Name: 바이러스 전파 및 세포 기반 비색 정량화 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-04-07T14:55:00.000+00:00
Duration: 7 min 26 s
Description: 배우세요 Zika 바이러스를 Vero 세포에서 증식시키고 세포 기반 비색 면역검출법으로 정량화하는 방법을. 혼합된 바이러스 혈청형을 식별하고 고속 스크리닝에 활용할 수 있는 효율적인 프로토콜입니다.

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이 연구는 장기 연구 보조금 제도(LRGS MRUN Phase 1: LRGS MRUN/F1/01/2018)와 고등 기관 우수 센터(HICoE) 프로그램(MO002-2019)에 대한 자금 지원에 따라 말레이시아 고등 교육부의 지원을 받았습니다. 초점 형성 분석을 위한 염색 워크플로우를 보여주는 이 연구의 그림 3은 BioRender.com(2022)의 "DAB Immunohistochemistry"에서 채택한 것입니다. https://app.biorender.com/biorender-templates/t-5f3edb2eb20ace00af8faed9-dab-immunohistochemistry 에서 가져옴.

1. 바이러스 전파
<ol><li>세포 준비<ol><li>10% 소 태아 혈청(FBS) 및 2mM L-글루타민이 보충된 Dulbecco's modified Eagle's medium(DMEM) 12mL가 포함된 75cm2 세포 배양 플라스크에서 Vero 세포를 성장시킵니다( 재료 표 참조). 5 % CO2 로 37 ° C의 세포 배양 인큐베이터에서 세포를 배양합니다.</li>
		<li>현미경으로 세포를 모니터링하십시오. 세포가 70%-90% 밀도에 도달하면 사용할 준비가 된 것입니다(그림 1A). 알림: Vero 셀은 약 24시간17분마다 두 배가 됩니다. 1:10의 희석은 75cm2 플라스크에서 80%-90% 밀도에 도달하는 데 3-4일이 소요되어야 합니다. 매일 또는 격일로 세포를 모니터링합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>세포 단층의 감염<ol><li>10mL 혈청학적 피펫을 사용하여 세포 배양 플라스크에서 성장 배지를 제거합니다. 5mL 혈청학적 피펫을 사용하여 Dulbecco의 인산염 완충 식염수(dPBS) 3mL로 플라스크를 2회 헹굽니다. 알림: 플라스크/플레이트에서 버려진 감염성 액체 폐기물을 소독하기 위해 10% 차아염소산나트륨이 포함된 비커를 준비해야 합니다.</li>
		<li>무혈청 DMEM 2mL(FBS 없이 2mM L-글루타민이 보충된 DMEM)와 ZIKV 접종물 20μL를 세포 배양 플라스크에 넣습니다. 바이러스 흡착을 위해 실온에서 1시간 동안 부드럽게 흔들면서 플라스크를 배양합니다. 참고: 초기 ZIKV 재고의 적정은 ZIKV 접종 첨가량(2단계)을 결정하는 데 도움이 됩니다. 주의: ZIKV는 생물안전 레벨 2(BSL-2) 병원체로 분류됩니다. ZIKV가 포함된 물질에 대한 모든 절차는 인증된 생물 안전 캐비닛에서 수행되어야 하며 적절한 개인 보호 장비를 사용하여 모든 실험실 표준 운영 절차(SOP)를 따라야 합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>오버레이 매체 추가<ol><li>1시간 배양 후 5mL 혈청학적 피펫을 사용하여 희석된 바이러스 접종물을 제거하고 폐기합니다. 세포 배양 플라스크를 3mL의 dPBS 2x로 헹굽니다.</li>
		<li>감염된 세포를 유지하기 위해 세포 배양 플라스크에 12mL의 유지 배지(2% FBS, 2mM L-글루타민 및 100U/mL 페니실린-스트렙토마이신이 보충된 DMEM)를 추가합니다.</li>
		<li>감염된 Vero 세포를 37°C의 세포 배양 인큐베이터에서 5%CO2로 3일 동안 배양합니다. 알림: 현미경으로 감염된 Vero 세포의 CPE를 매일 모니터링합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>ZIKV를 함유한 세포 배양 상층액의 수확<ol><li>감염 후 3일째에 세포 반올림 및 분리(CPE)를 관찰할 수 있습니다(그림 1B-D). 10mL 혈청학적 피펫을 사용하여 ZIKV가 포함된 세포 배양 상층액을 50mL 원심분리 튜브로 수확합니다.</li>
		<li>0.22μm 폴리에테르설폰 주사기 필터( 재료 표 참조)를 사용하여 세포 배양 상층액을 여과합니다. 여과된 세포 배양 상층액 500μL를 2.0mL 스크류 캡 튜브에 분취하고 나중에 사용할 때까지 -80°C에서 보관합니다. 참고: 수확된 ZIKV는 장기 보관을 위해 -80°C에서 보관할 수 있습니다. 주의 : 주사기 바늘을 사용하는 경우 바늘이 피부에 구멍을 뚫을 수 있으므로 추가 예방 조치를 취해야 합니다. 실험실 SOP를 수립해야 합니다.</li>
	</ol></li>
</ol>2. 바이러스 정량 분석
<ol><li>세포 준비<ol><li>지정된 플레이트(24-웰 플레이트: 0.5mL/웰, 7.5 x 104 세포/웰, 96-웰 플레이트: 0.1mL/웰, 1.5 x 104 세포/웰)에 Vero 세포를 시드하고 5%CO2로 37°C의 세포 배양 인큐베이터에서 플레이트를 밤새 배양합니다. 참고: 테스트할 5가지 시점이 있습니다(24웰 플레이트: 감염 후 48시간, 60시간, 72시간, 84시간 및 96시간, 96웰 플레이트: 감염 후 24시간, 36시간, 48시간, 60시간 및 72시간); 따라서 각 시점에 대해 하나의 접시를 준비하십시오.</li>
		<li>24시간 배양 후 세포가 70%-90% 밀도에 도달하면(그림 1E) 플레이트는 감염 준비가 된 것입니다. 세포 단층의 감염 전에 희석된 바이러스 스톡을 준비합니다(단계 2.2).</li>
	</ol></li>
	<li>바이러스 희석<ol><li>24웰 및 96웰 플레이트의 경우 각 플레이트에 대해 6개의 멸균 1.5mL 미세 원심분리기 튜브를 준비하여 음성 대조군을 포함하여 10배 희석(10-1 에서 최대 10-5)을 수행합니다. 24웰 플레이트에 대한 실험 설정을 위해 6개의 마이크로 원심분리기 튜브 모두에 450μL의 무혈청 DMEM을 추가합니다. 96웰 플레이트에 대한 실험 설정을 위해 135μL의 무혈청 DMEM을 6개의 튜브에 추가합니다. 알림: 10배 연속 희석을 수행하기 전에 내용물의 희석을 나타내기 위해 각 튜브에 명확하게 라벨을 붙이십시오.</li>
