Name: 실험적 자가면역 뇌척수염 유도를 위한 항원/보조 에멀젼을 제조하기 위한 빠르고 간단하며 표준화된 균질화 방법 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-12-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 44 s
Description: 학습하세요 실험적 자가면역 뇌척수염(EAE) 유도를 위한 표준화된 항원/보조 에멀젼 균질화 방법을 통해 다발성 경화증 동물 모델에서 재현성 높은 결과를 얻는 기법을 확인하세요.

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저자는 룬드 대학교의 동물 주택 유닛인 카밀라 비외르클뢰프와 아그니에슈카 초펙의 지원과 영국 옥스퍼드 대학교 케네디 류마티스 연구소의 리처드 윌리엄스가 이 원고를 제작한 건설적인 비평과 언어적 지원에 대해 감사를 표하고 싶습니다.

모든 동물 절차는 스웨덴 동물 연구위원회의 관행에 따라 수행되었으며 스웨덴 룬드 말뫼의 동물 윤리위원회의 승인을 받았습니다(허가 번호: M126-16).
참고: 방법의 개략적인 흐름은 그림 1에 설명되어 있습니다.
1. 재료 준비
참고: 모든 시약을 멸균 후드에 무균 상태로 준비하고 부분 표본을 취하여 표시된 온도에서 보관하십시오. 시약은 효과를 잃지 않고 최대 2 년까지 보관할 수 있습니다.
<ol><li>아래 설명된 대로 결핵 균 20mg/mL를 함유한 CFA를 준비합니다.<ol><li>동결 건조 M. tuberculosis H37RA 100mg(재료 표 참조)과 3.2mm 스틸 비드 5개를 7mL 튜브에 추가합니다(재료 표 참조). 균질화기(재료 표 참조)에서 튜브를 최고 속도 설정(5,000rpm)에서 60초 동안 흔듭니다.</li>
		<li>불완전한 프로인트 보조제(IFA) 5mL를 튜브에 넣고 최고 속도로 60초 동안 다시 흔듭니다. IFA(현재 CFA로 명명됨)에서 균질화된 M. tuberculosis 의 슬러리를 피펫이 있는 새로운 튜브로 옮기고 비드를 남겨두고 사용할 때까지 4°C에서 보관합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>MOG35-55 펩타이드의 동결건조 분말에 초순수를 첨가하여( 재료 표 참조) 10mg/mL의 최종 펩타이드 농도를 얻습니다. 용액을 0.2μm 필터에 통과시켜 멸균합니다. 60 μL 분취량을 준비하고 사용할 때까지 -20 °C에서 보관하십시오. 참고: 이 실험에 사용된 MOG35-55 펩타이드는 ImmunoGrade 순도(~70%)이고 TFA 절단되며 물에 쉽게 용해되며 생체 내 안정성을 높이기 위해 C-말단 아미드(-NH2)를 포함합니다14. 펩티드 분취량은 결코 해동되지 않았고, 2회 이상 재냉동되었고, 사용시까지 -20°C에서 저장되었다.</li>
	<li>백일해 독소 완충액 100mL 준비: 1x Ca 2+/Mg2+ 유리 PBS 80mL에 NaCl 2.9g을 녹이고 10% 트리톤 X-100 100μL를 추가합니다. PBS로 부피를 100mL로 조정하고 0.2μm 필터를 통과시켜 용액을 멸균합니다. 10mL 분취량을 준비하고 사용할 때까지 4°C에서 보관하십시오.</li>
</ol>2. CFA/펩타이드 에멀젼의 제조
