Name: 미국 바퀴벌레에 있는 RNA 간섭의 신청 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-12-17T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 32 s
Description: 배우세요 미국 바퀴벌레에서 RNA 간섭을 이용한 유전자 기능 연구 방법을. 유전자 녹다운을 통해 발달, 재생, 짝짓기 행동의 분자 메커니즘을 탐구할 수 있습니다. 이 기술은 유전자 편집이 어려운 곤충 연구에 효과적인 도구입니다.

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이 연구는 중국 국립 자연 과학 재단 (보조금 번호 32070500, 31620103917, 31330072 및 31572325 C.R., Sh.L.), 광동성 자연 과학 재단 (보조금 번호 2021B1515020044 및 2020A1515011267 ~ C.R.), 광동성 과학 기술부 (보조금 번호 2019B090905003 및 2019A0102006), 광저우 과학 기술부 (보조금 번호 202102020110), 심천 과학 기술 프로그램 (보조금 번호. KQTD20180411143628272 to Sh.L.).

P. americana의 라인은 처음에 Huiling Hao 박사에 의해 제공되었습니다. 이 종은 30 년 동안 근친 교배로 유지되어왔습니다 9.
1. P. americana의 부화 및 먹이주기
<ol><li>P. americana의 신선한 oothecae (알을 낳는 직후)를 수집하고 ~ 25 일 동안 25 °C 및 60 % 습도의 어두운 인큐베이터에서 배양하십시오. 그런 다음 부화 3 일 전에 온도와 습도를 30 ° C와 75 %로 높입니다.</li>
	<li>4mm 조리개가있는 체를 사용하여 부화 한 님프를 oothecae에서 분리하십시오.</li>
	<li>님프를 원통형 용기 (직경 12cm, 높이 10cm)에 28 °C, 70 % 습도의 어둠 속에 보관하십시오. 바퀴벌레가 탈출하는 것을 막기 위해 바셀린으로 용기의 안쪽 가장자리를 닦으십시오. 쥐 음식, 물 및 피난처 (달걀 쟁반)를 제공하십시오. 님프의 활동에주의를 기울이고 정기적으로 대변과 파편을 청소하십시오.</li>
</ol>2. 적절한 별에서 님프의 선택
<ol><li>유리 튜브를 사용하여 갓 털갈이 된 P. americana (몸 색깔이 흰색)를 골라냅니다. 새 용기에 보관하고 올바른 치료 단계를 기다리십시오. 참고 : 위의 수유 조건 하에서 ~ 19 일 후, 3번째 별의 님프는 주사를 사용할 수 있습니다. 갓 털갈이 한 바퀴벌레의 색깔은 흰색이며, 별은 털갈이 시간에 의해 명확 해집니다.</li>
</ol>3. T7 프로모터를 이용한 표적 단편의 제조
<ol><li>P. americana의 cDNA를 주형으로 사용하여, PCR을 수행하여 짝을 이룬 프라이머를 설계하여 표적 유전자9의 300-800 bp DNA 단편을 얻었다. 그런 다음 PCR 단편을 시퀀싱을 위해 pTOPO 벡터 (물질 표 참조)에 클로닝하십시오.</li>
	<li>표적 단편 DNA를 주형으로 사용하여, 5' 말단에서 T7 프로모터 서열 (5'-GGATCCTAATACGACTCACTCACTATAGG-3')을 갖는 하나의 새로운 프라이머 쌍을 합성하고, PCR의 또 다른 라운드를 수행하여 각 측면9에 T7 프로모터를 갖는 표적 단편을 얻었다.</li>
</ol>4. 시험관 내에서 dsRNA의 전사 및 합성
<ol><li>10 μL의 T7 2X 버퍼, 2 μL의 효소 믹스, 2 μL의 T7 Express (표 표 참조) 및 2 μg의 PCR 생성물 (단계 3.2에서 수득됨)을 반응 시스템에 첨가하고, ddH2O로 총 부피를20μL로 첨가하고, 수동으로 거꾸로 부드럽게 혼합하고, 37°C에서 30분 동안 및 70°C에서 10분 동안 인큐베이션하고, 그런 다음 천천히 실온으로 식히십시오.</li>
