Name: 마우스의 심방 세동 감수성을 평가하기위한 경식도 심방 페이싱의 최적화 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-06-29T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 5 s
Description: 배우세요 마우스 심방 세동 감수성 평가를 위한 경식도 심방 페이싱 최적화 방법을. 동일 동물에서 반복 테스트가 가능하여 결과 재현성을 높이고, 전기생리학적 특성 분석에 활용할 수 있습니다.

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그림 2 는 BioRender.com 로 작성되었습니다. 이 작업은 국립 보건원 (HL096844 및 HL133127)의 국립 심장, 폐 및 혈액 연구소의 보조금으로 지원되었습니다. 미국 심장 협회 (2160035, 18SFRN34230125 및 903918 [MBM]); 및 국립 보건원 (UL1 TR000445)의 번역 과학 발전을위한 국립 센터.

이 절차는 Vanderbilt 기관 동물 관리 및 사용위원회의 승인을 받았으며 실험실 동물의 관리 및 사용 가이드와 일치합니다. 상기 프로토콜은 AF 감수성의 유전자9 및 획득된10 (예를 들어, 고혈압) 마우스 모델 둘 다를 사용하여 개발되었다. 작업자는 연구중인 마우스의 표현형에 대해 눈이 멀었다.
1. 동물 선택
<ol><li>유전 모델의 경우, 마우스를 격주(즉, 격주로) 하기 설명된 바와 같이 심방 페이싱(단계 6 참조)하여 AF 감수성의 최적 기간을 결정한다.<ol><li>생후 8주부터 격주로 페이싱을 시작합니다. 야생형 쓰레기를 대조군으로 사용하여 변동성을 줄입니다. AF 표현형이 발달하지 않을 수 있으므로 남녀 모두를 연구하십시오9.</li>
	</ol></li>
	<li>획득한 모델의 경우, 마우스가 신체적 성숙(~12주령)에 도달한 후 페이싱을 수행합니다10. 위에서 언급했듯이 남녀 모두를 연구하십시오.</li>
	<li>이러한 예비 연구 중에 버스트 페이싱8 (고정 페이싱 사이클 길이[CL] 사용)과 감소 페이싱7 (점진적으로 더 짧은 페이싱 CL 사용)을 모두 수행하여 최적의 페이싱 모드를 결정합니다. 각 절차를 최소 24 시간 간격으로 분리하십시오. 참고: 점점 더 많은 수의 마우스가 연구됨에 따라 축적된 데이터를 검토하여 AF에 민감한 마우스에서 AF를 촉진하지만 대조군은 아닌 최적의 연령, 성별 및 페이싱 모드를 결정합니다.<ol><li>일부 모델은 모든 정의가 아닌 하나에 대해 AF 표현형을 표시할 수 있으므로 AF 감수성의여러 정의(예: AF 에피소드 수8, 총 AF 지속 시간9, AF 발생률4 및 지속 AF발생률, 일반적으로 10초 11 또는 15초 12, 심지어 최대 5분13,14)를 사용하여 데이터를 분석합니다. 참고: AF 에피소드와 AF 감수성의 정의는 발표된 연구 4,7마다 다릅니다. AF 에피소드8은 일반적으로 최소 1초 동안 불규칙하게 불규칙한 심실 반응이 발생하는 빠른 심방 활동으로 정의됩니다(그림 1). AF 외에도 심방 페이싱은 규칙적이거나 불규칙한 심실 반응으로 심방 조동을 유발할 수 있습니다.</li>
	</ol></li>
	<li>추가 마우스에 대한 후속 연구를 위해 최적화된 모델별 파라미터와 AF 감수성 정의를 사용합니다.</li>
</ol>2. 동물 준비
<ol><li>100% 산소의 1L/min에 3% 이소플루란( 재료 표 참조)을 사용하여 유도 챔버에서 마우스를 마취합니다. 알림: 이소플루란은 유해합니다. 피부나 눈을 자극할 수 있으며 다른 중추신경계 독성 중에서도 현기증, 피로, 두통을 유발할 수 있습니다. 적절한 청소 방법(예: 활성탄 캐니스터)을 사용하여 환기가 잘 되는 곳에서 사용하십시오.</li>
	<li>페달 반사가 사라진 후 뒷다리를 패드 표면에 테이프로 붙인 상태에서 체온을 약 37°C로 유지하도록 설계된 가열 패드의 앙와위 위치에 마우스를 놓습니다.</li>
	<li>건조를 방지하기 위해 눈에 윤활 눈 연고를 바르십시오.</li>
	<li>마취 마스크를 마우스의 코 위에 단단히 놓습니다. 100% 산소 1L/min에 1% 이소플루란을 사용하여 마취 유지를 시작합니다. 쥐가 의무적 인 코 호흡자이므로 콧 구멍이 막히지 않도록하십시오.</li>