		<li>연속 희석을 수행하려면 24웰 플레이트 실험 설정을 위해 1단계에서 수확한 50μL의 ZIKV 스톡을 450μL의 무혈청 DMEM이 포함된 10-1 튜브에 추가합니다. 96웰 플레이트 실험 설정의 경우, 135μL의 무혈청 DMEM이 포함된 10-1 튜브에 15μL의 ZIKV 스톡을 추가합니다.</li>
		<li>각 튜브를 소용돌이치게 하여 바이러스와 배지를 혼합합니다. 이것은 첫 번째 10배 희석입니다. 참고: 정확한 연속 희석을 위해서는 각 희석 튜브에서 바이러스와 배양 배지를 적절하게 혼합해야 합니다.</li>
		<li>24웰 플레이트 실험 설정의 경우 새 피펫 팁을 사용하여 10-1 튜브를 재현탁하고 50μL의 희석된 ZIKV를 10-2 튜브에 두 번째 10배 희석으로 옮깁니다. 96웰 플레이트 실험 설정의 경우 새 피펫 팁을 사용하여 10-1 튜브를 재현탁하고 15μL의 희석된 ZIKV를 10-2 튜브에 두 번째 10배 희석으로 옮깁니다.</li>
		<li>5번째 튜브까지 2.2.4단계를 네 번 반복합니다(음성 대조군 제외). 알림: 교차 오염을 방지하기 위해 각 피펫팅 단계 후에 새 피펫 팁을 사용하십시오.</li>
	</ol></li>
	<li>세포 단층의 감염<ol><li>각 웰(24웰 플레이트: 0.5mL/웰, 96웰 플레이트: 0.1mL/웰)에서 조절된 배지를 제거하고 폐기합니다.</li>
		<li>dPBS 2x(24웰 플레이트: 300μL/웰, 96웰 플레이트: 60μL/웰)로 각 웰을 헹굽니다.</li>
		<li>가장 높은 희석액에서 가장 낮은 희석액으로 작업하면서 연속적으로 희석된 각 바이러스 접종물을 웰(24웰 플레이트: 200μL/웰, 96웰 플레이트: 40μL/웰)에 추가합니다. 알림: 각 희석액의 감염은 복제된 웰에서 수행됩니다. 감염되지 않은 두 개의 우물을 음성 대조군으로 유지합니다. 혼동을 피하기 위해 플레이트와 웰에 명확하게 라벨을 붙입니다. 교차 오염을 방지하기 위해 각 피펫팅 단계 후에 피펫 팁을 교체하십시오.</li>
		<li>바이러스 흡착을 허용하기 위해 실온에서 1시간 동안 부드럽게 흔들어 플레이트를 배양합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>오버레이 세포 배양 배지 추가<ol><li>배양 1시간 후 바이러스 현탁액을 제거하고 가장 낮은 농도에서 가장 높은 농도로 폐기합니다.</li>
		<li>감염된 세포를 dPBS 2x(24웰 플레이트: 300μL/웰, 96웰 플레이트: 60μL/웰)로 세척합니다.</li>
		<li>웰을 DMEM(2% FBS, 2mM L-글루타민 및 100U/mL 페니실린-스트렙토마이신 보충) 및 1.5% 저점도 카르복시메틸 셀룰로오스(CMC, 재료 표 참조)로 오버레이합니다(24웰 플레이트: 1mL/웰, 96웰 플레이트: 0.2mL/웰).</li>
		<li>5 % CO2 를 사용하여 37 ° C의 세포 배양 인큐베이터에서 플레이트를 배양합니다. 알림: 이 잠복기 동안 플레이트를 방해하지 마십시오.</li>
		<li>다양한 시점(24웰 플레이트: 감염 후 48시간, 60시간, 72시간, 84시간 및 96시간, 96웰 플레이트: 감염 후 24시간, 36시간, 48시간, 60시간 및 72시간)에서 염색을 위해 플레이트를 꺼냅니다.</li>
	</ol></li>
</ol>3. 염색
<ol><li>세포 고정<ol><li>특정 배양 시간(24웰 플레이트: 감염 후 48시간, 60시간, 72시간, 84시간 및 96시간, 96웰 플레이트: 감염 후 24시간, 36시간, 48시간, 60시간 및 72시간) 후 오버레이 배지를 제거 및 폐기하고 1x PBS로 세포를 3번 세척합니다. 96웰 플레이트의 경우, 오버레이 배지를 제거 및 폐기하고 멀티채널 피펫을 사용하여 60μL/웰 1x PBS로 세포를 3번 세척합니다.</li>
		<li>4% 파라포름알데히드를 추가하여 세포를 고정합니다(24웰 플레이트: 300μL/웰, 96웰 플레이트: 60μL/웰). 플레이트를 실온에서 20분 동안 배양합니다. 주의 : 파라 포름 알데히드는 고체 중합 포름 알데히드입니다. 물과 혼합하거나 가열할 때 포름알데히드 가스를 방출하는 가연성, 고체, 백색 결정성 분말입니다. 파라포름알데히드 사용과 관련된 모든 절차는 포름알데히드 함유 화학 물질에 대한 실험실 SOP에 따라 인증된 화학 흄 후드 또는 승인된 배기 인클로저에서 수행해야 합니다.</li>
		<li>20분 후 파라포름알데히드를 버리고 1x PBS로 세포를 3번 세척합니다. 3.2-3.5단계에 따라 투과화, 차단 및 항체 배양을 수행합니다. 알림: 4% 파라포름알데히드를 폐기할 때는 대학 또는 기관의 폐기물 처리 절차를 따르십시오.</li>
	</ol></li>
	<li>세포 투과화<ol><li>1% 옥틸페녹시 폴리(에틸렌옥시)에탄올( 재료 표 참조)을 추가하여 세포를 투과시킵니다(24웰 플레이트: 200μL/웰, 96웰 플레이트: 40μL/웰). 플레이트를 실온에서 15분 동안 배양합니다.</li>
		<li>15분 후 옥틸페녹시 폴리(에틸렌옥시) 에탄올을 버리고 1x PBS로 세포를 3번 세척합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>블로킹<ol><li>3% 탈지유를 첨가하여 샘플의 비특이적 결합을 줄입니다(24웰 플레이트: 500μL/웰, 96웰 플레이트: 100μL/웰). 플레이트를 실온에서 2시간 동안 배양합니다.</li>
		<li>2시간 후 3% 탈지유를 버리고 1x PBS로 세포를 3번 세척합니다. 참고: 이것은 중지 지점입니다. 3% 탈지유를 첨가한 후 플레이트를 1차 항체 삽입 최대 2일 전까지 4°C에서 보관할 수 있습니다.</li>
	</ol></li>
	<li>1차 항체 배양<ol><li>1% 탈지유(1:1,000 비율)에 희석한 항플라비바이러스 단클론 항체 4G2(클론 D1-4G2-4-15; 1차 항체, 재료 표 참조)를 추가합니다(24웰 플레이트: 200μL/웰, 96웰 플레이트: 40μL/웰). 플레이트를 37°C에서 1시간 동안 배양합니다.</li>
		<li>1시간 후 단클론 항체가 포함된 용액을 제거하고 1x PBS로 세포를 3회 세척합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>2차 항체 배양<ol><li>1% 탈지유(1:1,000 비율)에 희석한 고추냉이 과산화효소(HRP)( 재료 표 참조)와 접합된 염소 항마우스 IgG 2차 항체를 추가합니다(24웰 플레이트: 200μL/웰, 96웰 플레이트: 40μL/웰). 플레이트를 37°C에서 1시간 동안 배양합니다.</li>