<ol><li>예방 접종에 필요한 에멀젼의 양을 계산하십시오. 이 표준 프로토콜에서 각 마우스는 프로인트 보조제(CFA)에 분산된 50μg의 MOG35-55 펩타이드와 300μg의 M. tuberculosis 를 받습니다. 에멀젼을 제조하는데 필요한 각 시약 (MOG35-55 펩티드, PBS, CFA, 및 IFA)의 양은 보충 파일 1을 사용하여 계산할 수 있다. 에멀젼의 작은 손실을 보상하기 위해 모든 시약의 추가 20 %가 계산에 포함됩니다. 참고: 이 연구에 사용된 상업용 에멀젼 키트( 재료 표 참조)는 멸균된 파우치에 튜브, 스크류 캡 및 플런저로 구성됩니다. 에멀젼 키트의 각 튜브에는 최대 9.6mL가 들어 있어 40마리의 마우스(동물당 100μL의 에멀젼을 사용하는 경우 80마리의 마우스)를 면역화하기에 충분한 8 x 1mL 주사기를 준비할 수 있습니다.</li>
	<li>스크류 캡이 있는 튜브(상업용 에멀젼 키트에서)와 사용할 시약을 얼음 위에 놓습니다.</li>
	<li>단계 2.1에서 계산된 부피에 다음 순서로 에멀젼 성분을 추가합니다: PBS, 펩타이드, CFA의 M. tuberculosis , 마지막으로 IFA.</li>
	<li>튜브를 여러 번 조이고 풀어 캡으로 단단히 닫습니다. 시약을 미리 혼합하기 위해 손으로 튜브를 5-10초 동안 세게 흔듭니다.</li>
	<li>튜브를 흔들리는 균질화기에 넣고 막대로 고정합니다. 속도를 최고 설정으로 설정하고 시간을 60초로 설정합니다. 달리기가 끝나면 튜브를 얼음 위에 3분 동안 놓습니다. 동일한 설정으로 실행을 한두 번 더 반복합니다.</li>
	<li>튜브를 300 x g 로 1분 동안 원심분리하여 갇힌 공기를 제거하고 에멀젼을 압축합니다.</li>
	<li>튜브에서 캡을 제거하고 플런저를 튜브에 삽입한 다음 에멀젼 상단에 도달할 때까지 천천히 아래로 누릅니다. 튜브 바닥의 스냅 오프 클로저를 비틀어 제거합니다.</li>
	<li>주입 주사기(1mL, 재료 표 참조)에서 플런저를 제거합니다. 주사기에 바늘 (바람직하게는 25-27G)을 추가하십시오.</li>
	<li>주사기의 뒤쪽 끝을 튜브 하단의 전용 잠금 장치에 부착하고 짧게 비틀어 잠급니다.</li>
	<li>플런저를 부드럽게 밀어 튜브에서 주입 주사기로 에멀젼을 옮깁니다. 에멀젼이 주사기의 0.15mL 눈금에 도달하면 중지합니다.</li>
	<li>주입 주사기를 튜브에서 분리하고 주사기에 공기가 들어 가지 않도록주의하면서 플런저를 조심스럽게 삽입하십시오. 에멀젼이 바늘에서 나올 때까지 플런저를 밉니다. 참고: 이 시점에서 일부 에멀젼을 품질 관리에 사용할 수 있습니다(3단계 참조).</li>
	<li>튜브에 존재하는 나머지 에멀젼에 대해 2.8-2.11단계를 반복합니다. 알림: 값비싼 CFA/항원 에멀젼의 낭비를 최소화하려면 1mL 주사기를 사용해야 합니다. 튜브 바닥의 전용 잠금 장치에 맞는 다른 주사기를 사용할 수 있습니다. 그러나 더 많은 양의 에멀젼을 준비해야 할 수도 있습니다. CFA/MOG35-55 펩타이드 에멀젼은 EAE 유도 능력을 잃지 않고 최대 15주 동안 4°C에서 보관할 수 있습니다.</li>
</ol>3. 에멀젼의 품질 관리
