Name: 희귀 나비 개체군의 비파괴 유전자 샘플링을 수행하기 위해 지역 사회 과학자 배치 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-10-28T12:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 17 s
Description: 학습하세요 희귀 나비 개체군의 비파괴 유전자 샘플링 방법을. 부화한 알의 난각을 수집하여 DNA를 추출하고, 지역 사회 과학자들이 참여하는 생물다양성 보전 연구에 활용할 수 있습니다.

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저자는 데이비드 커스렐, 아만다 딜런, 스티브 풀러, 닐 기포드, 하이디 홀먼, 딘 주, 샐리 주, 다니엘 케네디, 제네비브 코작, 레베카 롱제네커, 모린 맥클렁, 맷 모란, 로빈 니버, 브렌다 스미스, 헌터 트로브리지, 제섭 와이첼트에게 물류, 조정, 허가 및/또는 샘플 수집을 포함한 프로젝트의 다양한 측면에 도움을 준 것에 대해 감사드립니다. 이 연구는 야생 동물 관리 연구소(보조금 SA 20-00356)에서 관리하는 미국 어류 및 야생 동물 관리국(연방 수상 식별 번호 F2021AC00356)의 보조금을 통해 자금을 지원받았습니다.

1. 지역 과학자에 대한 물품 보급
<ol><li>전체 자료표를 참조하여 필요한 수집 관련 소모품의 전체 목록을 주의 깊게 검토하고 수집하십시오.</li>
	<li>샘플 수집이 여러 위치 및/또는 여러 개인/팀에 의해 수행되는 경우 필요한 모든 보급품을 별도의 배치 가능한 장치로 수집하고 구성합니다(그림 1 및 그림 2).</li>
	<li>보급품 (배치 가능한 유닛)을 지역 사회 과학자 또는 현장 수집을 담당하는 기타 직원에게 운송합니다.</li>
	<li>직원이 현지인이 아닌 경우 소모품(각 배치 가능한 장치)을 완전한 배송 라벨과 배송이 있는 별도의 판지 배송 상자에 조심스럽게 포장하십시오. 참고: 이 단계에서는 빠른 배송이 필요하지 않습니다.</li>
</ol>2. 지역 과학자 수집 준비
<ol><li>수거 태클 박스를 포함한 수거 용품을 수령하면 적층 공급 목록을주의 깊게 검토하고 전체 재고를 수행하십시오. 누락된 소모품이 있는 경우 프로젝트 리더에게 알립니다.</li>
	<li>1.5mL 마이크로 원심분리 튜브에 180μL의 용해 버퍼를 미리 채우고 사전 인쇄된 고유 ID 레이블이 있는 라벨을 각 미세 원심분리 튜브에 적용하고 모든 튜브를 64웰 미세 원심분리 튜브 보관 상자에 넣습니다. 적재 후 뚜껑을 단단히 고정하십시오. 알림: 라벨 프린터를 사용할 수 없는 경우 에탄올 방지 마커를 사용하여 각 바이알의 측면과 덮개에 고유 ID 번호를 적용하십시오.</li>
	<li>모든 디지털 장비(예: 스마트폰 또는 카메라)가 완전히 충전되어 있고 여분의 배터리가 포장되어 있는지 확인합니다.</li>
	<li>수집 된 샘플의 현장 저장 및 지역 운송을 위해 작은 냉각기에 얼음을 부분적으로 채 웁니다.</li>
	<li>모든 수집 용품을 안전한 운송 및 통합 보관을 위해 수집 도구 상자 또는 이와 유사한 견고한 비바람에 견디는 컨테이너에 포장하십시오.</li>
	<li>현장으로 향하기 전에 비파괴 유전자 샘플 수집 프로토콜을 자세히 검토하십시오. 참고: 현장에서 추가 지침을 위해 적층 및 응축된 그림 프로토콜을 사용하십시오(보충 그림 S1 및 보충 그림 S2).</li>
</ol>3. 현장에서의 샘플 수집
<ol><li>현장 현장에 도착하면 연필이나 전천후 펜을 사용하여 시간, 날짜, 전체 재산 이름(예: Apalachicola 국유림), 특정 현장 현장 위치 이름 또는 설명, 가능한 경우 GPS 판독값, 참석한 모든 사람의 전체 이름과 역할을 비바람에 견디는 현장 노트에 기록합니다.</li>
	<li>대상 나비에 특정한 유충 숙주 식물 종이있는 적절한 서식지를 찾으십시오. 알림: 민감한 서식지, 식물 개체군 및 야생 동물에 대한 영향을 피하거나 최소화하려면주의하십시오. 또한 사이트 및 샘플 수집 이벤트에 액세스하기 전에 모든 적절한 토지 소유자 허가 및/또는 허가를 확보해야 합니다.</li>
	<li>스마트 폰이나 카메라를 사용하여 모든 현장 현장, 샘플 수집 위치, 숙주 식물 및 프로젝트와 관련이있을 수있는 기타 정보의 자세한 사진을 찍습니다. GPS 좌표를 기록하는 스마트 폰이나 기타 카메라를 사용하십시오. 알림: 사진 위치 정보 태그 지정은 모든 스마트폰에서 활성화해야 합니다.</li>
	<li>부화 된 알을 위해 산란 (알을 낳는)하여 선택된 것으로 알려진 잎, 꽃 봉오리, 꽃 또는 발달 과일과 같은 모든 유충 숙주 식물 부분을 종합적으로 검색합니다. 대부분의 Lycaenidae의 경우 중앙에 신생아 유충이 나온 도넛과 유사한 뚜렷한 구멍이있는 흰색 부화 알을 찾으십시오 (그림 3). 색이 다소 어둡고 종종 녹색 또는 푸르스름하고 중간에 구멍없이 완전히 손상되지 않은 부화되지 않은 알을 찾으십시오 (그림 4). 손 렌즈 또는 기타 확대 장치를 사용하여 각 계란을 면밀히 검사하십시오.</li>
	<li>부화 한 알을 찾으면 양손에 니트릴 장갑을 끼십시오.</li>
	<li>깨끗하고 멸균 된 뾰족한 집게를 사용하여 부화 한 알을 숙주 식물에서 잡고 부드럽게 꺼내 64 웰 보관 상자에서 가져온 용해 완충액으로 미리 채워진 라벨이 붙은 미세 원심 분리기 튜브에 직접 넣습니다. 알림: 일부 숙주 식물 캐리 오버 재료 (직경 15mm 미만)는 수거 중에 허용되며 정상입니다.</li>
	<li>숙주 식물 패치 / 사이트 당 최소 총 5 개의 샘플 (각각 1-20 개의 부화 된 알 포함)을 수집하여 가능한 경우 한 위치에서 총 >50 개의 알을 목표로합니다. 알림: 이렇게 하면 모든 샘플 식물/패치에서 최소한 일부 조직이 수집되고 DNA 검출 가능성이 높아집니다(개인 관찰).</li>