		<li>1시간 후 2차 항체가 포함된 용액을 제거하고 1x PBS로 세포를 3회 세척합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>기질 배양<ol><li>3,3'디아미노벤지딘(DAB) 퍼옥시다제 기질( 재료 표 참조)을 추가하고 어두운 곳에서 30분 동안 플레이트를 배양합니다(24웰 플레이트: 200μL/웰, 96웰 플레이트: 40μL/웰). 30분 후 우물을 물로 씻어 반응을 멈춥니다.</li>
		<li>플레이트를 밤새 자연 건조시키고 플레이트가 완전히 건조된 후 초점 계수를 진행합니다.</li>
	</ol></li>
</ol>4. 바이러스 역가 측정
<ol><li>수동 초점 계수 프로세스(24-well 형식)<ol><li>초점은 실체 현미경으로 시각화할 수 있습니다. 50-200 초점이 생성되는 희석액을 선택합니다.</li>
		<li>선택한 희석액의 각 반복에 대한 초점을 계산합니다. 선택한 각 희석액에 대한 평균 병소 수를 계산합니다.</li>
		<li>아래 공식을 사용하여 각 샘플에 대한 mL당 병소 형성 단위(FFU/mL)를 계산합니다: FFU/mL = 평균 병소 수 계수/(희석 x 희석된 바이러스 추가량).</li>
	</ol></li>
	<li>자동 초점 계수 프로세스(96웰 형식)<ol><li>상용 소프트웨어 분석기에서 96웰 플레이트를 스캔합니다.<ol><li>소프트웨어( 재료 표 참조)를 두 번 클릭하여 엽니다.</li>
			<li>Switch Suites(스위치 제품군)를 클릭하고 제품군이 적용 가능한 제품군으로 전환되었는지 확인합니다(보충 그림 1A). 확인을 클릭합니다.</li>
			<li>스캔(Scan) > 전체 플레이트 스캔(Full plate scan)을 클릭하여 스캔을 시작합니다(보충 그림 1B).</li>
			<li>Dashboard( 대시보드 )를 클릭하여 캡처 형식이 96-well 형식인지 확인합니다(보충 그림 2A).</li>
			<li>센터링 모드를 "Auto Prealignment User Verified"로 선택합니다(보충 그림 2B).</li>
			<li>Eject( 추출 )를 클릭하여 플레이트를 로드합니다. 알림: 플레이트의 뚜껑을 열고 A열이 상단에 오도록 위쪽으로 놓습니다(보충 그림 3A).</li>
			<li>플레이트 이름을 입력하고 확인을 클릭합니다. 로드( Load )를 클릭하여 플레이트를 로드합니다.</li>
			<li>시작을 클릭하여 스캔을 시작합니다. 그런 다음 "위, 아래, 왼쪽, 오른쪽" 버튼을 사용하여 A1, A12 및 H1의 위치를 보정하고 확인을 클릭합니다(보충 그림 3B). 알림: 소프트웨어가 각 웰 스캔을 시작합니다.</li>
			<li>스캔이 완료되면 개요 이미지가 나타납니다. 닫기를 클릭합니다.</li>
			<li>Back to switchboard(스위치보드로 돌아가기)를 클릭하여 스캔을 종료합니다.</li>
		</ol></li>
		<li>소프트웨어를 사용하여 96웰 플레이트를 계산합니다.<ol><li>Count > Smart Count를 클릭합니다.</li>
			<li>소프트웨어에 "1/5단계: 계산할 플레이트 선택"이 표시됩니다. 플레이트 로드(Load plate(s))를 클릭합니다. 전체 폴더를 선택하고 선택을 클릭하여 스캔한 플레이트를 가져옵니다(보충 그림 4A).</li>
			<li>소프트웨어에 "2/5단계: 계수 매개변수 정의"가 표시됩니다. 매개변수 조정을 클릭하면 매개변수가 표시됩니다(확산 프로세스, 소형/일반/대형/최대/최대 +1; 스폿 분리, 계수 면적, 배경 균형, 섬유 제거, 게이팅). 알림: 하나의 우물로 시작하여 앞뒤로 확인하여 모든 우물에 가장 적합한 설정을 찾으십시오.</li>
			<li>완료되면 Next(다음 )를 클릭합니다(보충 그림 4B).</li>
			<li>소프트웨어에 "3/5단계: 웰 선택/선택 취소"가 표시됩니다. 계산할 웰 선택이 완료되면 다음을 클릭하여 계속 진행합니다. 알림: 계산하도록 선택한 웰은 각 웰의 오른쪽 상단 모서리에 "C"로 표시됩니다(보충 그림 5A).</li>
			<li>소프트웨어에 "4/5단계: 출력 설정"이 표시됩니다. 출력 설정 보기/수정 을 클릭하여 설정(예: 이미지 형식)이 적합한지 확인합니다. Save and Exit(저장 및 종료 )를 클릭합니다> Next(보충 그림 5B)).</li>
			<li>소프트웨어에 "5/5단계: 자동 계산 시작"이 표시됩니다. Start AutoCount(자동 계산 시작 )를 클릭합니다(보충 그림 6A).</li>
			<li>완료되면 자동 계산 종료를 클릭합니다.</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
	<li>상용 소프트웨어 분석기에서 품질 관리(QC)를 수행합니다.<ol><li>switchboard(교환대) 페이지에서 Quality Control(품질 관리) > Add plate(s)(플레이트 추가)를 클릭합니다. 계산된 플레이트를 가져올 전체 폴더를 선택하고 선택 > QC 시작(보충 그림 6B)을 클릭합니다.</li>
		<li>각 우물을 두 번 클릭하여 지점을 검사합니다. 카운트 를 클릭하여 얼룩을 제거합니다. 소프트웨어가 계산을 시작합니다. 알림: "Spots: Remove"가 선택되어 있는지 확인하십시오. 카운팅의 완료는 카운팅된 초점 수, 예를 들어 "30"으로 표시될 수 있습니다(보충 그림 7A).</li>
		<li>카운팅이 종료되면(카운팅된 초점 수로 표시, 예:ample "30"), "예"를 클릭하여 반점을 제거합니다(보충 그림 7B). 제거할 지점을 세 번 마우스 왼쪽 버튼으로 클릭합니다. 마우스 오른쪽 버튼을 클릭하여 완료한 다음 Yes( 예)를 클릭합니다.</li>
		<li>Finish Plate(마감 플레이트)를 클릭하고 QC가 완료되면 프로젝트 개요(Project Overview)로 이동합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>소프트웨어 분석기를 사용하여 이미징을 수행합니다.<ol><li>스캔, 계수 및 QC 플레이트 이미지를 확인합니다(그림 2).</li>
	</ol></li>
</ol>

