Name: 초 파리 Oogenesis 동안 양극화 된 세포 내 밀매 및 기저막 단백질의 분비의 공초점 및 수퍼 해상도 이미징 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-05-19T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 41 s
Description: 배우세요 초파리 난소에서 기저막 단백질의 세포 내 밀매 및 분비를 공초점 및 Airyscan 초고해상도 현미경으로 시각화하는 방법을. 이 기법은 발달생물학 및 세포생물학 연구에 활용됩니다.

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저자는 줄리 머클 (Julie Merkle)이 원고에 대한 도움이되는 의견에 감사드립니다. 이 작업은 NIH 보조금 R15GM137236에 의해 O.D.에 지원되었습니다. 공초점 및 초해상도 이미지는 NSF MRI 보조금 2018748로 구입 한 Airyscan 2와 함께 Zeiss LSM 900을 사용하여 획득했습니다.

저자는 공개 할 것이 없습니다.

BM은 배아 및 장기 형태 형성 및 성인 생리 기능에 중요합니다. 또한, BM은 상피 극성의 확립 및 유지를 위한 신호 전달 플랫폼 역할을 하며 조직에 지지체2를 제공한다. 그러나 BM 단백질의 적절한 배치를 조절하는 메커니즘은 잘 이해되지 않았습니다. BM 단백질의 세포 내 밀매 및 양극화 된 분비에 전념하는 생물학적 경로를 더 잘 이해하려면 이러한 경로의 구성 요소와 BM 처리에서의 역할에 대한 신중한 분석이 필요합니다. 이를 달성하는 한 가지 방법은 공초점 및 초해상도 이미징을 사용하는 것입니다. 여기에서, 공초점 및 초분해능 현미경을 사용하여 FE에서 BM 단백질의 세포 내 밀매 및 분비를 효율적으로 이미지화하기 위해 초파리 난소의 준비 및 염색 또는 면역염색을 위한 방법을 설명하였다.
야생형 및 돌연변이 조건에서 BM 단백질의 세포 내 밀매 및 분비를 시각화하는 단백질 트랩 및 내인성 태그된 단백질...