	<li>각 계란 수집 후 집게 끝을 95 % 에탄올 약병에 담그거나 짜낸 병에서 95 % 에탄올을 사용하거나 알코올 물티슈를 사용하여 조심스럽게 청소하십시오. 알림: 이렇게 하면 샘플링 이벤트 사이의 조직 이월을 최소화하는 데 도움이 됩니다.</li>
	<li>가능한 경우 동일한 숙주 패치의 여러 식물에서 부화 한 여러 알 (1-20 알)을 단일 미세 원심 분리기 튜브에 모으고 뚜껑을 단단히 닫습니다. 더 큰 초본 또는 목본 숙주 종을 사용하는 나비 종의 경우 숙주 패치가 제한된 경우 동일한 식물의 다른 위치에서 여러 알을 수집합니다. 알림: 식물은 잎이 서로 닿으면 동일한 숙주 패치에 있습니다. 식물이나 패치 사이에 눈에 띄는 물리적 분리가있는 경우 다른 샘플로 간주해야합니다. 유충 exuviae 또는 단일 다리와 같은 다른 조직 유형을 수집하는 경우 단일 다리, 다리 조각 또는 유충 삼출물 만 미세 원심 분리 튜브에 넣습니다 (개인당 샘플 1 개).</li>
	<li>수집된 모든 물질이 각 1.5mL 미세 원심분리 튜브 내의 용해 완충액에 완전히 잠겨 있는지 확인하십시오. 필요한 경우 해당 튜브의 바닥을 단단한 표면에 두드려 샘플을 다시 잠수하십시오.</li>
	<li>깨끗한 일회용 실험실 물티슈로 집게를 닦아 말리십시오. 알림: 샘플 간의 교차 오염을 방지하기 위해 신중한 겸자 세척이 필수적입니다.</li>
	<li>새 샘플을 수집 할 때 사용한 니트릴 장갑을 버리고 깨끗한 쌍으로 교체하십시오.</li>
	<li>내후성 필드 노트북에서 연필 또는 전천후 펜을 사용하여 마이크로 원심 분리기 튜브에서 할당 된 고유 ID 라벨과 샘플 유형 (예 : 계란, 유충 exuviae 또는 다리), 부화 된 계란의 대략적인 수 및 수집가 이름, 날짜, 위치, 숙주 식물 종 및 추가 메모와 같은 수집 정보를 기록합니다 (그림 2).</li>
	<li>계란 파편 샘플이 있는 닫힌 미세 원심분리기 튜브를 64웰 미세 원심분리기 보관 상자에 다시 넣습니다.</li>
	<li>현장에서 64웰 마이크로 원심분리기 보관 상자를 얼음이 있는 냉각기에 보관하십시오.</li>
	<li>현장에 있는 동안 다른 모든 수집 용품을 수집 태클박스에 보관하여 현장 간에 안전하고 통합된 보관 및 운송을 하십시오.</li>
</ol>4. 필드 수집이 완료된 경우
<ol><li>샘플이 들어 있는 모든 미세 원심분리기 튜브가 운송용 얼음이 있는 냉각기의 64웰 미세 원심분리기 보관 상자에 있는지 확인합니다.</li>
	<li>모든 현장 수집 용품을 수집 태클 박스에 다시 넣으십시오.</li>
	<li>모든 샘플을 사무실이나 실험실로 다시 운반하고 각 미세 원심 분리 튜브를 조심스럽게 다시 확인하여 모든 샘플 재료가 용해 버퍼에 완전히 잠겨 있는지 확인하십시오.</li>
	<li>샘플이 담긴 64웰 마이크로 원심분리기 보관 상자를 배송 또는 가공할 때까지 냉동실에 두십시오. 알림: -18 ° C의 평균 상업용 냉동고는 단기 보관에 허용됩니다.</li>
	<li>수집 도구 상자의 모든 소모품을 주의 깊게 평가하고 필요에 따라 교체하십시오. 참고: 여러 필드 컬렉션 이벤트가 예약된 경우 특히 중요합니다.</li>
	<li>수집 태클 박스는 다음 현장 수집 이벤트가 있을 때까지 안전한 위치에 보관하십시오.</li>
	<li>모든 디지털 이미지를 다운로드하고 서버 또는 클라우드 기반 스토리지 시스템에 안전하게 백업하십시오.</li>
	<li>모든 정보를 프로젝트 스프레드시트 또는 데이터베이스에 입력할 수 있을 때까지 수집 데이터가 포함된 원본 내후성, 현장 수첩 페이지 또는 현장 데이터 시트를 스캔하거나 사진을 찍습니다.</li>
</ol>5. 샘플 및 데이터 제출
<ol><li>냉동실에서 샘플이 담긴 모든 64웰 미세 원심분리기 보관 상자를 제거합니다.</li>
	<li>샘플과 현장 노트북 또는 현장 데이터 시트가 포함된 64웰 마이크로 원심분리기 보관 상자를 표준 배송 상자에 조심스럽게 포장하고, 제공된 배송 라벨에 원래 발송인의 계정 번호를 부착하고, 특급 운송업체가 보장하는 익일 배송을 통해 프로젝트 디렉터에게 보냅니다.</li>
	<li>패키지 추적 번호와 스캔한 노트북 페이지 또는 현장 데이터 시트 사본을 프로젝트 디렉터에게 이메일로 보냅니다.</li>
</ol>6. DNA 추출
<ol><li>64웰 마이크로 원심분리기 보관 상자를 받으면 DNA 추출 준비가 될 때까지 샘플의 DNA 보존을 위해 -20°C에 보관합니다.</li>
	<li>실험실에서는 -20°C에서 해동한 후 용해 완충액에 보관된 곤충 조직을 분쇄하여 DNA를 추출한다. 20μL의 프로테이나제 K를 추가하고 샘플을 가열된 인큐베이터에서 56°C에서 밤새 24시간 이상 담가 두십시오.</li>
	<li>특정 제조업체의 권장 사항에 따라 적절한 세척 및 세척 버퍼를 추가하십시오13.</li>
	<li>완충액에 현탁된 샘플을 2mL 수집 바이알에 부착된 스핀 컬럼으로 옮깁니다.</li>
	<li>원심분리기를 사용하여 6,021× g 에서 60초 동안 회전시킵니다. 적절한 세척 버퍼를 추가하고 적절하게 스핀다운합니다.</li>
	<li>분리 완충액(30μL)을 사용하여 결합된 DNA를 방출하고 샘플을 새로운 1.5mL 미세 원심분리 튜브로 스핀다운합니다. -20 °C에서 보관하십시오. 참고: DNA 농도가 0.010ng/mL를 초과하는 경우 시퀀싱을 진행하십시오. 조직 유형별 DNA 농도는 그림 5 를 참조하십시오.</li>
</ol>7. DNA 서열의 데이터 분석
<ol><li>결과 시퀀스에서 품질이 낮은 기본 호출을 자르거나 편집합니다.</li>
	<li>종 식별을 확인하기 위해 공개 데이터베이스에 대한 쿼리 시퀀스.</li>
	<li>개인 간의 차이점을 비교하기 위해 시퀀스를 서로 정렬합니다.</li>
</ol>

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</ol>

저자는 공개 할 이해 상충이 없습니다.