<ol><li>낙하 테스트: 20mL의 찬물로 채워진 멸균 50mL 원추형 튜브에 에멀젼의 작은 방울을 추가합니다. 튜브를 닫고 몇 초 동안 손으로 흔 듭니다. 작고 뚜렷한 물방울의 출현은 유중수 에멀젼의 형성을 확인합니다.</li>
	<li>위상차 현미경을 사용하여 에멀젼을 검사합니다.<ol><li>유중수 입자의 크기를 분석하려면 에멀젼의 작은 방울(2-3μL)을 현미경 슬라이드에 추가하고 커버 슬립으로 번진 다음 원을 그리며 세게 밀어 에멀젼을 평평하게 만듭니다.</li>
		<li>400x 배율로 위상차 현미경( 재료 표 참조)으로 번진 에멀젼을 검사하고 에멀젼의 단층이 있는 필드에 초점을 맞춥니다. 작고 균일한 회색/흰색 입자가 보이는지 확인합니다(그림 2A).</li>
	</ol></li>
	<li>레이저 회절을 사용하여 에멀젼 입자 크기를 분석합니다. 참고: 레이저 회절은 레이저 빔을 사용하여 입자 크기 분포를 측정합니다. 이것은 에멀젼에 대한 궁극적 인 품질 관리 테스트입니다. 여기에 기술된 방법을 사용한 입자 크기 분포의 대표적인 결과가 도 2B 에 도시되어 있다(자세한 설명은 Topping et al.6 참조). 그럼에도 불구하고 낙하 시험과 현미경 검사는 만족스러운 에멀젼이 형성되었는지 여부를 검증하기에 충분합니다.<ol><li>분산제(재료 표 참조)에 대한 적색 및 청색 레이저의 굴절률을 1.456으로 설정하고 샘플의 굴절률을 입자 크기 분석기에서 1.33으로 설정합니다(재료 표 참조). 굴절률의 흡광도를 0.02로 설정합니다.</li>
		<li>펩티드 에멀젼을 함유하는 주사기로부터 한 방울을 경광유를 함유하는 분산부에 첨가한다. 에멀젼 분산 후 즉시 데이터 수집을 시작하십시오. 참고: 범용 모델이 적용되었으며 입자 크기 분포를 추정하기 위해 구형 입자가 가정되었습니다.</li>
	</ol></li>
</ol>4. C57BL6/J 마우스에서 MOG 35-55 펩타이드 에멀젼을 이용한 EAE 유도
참고: 모든 실험에서 5마리의 8-12주령 암컷 C57BL6/J 마우스를 사용했습니다.
<ol><li>면역화 전에 2.5% 기화된 이소플루란을 사용하여 마우스를 마취시키고 단단한 발가락 핀치를 사용하여 확인합니다.</li>
	<li>펩타이드/CFA의 1:1(v/v) 비율로 MOG35-55 펩타이드 50μg을 함유한 에멀젼 200μL를 사용하여 뒷부분의 오른쪽과 왼쪽에 있는 1mL 주사기를 사용하여 각 마우스를 피하 주사합니다.</li>
	<li>에멀젼으로 면역화 후 적어도 1.5 시간, 그리고 다시 24 시간 후에, 복강 내 주사를 통해 각 마우스에 백일해 독소 완충액 200 μL에 총 80 ng의 보르 데텔라 백일해 독소를 투여한다 (배의 왼쪽 부위에서 100 μL 및 오른쪽 부위에 100 μL). 참고: 백일해 독소를 사용한 복강내 주사의 정확한 국소화는 배액 림프절(15)에서 T 세포의 활성화에 필수적인 것으로 나타났다.</li>
	<li>선택 사항: 4.2단계를 반복하여 7일째(일부 프로토콜16에서 사용됨)에 MOG35-55 펩타이드를 다시 주입합니다. 알림: 가장 중요한 것은 MOG/CFA 또는 백일해 독소가 포함된 예방 접종에 사용되는 주사기와 바늘을 생물학적 위험 백/용기에 적절하게 폐기했는지 확인하는 것입니다.</li>
	<li>앞서 설명한 대로 0-6의 척도를 사용하여 매일 임상 점수를 평가합니다6.</li>
</ol>