<ol><li>Dick, G. W. A., Kitchen, S. F., Haddow, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+virus.+I.+Isolations+and+serological+specificity%5BTitle%5D)+AND+%22Transactions+of+the+Royal+Society+of+Tropical+Medicine+and+Hygiene%22%5BJournal%5D)">Zika virus. I. Isolations and serological specificity.</a> Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene. 46 (5), 509-520 (1952).</li>
<li>Dick, G. W. A., Kitchen, S. F., Haddow, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+virus.+II.+Pathogenicity+and+physical+properties%5BTitle%5D)+AND+%22Transactions+of+the+Royal+Society+of+Tropical+Medicine+and+Hygiene%22%5BJournal%5D)">Zika virus. II. Pathogenicity and physical properties.</a> Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene. 46 (5), (1952).</li>
<li>Duffy, M. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+virus+outbreak+on+Yap+Island%2C+Federated+States+of+Micronesia%5BTitle%5D)+AND+%22The+New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">Zika virus outbreak on Yap Island, Federated States of Micronesia.</a> The New England Journal of Medicine. 360 (24), 2536-2543 (2009).</li>
<li>Musso, D., Nilles, E. J., Cao-Lormeau, V. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+spread+of+emerging+Zika+virus+in+the+Pacific+area%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Microbiology+and+Infection%22%5BJournal%5D)">Rapid spread of emerging Zika virus in the Pacific area.</a> Clinical Microbiology and Infection. 20 (10), O595-O596 (2014).</li>
<li>Cao-Lormeau, V. -M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+virus%2C+French+polynesia%2C+South+pacific%2C+2013%5BTitle%5D)+AND+%22Emerging+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Zika virus, French polynesia, South pacific, 2013.</a> Emerging Infectious Diseases. 20 (6), 1085-1086 (2014).</li>
<li>Dupont-Rouzeyrol, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Co-infection+with+Zika+and+dengue+viruses+in+2+patients%2C+New+Caledonia%2C+2014%5BTitle%5D)+AND+%22Emerging+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Co-infection with Zika and dengue viruses in 2 patients, New Caledonia, 2014.</a> Emerging Infectious Diseases. 21 (2), 381-382 (2015).</li>
<li>Roth, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Concurrent+outbreaks+of+dengue%2C+chikungunya+and+Zika+virus+infections-an+unprecedented+epidemic+wave+of+mosquito-borne+viruses+in+the+Pacific+2012-2014%5BTitle%5D)+AND+%22Euro+Surveillance%22%5BJournal%5D)">Concurrent outbreaks of dengue, chikungunya and Zika virus infections-an unprecedented epidemic wave of mosquito-borne viruses in the Pacific 2012-2014.</a> Euro Surveillance. 19 (41), 20929(2014).</li>
<li>Tognarelli, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+report+on+the+outbreak+of+Zika+virus+on+Easter+Island%2C+South+Pacific%2C+2014%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Virology%22%5BJournal%5D)">A report on the outbreak of Zika virus on Easter Island, South Pacific, 2014.</a> Archives of Virology. 161 (3), 665-668 (2016).</li>
<li>Oehler, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+virus+infection+complicated+by+Guillain-Barre+syndrome-case+report%2C+French+Polynesia%2C+December+2013%5BTitle%5D)+AND+%22Euro+Surveillance%22%5BJournal%5D)">Zika virus infection complicated by Guillain-Barre syndrome-case report, French Polynesia, December 2013.</a> Euro Surveillance. 19 (9), 20720(2014).</li>
<li>Faria, N. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+virus+in+the+Americas%3A+early+epidemiological+and+genetic+findings%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Zika virus in the Americas: early epidemiological and genetic findings.</a> Science. 352 (6283), 345-349 (2016).</li>
<li>Rapid risk assessment: Zika virus epidemic in the Americas: potential association with microcephaly and Guillain-Barré syndrome - 4th update. European Centre for Disease Prevention and Control. , Stockholm. Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.ecdc.europa.eu/en/publications-data/rapid-risk-assessment-zika-virus-epidemic-americas-potential-association">https://www.ecdc.europa.eu/en/publications-data/rapid-risk-assessment-zika-virus-epidemic-americas-potential-association</a> (2015).</li>
<li>Payne, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+to+study+viruses%5BTitle%5D)+AND+%22Viruses%22%5BJournal%5D)">Methods to study viruses.</a> Viruses. , 37-52 (2017).</li>
<li>Bustin, S. A., Mueller, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+reverse+transcription+PCR+%28qRT-PCR%29+and+its+potential+use+in+clinical+diagnosis%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Science%22%5BJournal%5D)">Real-time reverse transcription PCR (qRT-PCR) and its potential use in clinical diagnosis.</a> Clinical Science. 109 (4), 365-379 (2005).</li>
<li>Sedlak, R. H., Jerome, K. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viral+diagnostics+in+the+era+of+digital+polymerase+chain+reaction%5BTitle%5D)+AND+%22Diagnostic+Microbiology+and+Infectious+Disease%22%5BJournal%5D)">Viral diagnostics in the era of digital polymerase chain reaction.</a> Diagnostic Microbiology and Infectious Disease. 75 (1), 1-4 (2013).</li>
<li>Bae, H. -G., Nitsche, A., Teichmann, A., Biel, S. S., Niedrig, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+yellow+fever+virus%3A+a+comparison+of+quantitative+real-time+PCR+and+plaque+assay%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virological+Methods%22%5BJournal%5D)">Detection of yellow fever virus: a comparison of quantitative real-time PCR and plaque assay.</a> Journal of Virological Methods. 110 (2), 185-191 (2003).</li>
<li>Dulbecco, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+of+plaques+in+monolayer+tissue+cultures+by+single+particles+of+an+animal+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Production of plaques in monolayer tissue cultures by single particles of an animal virus.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 38 (8), 747-752 (1952).</li>
<li>Nahapetian, A. T., Thomas, J. N., Thilly, W. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+environment+for+high+density+Vero+cell+culture%3A+effect+of+dissolved+oxygen+and+nutrient+supply+on+cell+growth+and+changes+in+metabolites%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cell+Science%22%5BJournal%5D)">Optimization of environment for high density Vero cell culture: effect of dissolved oxygen and nutrient supply on cell growth and changes in metabolites.</a> Journal of Cell Science. 81, 65-103 (1986).</li>
<li>Agbulos, D. S., Barelli, L., Giordano, B. V., Hunter, F. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+virus%3A+quantification%2C+propagation%2C+detection%2C+and+storage%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Zika virus: quantification, propagation, detection, and storage.</a> Current Protocols in Microbiology. 43, (2016).</li>
<li>Brien, J. D., Lazear, H. M., Diamond, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Propagation%2C+quantification%2C+detection%2C+and+storage+of+West+Nile+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Propagation, quantification, detection, and storage of West Nile virus.</a> Current Protocols in Microbiology. 31, (2013).</li>
<li>Bolívar-Marin, S., Bosch, I., Narváez, C. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combination+of+the+focus-forming+assay+and+digital+automated+imaging+analysis+for+the+detection+of+dengue+and+Zika+viral+loads+in+cultures+and+acute+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Tropical+Medicine%22%5BJournal%5D)">Combination of the focus-forming assay and digital automated imaging analysis for the detection of dengue and Zika viral loads in cultures and acute disease.</a> Journal of Tropical Medicine. 2022, 2177183(2022).</li>
<li>Dangsagul, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+virus+isolation%2C+propagation%2C+and+quantification+using+multiple+methods%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Zika virus isolation, propagation, and quantification using multiple methods.</a> PLoS One. 16 (7), e0255314(2021).</li>
<li>Brien, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genotype-specific+neutralization+and+protection+by+antibodies+against+dengue+virus+type+3%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virology%22%5BJournal%5D)">Genotype-specific neutralization and protection by antibodies against dengue virus type 3.</a> Journal of Virology. 84 (20), 10630-10643 (2010).</li>
<li>Lazear, H. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+mouse+model+of+Zika+virus+pathogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Host+%26+Microbe%22%5BJournal%5D)">A mouse model of Zika virus pathogenesis.</a> Cell Host & Microbe. 19 (5), 720-730 (2016).</li>
<li>Miner, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+virus+infection+during+pregnancy+in+mice+causes+placental+damage+and+fetal+demise%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Zika virus infection during pregnancy in mice causes placental damage and fetal demise.</a> Cell. 165 (5), 1081-1091 (2016).</li>
<li>Kang, W., Shin, E. -C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Colorimetric+focus-forming+assay+with+automated+focus+counting+by+image+analysis+for+quantification+of+infectious+hepatitis+C+virions%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Colorimetric focus-forming assay with automated focus counting by image analysis for quantification of infectious hepatitis C virions.</a> PLoS One. 7 (8), e43960(2012).</li>
<li>Brien, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+quantification+of+Zika+virus+from+multiple+organs+in+a+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+VIsualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Isolation and quantification of Zika virus from multiple organs in a mouse.</a> Journal of VIsualized Experiments. (150), e59632(2019).</li>
<li>Payne, A. F., Binduga-Gajewska, I., Kauffman, E. B., Kramer, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitation+of+flaviviruses+by+fluorescent+focus+assay%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virological+Methods%22%5BJournal%5D)">Quantitation of flaviviruses by fluorescent focus assay.</a> Journal of Virological Methods. 134 (1-2), 183-189 (2006).</li>
<li>Moser, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Growth+and+adaptation+of+Zika+virus+in+mammalian+and+mosquito+cells%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Neglected+Tropical+Diseases%22%5BJournal%5D)">Growth and adaptation of Zika virus in mammalian and mosquito cells.</a> PLoS Neglected Tropical Diseases. 12 (11), e0006880(2018).</li>
<li>Ishimine, T., Tadano, M., Fukunaga, T., Okuno, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+micromethod+for+infectivity+assays+and+neutralization+tests+of+dengue+viruses%5BTitle%5D)+AND+%22Biken+Journal%22%5BJournal%5D)">An improved micromethod for infectivity assays and neutralization tests of dengue viruses.</a> Biken Journal. 30 (2), 39-44 (1987).</li>
<li>Leiva, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+quantitative+immunofluorescence+assays+to+analyze+the+expression+of+cell+contact+proteins+during+Zika+virus+infections%5BTitle%5D)+AND+%22Virus+Research%22%5BJournal%5D)">Application of quantitative immunofluorescence assays to analyze the expression of cell contact proteins during Zika virus infections.</a> Virus Research. 304, 198544(2021).</li>
<li>Lee, E. M., Titus, S. A., Xu, M., Tang, H., Zheng, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+Zika+viral+titer+assay+for+rapid+screening+of+antiviral+drugs%5BTitle%5D)+AND+%22ASSAY+and+Drug+Development+Technologies%22%5BJournal%5D)">High-throughput Zika viral titer assay for rapid screening of antiviral drugs.</a> ASSAY and Drug Development Technologies. 17 (3), 128-139 (2019).</li>
</ol>