이 프로토콜은 개체군 유전 구조 또는 DNA 바코드 분석을 위해 희귀 나비를 비파괴적으로 샘플링하는 현장 방법을 설명합니다. 이 프로토콜의 전반적인 이점은 지역 사회 과학자, 보존 실무자 및 학생과 같은 다양한 경험과 기술 수준의 개인이 광범위한 구현을 극대화하는 데 도움이 되도록 특별히 설계되었습니다. 여기에는 상대적으로 낮은 전체 비용, 구입하기 쉬운 소모품 및 장비, 지나치게 복잡한 단계가 없는 간단하고 접근하기 쉬운 방법, 광범위한 지리적 영역에 대한 쉬운 배포가 포함됩니다. 또한 일시적으로 포획하거나 조작할 필요가 없는 잔류 유기 물질을 표적으로 삼고 그 과정에서 유전자 샘플을 획득하기 위해 살아있는 유기체에 잠재적으로 해를 끼칠 수 있습니다. 또한 샘플 수집에 사용할 수 있는 잠재적 기간을 기존의 계통학 또는 특정 수명 단계의 수명을 넘어 연장하여 유연성과 전반적인 수집 기회를 향상시켜 샘플 수를 최대화하는 데 도움이 됩니다. 
이 노력의 초점 분류군은 널리 퍼져 있지만 감소하는 서식지 전문가 인 서리로 덥은 꼬마 요정 나비 였지만,이 프로토콜은 보존 우려를 포함한 다른 많은 곤충에보다 광범위하게 적용될 수 있습니다. 유사하게, 프로토콜은 유전 물질의 원천으로서 부화 된 알의 수집을 목표로하지만, 잠재적으로 더 전통적인 다른 샘플 (예 : 다리, 날개 조각, 안테나 클립) 또는 전체 유기체에 쉽게 적용 할 수 있습니다. 그러나 이러한 측면은 프로토콜의 잠재적인 제한이기도 합니다. 대부분의 단계는 비교적 간단하고 빠르게 달성하도록 설계되었지만 일반적으로 직경이 <1.0mm인 부화 알을 찾기 위해 유충 숙주 식물 패치를 포괄적으로 검색하는 것은 시간과 노동 집약적입니다. 그럼에도 불구하고 이러한 광범위한 샘플링 활동은 지역 사회 과학자와 같은 대규모 참가자 네트워크에 특히 이상적입니다. 
다른 현장 기반 프로젝트와 마찬가지로 신중한 준비가 필수적입니다. 여기에는 품목이 누락되지 않았는지, 필요한 준비 작업이 완료되었는지, 잘 조직되고 안전하게 포장되어 현장 배치를 위해 준비되었는지 확인하는 데 필요한 소모품의 전체 인벤토리를 수행하는 것이 포함됩니다. 또한 모든 현장 직원, 특히 조직 수집을 수행하는 직원은 수집 이벤트 전에 수집 프로토콜을 자세히 검토하고 프로젝트를 감독하는 개인에게 질문을 해결해야 합니다. 일단 현장에 들어가면 프로토콜의 샘플 수집 부분은 세부 사항에 세심한주의가 필요합니다. 여기에는 오바가 부화되어 수집에 적합한지 확인하기 위해 모든 난자를 찾고 주의 깊게 검사하고, 집게를 철저히 청소하고, 샘플링 이벤트 사이의 조직 캐리오버를 줄이는 데 도움이 되도록 장갑을 교체하고, 조직 샘플이 각 1.5mL 미세 원심분리 튜브 내의 용해 완충액에 완전히 잠기도록 하는 것이 포함됩니다. 마지막으로, 정확하고 상세한 데이터를 기록하는 것이 필수적이며, 여기에는 마이크로 원심분리 튜브에서 할당된 고유 ID 라벨과 채취한 특정 샘플 및 기타 모든 관련 수집 정보를 연결하는 것이 포함됩니다. 이 단계는 과학 연구에서 일상적이지만 커뮤니티 과학 청중을 위해 철저히 명확하고 강화해야 하는 경우가 많습니다.
여기에서 우리는 작고 희귀하며 멸종 위기에 처한 종에서 치명적이지 않은 샘플 수집을 위해 지역 사회 과학자들의 잠재적 활용을 보여줍니다. 그러나 결과 유전자 데이터를 분석할 때 명심해야 할 몇 가지 잠재적인 제한 사항이 있습니다. 예를 들어, 단일 패치에서 샘플을 풀링하면 검출을 위해 충분한 DNA를 회수할 가능성이 높아지지만 잠재적으로 이형접합성도 도입될 수 있습니다. 또한 프로토콜은 부화 된 난자에서 chorion을 수집하는 것을 포함하기 때문에 부모 DNA를 나타내는 암컷 나비 만 개체군 내에서 샘플링 할 수 있습니다. 그럼에도 불구하고 C. irus에 대한 이전 인구 수준의 유전 데이터가 없었기 때문에 얻은 통찰력은 종 보존 및 관리에만 도움이 될 수 있습니다. 예를 들어, 인구 구조를 적절하게 평가하려면 철저하고 상세한 연구 설계와 신중한 마커 선택이 필요하지만 여기에 설명된 샘플링 프로토콜과 시토크롬 c 산화효소 서브유닛 1(CO1) DNA 바코드의 사용을 사용하여 희귀하거나 멸종 위기에 처한 분류군의 발생을 감지할 수 있습니다. 여기에 설명된 비치명적 샘플링에서 DNA 시퀀싱의 유용성 및 적용에 대한 추가 논의는 Storer et에 의해 자세히 설명되어 있습니다. 앨리.14.
유전자 분석을 위한 샘플 수집의 주요 목표 외에도 프로토콜은 참가자가 모든 현장 사이트, 수집 위치, 존재하는 유충 숙주 식물 및 관련성이 있을 수 있는 주변 서식지의 기타 요소에 대한 상세한 디지털 사진을 찍는 것을 강조합니다. 이러한 문서는 식물 계통학, 숙주 자원 밀도 및 관리 이력(예: 최근에 규정된 화재)과 같은 기존 현장 조건을 설명하는 데 유용한 일반적인 서식지 평가를 제공하는 데 도움이 됩니다. 이러한 정보는 보다 자세한 환경 비교를 가능하게 하기 위해 더 넓은 시간 기간에 걸쳐 현장 샘플을 채취하는 프로젝트에 특히 유용합니다. 
마지막으로, 전 세계 곤충 감소가 계속 가속화됨에 따라 확대 된 종 평가 및 모니터링 노력이 매우 필요합니다15,16. 지역 사회 과학자, 학생 (예 : 미국 어류 및 야생 동물 서비스 인턴 및 동료) 및 보존 실무자의보다 광범위한 참여 참여를 사용하면 DNA 샘플을 포함한 다양한 유형의 광범위한 데이터 수집을위한 점점 더 실행 가능한 옵션이 제공됩니다. 따라서이 프로토콜에서 생성 된 데이터는 많은 용도로 사용할 수 있습니다. 여기에는 보존 조치 (예 : 계획, 복구 및 관리), 결정 또는 종 상태 평가 나열, 생태, 인구 및 분류 학적 연구에 대한 정보 제공이 포함됩니다.

