또한, 생체내에서 SAH 중증도를 결정하기 위한 몇 가지 방법이 확립되었다. 접근법은 간단한 신경 학적 채점에서 두개내 압력 (ICP)의 모니터링에 이르기까지 다양한 방사선 이미징 기술에 이르기까지 다양합니다. 또한, MRI 등급은 SAH 중증도를 등급화하는 새로운 비침습적 도구로 밝혀졌으며, 이는 신경학적 점수18,19와 상관관계가 있다.
여기에서, 혈관 내 천공에 의해 야기된 SAH 모델에 대한 프로토콜이 제시되고, 수술 후 MRI와 결합된다. 생체 내 환경에서 출혈량을 객관화하는 시스템을 구축하기 위한 시도로, 우리는 또한 7.0 T 고해상도 T2 가중 MRI를 기반으로 총 혈액량의 SAH 등급 및 정량화를 위한 시스템을 개발하였다. 이 접근법은 SAH의 올바른 유도와 뇌졸중, 뇌수종 또는 뇌출혈 (ICH) 및 합병증과 같은 다른 병리를 배제합니다.

<table><tbody><tr><td>아이 크림</td><td>Bayer</td><td>815529836</td><td>Bepanthen</td></tr><tr><td>이미지 분석 소프트웨어</td><td>ImageJ</td><td></td><td>Java 1.8.0_172</td></tr><tr><td>결찰 봉합사 (5-0)</td> <td>SMI</td><td></td>와 번들 실크 <td>블랙 USP</td></tr><tr><td>현미경 용 광원</td><td>Zeiss</td><td>CL 6000 LED</td><td></td></tr><tr><td>케타민</td><td>CP-pharma</td><td>797-037</td><td>100 mg / mL</td></tr><tr><td>MRI</td><td>브루커</td><td>파마스캔 70/16</td><td>&nbsp; 7 Tesla</td></tr><tr><td>MRI 이미지 획득 소프트웨어</td><td>Bruker</td><td></td><td>Bruker Paravision 5.1</td></tr><tr><td>파라세타몰 (40 mg/mL)</td><td>베네 Arzneimittel</td><td>4993736</td><td></td></tr><tr><td>프롤렌 필라멘트 (5-0)</td><td>Erhicon</td><td>EH7255</td><td></td></tr><tr><td>면도기</td><td>Wella</td><td>HS61</td><td></td></tr><tr><td>수술 기구(미세 가위)</td><td>FST</td><td>14060-09</td><td></td></tr><tr><td>수술 기구 (겸자#1)</td><td>AESCULAP</td><td>FM001R</td><td></td></tr><tr><td>수술 기구(겸자#2)</td><td>AESCULAP</td><td>FD2855R</td><td></td></tr><tr><td>수술 기구(겸자#3)</td><td>Hammacher</td><td>HCS 082-12</td><td></td></tr><tr><td>수술 기구(바늘 홀더)</td><td>FST</td><td>91201-13</td><td></td></tr><tr><td>수술 기구(Vannas Spring Scissors)</td><td>FST</td><td>15000-08</td><td></td></tr><tr><td>수술용 현미경</td><td>Zeiss</td><td>Stemi 2000 C</td><td></td></tr><tr><td>환기 모니터링</td><td>Stony Brook</td><td></td><td>소형 동물 모니터링 및 게이팅 시스템</td></tr><tr><td>상처 봉합사(4-0)</td><td>Erhicon</td><td>CB84D</td><td></td></tr><tr><td>Xylavet</td><td>CP-pharma</td><td>797-062</td><td>20 mg/mL</td></tr></tbody></table>

자기 공명 영상(mri)과 결합된 subarachnoid 출혈에 대한 혈관 내 천공 모델

Endovascular Perforation Model for Subarachnoid Hemorrhage Combined with Magnetic Resonance Imaging (MRI)