	<li>생체 증폭기 및 데이터 수집 하드웨어에 연결된 27 G ECG 바늘 전극( 재료 표 참조)을 앞다리 내로 피하 배치하여 표면 심전도(ECG, 리드 I)를 얻습니다. 바늘 전극을 왼쪽 뒷다리에 배치하여 신호를 접지하십시오.</li>
</ol>3. 카테터 배치
<ol><li>마우스에서 이소 플루 란 마스크를 간단히 제거하십시오.</li>
	<li>자극기와 자극 아이솔레이터( 재료 표 참조)에 연결된 2F 팔극 전극 카테터(전극 폭 및 간격 = 0.5mm)를 식도에 삽입합니다(그림 2).<ol><li>입에서 (목을 확장 한 상태에서) xiphoid 연골 바로 위까지의 거리와 비슷한 깊이로 삽입하십시오.</li>
	</ol></li>
	<li>이소플루란 마스크를 마우스의 콧구멍 위로 재배치합니다.</li>
	<li>분석 소프트웨어를 사용하여 ECG 리드 I의 지속적인 기록으로 데이터 수집을 시작합니다( 재료 표 참조).</li>
	<li>자극 아이솔레이터 모드를 양극성으로 조정합니다. 자극하는 동안 가장 말단 전극 쌍을 사용하십시오.</li>
	<li>포획이 가능하도록 식도 내에 카테터를 적절하게 배치합니다. 이렇게 하려면 부비동 CL보다 약간 짧은 CL에서 펄스 폭이 2ms인 1.5mA 자극을 적용합니다(예: 부비동 CL이 120ms인 경우 100ms의 CL 사용). 일관된 심방 포획이 얻어 질 때까지 카테터를 조심스럽게 배치하십시오.</li>
</ol>4. 임계 값 결정
<ol><li>심방 이완기 포획 임계 값 (TH)을 결정하려면 심방 포획에 사용되는 CL에서 펄스 폭이 2ms인 1.5mA에서 페이싱을 시작합니다. 심방 포획이 손실 될 때까지 자극 진폭을 0.05mA 씩 줄이고 포획 될 때까지 증가시킵니다. 참고: 일관된 심방 포획이 얻어지는 가장 낮은 진폭은 심방 TH입니다. 인공물 AF 유도9로 페이싱하는 동안 과도한 AV 블록에 의해 반사되는 높은 자극 진폭에서의 부교감 신경 자극에 대한 우려로 인해 최대 허용 TH는 0.75mA입니다. 필요한 경우 TH ≤0.75 mA를 달성하기 위해 카테터를 재배치하십시오.</li>
	<li>자극 진폭을 두 배 TH로 조정합니다.</li>
</ol>5. 전기 생리 학적 특성의 결정
<ol><li>AF 유도15를 위한 빠른 심방 페이싱 전에 부비동 결절 회복 시간(SNRT), 웬케바흐 주기 길이(WCL) 및 방실 유효 불응 기간(AVERP)을 포함한 전기생리학적 매개변수를 측정합니다.</li>
</ol>6. 심방 부정맥 감수성
<ol><li>다른 CL에서의 버스트 페이싱 또는 초기 연구에서 결정된 감소 페이싱을 사용하여 2ms의 펄스 폭으로 두 번 TH에서 페이싱을 수행합니다 (단계 1.1.-1.4).</li>
	<li>버스트 페이싱의 경우 15초 동안 50ms의 초기 CL에서 페이스를 유지하고 후속 열차는 40ms, 30ms, 25ms, 20ms 및 15ms 8,10의 CL에서 발생합니다. 진행하기 전에 회복할 수 있도록 각 페이싱 열차 후 30초 동안 페이싱을 일시 중지합니다. 페이싱 트레인 후에 AF가 발생하면 종료 후 30초 동안 기다렸다가 후속 페이싱을 진행하십시오.</li>
	<li>감소 페이싱의 경우 40ms의 CL에서 페이스를 유지하고 20ms에서 종료될 때까지 2초마다 CL을2ms씩 줄입니다7. 트리플리케이트16 또는 퀸투플리케이트17에서 페이싱 트레인을 수행하고 각 트레인 후 회복을 위해 30초 동안 일시 중지합니다. 위와 같이 AF가 발생하면 종료 후 30초 동안 기다렸다가 계속 진행하십시오. 참고: 예비 실험(즉, 1.1.-1.5단계) 중에 프로토콜 매개변수를 최적화할 때 5개의 트레인으로 감소 페이싱을 수행합니다. 사후 분석을 수행하여 3개 또는 5개의 열차가 가장 큰 감도를 제공하는지 확인합니다.</li>
	<li>마지막 페이싱 열차 이후 30초의 부비동 리듬 또는 AF의 10분 에피소드 후 중 먼저 도래하는 시점에 절차를 종료합니다.</li>
</ol>7. 사후 절차
<ol><li>데이터 수집을 중지합니다.</li>
	<li>카테터와 ECG 전극을 부드럽게 제거하십시오.</li>
	<li>마취를 중단하십시오.</li>
	<li>마취된 마우스를 케이지에 넣고 회복을 위해 10분 동안 관찰합니다.</li>
	<li>데이터 파일을 저장합니다. 연속 테스트의 경우 페이싱 절차를 반복하기 전에 최소 24시간 동안 기다리십시오.</li>
</ol>