희귀, 감소 및/또는 등재된 곤충 분류군의 효과적인 개체군 유전자 샘플링은 종종 보존 및 관리 조치를 알리는 데 중요합니다. 치명적이거나 유해한 조직 샘플링 방법은 많은 유전자 분석에 일상적으로 사용됩니다. 그러나 이러한 방법은 취약한 현존하는 개체군에 해를 끼치거나 행동 및 체력에 부정적인 영향을 미칠 수 있기 때문에 바람직하지 않거나 허용되지 않습니다. 전체 다리, 안테나 또는 날개 깎기, 유충 삼출물 또는 방어 분비물 및 frass와 같은 기타 제품의 혈액 림프와 같은 조직을 포함하는 다양한 비살상 또는 비침습적 샘플링 기술이 곤충 유전 연구에 적합했습니다.1,2,3,4,5,6,7,8,9 . 이러한 다양한 조직 샘플링 기술의 전반적인 타당성 및 적용 가능성은 생물학, 생태학, 행동, 크기 및 초점 유기체의 희귀도, 상황 및 물질을 수집하는 개인에 따라 크게 다릅니다. 예를 들어, 전체 다리 또는 부속기 예지물은 일반적으로 숙련 된 직원이 적절한 생활 단계의 여러 개인을 일시적으로 포착하고 조심스럽게 다루어야합니다. 유사하게, 애벌레 exuviae 또는 frass와 같은 조직 소스는 유기체가 포로 상태에 있거나 적절한 기간 동안 일시적으로 보유되어있는 경우에만 실용적 일 수 있습니다.
잠재적 인 분류 학적 분화 또는 유전 적 구조에 관한 질문과 같이 인구 수준에서 묻는 연구 질문의 경우 더 넓은 시간적 또는 지리적 규모 (즉, 지역 또는 대륙)에서 샘플링이 필요한 경우가 많습니다. 결과적으로, 특정 비침습적 조직 공급원은 완전히 비실용적이거나 최소한 대량으로 수집하는 것이 비효율적일 수 있습니다. 이러한 규모의 샘플 수집은 개별 연구자 또는 소규모 현장 팀이 수행하는 것이 물류 또는 재정적으로 비실용적이거나 금지 될 수 있습니다. 이러한 많은 문제를 해결하고 빅 데이터 기반 수집을 가속화하기 위해 연구 커뮤니티에서 커뮤니티 과학자의 직접적인 참여를 점점 더 많이 채택하고 있지만 비파괴적, 비침습적 또는 eDNA 샘플링10,11,12와 관련된 연구의 채택은 제한적이었습니다.
이러한 잠재적 한계 중 일부를 극복하기 위해 우리는 부화 한 나비 난자의 융모막이 종의 정체성을 확인하고 유전 적 변이를 정량화하기 위해 성공적인 유전자 시퀀싱을 위해 충분히 많은 양과 품질의 DNA를 산출 할 수 있음을 입증했습니다. 우리는 이어서 이 기술을 사용하여 다양한 수집 프로토콜을 테스트했습니다 13. 이 파일럿 작업은 추가 방법 론적 개선을위한 기초가되었습니다. 이 백서는 커뮤니티 과학자 및 기타 비전문가 인력을 위해 출시된 간단하면서도 포괄적인 수정된 현장 수집 프로토콜에 대해 자세히 설명합니다. 이 프로토콜은 서리로 덥은 꼬마 요정 나비 (Callophrys irus)의 광범위한 인구 구조 분석의 일부로, 향후 보존 조치와 미국 멸종 위기 종법에 따른 등재 가능성에 대한 연방 결정을 알리는 데 도움이됩니다. 일부 비 침습적 방법보다 잠재적으로 노동 집약적이지만 필요한 유기체 접촉이 부족하고 사용 편의성이 없기 때문에 일반적으로 일반적인 곤충과 보존 우려가있는 곤충을 대상으로하는 다른 집단 유전 연구 프로그램에 적용 할 수있는 잠재적으로 실행 가능한 모델입니다 최근에 부화 한 님프 또는 유충에서 잔여 알 파편을 남깁니다. 여기에 제시된 프로토콜 언어는 Lycaenidae 가족의 나비를 위해 특별히 개발되었으며 여기에 정의 된 비전문가가 지역 사회 과학자 또는 곤충 학적 경험이 제한된 다른 개인 (예 : 기관 생물 학자, 인턴)이 사용하기 위해 개발되었습니다.