지주막하 출혈 (SAH)을 모방하는 혈관 내 필라멘트 천공 모델은 일반적으로 사용되는 모델입니다 - 그러나, 기술은 높은 사망률뿐만 아니라 SAH 및 뇌졸중 또는 두개내 출혈과 같은 다른 두개내 합병증의 통제 할 수없는 부피를 유발할 수 있습니다. 이 프로토콜에서, 표준화된 SAH 마우스 모델이 제시되고, 혈관 내 필라멘트 천공에 의해 유도되고, 수술 후 24시간 후에 자기 공명 영상(MRI)과 결합되어 정확한 출혈 부위를 보장하고 다른 관련 두개내 병리를 배제한다. 간단히 말해서, C57BL / 6J 마우스는 복강 내 케타민 / 자일라진 (70mg / 16mg / kg 체중) 주사로 마취되어 수핀 위치에 놓입니다. 미드라인 목 절개 후, 일반적인 경동맥 (CCA) 및 경동맥 분기가 노출되고, 5-0 비흡수성 모노필라멘트 폴리프로필렌 봉합사가 역행 방식으로 외부 경동맥 (ECA)으로 삽입되고 일반적인 경동맥으로 진행된다. 이어서, 필라멘트는 내부 경동맥(ICA)으로 질내 내로 들어가고, 전방 대뇌동맥(ACA)을 천공하기 위해 앞으로 밀려난다. 수술에서 회복 한 후, 마우스는 24 시간 후에 7.0 T MRI를 겪습니다. 출혈의 양은 수술 후 MRI를 통해 정량화되고 등급화 될 수 있으므로 혈액량에 따라 추가 하위 그룹 분석을 수행 할 수있는 옵션을 갖춘 강력한 실험 SAH 그룹이 가능합니다.

사망률 본 연구를 위해, 8-12주 사이에 숙성된 총 92마리의 수컷 C57Bl/6J 마우스가 SAH 수술을 받았다; 이들에서, 우리는 11.9 %의 전체 사망률을 관찰했다 (n = 12). 사망률은 수술 후 처음 6-24 시간 이내에 독점적으로 발생했으며, 이는 수술 전 사망률과 SAH 출혈 자체가 가장 큰 기여 요인임을 시사합니다.
SAH 출혈 등급 총 50 마리의 마우스가 수술 후 24 시간 동안 MRI를 받아 SAH를 확인하고 아급성 허혈성 뇌졸중 및 뇌수종을 포함한 다른 동시 발생 병리의 탐지를 보장합니다. 나머지 동물들은 수술 후 MRI를 위한 적절한 시간을 선택하기 위해 초기 스캔에 사용되었다. 24 h 시점에서 50 마리의 검사 된 마우스 중 n = 7 마리의 SAH (출혈 등급 0)가 존재하지 않은 동물 및 n = 5 마리의 마우스가 추가 뇌졸중 및 / 또는 ICH (출혈 등급 IV)가 검출되...

여기서 우리는 정확한 출혈 부위를 보장하고 다른 관련 두개내 병리를 배제하기 위해 수술 후 24 시간 동안 자기 공명 영상 (MRI)과 결합 된 혈관 내 필라멘트 천공에 의해 유도 된 표준화 된 SAH 마우스 모델을 제시합니다.

자기 공명 영상(MRI)과 결합된 Subarachnoid 출혈에 대한 혈관 내 천공 모델

The endovascular filament perforation model to mimic subarachnoid hemorrhage (SAH) is a commonly used model - however, the technique can cause a high ...