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</ol>

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경식도 심방 페이싱은 동일한 동물에 대한 연속 연구를 허용할 뿐만 아니라 일반적으로 지속 시간이 심장 내 연구(~20분)보다 짧기 때문에 마취 사용과 전기 생리학적 매개변수에 미치는 영향을 최소화합니다. 
처음에는 각 개별 마우스 모델에 대해 방법을 최적화하는 것이 중요합니다. 노화는 정상 마우스(18, 19)에서 AF 유도성을 증가시키고, 개별 유전 모델은 제한된 기간에 걸쳐 AF 유도성을 입증할 수 있다. 격주로 파일럿 연구를 수행하면 AF 표현형 마우스는 유도 가능하지만 대조군 마우스는 유도되지 않는 연령 창을 결정할 수 있습니다. 한쪽 또는 양쪽 남녀가 유도성 AF9를 나타낼 수 있기 때문에 성별이 결정 요인이 될 수 있습니다. 또한, 특정 마우스는 한 가지 유형의 페이싱 모드에만 반응하여 AF 민감성을 나타낼 수 있는 반면,...

심방 세동 (AF)은 여러 후천적 및 유전 적 위험 요소에 대한 최종 공통 경로를 나타냅니다. AF 기질의 병태생리학적 메커니즘을 조사하는 연구의 경우, 마우스 모델은 유전자 조작의 용이성과 일반적으로 상이한 임상 표현형 1,2,3에 대해 인간에서 관찰된 AF 감수성을 재현한다는 사실을 고려할 때 유리하다. 그러나 마우스는 자발적인 AF4를 거의 개발하지 않으므로 도발적인 심방 페이싱 연구를 사용해야합니다.
프로그램 된 전기 자극 (PES)은 심장 내5 또는 경식도6 페이싱을 사용하여 쥐 심방 전기 생리학 및 AF 감수성을 평가하기 위해 수행 될 수 있습니다. 경식도 접근법은 생존 절차로서 특히 유리하지만, 그 사용은 수많은 발표 된 실험 프로토콜 7,8 및 재현성을 방해 할 수있는 가변성 원인9에 의해 복잡합니다. 또한 보고된 프로토콜 비교가 제한적으로 인해 적절한 페이싱 프로토콜을 선택하는 것이 어렵습니다.
현재 프로토콜은 재현성을 높이기 위해 쥐 AF 감수성을 평가하기 위한 모델별 경식도 PES 방법을 개발하기 위한 체계적인 전략을 활용하는 것을 목표로 합니다. 중요하게도, 초기 파일럿 연구는 연령, 성별 및 페이싱 모드 변동성을 고려하여 페이싱 프로토콜을 최적화하기 위해 수행되며, 페이싱은 결과를 혼란스럽게 할 수 있는 부주의한 부교감 신경 자극을 최소화하도록 설계되었습니다9.

<table><tbody><tr><td>27G ECG 전극</td><td>ADInstruments</td><td>MLA1204</td><td></td></tr><tr><td>2-F 팔극 전극 카테터</td><td>NuMED</td><td>CIBercath</td><td></td></tr><tr><td>활성탄 캐니스터</td><td>VetEquip</td><td>931401</td><td></td></tr><tr><td>분석 소프트웨어</td><td>ADInstruments</td><td>LabChart v8.1.13</td><td></td></tr><tr><td>생물학적 증폭기</td><td>ADInstruments</td><td>FE231</td><td></td></tr><tr><td>데이터 획득 하드웨어</td><td>ADInstruments</td><td>PowerLab 26T</td><td></td></tr><tr><td>눈 연고</td><td>MWI 수의학</td><td>NC1886507</td><td></td></tr><tr><td>가열 패드</td><td>Braintree Scientific</td><td>DPIP</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Piramal</td><td>66794-017-25</td><td></td></tr><tr><td>자극기</td><td>Bloom Associates</td><td>DTU-210</td><td></td></tr><tr><td>자극 절연체</td><td>세계 정밀 기기</td><td>모델 A365</td><td></td></tr></tbody></table>

마우스의 심방 세동 감수성을 평가하기위한 경식도 심방 페이싱의 최적화

Optimization of Transesophageal Atrial Pacing to Assess Atrial Fibrillation Susceptibility in Mice

심방 세동 (AF)에 대한 유전 적 및 후천적 위험 인자의 마우스 모델은 AF의 분자 결정 요인을 조사하는 데 가치있는 것으로 입증되었습니다. 프로그램된 전기 자극은 생존 절차로 경식도 심방 페이싱을 사용하여 수행할 수 있으므로 동일한 동물에서 연속 테스트가 가능합니다. 그러나 수많은 페이싱 프로토콜이 존재하여 재현성이 복잡합니다. 본 프로토콜은 연구 간의 재현성을 향상시키기 위해 모델 별 실험 매개 변수를 개발하기위한 표준화 된 전략을 제공하는 것을 목표로합니다. 예비 연구는 연구 당시의 연령, 성별 및 페이싱 프로토콜의 매개변수(예: 페이싱 모드 및 AF 감수성의 정의)를 포함하여 조사 중인 특정 모델에 대한 실험 방법을 최적화하기 위해 수행됩니다. 중요한 것은 높은 자극 에너지를 피하기 위해주의를 기울여야하는데, 이는 부주의 한 부교감 신경 활성화로 신경절 신경총의 자극을 유발할 수 있으며, 이는 페이싱 중 과장된 방실 (AV) 차단에 의해 나타나고 종종 인공물 AF 유도와 관련이 있습니다. 이 합병증을 나타내는 동물은 분석에서 제외해야합니다.