저자는 서로 상충되는 이해관계가 없다고 선언한다.

바이러스 역가를 결정하기 위한 몇 가지 분석법이 있습니다. PFA는 FFA와 유사한 바이러스 정량 프로토콜을 가지고 있으며, 바이러스 접종물을 희석하여 개별 플라크 또는 병소를 구별할 수 있습니다. 염색 후, 각 플라크 또는 병소는 접종물(19) 내의 단일 감염 입자를 나타낸다. PFA는 세포 용해 또는 사멸로 인한 플라크 형성을 시각화하기 위해 크리스탈 바이올렛으로 염색됩니다. 따라서 PFA는 바이러스가 CPE를 유발하는 데 더 오랜 시간이 필요하고 세포 용해 또는 사멸을 유도하는 바이러스에만 국한되기 때문에 시간이 더 많이 걸립니다. 많은 실험실에서 FFA를 사용하여 ZIKV 19,20,21,22,23,24,25를 포함한 플라비바이러스에 대한 전염성 바이러스 역가를 성공적으로 측정했습니다.<sup ...

지카 바이러스(ZIKV) 감염은 모기 매개 바이러스성 질병으로 부상하고 있습니다. ZIKV의 첫 번째 고립은 1947년 우간다에서 이루어졌다 1,2; 1947년부터 2007년까지는 임상 증상이 가장 흔하게 무증상이고 자기 제한적인 열성 질환을 특징으로 하기 때문에 방치되었습니다. 2007년 지카 바이러스는 얍 제도에서 시작되었고3,4 2013년부터 2014년까지 태평양 지역(프랑스령 폴리네시아, 이스터 섬, 쿡 제도, 뉴칼레도니아)에서 더 큰 전염병이 발생했다 5,6,7,8 성인에서 처음으로 심각한 신경학적 합병증인 길랭-바레 증후군(GBS)이 보고되었다 9. 2015년과 2016년 사이에, 2013년 브라질에서 ZIKV의 아시아 유전자형이 출현한 후 처음으로 광범위한 ZIKV 전염병이 아메리카 대륙을 휩쓸었다10. 이 발병 기간 동안 440,000건에서 130만 건의 소두증 및 기타 신경학적 장애가 신생아에게 보고되었다11. 현재 ZIKV 감염에 대한 특별한 치료법은 없습니다. 따라서 특히 임신 중 감염을 예방할 수 있는 ZIKV 백신에 대한 의학적 필요성이 시급합니다.
바이러스 정량화는 샘플에 존재하는 바이러스의 수를 결정하는 프로세스입니다. 그것은 연구에서 중요한 역할을 하며 학술 실험실에는 의학 및 생명 과학과 같은 많은 분야가 포함됩니다. 이 공정은 바이러스 백신, 재조합 단백질, 바이러스 항원 또는 항바이러스제의 생산과 같은 상업 부문에서도 중요합니다. 바이러스 정량화를 위해 많은 방법 또는 분석법을 사용할 수 있다12. 방법 또는 분석법의 선택은 일반적으로 바이러스 특성, 원하는 정확도 수준, 실험 또는 연구의 특성에 따라 달라집니다. 일반적으로, 바이러스를 정량화하는 방법은 두 가지 범주로 나눌 수 있다: 바이러스 핵산(DNA 또는 RNA)의 존재를 검출하는 분자 분석과 시험관 내에서 바이러스 감염성을 측정하는 분석법 12. 정량적 중합효소 연쇄 반응(qPCR, DNA용) 또는 정량적 역전사 중합효소 연쇄 반응(qRT-PCR, RNA용)13 및 디지털 액적 PCR(14)은 주어진 샘플에서 바이러스 핵산을 정량화하는 데 사용되는 일반적인 분자 기법의 예이다(15). 그러나, 이러한 고감도 분자 기술은 생존 가능한 바이러스와 생존 불가능한 바이러스를 구별할 수 없다15. 따라서 세포에 대한 바이러스 감염성과 같은 생물학적 특징에 대한 정보가 필요한 연구는 위에서 언급한 분자 기술을 사용하여 완료할 수 없습니다. 생존 가능한 바이러스의 존재를 측정하고 결정할 수 있는 분석이 필요합니다. 바이러스 감염도를 측정하는 분석법에는 플라크 형성 분석법(PFA), 50% 조직 배양 감염선량(TCID50), 형광 초점 분석법 및 투과 전자 현미경(TEM)이 포함됩니다12.
1952년 Renato Dulbecco가 개발한 PFA는 ZIKV16을 포함하여 바이러스 적정에 가장 일반적으로 사용되는 방법 중 하나입니다. 감염성 용해 바이러스에 대한 바이러스 농도를 직접 측정하는 데 사용됩니다. 이 방법은 바이러스 감염 후 접종된 세포 단층에서 세포병증 효과(CPE, 세포 사멸 영역 또는 플라크, 감염되지 않은 세포로 둘러싸인 감염 영역)를 생성하는 용해 바이러스의 능력을 기반으로 합니다. 그러나 분석에는 유용성에 영향을 미치는 몇 가지 단점이 있습니다. 분석은 시간이 많이 걸리고(바이러스에 따라 약 7-10일 소요), CPE에 의존하며 오류가 발생하기 쉽습니다. 본 연구에서는 24웰 플레이트 및 96웰 플레이트 형식에서 ZIKV를 검출하고 정량화하기 위한 면역 비색 기법인 초점 형성 분석(FFA)을 보고합니다.