수술 후 MRI와 결합 된 혈관 내 천공 모델은 출혈의 검증과 다른 두개간 병리의 배제를 허용합니다. 이 접근법의 장점 중 하나는 추가 하위 그룹 분석을 위해 출혈량을 정량화하는 옵션입니다. 마우스의 목 머리카락을 면도하는 것으로 시작하십시오.절차 중에 안과 연고를 바르십시오. 70 % 에탄올로 피부를 살균 한 다음 Betadine 또는 chlorhexidine을 바르고 1 % 리도카인을 바르십시오. 마우스를 머리와 몸통이 위쪽 방향을 향하도록 수핀 위치에 놓습니다.네 사지에 테이프를 사용하여 마우스를 등쪽으로 안정화하십시오. 목의 피부를 스트레칭하고 들어 올립니다. 턱에서 유방 뼈의 위쪽 가장자리까지 목 피부를 펼치고 인접한 결합 조직에서 타액선을 분리하십시오.기관의 한쪽을 따라 근육을 분리하여 일반적인 경동맥 외피를 노출시킵니다. 수축기 또는 멸균 거즈 면봉으로 수술 현장을 노출시키고 경동맥을 분리하고 자유 8-0을 남겨 둡니다. 실크 봉합사를 결찰하지 않고 미주 신경을 손상시키지 않도록합니다. ECA의 원위 말단을 해부하고 원위 위치에서 혈관을 두 번 절제하십시오.두 번 결찰 된 필라멘트 세그먼트의 중간 지점에서 ECA를 분리하고 용기 그루터기를 만듭니다. 실크 봉합사를 닫지 않고 ICA 주위에 두십시오. ECA 그루터기 주위의 필라멘트에 대한 하나의 결찰을 미리 배열하십시오.필라멘트 삽입이 성공할 때까지 닫지 마십시오. 봉합사 또는 마이크로 클립을 사용하여 ICA 및 CCA를 일시적으로 닫습니다. 미세 혈관 가위를 사용하여 ECA를 절개하고 5-0 대안으로 4-O Prolene 필라멘트를 삽입하고 CCA로 전진시킵니다.ICA 및 CCA의 마이크로 클립을 분리하면서 ECA의 합자를 닫습니다. 필라멘트를 부드럽게 뒤로 당기고 ECA 그루터기를 두개골 방향으로 조정하면서 ICA로의 분기를 통해 필라멘트를 질질합니다. 필라멘트 팁을 수평면의 기관 미드라인에 약 30도 각도로 중앙에 놓고 ICA 내부로 밀어 넣습니다.ACA-MCA 분기에서 저항이 관찰됩니다. 필라멘트를 앞으로 세 밀리미터까지 이동하고 오른쪽 ACA를 천공합니다. 필라멘트를 ECA 그루터기로 신속하게 철수시켜 지주막하 공간에서 혈류를 허용합니다.필라멘트를 이 위치에 10초 동안 놓습니다. 필라멘트를 철회하십시오. CCA는 과도한 혈액 손실을 피하기 위해 사전에 일시적으로 폐쇄 된 다음 필라멘트를 철회 할 수 있습니다.미리 배열 된 봉합사를 사용하여 ECA를 취소하고 이전에 닫은 경우 CCA를 다시 엽니 다. 근육 떨림, 동측성 근증, 호흡을 위해 헐떡이는 것, 변경된 심장 리듬 및 요실금의 존재는 성공적인 수술의 증거를 뒷받침 할 수 있습니다. 출혈 누출이 없는지 확인하고 피부를 소독하십시오.상처를 봉합하십시오. 마우스를 열 상자에 넣고 동물이 흉골 잔해를 갖기에 충분한 의식을 가질 때까지 기다리십시오. 통증을 완화하려면 파라세타몰 밀리리터 당 1.2 밀리그램을 투여하십시오.마우스 머리 공진기에 설치류 스캐너를 사용하여 수술 24 시간 후 MRI를 수행하고 마우스를 섭씨 37도에서 가열 된 순환 물 담요에 놓습니다. 먼저 세 개의 직교 슬라이스 패키지를 획득하는 빠른 참조 스캔을 수행합니다. 그런 다음 이미징을 위해 고해상도 T2 가중 2D 터보 스핀 에코 시퀀스를 사용하십시오.데이터를 DICOM 이미지 형식으로 전송하고 혈전의 SAH 등급 및 체적 측정을 위해 Imagej 소프트웨어를 사용하십시오. 정확한 출혈 부위를 보장하고 다른 두개내 병리를 배제하기 위해, MRI 스캔은 수술 후 24시간 동안 수행되었다. SAH 출혈 등급은 T2 가중 MRI 스캔을 기준으로 정량화되었다.조사된 마우스 중에서, 동물의 14%는 SAH 또는 출혈에 대한 방사선학적 증거 없이 출혈 등급 0으로 분류되었다. 대부분의 동물은 한 명에서 세 명 사이의 출혈 등급을 보였고 10 %는 뇌졸중 및 / 또는 ICH를 따라 SAH로 정의 된 출혈 등급 네 번째 등급을 보였습니다. SAH 두께를 기준으로 각 SAH 등급의 총 출혈 부피를 정량화하여 출혈 부위를 결정하는 데 도움을줍니다.축방향 SAH 두께에 기초하여 계산된 출혈 부피는 그들의 상응하는 하위군 등급에서 하나 내지 세 등급에서 유의한 차이를 보였다. 전체 수술 전반에 걸쳐, 봉합사의 올바른 위치를 위해 주변 연결 조직의 철저한 해부가 중요합니다. ECA 그루터기의 길이가 충분하여 필라멘트의 결찰, 절개 및 삽입을위한 편안한 작업 공간을 확보하십시오.조기 혈관 천공을 방지하기 위해 MCA-ACA 분기 전에 저항을 느낄 때 필라멘트를 앞으로 밀지 마십시오.