경식도 심방 페이싱 연구는 SNRT 및 AVERP와 AF 감수성6 을 결정하여 SA 및 AV 노드의 전기생리학적 특성을 평가합니다(그림 1). ECG 기록을 통해 P 파 지속 시간, PR 간격, QRS 지속 시간 및 QT / QTc 간격을 측정 할 수 있습니다. 빠른 심방 페이싱 동안 ECG를 지속적으로 기록하면 연구 중에 유도 된 에피소드 수, 에피소드의 누적 및 평균 지속 시간, 지속 된 AF 에피소드 수와 같은 AF 취약성 측정을 제공 할 수 있습니다. 페이싱 중 과도한 AV 차단의 에피소드는 페이싱으로 인한 부교감 신경 자극 기간을 나타낼 수 있으며(그림 3), 이는 연관된 AF가모델 자체의 병태생리학이 아니라 이 현상의 인공물임을 나타냅니다9.
<p class="jove_content biglegend" fo:keep-to...

본 프로토콜은 마우스에서 심방 세동 감수성을 평가하기 위해 경식도 심방 페이싱을 사용할 때 실험 파라미터의 최적화를 설명합니다.

Mouse models of genetic and acquired risk factors for atrial fibrillation (AF) have proven valuable in investigating the molecular determinants of AF. ...