기저막(BM)은 상피 구조 및 형태형성에 중요한 층상 세포-부착성 세포외 매트릭스(ECM)의 얇은 시트이다1. 그것은 ∼50 개의 단백질을 포함하며 상피 및 내피 세포의 기초가되는 유비쿼터스하게 발견되며, 골격, 평활 및 심장 근육 세포 및 지방 세포 1,2,3을 감싸고 있습니다. 상피 세포의 기저부에서 BM의 세 가지 주요 구성 요소는 콜라겐 IV, 펄레칸 및 라미닌입니다. BM은 상피 세포의 기초가되며 조직 분리 및 장벽, 성장 및 지원, 세포 분극 2,3,4,5,6,7,8,9,10,11,12를 포함한 많은 기능을 담당합니다. . 신호 전달 플랫폼으로서의 그의 역할은 발달 동안 상피 세포 및 조직의 형태학 및 분화를 조절한다 3,13,14. 더욱이, BM의 잘못된 조절 및/또는 그 완전성의 위반은 종양 전이 2,15,16을 포함한 많은 병리학적 상태의 주요 원인이다. 조직 및 기관 형태형성 동안 BM에 의해 수행되는 필수적인 기능에도 불구하고, 편광된 세포내 밀매 및 BM 단백질의 분비에 전념하는 생물학적 경로(들)의 성분들은 모호하게 알려져 있다.
BM 함유 소포의 세포 내 밀매와 상피 세포에 의한 BM 단백질의 분비를 연구하기 위해, 초파리 난소의 여포 상피 (FE)는 강력한 모델 시스템입니다 (그림 1). 초파리 난소는 난소라고 불리는 16-20 개의 긴 튜브 형 구조로 구성됩니다 (그림 1A, B) 17,18,19. 각 난소는 난자 조립 라인으로 생각할 수 있으며, 성숙한 난자가 난관을 통해 빠져 나올 때까지 앞쪽 끝에서 시작하여 후방으로 움직이는 계란 챔버 (각각 계란을 발생시킵니다)의 연령 진행과 함께 알 조립 라인으로 생각할 수 있습니다. 각 달걀 챔버는 중앙 생식 세포(GCs)를 둘러싸고 있는 체세포 모낭 세포(FCs)의 단층인 FE에 의해 캡슐화된다. FE는 정점 도메인이 생식계열을 향하는 뚜렷한 정점-기저 극성으로 고도로 편광되고, BM 단백질은 기저18,19로 분비된다. FC는 콜라겐 IV, 펄레칸 및 라미닌20,21을 포함한 BM의 모든 주요 성분을 적극적으로 분비합니다. FCs와 같은 상피 세포에서, BM 성분은 생산되고 그들의 세포외 침착을 위한 특수한 편광 분비 경로를 필요로 한다. 예를 들어, BM의 가장 풍부한 성분인 콜라겐 IV(Coll IV)의 경우, 그의 편광된 세포내 밀매와 분비를 둘러싼 세부사항은 그것의 생산 및 침착이 많은 연구의 초점임에도 불구하고 모호하다. Coll IV는 소포체(ER)로 번역되며, 이는 또한 여기서 각각의 피브릴-세 개의 폴리펩티드(2개의 α1 쇄 및 하나의 α2 쇄)로 구성된-삼중 나선(22)으로 조립된다. 적절한 Coll IV 폴딩 및 기능에는 Plod 및 PH4αEFB 20,22,23,24,25,26과 같은 리실 및 프롤릴-히드록실라제를 포함하는 ER 샤페론 및 효소가 필요합니다. 이러한 번역 후 효소는 Coll IV의 ER 분류를 조절하는데, 각각의 손실로 인해 Coll IV가 기 저 ER20,23,24,25,26에 갇히게 됩니다. 이어서, 새로 합성된 Coll IV는 COPII 코팅된 소포체에서 골지에 대한 ER을 빠져나간다. 화물 수용체 Tango1은 큰 다량체 단백질20,27을 수용 할 수있는 상당한 골지 결합 소포로 콜라겐을 포장하는 데 도움을줍니다. 일단 Coll IV가 세포내 외래 소포로 포장되면, 그것은 상피 세포로부터 기저로 특이적으로 분비된다. BM 침착을 기저측으로 지시하기 위해, 상피 세포는 편광된 BM 분비에 특별히 전념하는 또 다른 인자 세트를 필요로 한다. 초파리 난소의 FE를 사용하여, 뉴클레오티드 교환 인자 (GEFs) Crag 및 Stratum, GTPases Rab8 및 Rab10뿐만 아니라 포스포이노시타이드 PI (4,5) P2, 및 Kinesin 1 및 3 모터 단백질 20,28,29,30,31의 수준을 포함하여이 새로운 세포 과정의 몇 가지 구성 요소가 특성화되었습니다. . 이러한 성분은 BM 단백질의 편광 분포를 보장하는 데 중요합니다.