	<li>RNase A 용액 (4 μg / μL)을 ddH2 O로 1:200의 비율로 희석하십시오. 그런 다음 RQ1 RNase-Free DNase (1 U / μL) 1 μL와 희석 된 RNase A 용액 1 μL를 시스템에 첨가하십시오 (자료 표 참조). 참고: 이제 단일 시스템의 부피는 22μL입니다.</li>
	<li>37°C에서 30분 동안 인큐베이션한다. 그런 다음 아세트산나트륨의 총 부피의 10%(N 반응을 동시에 수행할 때, 총 부피는 N x 22 μL임)와 이소프로판올의 총 부피의 세 부피를 첨가한다.</li>
	<li>수동으로 거꾸로 부드럽게 혼합하고, 얼음 위에 5분 동안 놓고, 4°C에서 10분 동안 13,000 x g 에서 원심분리한다.</li>
	<li>상청액을 피펫으로 제거하고, 잔류물을 75% 에탄올(25% 디에틸 피로카보네이트(DEPC) 처리된 물 사용)으로 세척한 다음, 4°C에서 5분 동안 13,000 x g 에서 원심분리한다.</li>
	<li>상층액을 다시 제거하십시오. 펠렛을 실온에서 15분 동안 공기-건조시켰다. ~100μL의 DEPC 물을 사용하여 dsRNA를 용해시킨 다음, dsRNA를 최종 2μg/μL로 희석한다. 참고: dsRNA는 -80°C에서 6개월 동안 저장될 수 있었다.</li>
</ol>5. dsRNA 용액을 주사기에 로딩
<ol><li>각 주입의 부피가 일관되게 유지되도록 미리 마이크로 주입 펌프 ( 재료 표 참조)에 프로그램을 설정하십시오. 주사기를 사용하기 전에 주사기를 DEPC 물로 8-10 번 채워 주사기를 청소하십시오.</li>
	<li>10 μL 주사기를 미세주입 펌프에 설치하고, 펌프를 시작하고, 주사기를 10 μL의 dsRNA 용액으로 채운다(단계 4.6에서 제조). dsRNA 1 μL를 3번째 인스타 님프에 주입하고(단계 2 참조) 체내로 누출되지 않도록 합니다.</li>
</ol>6. P. 아메리카나에 dsRNA를 주입
<ol><li>바퀴벌레가 더 이상 움직이지 않을 때까지 용기에CO2 농도가 증가하여 바퀴벌레를 마취 한 다음 즉시 주사를 진행하십시오.</li>
	<li>핀셋으로 바퀴벌레를 부드럽게 집어 들고 바퀴벌레를 손으로 바늘 쪽으로 배달하십시오. 다음으로, 표피에 대해 수평으로 두 개의 복부 소마이트 사이의 틈을 통해 바늘을 삽입하십시오. 삽입 깊이에 관해서는 얕을수록 좋습니다.</li>
	<li>그런 다음 dsRNA 용액을 바퀴벌레에 주입하십시오. 마지막으로, 바늘 끝을 당깁니다. 내부 장기의 손상을 피하기 위해 바늘 끝이 표피에 가능한 한 가까이 있는지 확인하십시오. 참고 : 주사는 해부 현미경으로 이루어져야합니다.</li>
	<li>주입 된 바퀴벌레를 깨끗한 생물 분석 용기에 넣으십시오. 이들이 CO2 효과로부터 회복되도록 하기 위해 약10-20 분 동안 기다린다. 용기에 주사 날짜, dsRNA의 종류 및 복용량, P. americana의 나이로 라벨을 붙입니다.</li>
	<li>주입 된 바퀴벌레를 28 ° C, 70 % 습도의 어두운 환경에 놓고 물, 사료 및 피난처를 제공하고 바퀴벌레의 표현형의 가능한 변화를 정기적으로 관찰하십시오.</li>
</ol>7. 녹다운 확인 및 표현형 분석
<ol><li>정량적 실시간 PCR(qRT-PCR) 및 웨스턴 블롯팅과 같은 임의의 이용가능한 분자 생물학 기술을 사용하여 RNAi의 효율을 평가한다. 자세한 qRT-PCR 및 웨스턴 블롯팅 절차는 참조1,12를 참조하십시오.</li>
	<li>RNAi 관련 표현형을 관찰하고 분석하려면 살아있는 동물에 적합한 현미경을 사용하십시오. 참고 : RNAi는 바퀴벌레의 형태, 행동, 탈피, 사지 재생 및 기타 생리 활동에 영향을 줄 수 있습니다. 표현형의 특정 빈도는 특정 조건에 따라 계산됩니다.</li>
</ol>