경식도 심방 페이싱을 사용하여 프로그래밍 된 전기 자극은 마우스의 심방 세동에 대한 전기 생리 학적 특성과 감수성을 결정할 수 있습니다. 여기에서는 재현성을 최적화할 수 있는 프로토콜 개발을 위한 표준화된 절차를 설명했습니다. 심방 페이싱에 대한 경식도 접근법은 일반적으로 생존 절차이므로 동일한 동물에서 연속 테스트가 가능합니다.프로토콜 개발을 위한 중요한 구성 요소에는 연구 중인 모델의 실험 매개변수를 최적화하기 위한 초기 팔레트 연구와 페이싱 유발 부교감 신경 자극으로 인한 부정맥 식별이 포함됩니다. 유전 모델의 경우, 마우스에 격주로 심방 페이싱을 실시하고, AF 감수성의 최적 기간을 결정하기 위해 8주령부터 시작하여, AF 표현형이 발달하지 않을 수 있으므로 남녀 모두를 연구한다. 획득 한 모델의 경우, 마우스가 신체적 성숙에 도달 한 후 페이싱을 수행하십시오.성숙도는 일반적으로 12주에 달성되지만 실험 모델에 필요한 경우 연령을 조정합니다. 버스트 페이싱과 감소 페이싱을 모두 수행하여 최적의 페이싱 모드를 결정합니다. 각 절차를 최소 24 시간으로 분리하십시오.AF 민감성에 대한 여러 정의를 사용하여 데이터를 분석합니다. 추가 마우스에 대한 후속 연구를 위해 최적화된 모델별 파라미터와 AF 감수성의 정의를 사용합니다. 페달 반사가 사라진 후 마취 된 마우스를 뒷다리를 패드 표면에 테이프로 붙인 상태에서 체온을 섭씨 약 37 도로 유지하도록 설계된 가열 패드의 앙와위 자세에 놓습니다.생체 증폭기 및 데이터 수집 하드웨어에 연결된 27개의 게이지 심전도 바늘 전극을 뒷다리의 접지 전극과 함께 앞다리 내로 피하 배치하여 표면 심전도 리드를 얻는다. 자극기와 자극 아이솔레이터에 연결된 2-French 팔극 전극 카테터를 식도에 삽입합니다. 목을 확장 한 상태에서 입에서 검상구 연골 바로 위까지의 거리와 비슷한 깊이로 삽입하십시오.분석 소프트웨어를 사용하여 ECG 리드 1의 지속적인 기록으로 데이터 수집을 시작하십시오. 포획이 가능하도록 식도 내에 카테터를 적절하게 배치합니다. 이렇게 하려면 부비동 주기 길이보다 약간 짧은 주기 길이에서 펄스 폭이 2밀리초인 1.5밀리암페어 자극을 적용합니다.일관된 심방 포획이 얻어 질 때까지 카테터를 조심스럽게 배치하십시오. 심방 이완기 포획 역치를 결정하려면 심방 포획에 사용되는주기 길이에서 2 밀리 초의 펄스 폭으로 1.5 밀리 암페어에서 페이싱을 시작하십시오. 심방 포획이 손실 될 때까지 자극 진폭을 0.05 밀리 암페어 씩 줄이고 포획 될 때까지 후속 증가.부주의한 페이싱으로 인한 부교감 신경 자극을 최소화하기 위해 가능한 가장 낮은 페이싱 임계값을 얻습니다. 자극 진폭을 임계값의 두 배로 조정합니다. AF 유도를 위한 빠른 심방 페이싱 전에 부비동 노드 회복 시간, Wenckebach 주기 길이 및 방실 유효 불응 기간을 포함한 전기 생리학적 매개변수를 측정합니다.