FE 내의 BM 단백질의 세포내 국소화를 모니터링하기 위해, 내인성 태깅된 기저막 단백질(단백질 트랩), 예컨대 바이킹-GFP(Vkg-GFP 또는 α2 Coll IV-GFP) 및 펄레칸-GFP(Pcan-GFP)32,33이 사용될 수 있다. 이러한 단백질 트랩 라인은 BM 단백질의 내인성 분포를 정확하게 반영하고 수포 밀매28,30의 더 민감한 검출을 허용하는 것으로 나타났다. FE에서 BM의 편광 증착에 관여하는 성분들은 먼저 Vkg-GFP 및 Pcan-GFP 20,28,29,30에 대한 단백질 트랩 라인을 사용하여 특성화되었다. 단백질 트랩은 돌연변이체 및 Gal4 라인(34)을 포함하는 상이한 유전적 배경에서 사용될 수 있다. 더욱이, 단백질 트랩은 형광 염료 및/또는 형광 면역염색과 함께 사용될 수 있어, 야생형 및 돌연변이 조건(35)을 비교할 때 BM 단백질의 국소화의 정밀한 특성화를 가능하게 한다.
BM 단백질 함유 소포의 분포 및 국재화를 정확하고 효율적으로 평가하기 위해, 공초점 레이저 스캐닝 현미경(CLSM) 및 초분해능 이미징 기술은 다른 이미징 접근법에 상당한 이점을 제시한다. 이러한 접근 방식은 고해상도 이미징과 상대적으로 사용하기 쉬운 방법을 결합합니다. CLSM은 갈바노미터를 사용하여 래스터 스캔 방식으로 레이저로 시편을 스캔하여 광학 분해능을 향상시킬 수 있는 현미경 기술입니다. 핀홀 조리개는 공초점 현미경의 핵심 구성 요소입니다. 초점면의 위 또는 아래에서 오는 초점이 맞지 않는 신호를 차단함으로써, 핀홀 조리개는 z축(36)에서 매우 우수한 분해능을 가져온다. 이것은 또한 일련의 광학 섹션에 해당하는 z-스택이라고 불리는 z-평면에서 일련의 이미지를 얻을 수있게합니다. z-스택은 이후 이미징 소프트웨어의 도움으로 3D 재구성을 통해 시편의 3D 이미지를 생성합니다. 기존의 에피형광(와이드필드) 현미경은 공초점 현미경과 달리 초점이 맞지 않는 빛이 이미지 품질에 기여하여 이미지 해상도와 콘트라스트(36,37)를 감소시킵니다. 이것은 epifluorescence 현미경을 단백질 국소화 또는 공동 국소화를 연구 할 때 덜 매력적인 후보로 만듭니다.
CLSM은 BM 단백질의 세포 내 밀매의 이미징 및 특성화를 포함한 다양한 응용에 적합한 접근법이지만, 아베의 빛의 회절 한계 (200-250 nm) 이하의 샘플을 이미징 할 때 여전히 문제가 있습니다. 이러한 샘플을 이미징 할 때, 공초점 현미경 검사, 특히 오일 목표를 사용할 때 높은 해상도를 초래할 수 있습니다. 그러나 초분해능 기술은 공초점 현미경의 한계를 뛰어 넘습니다. 초분해능 현미경을 달성하기 위한 다양한 접근법이 있으며, 각 현미경에는 특정 분해능 한계가 있으며 각 현미경은 서로 다른 분석에 적합합니다. 이러한 접근법에는 광활성화 국소화 현미경 (PALM) 또는 확률 적 광학 재구성 현미경 (STORM), 자극 방출 고갈 현미경 (STED), 구조화 된 조명 현미경 (SIM) 및 Airyscan (초해상도) 현미경 38,39,40,41,42,43,44,45,46이 포함됩니다. . Airyscan은 PALM / STORM, STED 및 SIM보다 거친 해상도를 가지고 있지만 최대 ~ 120nm (CLSM의 약 두 배)의 해상도를 달성 할 수 있습니다. 또한, 이러한 초분해능 현미경 접근 방식은 낮은 신호 대 잡음비47,48로 두꺼운 샘플 및 샘플을 이미징할 때 SIM 및 기타 초분해능 기술에 비해 이점이 있는 것으로 나타났습니다.