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</ol>

BTB 에멀젼 AB는 동물 및 인간을 위한 면역화 및 에멀젼을 제조하기 위한 장치 및 방법의 사용에 대한 특허 출원을 제출하였다(유럽 특허 출원 번호: EP3836884A1). BTB는 회사의 CEO이자 설립자이며 BTB 에멀젼의 주주입니다. Bertin-Instruments는 이 출판물에 사용된 에멀젼 키트를 전 세계에 배포하고 있습니다.

항원/프로인트 보조제와 같은 유중수 에멀젼은 EAE17을 유도하기 위해 반세기 이상 사용되어 왔습니다. 현재 인간의 영향과 무관한 항원 에멀젼을 제조하는 표준화된 방법은 없습니다. 주사기를 사용한 수동 혼합은 대부분의 실험실에서 표준이지만이 방법은 시간이 많이 걸리고 종종 과도한 재료 손실을 초래하며 품질은 준비하는 과학자에 따라 다릅니다.
이 원고에 제시된 방법은 항원 / CFA 에멀젼을 준비하기 위해 표준 진탕 균질화 기계를 사용합니다. 또한 여기에 사용 된 모든 시약은 분취 및 장기간 보관할 수있어 에멀젼을 편리하고 빠르게 준비 할 수 있습니다. 최대 80 마리의 마우스에 대한 에멀젼을 준비하는 총 시간은 약 30 분입니다. 이것은 MOG35-55 에멀젼16,18을 준비하는 데 1-1.5시간이 필요한 다른 발...

면역 학적 내성의 붕괴는 다발성 경화증 (MS)과 같은자가 면역 질환의 생성을 초래할 수 있습니다. 전 세계적으로 280만 명이 MS를 앓고 있는 것으로 추정됩니다1. MS의 정확한 원인은 아직 잘 알려져 있지 않지만자가 반응성 T 및 B 세포의 조절 장애와 Treg 기능의 결함은 질병의 발병 기전에 중요한 역할을합니다 2,3.
자가면역 질환의 동물 모델은 잠재적인 치료 양식을 조사하는 데 필수적인 도구입니다. 실험적 자가면역 뇌척수염(EAE) 모델은 MS4에 관심이 있는 연구자들에 의해 거의 한 세기 동안 사용되어 왔다. 초기 실험에서이 질병의 발병률은 상대적으로 낮았습니다. 마이코박테리움 및 백일해 독소를 함유하는 완전한 프로인트 보조제(CFA)의 도입은 마우스4에서 EAE의 일관된 유도를 가능하게 하였다. 가장 중요한 것은 EAE를 유도하기 위한 균일한 유중수 에멀젼을 생성하기 위해 CFA를 중추신경계(CNS) 특이적 항원과 혼합하는 것이 필요하다는 것입니다. 현재 이용 가능한 가장 일반적인 EAE 모델은 뇌염 펩티드를 사용한 마우스의 활성 면역화에 기초한다. 마우스의 유전 적 배경은 각각 C57BL / 6J 및 SJL 마우스에서 EAE를 유도하기 위해 사용되는 미엘린 희소 돌기 아교 세포 당 단백질 (MOG35-55) 및 미엘린 프로테오리피드 단백질 (PLP139-151) 펩타이드와 함께 질병 감수성에 중요한 역할을합니다5. 그러나, 다른 마우스 균주 및 CNS-유래된 펩티드가 또한 사용될 수 있다.
CFA/펩타이드 에멀젼의 품질은 활성 면역화 EAE 모델6에서 질병 침투를 결정하는 중요한 요소입니다. 균질 한 유중수 에멀젼은 수성 완충액에 용해 된 뇌염 생성 펩타이드를 CFA와 혼합하여 준비해야하며, 그렇지 않으면 동물이 질병을 발병하지 않습니다. CFA/펩타이드 에멀젼의 제조에 대한 수많은 프로토콜이 발표되었습니다. 예로는 와류7, 초음파 처리8, 주사기 및 3 방향 T 커넥터9, 또는 하나의 주사기만 5의 사용이 포함됩니다. 그러나 이러한 모든 방법은 표준화하기 어렵고 종종 길고 복잡한 프로토콜과 관련이 있습니다.
위의 모든 방법과 비교하여 에멀젼 제조를 위해 여기에 설명된 간단한 방법은 사람 대 사람 차이가 없고 상대적으로 빠르다는 이점을 제공합니다. 에멀젼은 설정된 속도, 시간 및 온도로 시약을 흔드는 균질화기에 의해 생성되어 빠르고 일관된 결과를 보장합니다. EAE 모델에서 질병을 유도하는 것 외에도이 방법은 콜라겐 유도 관절염 (CIA) 및 항원 유발 관절염 (AIA)과 같은 다른자가 면역 질환 모델을 연구하는 데에도 사용할 수 있습니다6. 따라서, 이 방법은 실험적 자가면역 신경염(EAN)10, 실험적 자가면역 갑상선염(EAT)11, 자가면역 포도막염(EAU)12 및 중증 근무력증(MG)13과 같은 자가항원이 있는 유중수 에멀젼에 의존하는 다른 동물 모델에서 질병을 일관되게 유도하는 데 사용될 수 있을 것으로 예상된다. 이 방법은 또한 지연형 과민증(DTH)과 같은 일반적인 면역 반응을 일관되게 유도합니다.6, 따라서 암 및 말라리아 백신을 전달하는 데 사용할 수 있습니다(토론 참조).
따라서, 신속한(총 준비 시간 ~30분), 단순(모든 시약은 미리 제조 및 저장될 수 있음) 및 표준화된(에멀젼은 진탕 균질기를 사용하여 달성됨) 방법이 개발되어 여기에 제시된다. 이 프로토콜을 사용하여 제조된 CFA/항원 에멀젼은 자가면역 동물 모델에서 일관되게 질병을 유도합니다.