<ol><li>Miller, S. C., Miyata, K., Brown, S. J., Tomoyasu, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissecting+systemic+RNA+interference+in+the+red+flour+beetle+Tribolium+castaneum%3A+Parameters+affecting+the+efficiency+of+RNAi%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Dissecting systemic RNA interference in the red flour beetle Tribolium castaneum: Parameters affecting the efficiency of RNAi.</a> PloS One. 7 (10), 47431(2012).</li>
<li>Fire, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Potent+and+specific+genetic+interference+by+double-stranded+RNA+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans.</a> Nature. 391 (6669), 806-811 (1998).</li>
<li>Ambesajir, A., Kaushik, A., Kaushik, J. J., Petros, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+interference%3A+A+futuristic+tool+and+its+therapeutic+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Saudi+Journal+of+Biological+Sciences%22%5BJournal%5D)">RNA interference: A futuristic tool and its therapeutic applications.</a> Saudi Journal of Biological Sciences. 19 (4), 395-403 (2012).</li>
<li>Younis, A., Siddique, M. I., Kim, C. K., Lim, K. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+interference+%28RNAi%29+induced+gene+silencing%3A+A+promising+approach+of+hi-tech+plant+breeding%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Biological+Sciences%22%5BJournal%5D)">RNA interference (RNAi) induced gene silencing: A promising approach of hi-tech plant breeding.</a> International Journal of Biological Sciences. 10 (10), 1150-1158 (2014).</li>
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<li>French, A. S., Meisner, S., Liu, H., Weckström, M., Torkkeli, P. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcriptome+analysis+and+RNA+interference+of+cockroach+phototransduction+indicate+three+opsins+and+suggest+a+major+role+for+TRPL+channels%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Physiology%22%5BJournal%5D)">Transcriptome analysis and RNA interference of cockroach phototransduction indicate three opsins and suggest a major role for TRPL channels.</a> Frontiers in Physiology. 6, 207(2015).</li>
<li>Hennenfent, A., Liu, H., Torkkeli, P. H., French, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+interference+supports+a+role+for+Nanchung-Inactive+in+mechanotransduction+by+the+cockroach%2C+Periplaneta+americana%2C+tactile+spine%5BTitle%5D)+AND+%22Invertebrate+Neuroscience%3A+IN%22%5BJournal%5D)">RNA interference supports a role for Nanchung-Inactive in mechanotransduction by the cockroach, Periplaneta americana, tactile spine.</a> Invertebrate Neuroscience: IN. 20 (1), 1(2020).</li>
<li>Immonen, E. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((EAG+channels+expressed+in+microvillar+photoreceptors+are+unsuited+to+diurnal+vision%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">EAG channels expressed in microvillar photoreceptors are unsuited to diurnal vision.</a> The Journal of Physiology. 595 (16), 5465-5479 (2017).</li>
<li>Li, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+genomic+and+functional+landscapes+of+developmental+plasticity+in+the+American+cockroach%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">The genomic and functional landscapes of developmental plasticity in the American cockroach.</a> Nature Communications. 9 (1), 1008(2018).</li>
<li>Zhao, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Grainy+head+signaling+regulates+epithelium+development+and+ecdysis+in+Blattella+germanica%5BTitle%5D)+AND+%22Insect+Science%22%5BJournal%5D)">Grainy head signaling regulates epithelium development and ecdysis in Blattella germanica.</a> Insect Science. 28 (2), 485-494 (2021).</li>