<table><tbody><tr><td>14 쿼트 Igloo Playmate Cooler</td><td>Amazon</td><td>NA</td><td>휴대용 쿨러 배포 가능한 장치당 양: 1</td></tr><tr><td>쿨러 250 DNeasy Mini Spin Columns, Proteinase K, Buffers, Collection Tubes (2 mL)</td><td>Qiagen</td><td>69506</td><td>Qiagen DNeasy Blood & 조직 키트 배포 가능한 단위당 양: NA</td></tr><tr><td>Andwin Scientific Supplier Diversity Partner LAB MARKERS BLACK</td><td>FisherSci</td><td>NC9280166</td><td>에탄올 증명 실험실 마커 배포 가능한 단위당 양: 2</td></tr><tr><td>마커 판지 배송 상자</td><td></td><td></td><td>배송 상자 배포 가능한 단위당 양: 필요에 따라</td></tr><tr><td>Eisco 폴리에틸렌 세척 병, LDPE</td><td>FisherSci</td><td>S14091</td><td>실험실 등급 스프레이 또는 분출 병(에탄올 또는 알코올용) 배포 가능한 장치당 양: 1</td></tr>병 <tr><td>FedEx U.S. 익스프레스 항공운송장</td><td>FedEx</td><td>NA</td><td>배송 반품 라벨 배포 가능한 장치당 금액: 라벨 2</td></tr>개 <tr><td>Fisherbrand 프리미엄 마이크로 원심분리기 튜브: 1.5mL</td><td>FisherSci</td><td>NC9386261</td><td>멸균 1.5mL 마이크로 원심분리기 튜브 배포 가능한 장치당 양: 128 튜브</td></tr><tr><td>집게, #4a, 매우 미세하면서도 매우 강한 팁(33mm), 4-3/8"(111mm) 길이</td><td>Bioquip</td><td>4523</td><td>직선 팁 집게 전개 가능한 단위당 양: 2개의 직선 집</td></tr><tr><td>게, #7, 곡선 팁(13mm), 매우 미세한 점, 4-1/2"(114mm) 길이</td><td>Bioquip</td><td>4527</td><td>구부러진 팁 집게 전개 단위당 양: 2개의 곡선형 펜치</td></tr><tr><td>Kimberly-Clark Professional&nbsp; Kimtech Science Kimwipes 섬세한 작업 와이퍼, 1-Ply</td><td>FisherSci</td><td>06-666A</td><td>kimwipes(또는 기타 멸균 와이퍼) 배포 가능한 장치당 양: 1</td></tr>상자 <tr><td>적층 그림 현장 수집 프로토콜</td><td>NA</td><td></td><td>NA 약식 프로토콜 배포 가능한 장치당 양: 1 프로토콜</td></tr><tr><td>적층 재료 목록</td><td>NA</td><td></td><td>NA 공급 목록 배포 가능한 장치당 양: 1 목록</td></tr><tr><td>Lily Sugar 'N Cream The Original Solid Yarn, 2.5 oz, Medium 4 Gauge, 100% Cotton - Hot Pink - Machine Wash & 드라이</td><td>아마존</td><td>NA</td><td>핑크 원사(가시성을 위해 집게에 고정하기 위해) 배포 가능한 단위당 금액: Bausch & 의 2야드</td></tr><tr><td>루페; Lomb, 10x Coddington 돋보기</td><td>Amazon</td><td>NA</td><td>핸드 렌즈 배포 가능한 단위당 수량: 2개의 핸드 렌즈</td></tr><tr><td>MyGift 투명 플라스틱 2단 트레이 공예 용품 보관 상자/응급 처치 휴대용 케이스 w/탑 핸들 & 래치 잠금</td><td>Amazon</td><td>NA</td><td>공급 보관 상자 배포 가능한 단위당 양: 1 상자</td></tr><tr><td>니트릴, 일회용 장갑, L, 파우더 프리, 2.8 mil 손바닥 두께</td><td>Grainger</td><td>60NU14</td><td>니트릴 실험실 장갑 (대) 배포 가능한 단위당 양: 1 상자</td></tr><tr><td>니트릴, 일회용 장갑, M, 파우더 프리, 2.8 mil 손바닥 두께</td><td>Grainger</td><td>60NU13</td><td>니트릴 실험실 장갑 (중형) 배치 가능한 장치당 수량: 1 상자</td></tr><tr><td>Qiagen, Inc.&nbsp; 버퍼 ATL (200 ML)</td> <td>Qiagen</td><td>19076</td><td>Qiagen ATL 용해 버퍼 배포 가능한 단위당 양: 180 &마이크로; l/튜브; 128개의 튜브</td></tr><tr><td>Rite In The Rain 방수 사이드 스파이럴 노트북, 노란색 커버, 유니버설 페이지 패턴 (No. 373-MX), 11 x 8.75 x 0.5</td><td>Amazon</td><td>NA</td><td>방수 필드 노트북 배포 가능한 단위당 수량: 1 노트북</td></tr><tr><td>Showgard Professional Stamp Tongs 6" 904 라운드 팁 핀셋</td><td>Amazon</td><td>NA</td><td>6" 스페이드 팁 집게 배포 가능한 단위당 수량: 2개의 긴 스페이드 집게</td></tr><tr><td>Texwipe PolySat 사전 습식 와이퍼</td><td>FisherSci</td><td>18-366-231</td><td>알코올 와이퍼 배포 가능한 단위당 양: 100개의 물티슈</td></tr><tr><td>Thermo Scientific CryoBoxes</td><td>FisherSci</td><td>12-565-227</td><td>64개의 웰 마이크로 원심분리기 튜브 수집/보관 상자 배포 가능한 단위당 양: 2 상자</td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>포장재 배치 가능한 장치당 양: 필요에 따라</td></tr></tbody></table>

희귀 나비 개체군의 비파괴 유전자 샘플링을 수행하기 위해 지역 사회 과학자 배치

Deploying Community Scientists to Conduct Nondestructive Genetic Sampling of Rare Butterfly Populations

전 세계 곤충 감소는 계속 가속화되고 있습니다. 효과적인 유전자 샘플링은 많은 분류군에 대한 이해를 높이고 기존 지식 격차를 해결하는 데 매우 필요합니다. 이 프로토콜은 집단 유전 구조 또는 DNA 바코드 분석을 위해 희귀 나비를 비파괴적으로 샘플링하는 입증된 방법을 나타냅니다. 부화 한 나비 난자의 chorion을 사용하여 종의 정체성을 확인하고 유전 적 변이를 정량화하기 위해 성공적인 유전자 시퀀싱을 위해 충분히 많은 양과 품질의 DNA를 산출합니다. 다른 조직 샘플링 기술이 비실용적이거나 사용할 수 없을 때 특히 유용할 수 있습니다. 나비목을 위해 개발되었지만 그럼에도 불구하고 다른 곤충 종과 함께 사용하기 위해 쉽게 적응할 수 있습니다. 지역 사회 과학자, 보존 실무자 및 학생과 같은 다양한 경험과 기술 수준의 개인이 광범위한 구현을 극대화하고 광범위한 인구 샘플링을 용이하게하기 위해 넓은 지리적 영역에서 사용하기 위해 사용하기 쉽도록 특별히 설계되었습니다. 생성 된 데이터는 분류 및 목록 결정, 보존 및 관리 조치를 알리고 기본 생태 연구를 향상시키는 데 도움이 될 수 있습니다.