<table><tbody><tr><td>1 mL 주입 주사기</td><td>B. Braun</td><td>9166017V&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>1 mL 주입 주사기</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z683531</td><td></td></tr><tr><td>7 ml 빈 튜브와 캡</td><td>Bertin-Instruments</td><td>P000944LYSK0A.0</td><td>7 mL 튜브</td></tr><tr><td>50 mL 멸균 원심분리 튜브&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td>10788561 50 mL tube</td></tr><tr><td>Bordetella pertussis 독소</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P2980</td><td>-20 &deg에 보관; C</td></tr><tr><td>분산제, 경유</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M8410</td><td>RT에 보관</td></tr><tr><td>에멀젼 키트</td><td>Bertin-Instruments</td><td>D34200.10 ea</td><td>튜브, 캡 및 플런저 포함</td></tr><tr><td>불완전한 Freund의 보조</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>&nbsp; F5506</td><td>+4 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>Mycobacterium tuberculosis, H37RA</td><td>Fisher Scientific</td><td>DF3114-33-8</td><td>+4 &deg에서 저장; C</td></tr><tr><td>마스터사이저 2000&nbsp;</td><td>Malvern Panalytical</td><td>N/A</td><td>입자 크기 분석기</td></tr><tr><td>Minilys-개인 호모게나이저</td><td>Bertin-Instruments</td><td>P000673-MLYS0-A</td><td>쉐이킹 호모게나이저</td></tr><tr><td>MOG 35-55 펩타이드&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>Innovagen</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Montanide ISA 51 VG</td><td>Seppic</td><td>36362Z</td><td>FDA 승인 오일 보조제</td></tr><tr><td>Pall Acrodisc 주사기 필터 0.2 &mu; m</td><td>Fisher Scientific</td><td>17124381</td><td>Sterlie 필터</td></tr><tr><td>PBS, Ca2+/Mg2+ 무료</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>14190144</td><td>PBS</td></tr><tr><td>위상 대조 현미경</td><td>Olympus</td><td>BX40-B</td><td></td></tr><tr><td>스틸 비드 3.2mm</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC0445832</td><td>오토클레이브 및 RT</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>648463</td><td>RT 매장</td></tr></tbody></table>