<li>Lozano, J., Belles, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conserved+repressive+function+of+Kr%C3%BCppel+homolog+1+on+insect+metamorphosis+in+hemimetabolous+and+holometabolous+species%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Conserved repressive function of Krüppel homolog 1 on insect metamorphosis in hemimetabolous and holometabolous species.</a> Scientific Reports. 1, 163(2011).</li>
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<li>Zheng, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CRISPR+interference-based+specific+and+efficient+gene+inactivation+in+the+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">CRISPR interference-based specific and efficient gene inactivation in the brain.</a> Nature Neuroscience. 21 (3), 447-454 (2018).</li>
<li>Garbutt, J. S., Bellés, X., Richards, E. H., Reynolds, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Persistence+of+double-stranded+RNA+in+insect+hemolymph+as+a+potential+determiner+of+RNA+interference+success%3A+Evidence+from+Manduca+sexta+and+Blattella+germanica%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Insect+Physiology%22%5BJournal%5D)">Persistence of double-stranded RNA in insect hemolymph as a potential determiner of RNA interference success: Evidence from Manduca sexta and Blattella germanica.</a> Journal of Insect Physiology. 59 (2), 171-178 (2013).</li>
<li>Parrish, S., Fleenor, J., Xu, S., Mello, C., Fire, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+anatomy+of+a+dsRNA+trigger%3A+differential+requirement+for+the+two+trigger+strands+in+RNA+interference%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Cell%22%5BJournal%5D)">Functional anatomy of a dsRNA trigger: differential requirement for the two trigger strands in RNA interference.</a> Molecular Cell. 6 (5), 1077-1087 (2000).</li>
<li>Lemonds, T. R., Liu, J., Popadić, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+contribution+of+the+melanin+pathway+to+overall+body+pigmentation+during+ontogenesis+of+Periplaneta+americana%5BTitle%5D)+AND+%22Insect+Science%22%5BJournal%5D)">The contribution of the melanin pathway to overall body pigmentation during ontogenesis of Periplaneta americana.</a> Insect Science. 23 (4), 513-519 (2016).</li>
<li>Jackson, A. L., Linsley, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noise+amidst+the+silence%3A+Off-target+effects+of+siRNAs%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Genetics%3A+TIG%22%5BJournal%5D)">Noise amidst the silence: Off-target effects of siRNAs.</a> Trends in Genetics: TIG. 20 (11), 521-524 (2004).</li>
<li>Patel, M., Peter, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+DISE-inducing+shRNAs+by+monitoring+cellular+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Cycle+%28Georgetown%2C+Tex%29%22%5BJournal%5D)">Identification of DISE-inducing shRNAs by monitoring cellular responses.</a> Cell Cycle (Georgetown, Tex). 17 (4), 506-514 (2018).</li>
<li>Ventós-Alfonso, A., Ylla, G., Montañes, J. C., Belles, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNMT1+promotes+genome+methylation+and+early+embryo+development+in+cockroaches%5BTitle%5D)+AND+%22iScience%22%5BJournal%5D)">DNMT1 promotes genome methylation and early embryo development in cockroaches.</a> iScience. 23 (12), 101778(2020).</li>
<li>Wang, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Variation+in+RNAi+efficacy+among+insect+species+is+attributable+to+dsRNA+degradation+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Insect+Biochemistry+and+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Variation in RNAi efficacy among insect species is attributable to dsRNA degradation in vivo.</a> Insect Biochemistry and Molecular Biology. 77, 1-9 (2016).</li>
<li>Bi, F., Liu, N., Small Fan, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((interfering+RNA%3A+A+new+tool+for+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Gene+Therapy%22%5BJournal%5D)">interfering RNA: A new tool for gene therapy.</a> Current Gene Therapy. 3 (5), 411-417 (2003).</li>
</ol>