최대 563 개의 샘플을 수집하기위한 자료는 북미 동부의 종 범위에 걸쳐 9 개 주에서 온 8 명의 보존 및 지역 사회 과학자에게 보내졌습니다. 자료는 현지 피크 비행 시간 전에 2021년 동안 3개월에 걸쳐 발송되었습니다. 현재까지 수집된 총 160개의 C. irus 조직 샘플을 받았습니다(표 1). 게놈 DNA는 Storer et al.14에 의해 상세히 기술된 이 샘플 유형에 대한 프로토콜에 따라 추출되었다. 이 160 개의 샘플 중 DNA는 평균 농도가 1.67 ng / μL (SE ± 2.98) 인 88 개에서 성공적으로 추출되었으며 가장 높은 DNA 수율은 26.8 ng / μL였습니다. 농도는 2 μL의 추출물과 함께 제조업체의 지침에 따라 고감도 분석 키트를 사용하여 정량화되었습니다.
접수 된 샘플의 총 수는 수집을 위해 배치 된 전체 총 재료 수보다 실질적으로 적지 만, 이는 주로 수집 자료의 과잉을 주요 수집가 또는 팀 리더에게 제공하여 원하는 경우 여러 수집 사이트 및 / 또는 커뮤니티 과학자를 포함 할 수있는 최대한의 유연성을 가질 수 있도록하는 인공물입니다. 또한, C. 아이리스 는 현존하는 범위 전체에 걸쳐 제한적이고 종종 상대적으로 작은 개체군으로 대표되는 희귀하고 감소하는 분류군입니다. 이러한 제약에도 불구하고,받은 조직 샘플의 총 수는 특히 개별 성인 나비의보다 전통적인 샘플링에서 예상되는 것과 비교할 때 상당합니다.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63416/63416fig01.jpg"> 그림 1: 지역 사회 과학자 또는 현장 수집을 담당하는 기타 직원에게 선적을 기다리는 모든 필요한 보급품의 개별 배치 가능한 장치. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63416/63416fig01large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63416/63416fig02.jpg"> 그림 2: 모든 보급품, 투명 플라스틱 수거 태클 박스, 지역 사회 과학자 또는 현장 수거를 담당하는 기타 직원에게 배송을 기다리는 완성된 특급 운송업체 라벨을 포함한 개별 배치 가능한 장치. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63416/63416fig02large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63416/63416fig03.jpg"> 그림 3: 야생 루핀(Lupinus perennis)에 부화한 서리 낀 꼬마 나비(Callophrys irus) 알의 사진은 신생아 유충이 나온 중앙에 뚜렷한 구멍을 보여줍니다. 부화 한 알의 전체 색상은 흰색입니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63416/63416fig03large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63416/63416fig04.jpg"> 그림 4 : 야생 루핀 (Lupinus perennis)의 부화되지 않은 부화 된 서리로 덥은 엘핀 나비 (Callophrys irus) 알의 사진. 부화되지 않은 알에는 눈에 띄는 중앙 구멍이 없으며 전체 색상은 청록색입니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63416/63416fig04large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63416/63416fig05.jpg"> 그림 5: 조직 유형별 DNA 농도. 상자 중간선은 중앙값을 나타내고 각 상자는 IQR을 확장하며 상자 수염은 IQR 1.5×이며 외부의 모든 점은 이상값입니다. 단일 계란 케이스를 포함하는 샘플에는 하나의 계란 케이스만 있었고 여러 계란 케이스가 포함된 샘플에는 최소 2개의 케이스가 있었으며 케이스 수는 샘플당 2개에서 20개(평균 = 5.3) 사이였습니다. 약어: IQR = 사분위수 범위. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63416/63416fig05large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td>상태</td>
			<td>계란 케이스</td>
			<td>계란 케이스</td>
			<td>프라스</td>
			<td>다리</td>
			<td>털갈이</td>
			<td>총합계</td>
		</tr><tr><td>아칸소</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>2</td>
			<td></td>
			<td>2</td>
		</tr><tr><td>플로리다</td>
			<td>3</td>
			<td>10</td>
			<td></td>
			<td>7</td>
			<td>22</td>
			<td>42</td>
		</tr><tr><td>미시간</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr><tr><td>뉴햄프셔</td>
			<td>24</td>
			<td>6</td>
			<td></td>
			<td>15</td>
			<td></td>
			<td>45</td>
		</tr><tr><td>뉴욕</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>30</td>
			<td></td>
			<td>30</td>
		</tr><tr><td>오하이오</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr><tr><td>위스콘신</td>
			<td>9</td>
			<td>5</td>
			<td></td>
			<td>5</td>
			<td></td>
			<td>19</td>
		</tr><tr><td>오클라호마 주</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>16</td>
			<td>6</td>
			<td></td>
			<td>22</td>
		</tr><tr><td>총합계</td>
			<td>36</td>
			<td>21</td>
			<td>16</td>
			<td>65</td>
			<td>22</td>
			<td>160</td>
		</tr></tbody></table>표 1: 주별로 수집된 조직 재료의 수와 유형. 
보충 그림 S1: 현장에서 사용하기 위한 양면, 적층, 응축 및 그림 프로토콜의 첫 페이지. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63416/63416_Supplemental%20Fig%20S2.zip" target="_blank">이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.</a>
보충 그림 S2. 현장에서 사용하기 위한 양면, 적층, 응축, 그림 프로토콜의 뒷페이지. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63416/63416_Supplemental%20Fig%20s1.zip" target="_blank">이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.</a>

여기에서는 잔류 알 파편의 현장 수집을 기반으로 한 나비 개체군의 비침습적 유전자 샘플링을 위한 간단한 프로토콜을 제시합니다. 종의 정체성을 확인하고 유전 적 변이를 정량화하는 데 사용할 수 있습니다. 이 프로토콜은 커뮤니티 과학 참여를 위해 더 광범위한 그룹에 쉽게 적용할 수 있습니다.

Global insect declines continue to accelerate. Effective genetic sampling is critically needed to advance the understanding of many taxa and address ...