Airyscan은 비교적 새로운 초분해능 공초점 현미경 기술(46)이다. 핀홀 및 단일 포인트 검출기를 사용하여 초점이 맞지 않는 광을 거부하는 기존의 CLSM과는 달리, 이 초분해능 접근법은 모든 스캔 위치(45)에서 모든 광을 수집하는 32채널 갈륨 비소 포스피드(GaAsP) 광승수 튜브 영역 검출기를 사용합니다. 32개의 검출기 각각은 작은 핀홀로 작동하여 핀홀 크기를 기존 1.0 Airy Unit(A.U.)에서 향상된 0.2A.U.로 줄여 1.25A.U. 직경45의 효율을 유지하면서 더 높은 분해능과 신호 대 잡음비를 실현합니다. 또한, Airyscan이 사용하는 선형 디컨볼루션은 해상도(45)에서 최대 2배 증가를 초래한다. 이를 고려하여 CLSM, 특히 초분해능 현미경은 BM 단백질의 기초 침착을 조절하는 BM 단백질 및 단백질을 연구하는 데 매우 적합하며, 이는 국소화 및 공국재화 연구를 위한 매우 고해상도 이미지를 생성할 수 있기 때문에 이러한 과정을 제어하는 공간적, 시간적, 분자적 사건에 대한 새로운 통찰력을 제공합니다.
국소화 실험을 수행하는 데 사용할 수 있는 공초점 현미경에 대한 대안적인 접근법은 이미지 디컨볼루션입니다. 광시야 현미경 검사는 초점이 맞지 않는 빛이 검출기에 도달할 수 있게 하기 때문에, 수학적 및 전산 디컨볼루션 알고리즘을 적용하여 광역 현미경에 의해 획득된 이미지로부터 초점이 맞지 않는 광을 제거하거나 재할당할 수 있고, 이로써 이미지(49)의 해상도 및 대비를 향상시킬 수 있다. Deconvolution 알고리즘은 또한 공초점 이미지에 적용되어 해상도와 콘트라스트를 더욱 증가시킬 수 있으며, 초해상도 현미경(50)의 최종 이미지와 거의 유사한 최종 이미지를 생성할 수 있다. Airyscan은 Weiner 필터 기반 디컨볼루션과 셰퍼드의 픽셀 재할당을 사용하여 공간 분해능과 신호 대 잡음비를 크게 향상시킵니다. 공초점 현미경과 비교하여, 이 초분해능 현미경 기술45,51을 사용할 때 세 가지 공간 차원(x 및 y에서 120nm, z에서 350nm) 모두에서 분해능이 2배 증가한 것이 관찰됩니다.
이 원고는 공초점 및 초분해능 현미경과 결합 된 모델 시스템으로 초파리 난소의 FE를 사용하여 BM 단백질의 세포 내 밀매 및 침착을 염색, 획득 및 시각화하기위한 상세하고 최적화 된 프로토콜을 제공합니다. 내인성으로 태그된 기저막 단백질, 예를 들어, Vkg-GFP 및 Pcan-GFP를 발현하는 초파리 라인은 BM 단백질 밀매 및 분비를 가시화하는 효율적이고 정확한 도구이다. 또한, 이들은 돌연변이 및 Gal4/UAS 라인(34)을 포함하는 상이한 유전적 배경에서 용이하게 사용될 수 있다. 내인성으로 태그된 기저막 단백질이 권장되지만, 특정 BM 단백질에 대한 항체의 사용은 또한 기술된 프로토콜과 양립가능하다. 이러한 프로토콜은 공초점 및 초해상도 이미징을 사용하여 손상되지 않은 상피 조직에서 세포 내 밀매 및 BM 단백질 분비를 연구하는 데 관심이있는 과학자들에게 특히 유용합니다. 또한, 상피 조직 분석을 초파리 유전학의 광범위한 도구와 결합 할 수있는 능력은이 접근법을 특히 강력하게 만듭니다. 마지막으로, 이러한 프로토콜은 수포 밀매 및 관심있는 다른 단백질의 분류를 연구하기 위해 쉽게 적응 될 수 있습니다.