<table><tbody><tr><td>0.22 & 마이크로; m 폴리에테르설폰 주사기 필터</td><td>Sartorius</td><td>S6534-FMOSK</td><td></td></tr><tr><td>1.5 mL 마이크로 원심분리기 튜브</td><td>Nest</td><td>615601</td><td></td></tr><tr><td>10 mL 멸균 혈청학 피펫</td><td>Labserv</td><td>14955156</td><td></td></tr><tr><td>1x Dulbecco' s 인산염 완충 식염수 (dPBS)</td><td>Gibco</td><td>14190-136</td><td></td></tr><tr><td>2.0 mL 스크류 캡 튜브&nbsp;</td><td>Axygen</td><td>SCT-200-SS-C-S</td><td></td></tr><tr><td>24웰 플레이트</td><td>Corning</td><td>3526</td><td></td></tr><tr><td>25 mL 멸균 혈청학 피펫</td><td>Labserv</td><td>14955157</td><td></td></tr><tr><td>3,3'Diaminobenzidine (DAB) peroxidase substrate</td><td>Thermo Scientific</td><td>34065</td><td></td></tr><tr><td>37 &deg; 5% CO2</td><td>Sanyo</td><td>MCO-18AIC</td><td></td></tr><tr><td>5 mL 멸균 혈청학 피펫</td>이 있는 C 인큐베이터 <td>Labserv</td><td>14955155</td><td></td></tr><tr><td>50 mL 원심분리 튜브</td><td>Falcon</td><td>LAB352070</td><td></td></tr><tr><td>75 cm2 조직 배양 플라스크&nbsp;</td><td>Corning</td><td>430725U</td><td></td></tr><tr><td>96-well plate</td><td>Falcon</td><td>353072</td><td></td></tr><tr><td>Anti-flavivirus monoclonal antibody, 4G2 (clone D1-4G2-4-15)</td><td>MilliporeSigma</td><td>MAB10216</td><td></td></tr><tr><td>Autoclaved 20x Phosphate buffered Saline (PBS)</td><td>N/A</td><td>N/A</td><td>8 mM Na2HPO4 4.0 g, 1.5 mM KH2PO4 4.0 g, 0.14 M NaCl 160 g, 2.7 mM KCl 4.0 g, MilliQ H2O</td></tr><tr><td>생물 안전 캐비닛 1 L, Class II</td><td>Holten</td><td>HB2448</td><td></td></tr><tr><td>CTL S6 범용 ELISpot/FluoroSpot 분석기</td><td>ImmunoSpot, Cellular Technology Limited (CTL)</td><td>CTL-S6UNV12</td><td>상용 소프트웨어 분석기</td></tr><tr><td>Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM)</td><td>Gibco</td><td>12800-017</td><td></td></tr><tr><td>Fetal bovine 혈청 (FBS)</td><td>Bovogen</td><td>SFBS</td><td></td></tr><tr><td>염소 항-마우스 IgG 보조 항체와 호스래디시 퍼옥시다제 (HRP)</td><td>MilliporeSigma</td><td>12-349</td><td></td></tr><tr><td>헤마사이토미터</td><td>Laboroptik LTD</td><td>Neubauer 개선된</td><td></td></tr><tr><td>IGEPAL CA-630 세제</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I8896</td><td>Octylphenoxy poly(ethyleneoxy)ethanolIGEPAL&nbsp;</td></tr><tr><td>도립 현미경</td><td>ZEISS</td><td>TELAVAL 31</td><td></td></tr><tr><td>Laboratory rocker</td><td>FINEPCR</td><td>CR300</td><td></td></tr><tr><td>L-Glutamine</td><td>Gibco</td><td>25030-081</td><td></td></tr><tr><td>저점도 카르복시메틸 셀룰로오스 (CMC)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C5678</td><td></td></tr><tr><td>다채널 마이크로피펫 (10 - 100 &micro; L)</td><td>Eppendorf</td><td>3125000036</td><td></td></tr><tr><td>멀티채널 마이크로피펫 (30 - 300 &마이크로; L)</td><td>Eppendorf</td><td>3125000052</td><td></td></tr><tr><td>파라포름알데히드</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6148</td><td></td></tr><tr><td>페니실린-스트렙토마이신</td><td>Gibco</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>싱글 채널 피펫 (10 - 100 &micro; L)</td><td>Eppendorf</td><td>3123000047</td><td></td></tr><tr><td>싱글 채널 피펫 (100 - 1000 &micro; L)</td><td>Eppendorf</td><td>3123000063</td><td></td></tr><tr><td>싱글 채널 피펫 (20 - 200 &micro; L)</td><td>Eppendorf</td><td>3123000055</td><td></td></tr><tr><td>탈지유</td><td>Sunlac Low Fat</td><td>N/A</td><td>염색 단계 차단을 위해 1x PBS에 3% 탈지유를 준비합니다</td></tr><tr><td>차아염소산나트륨</td><td>Clorox</td><td>N/A</td><td>플라스크/플레이트에서 버려진 감염성 액체 폐기물을 소독하기 위해</td></tr><tr><td>실체현미경</td><td>Nikon</td><td>SMZ1000</td><td></td></tr><tr><td>일회용, Luer Lock, 10 mL with 21 G Needle</td><td>Terumo</td><td></td><td></td></tr><tr><td>SS10L21G Vero 아프리카 녹색 원숭이 신장 세포&nbsp;</td><td>-</td><td>ECACC 88020401</td><td>협업자로부터 받았습니다. 그러나 다른 공급업체에서 얻은 Vero 셀은 일부 최적화와 함께 사용할 수 있어야 합니다.</td></tr></tbody></table>

바이러스 전파 및 세포 기반 비색 정량화

Virus Propagation and Cell-Based Colorimetric Quantification

지카 바이러스(ZIKV)는 플라비바이러스(Flavivirus) 속에 속하는 모기 매개 바이러스입니다. ZIKV 감염은 선천성 뇌 이상 및 성인의 길랭-바레 증후군과 관련이 있습니다. 질병 기전을 이해하기 위한 ZIKV에 대한 연구는 백신 및 치료제 개발을 촉진하는 데 중요합니다. 바이러스를 정량화하는 방법은 바이러스학 분야에서 중요하고 기본적입니다. 초점 형성 분석(FFA)은 항체로 바이러스 항원을 검출하고 과산화효소 면역염색 기술을 사용하여 세포의 감염 병소를 식별하는 바이러스 정량 분석법입니다. 현재 연구에서는 24-well 및 96-well(고처리량) 형식을 모두 사용하는 바이러스 전파 및 정량화 프로토콜을 설명합니다. 다른 유사한 연구와 비교했을 때, 이 프로토콜은 다른 바이러스에 대한 이 분석법의 사용을 확장하기 위한 가이드 역할을 할 수 있는 초점 크기 최적화를 추가로 설명했습니다. 첫째, ZIKV 증식은 Vero 세포에서 3일 동안 수행됩니다. ZIKV를 함유하는 배양 상층액은 FFA를 사용하여 수거하고 정량화합니다. 간단히 말해서, 바이러스 배양을 Vero 세포에 접종하고 2-3일 동안 배양합니다. 그런 다음 병소 형성은 세포 고정, 투과화, 차단, 항체 결합 및 과산화효소 기질을 사용한 배양을 포함한 최적화된 염색 공정 후에 결정됩니다. 염색된 바이러스 병소는 실체 현미경(24-웰 형식의 수동 계수) 또는 소프트웨어 분석기(96-웰 형식의 자동 계수)를 사용하여 시각화됩니다. FFA는 재현 가능하고 비교적 빠른 결과(3-4일)를 제공하며 플라크를 형성하지 않는 바이러스를 포함한 다양한 바이러스에 사용하기에 적합합니다. 결과적으로 이 프로토콜은 ZIKV 감염 연구에 유용하며 다른 임상적으로 중요한 바이러스를 검출하는 데 사용할 수 있습니다.