실험적 자가면역 뇌척수염 유도를 위한 항원/보조 에멀젼을 제조하기 위한 빠르고 간단하며 표준화된 균질화 방법

A Rapid, Simple, and Standardized Homogenization Method to Prepare Antigen/Adjuvant Emulsions for Inducing Experimental Autoimmune Encephalomyelitis

실험적 자가면역 뇌척수염(EAE)은 다발성 경화증(MS)과 유사한 면역학적 및 임상적 특징을 공유하므로 더 나은 환자 치료를 위한 신약 표적을 식별하는 모델로 널리 사용됩니다. MS는 재발성 완화 MS (RRMS), 원발성 진행성 MS (PPMS), 이차성 진행성 MS (SPMS) 및 희귀 진행성 재발 형태의 MS (PRMS)와 같은 여러 가지 질병 과정을 특징으로합니다. 동물 모델이 이러한 대조적인 인간 질병 표현형을 모두 정확하게 모방하지는 않지만, MS의 상이한 임상 증상 중 일부를 반영하는 EAE 모델이 있다. 예를 들어, C57BL/6J 마우스에서 미엘린 희소돌기아교세포 당단백질(MOG) 유도 EAE는 인간 PPMS를 모방하는 반면, SJL/J 마우스에서 미엘린 프로테오리피드 단백질(PLP) 유도 EAE는 RRMS와 유사합니다. 다른 자가항원, 예컨대 미엘린 염기성 단백질 (MBP) 및 다수의 상이한 마우스 균주도 EAE를 연구하는데 사용된다. 이들 자가항원-면역화 EAE 모델에서 질환을 유도하기 위해, 유중수 에멀젼을 제조하고 피하 주사한다. EAE 모델의 대부분은 또한 질병이 발병하기 위해 백일해 독소의 주사를 필요로합니다. 일관되고 재현 가능한 EAE 유도를 위해서는 항원/보조 에멀젼을 생성하기 위한 시약을 준비하기 위한 상세한 프로토콜이 필요합니다. 여기에 설명된 방법은 표준화된 방법을 활용하여 유중수 에멀젼을 생성합니다. 간단하고 빠르며 주사기 대신 흔들리는 균질화기를 사용하여 품질 관리 에멀젼을 준비합니다.

CFA/MOG 에멀젼 제조를 위한 빠르고 간단하며 표준화된 프로토콜이 그림 1에 나와 있습니다. 이 방법은 최근에 다른 곳에서 설명되었다6. CFA/MOG 에멀젼은 기존의 주사기 방법 또는 와류 방법과 같은 다른 방법으로도 제조할 수 있습니다. 이들 방법은 에멀젼의 품질을 평가함으로써 여기에서 비교되었다. 모든 방법은 유중수 에멀젼을 생산했습니다. 이러한 에멀젼의 균질성과 품질은 유리 슬라이드에 작은 방울을 추가한 다음 위상차 현미경으로 관찰하여 평가했습니다. 진탕 균질화 방법으로 생성 된 에멀젼은 회색 / 흰색 콩 모양의 입자를 나타내며, 이는 유중수 에멀젼의 작은 방울을 나타냅니다. 대조적으로, 주사기 방법을 사용하여 생성 된 에멀젼 방울은 더 크고 더 희었다. 와류 방법에서는 에멀젼에 갇힌 기포에 해당하는 큰 회색/검은색 입자가 관찰되었습니다(그림 2A).
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다발성 경화증의 동물 모델인 실험적 자가면역 뇌척수염을 유도하기 위해, 마우스를 자가항원 및 완전한 프로인트 보조제를 함유하는 유중수 에멀젼으로 면역화시킨다. 이러한 에멀젼의 제조를 위한 여러 프로토콜이 존재하지만, 에멀젼 제조를 위한 빠르고 간단하며 표준화된 균질화 프로토콜이 여기에 제시된다.

Experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE) shares similar immunological and clinical features with multiple sclerosis (MS), and is therefore widely ...

실험적 자가면역 뇌척수염 또는 EAE는 다발성 경화증 환자에 대한 새롭고 개선된 치료법을 개발하기 위해 사용되는 동물 모델이다. EAE에서 질병을 유도하려면 일관된 결과를 얻기 위해 완벽한 오일 및 물 에멀젼이 필요합니다. 여기에 제시된 에멀젼 제조 방법은 인간의 영향을받지 않으므로 한 실험에서 다른 실험으로의 불일치를 제한합니다.이 방법은 EAE에 최적화되었지만 다른자가 면역 질환 모델 및 암 백신 테스트에도 사용할 수 있습니다. CFA 슬러리를 100 밀리그램의 동결건조된 M 결핵 H37 RA 및 5개, 3.2 밀리미터 스틸 비드를 7 밀리리터 튜브로 제조하였다. 최고 속도 설정에서 60 초 동안 균질 기의 튜브를 흔 듭니다.튜브에 5 밀리리터의 IFA 보조제를 넣고 최고 속도로 60 초 동안 다시 흔 듭니다. 그런 다음 슬러리를 피펫으로 새 튜브로 옮기고 비드를 남기고 사용할 때까지 섭씨 4도에서 보관하십시오. CFA/펩타이드 에멀젼을 준비하려면 보충 파일 1을 다운로드하여 각 시약에 필요한 양을 계산하십시오.그런 다음 스크류 캡핑 튜브와 사용할 시약을 얼음 위에 놓습니다. 다음으로 에멀젼 성분을 첨가하십시오. 먼저 PBS, 이어서 펩타이드, CFA 슬러리.마지막으로 IFA입니다. 튜브를 여러 번 조이고 풀어 캡으로 단단히 닫습니다. 시약을 미리 혼합하기 위해 손으로 5-10초 동안 튜브를 세게 흔듭니다.튜브를 흔들리는 균질화기에 넣고 막대로 고정합니다. 속도를 최고 설정으로 설정하고 시간을 60초로 설정합니다. 달리기가 끝나면 튜브를 얼음 위에 3 분 동안 놓고 동일한 설정으로 한두 번 더 달리기를 반복하십시오.튜브를 300G에서 1분에서 원심분리하여 갇힌 공기를 제거하고 에멀젼을 압축합니다. 튜브에서 캡을 제거하십시오. 플런저를 튜브에 삽입하고 에멀젼 상단에 도달 할 때까지 천천히 아래로 누릅니다.튜브 바닥에 있는 스냅 오프 인클로저를 비틀어 제거합니다. 다음으로 모든 주사기에서 플런저를 제거하고 주사기에 바늘을 추가합니다. 그런 다음 주사기 뒷면을 튜브 바닥의 전용 잠금 장치에 부착하고 짧게 비틀어 잠급니다.플런저를 부드럽게 밀어 튜브에서 주입 주사기로 에멀젼을 옮깁니다. 에멀젼이 주사기의 0.15 밀리리터 눈금에 도달하면 중지하십시오. 튜브에서 주사기를 분리하고 이 주사기에 공기가 들어가지 않도록 주의하면서 플런저를 조심스럽게 삽입합니다.에멀젼이 바늘에서 나올 때까지 플런저를 밀고 튜브에 존재하는 나머지 에멀젼에 대해 이 과정을 반복합니다. 물과 기름 입자의 크기를 분석하려면 현미경 슬라이드에 에멀젼의 작은 방울을 추가하고 커버 슬립으로 번진 다음 원을 그리며 세게 밀어 에멀젼을 평평하게 만듭니다. 400배 배율의 위상차 현미경으로 얼룩진 에멀젼을 검사하고 에멀젼의 단층이 있는 필드에 초점을 맞춥니다.작고 균일 한 회색 또는 흰색 입자가 보이는지 확인하십시오. 균질화 방법에 의해 생성 된 에멀젼은 물과 오일 에멀젼의 작은 방울을 나타내는 회색 또는 흰색 콩 모양의 입자를 표시했습니다. 대조적으로, 주사기 방법을 사용하여 생성 된 에멀젼 방울은 더 크고 넓었다.와류 방법에서, 에멀젼에 갇힌 기포에 상응하는 큰 회색 또는 검은 색 입자가 관찰되었다. 물 및 오일 에멀젼에 대한 레이저 굴절 입자 크기 분석기를 사용하여 측정한 시간 경과에 따른 입자 크기 분포의 변화는 6주 동안 입자 크기의 변화를 나타내지 않았습니다. 신선한 3주령 및 15주령의 에멀젼은 모두 실험 전반에 걸쳐 시험된 모든 동물에서 유사한 EAE 질환을 유도하였다.마우스는 모든 실험에서 유사한 질병 패턴을 개발하여 여기에 제시된 균질화 방법이 일관되고 재현 가능한 방식으로 EAE를 유도하는 에멀젼을 생성한다는 것을 밝혔습니다. 실험을 위해 에멀젼을 만들기 전에 보충 파일 번호 1을 다운로드하여 낭비를 최소화하는 데 필요한 각 구성 요소의 양을 계산하십시오. 여기에 제시된 방법은 전임상 연구뿐만 아니라 향후 클리닉에서 암 백신을 준비하기 위해 에멀젼 제제를 표준화하는 데 사용될 수 있습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