저자는 이해 상충이 없다고 선언합니다.

이 보고서는 P. americana의 방법론적 단계별 RNAi 전략을 기술하였다; 참고로, 그것은 또한 다른 바퀴벌레 (예 : Blattella germanica )와 사소한 변화가있는 다른 많은 곤충에도 적용될 수 있습니다. 그러나, RNAi의 유전자 침묵 효율이 항상 충분히 높은 것은 아니며, 유전자 녹아웃 전략(13)과 비교하여 명백한 단점이 있다. 유전자 수준의 다음의 잔류 효과는 실제 표현형을 방해할 수 있다. RNAi 치료가 성공적인지 확인하기 위해서는 동물의 물리적 상태, 대조군의 선택, dsRNA 분자의 길이 및 농도, 오프 타겟 효과 (OTE)의 가능성 회피 및 dsRNA에 대한 조직의 다른 민감도를 포함하여 몇 가지 필수 조건을 고려해야합니다.
 P. 아메리카나의 신체 상태 건강한 동물은 RNAi 및...

진화적으로 보존된 기전인 RNA 간섭(RNAi)은 앤드류 파이어(Andrew Fire)와 크레이그 멜로 2(Craig Mello2)가 이중 가닥 RNA(dsRNA) 매개 유전자 침묵 전략을 개발했기 때문에 점차 많은 유기체1에서 유전자 발현을 억제하는 필수적인 역유전학적 도구가 된다. dsRNA는 21-23 뉴클레오티드의 단편으로 절단되고, 작은 간섭 RNA (siRNAs)는, 세포 내의 다이서 효소에 의해 RNAi 경로를 활성화시킨다. 그런 다음 siRNA가 표적 mRNA에 결합하고 mRNA 절단을 일으키고, 최종적으로 유전자 기능 3,4,5의 손실을 초래하는 RNA-유도 침묵 복합체 (RISC)에 혼입된다. 곤충 종 중에서, 많은 전신 RNAi 실험은 지금까지 Orthoptera, Isoptera, Hemiptera, Coleoptera, Neuroptera, Diptera, Hymenoptera, Lepidoptera 및 Blattodea 5,6,7,8과 같은 많은 곤충 순서에서보고되었습니다.
바퀴벌레 (Blattaria)는 급속한 성장주기, 환경에 대한 강한 적응력 및 높은 발달 가소성으로 발달 및 변형 연구에서 필수적인 곤충 군입니다9. RNAi가 바퀴벌레와 호환된다는 것을 발견하기 전에 이전 연구는 바퀴벌레의 유전자 조작 기술이 부족하기 때문에 바퀴벌레 예방 및 통제에만 중점을 두었습니다. 바퀴벌레 오테카의 독특한 구조는 CRISPR-Cas9 시스템으로 배아 주입 기반 유전자 녹아웃을 수행하는 것을 어렵게 만들었습니다. 게다가, 바퀴벌레의 대부분의 조직 (예 : P. americana)은 강력한 전신 RNAi 반응을 보여 하나 이상의 표적화 dsRNAs 9,10,11을 주입하여 기능 장애 표현형을 신속하게 생성 할 수 있습니다. 이러한 특징은 RNAi를 P. americana의 유전자 기능 연구에서 없어서는 안될 기술로 만들었습니다.
P. americana의 기능적 유전자 연구에서 RNAi의 사용이보고되었지만 상세하거나 단계별 설명은 제공되지 않았습니다. 이 보고서는 다른 바퀴벌레의 유전자 기능 연구에 유용한 P. americana의 RNAi에 대한 단계별 운영 지침을 제공합니다. 또한,이 가이드는 Blattodea에 국한되지 않으며 사소한 수정으로 다른 많은 곤충에 적용 할 수 있습니다.

<table><tbody><tr><td>701 N 10 &마이크로; L Syr (26s/51/2)</td><td>Hamilton</td><td>PN:80300</td><td>주입</td></tr><tr><td>인큐베이터</td><td>닝보 Jiangnan 악기 공장</td><td>RXZ-380A-LED</td><td>바퀴벌레 부화 및 수유용</td></tr><tr><td>마이크로 주입 펌프</td><td>Alcott Biotechnology</td><td>ALC-IP600</td><td>주입</td></tr><tr><td>pTOPO-Blunt 클로닝 키트</td><td>Aidlab Biotechnology</td><td>CV16</td><td>유전자 추적</td></tr><tr><td>정량적 Real-Time PCR 시스템용</td><td>Bio-Rad</td><td>CFX Connect</td><td>qRT-PCR 분석을 위한</td></tr><tr><td>T7 RiboMAX Express RNAi 시스템</td><td>Promega</td><td>P1700</td><td>dsRNA 합성을 위한 것으로, Rnase A 용액 (4 &mu; 지/&무; L), 아세트산나트륨, 3.0M(pH 5.2), 효소 혼합물, T7 Express, Nuclease-Free water, Express T7 2x Buffer, RQ1 RNase-Free DNase</td></tr><tr><td>Thermal Cyclers</td><td>Bio-Rad</td><td>S1000</td><td>DNA 증폭용</td></tr></tbody></table>