이 프로토콜은 유전자 분석을 위해 부화 된 나비 ovi에서 융모막을 샘플링하는 새로운 접근 방식을 사용합니다. 다른 조직 샘플링 기술이 비실용적이거나 사용할 수 없거나 허용되지 않을 때 특히 유용할 수 있습니다. 이 프로토콜은 공급품을 획득하기 쉽고 유전자 샘플을 획득하기 위해 일시적으로 포획하거나 조작하고 잠재적으로 살아있는 유기체에 해를 끼칠 필요가 없는 잔류 유기 물질을 표적으로 하는 것을 사용하여 상대적으로 낮은 전체 비용을 갖는다.전체 프로토콜은 간단하고 배우기 쉽지만 특히 샘플 수집 이벤트 간의 교차 오염을 방지하기 위해 매우 작은 대상 샘플을 성공적으로 찾고, 식별하고, 제거하기 위해 손재주와 세부 사항에 대한 엄격한 주의가 필요합니다. 필요한 수집 관련 물품의 전체 목록을 주의 깊게 검토하고 수집하는 것으로 시작하십시오. 샘플 수집이 여러 위치에서 발생하거나 여러 개인 또는 팀에 의해 발생하는 경우 필요한 모든 보급품을 별도의 배치 가능한 장치로 수집하고 구성합니다.지역 사회 과학자 또는 현장 수집을 담당하는 기타 직원에게 물품을 운송합니다. 직원이 현지인이 아닌 경우 완전한 배송 라벨이 있는 별도의 판지 배송 상자에 소모품을 조심스럽게 포장하여 배송하십시오. 수거 도구 상자를 포함한 수거 용품을 수령하면 적층 공급 목록을주의 깊게 검토하고 전체 재고를 수행하십시오.누락된 소모품이 있는 경우 프로젝트 리더에게 알립니다. 1.5 밀리리터 마이크로 원심 분리기 튜브에 180 마이크로 리터의 용해 버퍼를 미리 채 웁니다. 미리 인쇄된 고유 ID 라벨을 각 마이크로 원심분리기 튜브에 적용하고 모든 튜브를 64웰 마이크로 원심분리기 튜브 보관 상자에 넣습니다.적재 후 뚜껑을 단단히 고정하십시오. 모든 디지털 장비가 완전히 충전되어 있고 예비 배터리가 포장되어 있는지 확인하십시오. 수집 된 샘플의 현장 저장 및 지역 운송을 위해 작은 냉각기에 얼음을 부분적으로 채 웁니다.안전한 운송 및 통합 보관을 위해 모든 수집 용품을 수집 도구 상자 또는 이와 유사한 견고한 비바람에 견디는 컨테이너에 포장하십시오. 현장으로 향하기 전에 비파괴 유전자 샘플 수집 프로토콜과 세부 사항을 검토하십시오. 현장 현장에 도착하면 연필이나 전천후 펜을 사용하여 시간, 날짜, 전체 속성 이름, 특정 현장 현장 위치 이름 또는 설명, 가능한 경우 GPS 판독값, 내후성 현장 노트북에 있는 모든 개인의 전체 이름과 역할을 기록합니다.유충 숙주 식물의 존재에 적합한 서식지를 종 별 표적 나비에 배치하십시오. 스마트 폰이나 카메라를 사용하여 모든 현장 현장, 샘플 수집 위치, 숙주 식물 및 기타 관련 정보의 자세한 사진을 찍습니다. GPS 좌표를 기록하는 스마트 폰이나 기타 카메라를 사용하십시오.잎, 꽃 봉오리, 꽃과 같은 모든 유충 숙주 식물 부분을 종합적으로 검색하거나 부화 된 알을 위해 난자를 양성하는 성인 암컷 나비가 선택한 것으로 알려진 개발 과일을 검색합니다. 대부분의 Lycaenidae의 경우 중앙에 신생아 유충이 나온 도넛과 유사한 뚜렷한 구멍이있는 흰색 부화 알을 찾으십시오. 색이 더 어둡고 종종 녹색 또는 푸르스름하고 중간에 구멍이 없어 완전히 손상되지 않은 부화되지 않은 알을 찾으십시오.부화 한 알을 찾으면 니트릴 장갑을 착용하십시오. 멸균되고 뾰족한 집게를 사용하여 부화 한 알을 숙주 식물에서 잡고 부드럽게 당겨 용해 완충액으로 미리 채워진 라벨이 붙은 미세 원심 분리기 튜브에 직접 넣습니다. 유사하게, 다른 조직 샘플이 사용되고 처리될 수 있다.수집된 모든 물질이 각 1.5밀리리터 미세 원심분리기 튜브 내의 용해 완충액에 완전히 잠겨 있는지 확인하십시오. 필요한 경우 튜브의 바닥을 단단한 표면에 두드려 샘플을 다시 담그십시오. 새 샘플을 수집 할 때 사용한 니트릴 장갑을 버리고 깨끗한 쌍으로 교체하십시오.각 계란 수집 후, 집게 끝을 짜기 병에서 95 % 에탄올 약병에 담그거나 뿌리거나 알코올 물티슈를 사용하여 조심스럽게 청소하십시오. 사이트 당 숙주 식물 패치 당 최소 5 개의 샘플을 수집하고, 각 샘플에는 1-20 개의 알이 포함되어 있으며, 가능한 경우 한 위치에서 총 50 개 이상의 알을 목표로합니다. 동일한 숙주 패치의 여러 식물에서 부화 한 알 1-20 개를 단일 미세 원심 분리기 튜브에 모으고 뚜껑을 단단히 닫습니다.더 큰 초본 또는 목본 숙주 종을 사용하는 나비 종의 경우 숙주 패치가 제한된 경우 동일한 식물의 다른 위치에서 여러 알을 수집합니다. 비바람에 견디는 필드 노트북에서 할당된 고유 ID 레이블을 샘플 유형, 부화한 알의 대략적인 수 및 수집 정보와 함께 기록합니다. 계란 파편 샘플이 있는 닫힌 미세 원심분리기 튜브를 64웰 미세 원심분리기 보관 상자에 다시 넣습니다.현장에 있는 동안 얼음이 있는 쿨러에 보관 상자를 보관하십시오. 다른 모든 수거 용품은 현장 간에 안전하고 통합된 보관 및 운송을 위해 수거 도구 상자에 넣으십시오. 이 160 개의 샘플 중에서 DNA는 마이크로 리터당 1.67 나노 그램의 평균 농도로 88 개에서 성공적으로 추출되었으며 가장 높은 DNA 수율은 마이크로 리터당 26.8 나노 그램이었습니다.조직 유형별 DNA 농도는 하나의 계란 파편을 포함하는 샘플에는 하나의 계란 케이스만 있고 여러 개의 계란 케이스를 포함하는 샘플에는 2개에서 20개 사이의 케이스 수가 샘플 당 평균 5.3개로 최소 2개 있는 것으로 확인되었습니다. 최대 563 개의 샘플을 수집하기위한 자료는 북미 동부의 종 범위에 걸쳐 9 개 주에서 온 8 명의 보존 및 지역 사회 과학자에게 보내졌습니다. 자료는 현지 피크 비행 시간 전에 2021년 동안 3개월에 걸쳐 발송되었습니다.총 160 개의 칼레 펠리스 홍채 조직 샘플이 접수되었습니다. 샘플 간의 교차 오염을 최소화하고, 수집된 샘플이 용해 버퍼에 완전히 잠기도록 하고, 각 샘플에 대한 고유한 ID 라벨 및 수집 데이터를 정확하게 기록하는 것이 중요합니다. 이 프로토콜은 지역 사회 과학자들이 희귀 나비의 현존하는 개체군을 비파괴적으로 샘플링하여 광범위한 유전 구조 분석을 수행하는 데 도움이 되는 광범위한 배포 및 사용을 가능하게 했습니다.