<table><tbody><tr><td>Alexa Fluor 546 phalloidin</td><td>Invitrogen</td><td>A22283</td><td>F-Actin Stain (1/500 of 66&micro; M)</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 647 phalloidin</td><td>Invitrogen</td><td>A22287</td><td>F-Actin Stain (1/100 of 66&micro; M))</td></tr> <tr><td>Anti-GM130 항체</td><td>abcam</td><td>ab30637</td><td>골지 염색 (공동 국소화); 7&micro의 농도로 사용; g/uL</td></tr><tr><td>아쿠아-Polymount</td><td>Polysciences, Inc.</td><td>1860620</td><td>마운팅 매체</td></tr><tr><td>베이커 효모(활성 건조 효석)</td><td>Genesee Scientific</td><td>62-103</td><td>해부용 오버리를 살찌우기 위해</td></tr><tr><td>소 혈청 알부민(30% 용액)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7284</td><td>차단 용액</td></tr><tr><td>우울증 우물용</td><td>전자 현미경 과학</td><td>7156101</td><td>해부용(유리 오목한 슬라이드를 대신 사용할 수 있음)</td></tr><tr><td>해부 바늘</td><td>Fisher scientifc</td><td>13-820-024</td><td></td></tr><tr><td>초파리 인큐베이터</td><td>Genesee Scientific/Invictus</td><td></td><td></td></tr><tr><td>플라이 스톡: Perlecan-GFP Drosophila line (ZCL1700)</td><td></td><td></td><td>Morin et al., 2001</td></tr><tr><td>플라이 스톡: UAS-Crag RNAi line (TRIP line HMS00241)</td><td>Bloomington Drosophila Stock Center</td><td>33594</td><td>RNAi against Crag</td></tr><tr><td>플라이 스톡: Viking-GFP Drosophila line (CC00791)</td><td></td><td></td><td>Buszczak et al., 2007</td></tr><tr><td>플라이 스톡: Vkg-GFP, tj-Gal4</td><td></td><td></td><td>Devergne et al., 2017. FE 겸자에서 Crag RNAi의 발현 유도</td></tr><tr><td>(Dumont 5)</td> <td>Fine Science Tools</td><td>11251-30</td><td>해부용</td></tr><tr><td>유리 오목한 슬라이드</td><td>전자 현미경 과학</td><td>7187804</td><td>해부용 (함몰 우물을 대신 사용할 수 있음)</td></tr><tr><td>염소 항토끼 IgG, Alexa Fluor 568</td><td>Invitrogen</td><td>A11036</td><td>2차 항체 (GM130 항체) (5 &micro; g/mL)</td></tr><tr><td>Hoechst (Hoechst 33342)</td><td>Invitrogen</td><td>H3570</td><td>DNA Stain (1 ug/mL)</td></tr><tr><td>Kimwipes</td><td>Kimtech</td><td>Fisher Scientific: 06-666</td><td>섬세한 작업 와이퍼</td></tr><tr><td>Leica 형광 스테레오 현미경&nbsp; M165 FC</td><td>Leica</td><td></td><td>난소 이미징</td></tr><tr><td>용 현미경 슬라이드</td><td>Corning</td><td>294875X25</td><td>현미경 슬라이드</td></tr><tr><td>너트 플랫폼 로커</td><td>Corning Life Sciences</td><td>6720</td><td>난소 고정 및 염색</td></tr><tr><td>용 Nutri-Fly BF</td><td>Genesee Scientific</td><td>66-121</td><td>플라이 푸드</td></tr><tr><td>파라 포름 알데히드 20 % 용액</td><td>전자 현미경 과학</td><td>Fisher 과학 : 15713</td><td>PFA 4 %</td></tr> <tr><td>인산염 완충 식염수 정제</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP2944100</td><td>PBS 솔루션</td></tr><tr><td>ProLong Glass Antifade Mountant</td><td>Invitrogen</td><td>P36980</td><td>장착 매체</td></tr><tr><td>사각형 커버 유리</td><td>Corning</td><td>285022</td><td>커버 유리 현미경 슬라이드 용</td></tr><tr><td>Triton x-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>9036-19-5</td><td>PBST 용</td></tr><tr><td>Airyscan 2가 탑재된 Zeiss LSM 900</td><td>Zeiss</td><td></td><td>컨포칼 및 초고해상도 현미경</td></tr><tr><td>Zeiss Stemi 305 실체 현미경</td><td>Zeiss</td><td></td><td>해부 현미경</td></tr><tr><td>Zeiss Zen 소프트웨어 버전 3.3(블루 에디션)</td><td>Zeiss</td><td></td><td>이미지 수집 및 처리</td></tr></tbody></table>