미국 바퀴벌레에 있는 rna 간섭의 신청

Applications of RNA Interference in American Cockroach

위생 해충 인 바퀴벌레는 쉬운 먹이와 반대사 적 특성으로 인해 곤충 발달 및 변형 연구에서 필수적인 종입니다. 주석이 잘 달린 게놈 서열과 함께, 이러한 장점은 미국 바퀴벌레 인 Periplaneta americana를 중요한 반대사 곤충 모델로 만들었습니다. 녹아웃 전략의 부족으로 제한되는 효과적인 RNA 간섭 (RNAi) 기반 유전자 녹다운은 P. americana의 기능적 유전자 연구에 없어서는 안될 기술이됩니다. 본 프로토콜은 P. americana에서의 RNAi 조작 기술을 기술한다. 프로토콜은 (1) 적절한 발달 단계에서 P. americana 의 선택, (2) 주사 설정을위한 준비, (3) dsRNA 주사, 및 (4) 유전자 녹다운 효율 검출을 포함한다. RNAi는 P. americana의 강력한 역 유전 도구입니다. P. americana 조직의 대부분은 세포외 dsRNA에 민감하다. 그것의 단순성은 연구자가 하나 또는 여러 개의 표적화 dsRNA 주사 하에서 기능 장애 표현형을 신속하게 얻을 수있게하여 연구자가 발달 및 변형 연구에 P. americana를 더 잘 사용할 수있게 해줍니다.

그림 1은 성공적인 주사를 보여줍니다. 마이크로 직경 바늘이 있는 미세주사 주사기는 부스터 위에 수평으로 놓아야 합니다(그림 1A). 바늘은 표피에 대해 수평으로 두 복부 소마이트 사이의 틈을 통해 삽입됩니다 (그림 1B). 액체가 P. americana 복부에 들어가는지 확인하십시오. 바늘의 너무 가파른 각도는 내부 장기를 손상시키고 (그림 1C), 부적절한 주사는 복부 밖으로 dsRNA 용액이 누출됩니다 (그림 1D). dsRNA가 새어 나오면 동물을 버려야하며 또 다른 주사가 수행됩니다. P. americana는 주사 중에 완전히 마취해야합니다.
다른 생물학적 실...

본 프로토콜은 P. americana에서 RNAi 조작 기술에 대한 단계별 지침을 설명합니다.

미국 바퀴벌레에 있는 RNA 간섭의 신청

Cockroaches, a sanitary pest, are essential species in insect developmental and metamorphic studies due to their easy feeding and hemimetabolous ...