endovascular-perforation-model-for-subarachnoid-hemorrhage-combined

Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

Aneurysmal subarachnoid 출혈 (SAH)은 때 동맥 파열 subarachnoid 공간에 발생합니다 출혈이 있습니다. subarachnoid의 출혈이 몇 년 전 예전처럼 될 수 계속 한 후이 행사의 병적 상태와 사망률이 개선 치료 방법으로 인해 감소, vasospasm의 위험에 왔지만. 뇌성 vasospasm의 시작 이벤트를 식별하기 위해 포괄적이고 재현 동물 모델을 확립의 중요성은 배리의 1979 년 실험 vasospasm 모델 쥐의 첫 번째 사용하기 때문에 연구의...

실험 Subarachnoid의 출혈 후 뇌 지연 Vasospasm을 평가하기 위해 낮은 사망 쥐 모델

뇌동맥류, 즉 뇌의 혈관이 부풀어 올라 혈액으로 가득 차는 질환을 진단받은 환자부터 시작해 보십시오. MRI 기계의 헤드 코일 안에 환자의 머리를 고정합니다. 이미징을 시작합니다. 시스템은 강력한 자기장을 생성하여 뇌 조직의 양성자를 그 방향을 따라 정렬합니다. 반전 무선 주파수 펄스를 적용하여 자화로 준비된 빠른 그라디언트 에코 또는 MPRAGE 시퀀스를 시작합니다.  자기장과 반대 방향으로 양성자의 정렬을 뒤집습니다. 펄스가 멈추면 양성자는 T1 이완을 통해 자기장과의 원래 정렬로 점차 돌아가 이 과정에서 전자기 신호를 방출합니다. T1 이완 시간이 짧은 흐르는 혈액 속의 양성자는 밝은 신호를 생성하는 반면, 주변 고정 조직의 약한 신호는 어두운 배경을 만듭니다. 헤드 코일은 이러한 신호를 감지하여 고해상도 3D 이미지로 처리합니다. 뇌동맥류는 뚜렷한 목과 돔 부위가 있는 돌출부로 시각화됩니다.

MPRAGE를 사용한 뇌동맥류의 자기공명영상(Magnetic Resonance Imaging of Cerebral Aneurysms Using MPRAGE)

혈관 주위 공간(PVS)은 체액 배출에 관여하는 뇌 혈관 주위에 액체로 채워진 공간입니다. 소혈관 뇌졸중 중 PVS의 변화를 검사하기 위해 환자의 뇌에 있는 기저핵 영역의 자기공명영상(MRI)을 수행합니다. 이미징 프로토콜에는 T2 가중치 고속 스핀 에코 및 유체 감쇠 반전 복구(FLAIR) 시퀀스가 포함됩니다. T2 가중 이미징은 뇌척수액(CSF)으로 채워진 PVS와 주변 조직 간의 대비를 향상시킵니다. FLAIR는 CSF 신호를 억제하여 PVS와 오래된 열공 경색을 구별할 수 있습니다. 고해상도 이미징을 위한 적절한 이미징 매개변수를 보장합니다. PVS를 T2 가중 영상에서 CSF와 유사한 신호 강도를 가진 원형, 타원형 또는 선형 구조로 식별합니다. FLAIR에서 PVS는 오래된 열공 경색에서 볼 수 있는 초강렬한 테두리가 없는 저강도로 보입니다. 한쪽 반구에서 PVS의 농도가 가장 높은 MRI 슬라이스의 PVS를 시각적으로 평가하여 심각도를 평가합니다.