ZIKV는 그림 3에 개략적으로 요약된 것처럼 FFA를 사용하여 정량화할 수 있습니다. 24웰 플레이트의 경우, 감염된 Vero 세포는 감염 후 48시간, 60시간, 72시간, 84시간 및 96시간에 고정되었습니다. 그 결과, 감염 후 96시간(4일) 후에도 세포가 온전한 상태로 유지됨(세포 분리가 관찰되지 않음)하는 것으로 나타났습니다(그림 4 및 보충 그림 8A-E). 바이러스 병소의 출현은 감염 후 48시간(2일)에 처음 관찰되었습니다(그림 4A-F). 그러나 초점 크기가 너무 작아 초점의 정확한 계산이 어려웠습니다. 최적의 병소 크기는 감염 후 60시간(2.5일)에 달성되었습니다(그림 4B). 후자의 시점(감염 후 72시간, 84시간, 96시간)에는 ...

본 프로토콜은 베로 아프리카 녹색 원숭이 신장 세포에서 지카 바이러스(ZIKV)의 증식과 24웰 및 96웰(고처리량) 형식의 세포 기반 비색 면역검출 방법을 사용한 ZIKV의 정량화에 대해 설명합니다.

Zika virus (ZIKV) is a mosquito-borne virus belonging to the genus Flavivirus. ZIKV infection has been associated with congenital brain abnormalities and ...

이 프로토콜을 사용하면 세포병증 효과에 의존하지 않고 지카 바이러스를 식별하고 정량화할 수 있습니다. 바이러스 성분의 항체 인식에 달려 있습니다. 바이러스 특이적 항체를 사용하면 혼합된 집단에서 다양한 바이러스 혈청형을 식별하는 데 도움이 될 수 있습니다.이 방법은 기존의 플라크 형성 분석에 비해 장점이 있습니다. 빠른 세포 계수를 위해 자동 이미징 시스템과 함께 적용할 때 더 빠르고 처리량이 많은 응용 분야에 사용할 수 있습니다. 제안된 프로토콜은 적응력이 뛰어납니다.적절한 수정을 통해 제안된 프로토콜은 다양한 세포 유형 및 바이러스 표적에 적용될 수 있습니다. 10% FBS와 2밀리몰의 L-글루타민이 보충된 12밀리리터의 DMEM이 포함된 75제곱=센티미터 세포 배양 플라스크에서 Vero 세포를 성장시키는 것으로 시작합니다. 플라스크를 섭씨 37도, 이산화탄소 5%의 세포 배양 인큐베이터에 넣습니다.세포 단층을 감염시키려면 10mL 혈청학적 피펫을 사용하여 세포 배양 플라스크에서 성장 배지를 제거합니다. 5밀리리터의 혈청학적 피펫을 사용하여 플라스크를 3밀리리터의 DPBS로 두 번 헹굽니다. 다음으로, 무혈청 DMEM 2mL와 Zika 바이러스 접종물 20mL를 세포 배양 플라스크에 넣습니다.플라스크를 실온에서 1시간 동안 부드럽게 흔들어 바이러스 흡착을 촉진합니다. 배양이 끝나면 5밀리리터 혈청학적 피펫을 사용하여 세포 배양 플라스크에서 희석된 바이러스 접종물을 조심스럽게 제거하고 버립니다. 세포 배양 플라스크를 3mL의 DPBS로 두 번 헹굽니다.그런 다음 세포 배양 플라스크에 12mL의 유지 배지를 추가하여 감염된 세포를 유지합니다. 감염된 Vero 세포를 섭씨 37도, 이산화탄소 5%의 세포 배양 인큐베이터에서 3일 동안 배양합니다. 3일간의 배양 후 10밀리리터 혈청학적 피펫을 사용하여 지카 바이러스가 포함된 세포 배양 상층액을 50밀리리터 원심분리 튜브에 수확합니다.바이러스 정량을 위해 Vero 세포를 지정된 접시에 파종하고 5% 이산화탄소 대기에서 섭씨 37도에서 밤새 자라도록 합니다. 각 플레이트에 대해 6개의 멸균 1.5밀리리터 마이크로 원심분리기 튜브를 준비하여 음성 대조군을 위한 추가 튜브를 포함하여 10배 연속 희석을 수행합니다. 24웰 플레이트 설정의 경우 6개의 마이크로 원심분리기 튜브 모두에 450마이크로리터의 무혈청 DMEM을 추가합니다.96웰 플레이트 설정의 경우 135마이크로리터의 무혈청 DMEM을 6개의 추가 튜브에 분주합니다. 24웰 플레이트 실험에 대한 연속 희석을 수행하려면 50마이크로리터의 지카 바이러스 스톡을 450마이크로리터의 무혈청 DMEM이 들어 있는 10-마이너스 튜브에 추가합니다. 96웰 플레이트 실험의 경우, 135마이크로리터의 무혈청 DMEM이 들어 있는 튜브 1개에 15마이크로리터의 지카 바이러스 스톡을 추가합니다.각 튜브를 소용돌이쳐 바이러스와 배지를 완전히 혼합하여 희석 내에서 바이러스 입자가 고르게 분포되도록 합니다. 새 피펫 팁을 사용하여 10-마이너스 1개의 튜브를 재현탁하고 50-15마이크로리터의 희석된 지카 바이러스를 10-마이너스 2개의 튜브에 각각 24웰 및 96웰 플레이트에 대한 두 번째 10배 희석액으로 옮깁니다. 적절한 플레이트의 각 웰에 대한 상태 배지를 제거하고 폐기하십시오.DPBS로 각각을 두 번 잘 헹구어 잔여물을 제거합니다. 가장 높은 희석액부터 시작하여 연속적으로 희석된 바이러스 접종물을 웰에 추가하여 가장 낮은 희석액을 향해 작업합니다. 1시간 배양 후 가장 낮은 농도부터 가장 높은 농도까지 웰에서 바이러스 현탁액을 제거하고 폐기합니다.감염된 세포를 DPBS로 두 번 씻어 바이러스 현탁액의 흔적을 제거합니다. DMEM과 1.5% 저점도 카르복시메틸셀룰로오스로 웰을 오버레이합니다. 이산화탄소 5%가 있는 섭씨 37도의 세포 배양 인큐베이터에서 플레이트를 배양합니다.배양 후 오버레이 배지를 제거하고 폐기하고 PBS로 세포를 세 번 세척합니다. 96웰 플레이트의 경우 멀티채널 피펫을 사용하여 오버레이 배지를 제거 및 폐기하고 웰당 60마이크로리터의 PBS로 셀을 세 번 세척합니다. 4%의 파라포름알데히드를 첨가하여 세포를 고정하고 실온에서 20분 동안 플레이트를 배양합니다.20분 후 파라포름알데히드를 버리고 PBS로 세포를 세 번 씻습니다. 다음으로, 3, 3'디아미노벤지딘 퍼옥시다제 기질을 첨가하고 어두운 곳에서 30분 동안 플레이트를 배양합니다. 30 분 후 우물을 물로 씻어 반응을 중지하십시오.플레이트를 밤새 자연 건조시키고 초점 계수를 진행합니다. 선택한 희석액의 각 반복실험에 대한 병아리를 계산하고 각각에 대한 평균 병소 수를 계산합니다. 감염된 Vero 세포는 감염 후 다른 시점에서 고정되었습니다.2-웰 플레이트의 경우, 바이러스 병소의 첫 출현은 감염 후 48시간 후에 관찰되었지만, 병소 크기가 너무 작아서 정확하게 계산할 수 없었습니다. 감염 후 96시간이 지나도 세포 분리의 징후는 없었다. 감염 후 60시간이 지났을 때, 병소 크기는 계수를 위한 최적의 수준으로 증가했습니다.그 후, 시간이 지남에 따라 초점이 커지고 강도가 서로 합쳐지거나 겹치기 시작하여 시간이 지남에 따라 성장하는 클러스터를 형성했습니다. 따라서 감염 후 60시간 후에 형성된 병소를 선택하여 24웰 플레이트에서 지카 바이러스 역가를 측정했습니다. 96웰 플레이트의 경우, 감염 후 72시간 후에도 세포가 온전하게 유지되었습니다.바이러스 병소의 출현은 감염 후 24시간 후에 처음 관찰되었습니다. 그러나 감염 후 최대 36시간까지는 병소 크기가 너무 작았습니다. 최적의 병소 크기는 감염 후 48시간에 달성되었습니다.후자의 시점에서는 겹치거나 병합된 초점이 관찰되었고, 겹쳐진 초점의 수는 시간이 지남에 따라 증가했다. 감염 후 48시간 후에 형성된 병소는 지카 바이러스 분리체의 바이러스 역가를 결정하기 위해 선택되었습니다. 각 웰의 측면에 DPBS를 부드럽게 추가하고 플레이트를 앞뒤로 1-3회 흔들어 세포 파편과 과도한 매체를 제거합니다.이 기술은 지카 연구 연구자들에게 큰 도움이 될 것이며, 임상적으로 중요한 다른 바이러스를 정량화하는 데에도 광범위하게 적용될 수 있어 바이러스 감시 및 진단에 유용한 도구가 될 것입니다.