초 파리 oogenesis 동안 양극화 된 세포 내 밀매 및 기저막 단백질의 분비의 공초점 및 수퍼 해상도 이미징

Confocal and Super-Resolution Imaging of Polarized Intracellular Trafficking and Secretion of Basement Membrane Proteins During Drosophila Oogenesis

기저막 (BM) - 상피 세포의 기저 측에 존재하는 세포 외 매트릭스의 특수 시트 - 상피 조직 형태학 및 장기 형태 형성의 확립 및 유지에 중요합니다. 또한, BM은 조직 모델링에 필수적이며, 신호 전달 플랫폼 역할을하며, 조직과 장기를 형성하기위한 외부 힘을 제공합니다. BM이 정상적인 발달 및 병리학적 조건 동안 수행하는 많은 중요한 역할에도 불구하고, BM 함유 소포의 세포내 밀매를 조절하는 생물학적 경로와 기저 분비가 BM 단백질의 양극화 된 침착으로 이어지는 방법은 잘 이해되지 않습니다. 초파리 난소의 여포 상피는 BM의 모든 주요 성분을 생산하고 분비하기 때문에 BM 막 단백질의 기초 침착을 연구하는 훌륭한 모델 시스템입니다. 공초점 및 초해상도 이미징은 고정 된 조직에서의 이미지 처리와 결합하여 BM 단백질의 세포 내 밀매 및 침착에 특히 관여하는 세포 요인의 식별 및 특성화를 가능하게합니다. 이 기사는 초파리 난소의 여포 상피에서 내인성 태그가 지정된 단백질을 사용하여 BM 함유 소포 및 침착된 BM을 염색 및 이미징하기 위한 상세한 프로토콜을 제시한다. 이 프로토콜은 질적 및 양적 질문을 모두 해결하기 위해 적용될 수 있으며 고처리량 스크리닝을 수용하기 위해 개발되어 상피 조직 개발 중에 편광 된 세포 내 밀매 및 소포 분비와 관련된 요인을 신속하고 효율적으로 식별 할 수 있습니다.

본원에 기재된 방법은 초파리 난소의 FE와 같은 편광된 상피 세포에서 BM 단백질의 세포내 밀매 및 분비를 효율적이고 정확하게 이미지화하고 특성화하는데 사용될 수 있다. 다음으로, 우리는 설명 된 방법을 사용하여 얻은 예상 결과뿐만 아니라 유용한 조언 및 잠재적 인 함정을 제공합니다. 그렇게 하기 위해, Vkg-GFP, 내인성 태깅된 Vkg(초파리 콜 IV)이 사용된다. 그러나, 동일한 결과가 Pcan-GFP와 같은 다른 내인성 태깅된 BM 단백질과 함께 달성될 수 있다.
최적의 수집 파라미터 설정(그림 2) 상피 세포에서 Vkg 및 Pcan과 같은 BM 단백질의 세포 내 밀매 및 분비를 정확하게 특성화하기 위해서는 제공된 방법에 설명 된 바와 같이 공초점 현미경의 획득 매개 변수를 적절하게 설정하는 것이 중요합니다.
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기저막은 발달 동안 조직 및 장기 형태 형성에 필수적입니다. 이 구조의 적절한 배치로 이어지는 메커니즘을 더 잘 이해하기 위해 제시된 프로토콜은 공초점 및 초분해능 현미경을 사용하여 상피 세포에서 기저막 단백질의 세포 내 밀매 및 분비를 시각화하고 특성화하는 방법을 설명합니다.

초 파리 Oogenesis 동안 양극화 된 세포 내 밀매 및 기저막 단백질의 분비의 공초점 및 수퍼 해상도 이미징

The basement membrane (BM) - a specialized sheet of extracellular matrix present at the basal side of epithelial cells - is critical for the establishment ...