deploying-community-scientists-to-conduct-nondestructive-genetic

Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

Bicyclus anynana의 pupal 날개 조직에서 유전자 발현을 조사하기 위해, 우리는 riboprobes를 사용하여 현장 hybridizations에 대한 최적화된 프로토콜을 제시한다. 우리는 또한 다른 Lepidopteran 종의 pupal 날개에 사용하기 위해이 프로토콜을 더욱 최적화에 대한 지침을 제공합니다.

Riboprobes를 사용하여 나비 Pupal 날개에 대한해라 프로토콜

저희는 미국 피카에 표시 효율적으로 어려운 작은 포유류에서 머리카락 샘플을 수집하는 비침 투 샘플링 방법을 제시한다. 우리는 샘플 머리카락에서 DNA를 추출하여 일반적으로 야생 동물의 생태와 보존 연구에 사용된 분자 마커의 여러 유형을 확장하여이 방법의 유틸리티를 보여줍니다.

엘루시브 작은 포유류의 고품질 DNA를 얻기 위해 비침 투 헤어 샘플링 기법

특정 식물 종의 매개자 효과를 나타 내기 위해 필드 실험의 여러 방법들이 개발되어왔다. 이 연구는 상사화 sanguinea var에. sanguinea의 사례 연구와 새로운 수분기구, 파괴 버드의 수분을 이용하여 수분 생태에 대한 현장 실험의 기본 방법을 보여줍니다.

수분 (受粉) 생태학의 필드 실험 :의 케이스<em&gt; 상사화 sanguinea</em&gt; VAR.<em&gt; sanguinea</em

여기서, 우리는 1) 연방 멸종 위기에 처한 마이애미 블루 나비(Cyclargus thomasi bethunebakeri)의실험실 포로 전파에 대한 프로토콜을 제시하고, 2) 미숙한 발달 시간 및 애벌레 스타디아의 수와 같은 기본적인 생활 역사 정보를 평가. 두 방법 모두 다른 ex situ 보존 프로그램과 함께 사용하도록 조정할 수 있습니다.

생명역사 지식과 효과적인 Ex Situ 보존 기술을 향상시키기 위한 위험에 처한 나비 포로 전파 프로그램

환경 DNA 분석법은 현장 데이터 수집이 시작되기 전에 엄격한 설계, 테스트, 최적화 및 검증이 필요합니다. 여기서, 우리는 환경 샘플에서 표적 종 DNA의 검출 및 정량화를 위한 종별, 프로브 기반 qPCR 분석의 각 단계를 통해 사용자를 취할 프로토콜을 제시한다.

환경 DNA 응용을 위한 종별 정량PCR 분석의 개발 및 시험

여기서, 저렴한 비용의 접근 가능한 프로토콜은 주변 환경 조건에서 나비의 차가운 충격 복구를 평가하기 위해 설명된다.

현장 기반 열 생리학 분석: 주변 조건에서 감기 충격 회복

이 프로토콜은 gRNA 유도 Cas9 분열 및 DNA 수리 에 따른 표적 부위에서 비균성 최종 결합(NHEJ) 이벤트의 식별 및 정량화를 위한 분석을 포함하여 디지털 물방울 PCR(ddPCR)에 대한 실험용 설정에 DNA 추출에서 단계를 제공합니다. 이 방법의 그밖 용도는 다형성 검출 및 유전자 편집 이체 확인과 같은 응용을 포함합니다.

유전자 변형 된 Anopheline 모기 인구에서 인델 돌연변이를 감지하는 디지털 물방울 PCR

이 프로토콜은 자아 Caenorhabditis 선충류의 대규모 생태 조사를 수행하는 데 사용할 수 있습니다. 이 방법의 주요 장점은 자연에서 수집 된 선충류와 관련된 생태 및 분자 데이터의 효율적인 조직 및 분석입니다.

Selfing caenorhabditis 선충류의 생태 조사를 수행하기위한 고도로 확장 가능한 접근법

이 논문은 인공 식단으로 통제된 실험실 조건에서 양배추 흰 나비를 기르기 위한 자세한 프로토콜을 제시하며, 이를 통해 조기 생애 영양 및 독소 노출을 정밀하게 조작할 수 있습니다. 대표적인 결과는 이 프로토콜로 중금속 독성을 분석할 수 있는 방법을 보여줍니다.

통제 된 조건에서 양배추 흰 나비 (Pieris rapae) 키우기 : 중금속 내성 사례 연구

우리는 현장에서 채취한 꿀벌을 안전하게 취급하기 위한 검증된 방법을 보여줍니다. 이 방법을 사용하면 샘플링 중에 수집된 꽃가루를 통해 식물-곤충 상호 작용의 신속한 조작, 식별, 유전자 샘플링 및 확인을 수행할 수 있습니다. 쉽게 적응할 수 있는 이 접근 방식은 희귀 곤충 그룹을 연구하는 데 비용 효율적이고 치명적이지 않은 수단을 제공합니다.

현장에서 꿀벌을 가두고 안전하게 다루는 신속한 방법

여기에 제시된 프로토콜은 딱정벌레에서 생성된 시토크롬 c 산화효소 소단위 I(COI) 유전자 염기서열의 컴퓨터 기반 처리에 대해 사용자를 안내하는 것을 목표로 하며, 이를 통해 분자 연산 분류학 단위(MOTU)라고 하는 종 클러스터링 가설이 DNA에서 생성될 수 있습니다.

강기슭 딱정벌레와 수생 딱정벌레 사이에서 MOTU(Molecular Operational Taxonomic Units)를 생성하기 위한 혼합물 파이프라인

학습하세요 희귀 나비 개체군의 비파괴 유전자 샘플링 방법을. 부화한 알의 난각을 수집하여 DNA를 추출하고, 지역 사회 과학자들이 참여하는 생물다양성 보전 연구에 활용할 수 있습니다.

희귀 나비 개체군의 비파괴 유전자 샘플링을 수행하기 위해 지역 사회 과학자 배치

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