초기 연구에서 결정된 대로 다른 주기 길이의 버스트 페이싱 또는 감소 페이싱을 사용하여 펄스 폭이 2밀리초인 임계값의 두 배에서 페이싱을 수행합니다. 버스트 페이싱의 경우 초기 사이클 길이 50밀리초에서 15초 동안 페이스를 유지한 다음 사이클 길이가 40, 30, 25, 20 및 15밀리초인 트레인이 이어집니다. 감소 페이싱의 경우 3-5 개의 열차를 수행하고 40 밀리 초의 사이클 길이로 페이스를 수행하고 20 밀리 초에 종료 될 때까지 2 초마다 2 밀리 초 씩 줄입니다.마지막 페이싱 트레인 후 부비동 리듬 30초 후 또는 AF 에피소드 10분 후 중 먼저 도래하는 시점 후에 절차를 종료합니다. 카테터와 ECG 전극을 부드럽게 제거하십시오. 직렬 테스트의 경우 페이싱 절차를 반복하기 전에 최소 24시간 동안 기다리십시오.ECG 기록을 통해 P 파 지속 시간, PR 간격, QRS 지속 시간, QT 및 QTC 간격을 측정 할 수있었습니다. 빠른 심방 페이싱 동안 ECG의 연속 기록은 연구 동안 유도 된 AF의 각 에피소드의 기록을 제공했습니다. 이 데이터로부터 에피소드의 누적 및 평균 지속 시간과 지속 AF 에피소드 수가 기록되었습니다.페이싱 중 과도한 방실 차단의 에피소드는 페이싱 유도 부교감 신경 자극 기간을 나타내며, 이는 관련 AF가 모델 자체의 병태생리학이 아니라 이 현상의 인공물임을 나타냅니다. 이것은 후방 좌심방에 위치한 신경절 신경총의 부주의 한 자극으로 인해 부교감 신경 활성화가 발생했습니다. 이러한 유형의 부정맥 유도는 대조군 마우스에서 AF의 발생률을 증가시키고 실험 그룹 내에서 더 큰 부정맥 변동성을 유발합니다.이러한 오염 특징을 감안할 때 이러한 조건에서 AF를 경험하는 동물은 분석에서 제외해야합니다. 이 실험 전략을 사용할 때 초기 파일럿 연구와 부주의한 AF 유도를 유발하는 부교감 신경 자극의 인식은 프로토콜 최적화 및 연구 재현성에 특히 중요합니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

프로그램된 전기 자극은 심장의 전도 특성을 결정하는 능력, 다양한 서성 거려 프로토콜을 사용하여 심장 arrhythmias를 유도하고 종료할 수있는 가능성을 제공합니다. transvenous 카테터를 사용하여 intracardiac의 electrogram 레코딩은 arrhythmogenic 기판을 확인하기 위해 프로그램된 전기 자극 프로토콜을 다음과 생쥐에서 구할 수 있습니다.

마우스에 프로그램된 전기 자극을

여기에, 우리는 높은 공간 및 시간 해상도, 마우스 우심방 특히 중국 - 심방 노드에서 전기 활동의 광학 매핑을위한 프로토콜을 제시한다.