이 프로토콜은 초파리 어레이를 모델 시스템으로 사용하여 세포내 트래피킹 및 기저막 단백질의 분비의 특성화를 허용한다. 우리 기술의 가장 큰 장점은 내인성 태깅 단백질과 Airyscan 초해상도 현미경을 사용하여 기저막 단백질의 세포 내 밀매에 대한 고해상도 이미징을 허용한다는 것입니다. 이 프로토콜은 기저막 단백질의 세포 내 트래피킹을 이미지화하기 위해 개발되었지만, 관심있는 다른 단백질 및 세포 배양 및 오가노이드를 포함한 다른 생물학적 시스템의 밀매를 연구하기 위해 확장 될 수 있습니다.시작하려면 해부 범위에서 PBS의 초파리 난소를 해부 한 후 1 밀리리터의 고정 용액을 추가하고 난소를 15 분 동안 영양가있는 플랫폼에 고정시킵니다. 고정 용액을 제거하고 각각 한 밀리리터의 PBST로 두 번의 빠른 세척을 수행하십시오. 마이크로원심분리 튜브를 다섯 번 내지 여섯 번 부드럽게 반전시켜, 영양가 플랫폼 로커 상에서 PBST의 밀리리터로 각각 10분의 네 번의 긴 세척을 수행한다.고정 및 세척을 수행 한 후 PBST를 제거한 다음 한 밀리리터의 블로킹 용액을 추가하고 최소 한 시간 동안 영양가있는 플랫폼 로커에서 난소를 차단하십시오. 다음으로, 블로킹 용액을 제거하고 블로킹 용액에 적절한 농도로 희석된 일차 항체를 포함하는 일차 항체 용액 300 마이크로리터를 첨가한다. 섭씨 4도의 영양가있는 플랫폼 로커에서 밤새 배양하십시오.일차 항체 용액을 제거한 후, 이전에 입증된 바와 같이 두 번의 빠른 세척과 네 번의 긴 세척을 수행한 다음, PBST를 제거하고 사용된 일차 항체를 검출할 형광 이차 항체를 포함하는 이차 항체 용액 500 마이크로리터를 첨가한다. 이차 항체 용액의 난소를 실온에서 두 시간 동안 영양화 플랫폼 로커 상에서 인큐베이션한 다음, 영양가 플랫폼 로커 상에서 이전에 입증된 바와 같이 PBST에서 두 번의 빠른 세척과 네 번의 긴 세척을 수행한다. 마지막 세척 후 P-1000 피펫을 사용하여 난소를 튜브에서 위아래로 부드럽게 피펫하여 계란 챔버를 분리하십시오.튜브를 5 ~ 10 분 동안 똑바로 세운 상태로 유지하여 달걀 챔버가 바닥으로 가라 앉도록하십시오. 다음으로, 파스퇴르 피펫을 사용하여 PBST를 제거하고 약 50 마이크로리터를 남긴다. 그런 다음 P-200 피펫을 사용하여 나머지 PBST를 최대한 제거하고 커버 슬립에 고르게 퍼질 정도로 장착 매체 두 방울을 추가하십시오.점성 장착 매체를

confocal-super-resolution-imaging-polarized-intracellular-trafficking

Research

연구

JoVE Journal

Developmental Biology

발생생물학

출처: Wagner, K. et al., eGFP 태그가 지정된 단백질을 사용하여 초파리 광수용체 세포의 막 단백질 이동을 연구합니다.J. vis. 특급 (2022). 이 동영상은 eGFP 표지된 TRPL 단백질을 사용하여 초파리 광수용체 세포에서 막 단백질 이동을 시각화하는 방법을 보여줍니다. 이미징을 위한 형질전환 파리의 준비, 광수용체 세포의 형광 이미지 캡처, 횡문막에서 상대적 eGFP 형광을 측정하여 TRPL 트래픽의 정량화에 대해 자세히 설명합니다.

Drosophila Photoreceptor Cells의 막 단백질 이동에 대한 연구

이 논문은 직접 번데기를 통해 이미지 세포 행동에 빠른 스캐닝 공 초점 현미경을 사용하는 방법을 보여줍니다. 그대로 번데기 경우를 떠남으로서,이 방법은 직접 공부하기 어려운 초파리 개발의 단계에서 관찰하고 역동적 인 세포 프로세스의 측정을 할 수 있습니다.