virus-propagation-and-cell-based-colorimetric-quantification

Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

우리는 GFP를 표현하고 완전히 전염성이있다 maedi - visna 바이러스의 분자 클론을 설명합니다. 이 바이러스의 복제는 형광 현미경과 유동세포계측법를 사용하여 검색하실 수 있습니다.

전파와 녹색 형광 단백질을 표현 Maedi - visna 바이러스의 감염성 분자 클론을 검출

이 방법은 높은 감도에 감염된 생쥐들의 bronchioalveolar 세척 (BAL) 유체에서 H1N1의 탐지를위한 적외선 염료 기반 이미징 시스템의 사용을 설명합니다. 이 방법론은 96에서 수행할 수 있습니다 - 또는 판 384 자, 시험 물질 &lt;10 μl 볼륨이 필요하고 여러 병원체의 동시 상영을위한 잠재력을 가지고 있습니다.

인플루엔자 바이러스에 대한 높은 처리량 검출 방법

이 방법은 리프트 밸리 열병 바이러스 (RVFV) 변형 MP-12와 감염 후 숙주 세포의 전사의 변화를 측정하는 클릭 화학의 사용을 설명합니다. 결과는 형광 현미경을 통해 질적 시각 또는 유동 세포 계측법을 통해 정량적으로 얻을 수 있습니다. 이 방법은 다른 바이러스와 함께 사용하기위한 적응이다.

호스트 세포 RN​​A의 합성에 바이러스 감염의 효과를 측정하는 클릭 화학을 사용하여

우리는 스펙트럼 구별 리포터 형광의 단계 - 특이 적 발현을 통해 바이러스 감염 및 유전자 발현의 실시간 측정을 가능하게하는 형광 리포터 백시 니아 바이러스의 사용을 설명한다. 우리 세부 정확하게 바이러스 복제가 저분자 저해에 응답하여 영향되는 단계를 식별하기위한 플레이트 기반 방법.

유전자 발현의 모든 단계에서 바이러스 성 기능을 정량화 우두 바이러스 기자

이 논문은 자동 및 수동 액체 처리기를 사용하여 다양한 RNA 및 DNA 바이러스를 적정하는 고처리량 루시페라제 발현 기반 방법을 제시합니다.

루시 페라 제 발현 재조합 바이러스의 높은 처리량의 적정

여기에서 우리는 시험 관내에서 Homalodisca vitripennis 세포와 HoCV-1을 전파하는 프로토콜을 제시한다. 중간 HoCV - 한 긍정적 인 문화에서 제거하고 RNA는 168 시간 동안 매 24 시간을 추출 하였다. 세포 생존은 트리 판 블루 염색에 의해 정량 하였다. 전체 바이러스 입자는 감염 후를 추출 하였다. 추출 된 RNA는 QRT-PCR에 의해 정량 하였다.

의 전파<em&gt; Homalodisca의 coagulata 바이러스-01</em&gt;를 통해<em&gt; Homalodisca vitripennis</em&gt; 세포 배양

여기, 선물이 arbovirus 복제 및 arbovirus 복제를 제한 하는 2) 진 핵 호스트 요인 1) 바이러스 인코딩된 immunomodulators 식별 프로토콜. 이러한 형광 및 발광 기반 방법을 빠르게 낮은 신호 대 잡음 비율 단순한 분석에 arbovirus 복제의 양적 정보를 연구 수 있습니다.

Arbovirus 감염 바이러스 Immunomodulators 및 호스트 항 바이러스 요인의 식별을 위한 도구를 심사로

반전 녹음 방송 (실시간 정량)와 함께 하는 실시간 정량 중 합 효소 연쇄 반응 분석은 RNA 바이러스 감염의 수준을 측정 하 널리 사용 되었습니다. 여기는 직접 실시간 정량 분석 결과, 뎅기열 바이러스를 포함 하 여 여러 RNA 바이러스의 정량화에 대 한 개발 하는 RNA 정화 단계를 필요 하지 않는 선물이.

실시간 정량 중 합 효소 연쇄 반응에 의해 감염 된 세포의 문화 상쾌한에 뎅 그 열 바이러스 RNA를 측정

여기에 보고된 감염한 세포의 전기 임피던스 에 대한 실시간 모니터링을 이용한 전염성 바이러스 입자의 정량화를 위한 프로토콜이 있다. 이 방법의 실용적인 적용은 환경 조건을 모방하는 다른 물리화학 적 매개 변수하에서 인플루엔자 A 바이러스 부패를 정량화하여 제시된다.

실시간 세포 분석을 사용하여 호스트 외부인플루엔자 바이러스 생존 모니터링

여기서 설명된 프로토콜은 스파이크 당단백질로 의사형인 향상된 녹색 형광 단백질 표지 된 정맥낭염 바이러스에 의해 감염을 억제하는 병류 혈청 샘플의 능력을 평가함으로써 SARS-CoV-2 스파이크 단백질에 대한 중화 항체를 측정하는 빠르고 효과적인 방법을 설명합니다.

의사 바이러스 감염의 높은 처리량 형광 화상 진찰을 사용하여 SARS-CoV-2 중화 항체의 검출

여기서 보고된 TCID50 분석법은 라벨 없는 실시간 임피던스 측정과 시스템의 바이러스학 모듈을 활용하여 바이러스 유발 세포병리 효과(CPE)를 실시간으로 객관적으로 모니터링합니다. 이 간소화된 분석법은 직접 손을 대고 작업하는 시간을 크게 줄이면서 고처리량의 정량적 동역학 CPE 측정을 지원하고 자동화된 실시간 TCID50 계산을 가능하게 합니다.

임피던스를 이용한 자동화된 바이러스 역가 정량을 위한 간소화되고 라벨이 없는 실시간 50% 조직 배양 감염 선량(TCID50) 분석법

배우세요 Zika 바이러스를 Vero 세포에서 증식시키고 세포 기반 비색 면역검출법으로 정량화하는 방법을. 혼합된 바이러스 혈청형을 식별하고 고속 스크리닝에 활용할 수 있는 효율적인 프로토콜입니다.

바이러스 전파 및 세포 기반 비색 정량화

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