마우스 중국 - 심방 노드의 고해상도 광학 매핑

이 프로토콜 설명 electrophysiological murine atria는 높은 시간적, 공간적 해상도, 막 전압의 듀얼 녹음을 포함 한 광학 매핑 시스템을 활용 하 여 평가 하 고 캘리포니아2 + 에서 과도 프로그램 특수 전극 카 테 터를 통해 자극입니다.

고해상도 광학 매핑 Murine Atria electrophysiological 평가

여기에서는 기본 ECG 매개 변수 및 일반적인 부정맥에 대한 쥐의 장기 심전도 (ECG) 데이터를 분석하기위한 반자동 접근 방식에 대한 단계별 프로토콜을 제시합니다. 데이터는 살아 있는 마우스와 깨어 있는 마우스의 이식형 원격 측정 송신기로 얻고 Ponemah 및 해당 분석 모듈을 사용하여 분석합니다.

마우스의 부정맥을 감지하기 위한 장기 심전도 기록 분석

이 프로토콜은 마우스의 페이스메이킹 결함을 식별하기 위해 전체 시노어심 노드 조직의 미세 전극 어레이 기록을 사용하여 본질적인 심장 발사 속도를 측정하는 새로운 방법론을 설명하는 것을 목표로합니다. 약리학 에이전트는 또한 본질적인 페이스 메이킹에 그들의 효력을 공부하기 위하여 이 방법에 소개될 수 있습니다.

중고심 노드 발사 속도의 마이크로 전극 어레이 기록으로 마우스의 본질적인 심장 페이스메이킹 결함을 식별합니다.

우리는 심방 근 병증과 심방 세동 (AF)을 연구하기 위해 미니 피그에서 멸균 심낭염 모델을 설명합니다. 우리는 외과 및 마취 기술, 혈관 접근 전략 및 AF의 유도성을 연구하기위한 프로토콜을 제시합니다.

Aachener Minipigs의 멸균 심낭염 심방 근 병증 및 심방 세동을위한 모델로서

본 연구는 쥐에서 심방 세동 (AF)의 효율적인 유도를위한 경식도 심방 파열 페이싱의 실험 프로토콜을 설명합니다. 이 프로토콜은 건강한 또는 리모델링 된 심장을 가진 쥐에서 사용될 수 있으므로 AF 병리 생리학 연구, 새로운 치료 목표 식별 및 새로운 치료 전략 평가가 가능합니다.

쥐의 심방 세동 유도를위한 경식도 심방 파열 페이싱

우리는 전임상 연구에서 인공 조율 및 심부전 발달에 활용할 수 있는 장기 심장 조율의 최소 침습적 레포린 모델을 제시합니다.

만성 심장 박동의 번역 토끼 모델

본 프로토콜은 심부전의 마우스 모델에서 이완기 기능을 평가하는 데 유용한 도구 역할을 하는 경식도 페이싱을 통해 압력-부피 관계를 얻는 방법을 설명합니다.

쥐 심부전 모델에서 심박수 의존적 이완기 기능 평가를 위한 속도 제어 절차

우심부전(RHF)은 우측 심장 확장과 비대가 특징이며, 심실 및 심방 기능 부전을 유발합니다. RHF와 관련된 심폐 질환은 심장 부정맥의 위험 증가를 동반합니다. 이 논문은 향상된 심실 및 심방 부정맥 형성과 관련된 폐동맥 밴딩 유도 RHF의 표준화된 모델을 설명합니다.

폐동맥 밴딩을 이용한 우측 심장 리모델링 및 부정맥의 쥐 모델

배우세요 마우스 심방 세동 감수성 평가를 위한 경식도 심방 페이싱 최적화 방법을. 동일 동물에서 반복 테스트가 가능하여 결과 재현성을 높이고, 전기생리학적 특성 분석에 활용할 수 있습니다.

마우스의 심방 세동 감수성을 평가하기위한 경식도 심방 페이싱의 최적화

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