이 프로토콜은 미국 바퀴벌레를 연구하는 간단한 방법을 제공합니다. 일반적인 위생 해충과 전통 중국 의학에 유익한 곤충. 그것은 특정 유전자를 무너 뜨림으로써 미국 바퀴벌레의 여러 생명 활동의 분자 메커니즘을 탐구하는 데 도움이 될 것입니다.이 기술의 가장 큰 장점은 미국 바퀴벌레 또는 유전자 편집에 적합하지 않은 다른 유사한 곤충의 유전자를 무너 뜨릴 수 있다는 것입니다. 이 기술은 유전 및 후성 유전 학적 조절, 조직의 발달 과정, 부속기의 재생, 짝짓기 행동 및 미국 바퀴벌레의 다른 흥미로운 측면과 같은 다양한 분야를 탐구하는 데 사용할 수 있습니다. 이 기술은 작동하기 쉽고 다재다능합니다.DSRA 주사 치료 중에 동물을 건강하게 유지하는 것이 좋습니다. 초보자는 여러 연습 세션 후에이 기술을 쉽게 습득 할 수 있다고 생각합니다. 시작하려면 부화 한 님프를 네 밀리미터 조리개 체로 oothecae에서 분리하십시오.유리 튜브가있는 흰색 갓 맥아 P.americana를 골라냅니다. P.americana를 새 용기에 넣고 올바른 치료 단계를 기다립니다. 반응 시스템에서 10 마이크로리터의 T7 2X 완충액, 2 마이크로리터의 T7 익스프레스 효소 믹스 및 2마이크로그램의 PCR 생성물을 첨가한다.마지막으로, 이중 증류수로 총 부피를 20 마이크로 리터로 구성하십시오. 수동으로 부드럽게 거꾸로 섞어서 섭씨 37도에서 30 분 동안 배양 한 다음 섭씨 70도에서 10 분 동안 배양하십시오. 마이크로리터 RNase A 용액 당 4 마이크로그램을 DEPC 물로 1 내지 200의 비율로 희석한다.그런 다음 마이크로리터 당 1 마이크로리터의 RQ1 RNase 프리 드나제 및 희석된 RNase A 용액 1 마이크로리터를 시스템에 첨가한다. 섭씨 37도에서 30 분 동안 배양하십시오. 그런 다음 아세트산 나트륨의 총 부피의 10 %와 이소프로판올의 총 부피의 세 부피를 첨가하십시오.수동으로 거꾸로 부드럽게 섞은 다음 얼음 위에 5 분 동안 놓고 섭씨 4도에서 10 분 동안 13, 000g에서 원심 분리하십시오. 피펫으로 상층액을 제거하십시오. 다음으로, 잔류물을 75% 에탄올, 25% DEPC 처리수로 세척한 다음, 섭씨 4도에서 5분 동안 13, 000 g에서 원심분리한다.상층액을 다시 제거하고, 펠렛을 실온에서 15분 동안 공기 건조시킨다. 그런 다음 이중 가닥 RNA를 약 100 마이크로리터의 DEPC 물로 용해시키고 마이크로리터 당 2 마이크로그램의 최종 농도로 희석한다. 미세 주입 펌프에 프로그램을 설정하여 각 주입의 부피가 일정한지 확인하십시오.그런 다음 주사기를 DEPC 물로 8 ~ 10 번 채워서 청소하십시오. 마이크로 주입 펌프에 10 마이크로 리터 주사기를 설치하십시오. 그런 다음 펌프를 시작하고 주사기를 10 마이크로 리터의 이중 가닥 RNA 용액으로 채 웁니다.바퀴벌레를 이산화탄소로 마취 한 다음 핀셋으로 부드럽게 집어 들고 바퀴벌레를 손으로 바늘쪽으로 전달하십시오. 다음으로, 표피에 대해 수평으로 두 개의 복부 소마이트 사이의 틈을 통해 바늘을 삽입하십시오. 바퀴벌레에 이중 가닥 RNA 용액을 주입하여 바늘 끝이 표피에 최대한 가까워 내부 장기가 손상되지 않도록하십시오.마지막으로, 바늘 끝을 당깁니다. 주입 된 바퀴벌레를 깨끗한 생물 분석 용기에 넣으십시오. 이산화탄소의 영향으로부터 회복 할 수 있도록 약 10 ~ 20 분 동안 기다리십시오.용기에 주사 날짜, 이중 가닥 RNA의 유형 및 복용량 및 P.americana의 나이를 표시하십시오. Ddc 또는 DOPA 데카르복실라제 및 Dpp 또는 데카펜타플레기 유전자는 이중 가닥 RNA 주사 후 맥아 바퀴벌레의 표현형을 관찰하기 위해 두 가지 예로서 선정하였고, 동물에서 표적이 없는 dsMocK를 음성 대조군으로 취하였다. RNAi 효율을 qRT PCR에 의해 검출하였다.유전자는 dsDdc에 대해 0.01 미만, dsDpp에 대해 0.05 미만의 P 값으로 유의하게 녹다운되었다. 녹다운 Ddc 유전자를 가진 P.americana는 막힌 멜라닌화로 인해 흰 표피를 가졌다. dsDpp 주사를 사용한 실험에서, RNAi는 사지 재생을 방해했다.곤충은 건강해야하며 해를 끼치 지 않고 주사해야합니다. 이 기술은 미국 바퀴벌레와 같이 유전자 편집 할 수없는 곤충의 유전자 기능을 탐구하는 간단한 방법을 제공합니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Developmental Biology

발생생물학

RNA 간섭은 유전자의 기능을 분석하는 매우 효과적인...

dsRNA 주입하여 RNAi 간섭에 Drosophila 태아

여기서 우리는 유충 섭취 RNA 나노 입자 / 키토산의 사용을 통해 질병 벡터 모기 유전자 기능을 억제 간섭하는 절차를 설명한다.

질병 벡터 모기 유충의 키토산 / 간섭 RNA 나노 입자 중재 유전자 음소거

RNA interference (RNAi)는 유전자 기능을 밝히는 데 매우 유용한 도구입니다. 그러나 성체 이전 단계에서 RNAi를 사용하여 유전자를 표적으로 하는 능력은 주요 인간 말라리아 매개체인 Anopheles gambiae에서 제한됩니다. 번데기 발달 중 직접 주입을 통해 유전자 기능을 감소시키는 RNAi 프로토콜에 대해 설명합니다.