의 번데기 케이스를 통해서 영상<em&gt; 초파리</em

이 프로토콜에 설명된 직립 이미징 방법을 사용하면 발달 중인 Drosophila melanogaster 난자의 극을 자세히 시각화할 수 있습니다.  이 최종 보기는 여포 상피에서 여러 세포 유형의 배열과 형태에 대한 새로운 관점을 제공합니다.

의 수직 이미지<em&gt; 초파리</em&gt; 계란 챔버

셀 다른 형태학을 표시 하 고 그들의 이웃과 상호 작용의 다양 한 설정. 이 프로토콜에는 단일 세포의 형태를 공개 하 고 확고 Gal4/UAS 식 시스템을 사용 하 여 세포 세포 상호 작용을 조사 하는 방법을 설명 합니다.

높은 해상도 단일 셀 형태학 초파리 에서 명과의 세포 상호 작용을 공부 하 고 다 색 FlpOut 기술의 응용

여기에 제출된 것은 손상되지 않은 조직에서 초해상도 라이브 세포 이미징을 위한 프로토콜입니다. 우리는 그것의 네이티브 조직 환경에 있는 높게 민감한 성인 줄기 세포 인구를 화상 진찰을 위한 조건을 표준화했습니다. 이 기술은 살아있는 조직에서 생물학적 현상의 직접적인 관찰을 허용하는 시간적 및 공간 해상도의 균형을 포함한다.

세포 전 형 구조의 슈퍼 해상도 라이브 세포 이미징

초기 초파리 배아에서는 많은 소기관이 운동성입니다. 원칙적으로, 그들은 특정 형광 프로브를 통해 실시간으로 이미징 될 수 있지만, 달걀 껍질은 배아에 직접 적용하는 것을 방지합니다. 이 프로토콜은 미세주입을 통해 이러한 프로브  를 도입한 다음 입자 이미지 속도측정법을 통해 벌크 소기관 움직임을 분석하는 방법을 설명합니다.

초파리 배아에서 지질 함유 소기관의 세포 골격 의존성 밀매 시각화

여기에서, 광수용체 막 단백질의 국소화 및 eGFP 형광을 이용한 초파리 화합물 안구에서의 망막 변성의 평가를 위한 비침습적 방법이 기재되어 있다.

eGFP 태그 단백질을 사용하여 초파리 광수용체 세포에서 막 단백질 밀매를 연구하기

여기에서는 기존의 레이저 스캐닝 컨포칼 현미경을 사용하여 초고해상도 이미징을 달성하기 위해 초기 초파리 배아에서 확장 현미경을 구현하기 위한 프로토콜을 제시합니다.

초고해상도 이미징을 위해 확장 현미경을 사용하여 전체 마운트 초파리 배아를 물리적으로 확대

이 프로토콜들은 대조군과 돌연변이 초파리 배아 상피에서 주름 격격 접합부의 조직 및 폐쇄 기능을 어떻게 특성화할 수 있는지 개괄합니다.

초파리 배아 상피에서 코어 주름 부분 격지 접합 단백질을 규명하기 위한 면역염색 및 염료 침투 실험

라이브 공 촛점 이미징 개발을 연구하는 강력한 도구로 생물 학자를 제공합니다. 여기, 우리 애기 꽃을 개발하는 라이브 공 촛점 이미징에 대한 자세한 프로토콜을 제시한다.

애기 장대 꽃 개발의 공 촛점 이미징 라이브

배우세요 초파리 난소에서 기저막 단백질의 세포 내 밀매 및 분비를 공초점 및 Airyscan 초고해상도 현미경으로 시각화하는 방법을. 이 기법은 발달생물학 및 세포생물학 연구에 활용됩니다.

초 파리 Oogenesis 동안 양극화 된 세포 내 밀매 및 기저막 단백질의 분비의 공초점 및 수퍼 해상도 이미징

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