Magnetic Resonance Imaging of the Perivascular spaces in the human brain during a small vessel stroke(소혈관 뇌졸중 중 인간 뇌의 혈관 주위 공간의 자기 공명 영상)

이 비디오는 마우스 모델에서 혈관 내 천공을 통한 지주막하 출혈의 유도를 보여줍니다. 마취된 마우스의 목 부위를 절개하여 총경동맥과 그 분기점에 접근합니다. 동맥을 통해 필라멘트를 삽입하여 두개내 동맥 가지를 천공하여 지주막하 출혈을 유발합니다.

혈관내 천공을 통한 마우스 모델에서 지주막하 출혈 유도(Induction of a arachnoid hemorrhage in a Mouse Model through endovascular perforation)

윌리스 천공의 관내 서클 지주막 하 출혈의 표준화 된 마우스 모델을 설명한다. 선박 천공 및 지주막 하 출혈은 두개 내 압력 모니터링에 의해 모니터링된다. 또 각종 중요한 파라미터는 기록 및 생리적 조건을 유지하도록 제어된다.

지주막 하 출혈의 생쥐 모델

토끼를 대상으로 한 실험적 두개내 압력 조절 혈액 션트 지주막하 출혈(SAH) 모델은 쇄골하 동맥 삽관 및 경피적 수조 마그나 천자라는 표준 절차를 결합하여 SAH 후 인간의 병태생리학적 상태를 밀접하게 모방할 수 있습니다. 단계별 지침을 제시하고 성공적인 실험적 SAH 생성을 위한 주요 수술 포인트에 대해 논의합니다.

지주막 하 출혈의 급성과 늦은 후유증의 연구에 대한 토끼 피 션트 모델 : 기술적 측면

이 기사의 목적은 마이크로 계산 된 단층 촬영 및 전체 선박 세그먼트에 대뇌 vasospasm을 계량 하는 데 사용할 수 있는 볼륨의 결정 후 마우스에서 뇌혈관 나무의 3 차원 재구성을 허용 하는 방법을 제시 하는 것입니다. 거미 막 밑 출혈의 murine 모델입니다.

거미 막 밑 출혈의 Murine 모델에 대뇌 Vasospasm의 정량화에 대 한 체적 메서드

우리는 이 프로토콜에서 시스테나 마그나에 자가 전혈을 이중 으로 주입하여 표준화된 지주막 출혈(SAH) 마우스 모델을 기술하였다. 이중 주사 절차의 높은 수준의 표준화는 사망률에 관한 상대적 안전과 SAH의 중간-급성 모델을 나타낸다.

수브라크누드 출혈의 모델로 시스테나 마그나에 혈액을 이중 직접 주입

이 원고의 목적은 마우스의 대뇌 동맥에서 혈류의 생체 내 이미징을 허용하는 초음파 기반 방법을 제시하는 것입니다. 우리는 지주 막 증 출혈의 뮤린 모델에서 혈관 경련과 관련 된 혈액 흐름 속도의 변화를 결정 하기 위해 그것의 응용 프로그램을 보여줍니다 (SAH).

고주파 두개골 이중 초음파를 가진 수브라크누이드 출혈의 뮤린 모형에 있는 뇌 혈관경련의 분석

자기 공명 영상 (MRI)은 유전자 조작 생쥐의 표현형을 조사를위한 점점 인기있는 도구가되고 있습니다. 이 문서는 여러 마우스 MRI를 사용하여 유전자 조작 생쥐의 높은 처리량 phenotyping을 달성하는 데 필요한 방법을 보여줍니다.

여러 마우스 Neuroanatomical 자기 공명 영상

배우세요 혈관 내 천공 모델과 MRI를 결합한 쥐의 지막하 출혈 유도 방법을. T2 가중 MRI로 출혈 부위를 검증하고 출혈량을 정량화하여 병태생리학 연구에 활용할 수 있습니다.

자기 공명 영상(MRI)과 결합된 Subarachnoid 출혈에 대한 혈관 내 천공 모델

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