에 RNAi의 트리거 배달<em&gt; 아노 펠 레스 gambiae</em&gt; 번데기

여기, 우리는 실험실에서 중간 - 세균 딱정벌레, Dermestes maculatus (D. maculatus)를 양육하기위한 프로토콜을 제시한다. 우리는 또한이 종에서 유전자 기능을 연구하기 위해 배아 표현형을 분석 배아 및 부모의 RNAi를위한 프로토콜과 방법을 공유 할 수 있습니다.

양육 및 숨기기 비틀에 RNA 매개 유전자 최저를 두 번 좌초, Dermestes maculatus

이 원고는의 리에 이중 가닥 RNA의 구강 섭취를 통해 독일 바퀴벌레는 midgut에 유전자 발현의 고갈 보여 줍니다.

RNA 방해의 실용적인 사용: Liposome 캐리어 바퀴벌레에 대 한 이중 가닥 RNA의 구두 납품

이 문서에는 RNA 간섭 (RNAi) 곤충 먹이 체 관 부 수액에 대 한 식물의 혈관 조직을 통해 이중 가닥 RNA (dsRNA)의 구두 납품을 위해 개발 된 새로운 기술을 보여 줍니다.

체 관 부 식물 수액 공급 Hemipteran 곤충에 RNA 간섭을 유도 하 이중 가닥 RNA 구두 전달 방법

이 프로토콜 우리가 표준화 하 고 몇 년 동안 모기와 집 파리의 hemolymph를 직접 핵 산의 특정 수량을 제공 하는 데 사용 하는 microinjection 방법을 설명 합니다. 이 프로토콜 최소 주입 죽음 귀착되 고 통치의 복용량 상관 측정을 허용 한다.

재현할 수 dsRNA Microinjection 및 산란 검정 집 파리 모기에

RNA 간섭은 특정 발달 단계에서 유전자 발현을 조작하기 위한 널리 적용가능하고 강력한 기술입니다. 여기서, 우리는 수중 다이빙 딱정벌레 Thermonectus marmoratus에서이 기술을 구현하기 위한 필요한 단계를 기술합니다, 구조 또는 행동에 영향을 미치는 유전자의 녹다운에 유전자 의 취득에서.

특정 발달 시점에서 유전자 발현을 조작하기 위한 강력한 도구로 수생 딱정벌레의 RNA 간섭

세균에 의해 생산된 dsRNA의 경구 투여는, 예쁜꼬 마선충에서 일상적으로 사용되는 RNA 간섭(RNAi)에 대한 전달 방법으로서, 성인 모기에 성공적으로 적용되었다. 우리의 방법은 주사를 사용하지 않고도 강력한 역 유전학 연구 및 전송 차단 벡터 연구를 가능하게합니다.

성인 Anopheles 감비아 모기에 효과적인 경구 RNA 간섭 (RNAi) 투여

여기에서는 유전자 기능 연구를 용이하게하기 위해 Bursaphelenchus xylophilus 에서 RNA 간섭에 대한 상세한 담그는 방법을 소개합니다.

파인우드 선충류에서의 RNA 간섭의 적용, Bursaphelenchus xylophilus

RNA 간섭(RNAi)의 조작은 Trichogramma 말벌과 같이 크기가 작은 많은 기생충 종에서 만만치 않은 도전을 제시합니다. 이 연구는 Trichogramma denrolimi에서 효율적인 RNAi 방법을 설명했습니다. 본 방법론은 Trichogramma 말벌의 유전자 조절을 조사하기 위한 강력한 모델을 제공합니다.

계란 기생충의 RNA 간섭, Trichogramma dendrolimi Matsumura

배우세요 미국 바퀴벌레에서 RNA 간섭을 이용한 유전자 기능 연구 방법을. 유전자 녹다운을 통해 발달, 재생, 짝짓기 행동의 분자 메커니즘을 탐구할 수 있습니다. 이 기술은 유전자 편집이 어려운 곤충 연구에 효과적인 도구입니다.

미국 바퀴벌레에 있는 RNA 간섭의 신청

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