DA 쥐에서 만성 - 원래대로 돌아가는 실험 면역 encephalomyelitis :이 비디오는 여러 경화증의 동물 모델의 유도 및 임상 채점을 보여줍니다. 전체 쥐의 척수하고 완전한 프로 인드의 도움이되는가 포함된 유제와 immunizing 쥐가 유도된 질병은, 인간의 질병을 닮은 임상 징후를 보여줍니다.

유도 및 만성 - 원래대로 돌아가는 실험 면역 Encephalomyelitis 임상 채점

면역 hypophysitis는 마우스 뇌하수체의 단백질 추출물을 주사로 쥐 복제하​​실 수 있습니다.

실험 면역 Hypophysitis의 유도를위한 마우스 뇌하수체 Immunogen의 준비

특정 마우스 변종은 myelin 기본 단백질과 함께 실험적인 면역 encephalomyelitis (EAE)의 유도에 저항 할 수 있습니다. 여기에서 설명한 것은 응답하지 않는 문제를 역으로 여러 전형 EAE 모성 마우스 얼룩에 중풍 질환을 유도하는 간단한 예방 접종 프로토콜입니다.

입양 이전 및 Antigenic 챌린지에 의해 실험적 면역 Encephalomyelitis (EAE) 모성 마우스 변종에 응답하지 않는 문제를 극복

이 비디오는 쥐 모델에서 실험적 자가면역 뇌척수염(EAE)을 유도하기 위해 항원 보조 에멀젼을 생성하는 효율적인 균질화 기술을 보여줍니다. 에멀젼은 물 상태에 자가항원인 미엘린 희소돌기아교세포 당단백질(MOG)을 함유하고 있으며, 불활성화된 병원성 박테리아로 구성된 연속적인 오일 상태로 둘러싸여 있습니다. 에멀젼은 장기적인 면역 반응을 위해 항원의 지속적인 방출을 보장합니다.

자가면역 뇌척수염을 유발하기 위한 항원 보조 에멀젼 제조

이 비디오는 미엘린 희소돌기아교세포 당단백질과 불활성화된 결핵균의 조합을 주입하여 마우스 모델에서 실험적 자가면역 뇌척수염을 유도하는 방법을 보여줍니다. 이 모델을 통해 연구원들은 질병 메커니즘을 연구하고 치료 개입을 테스트할 수 있습니다.

마우스 모델에서 실험적 자가면역 뇌척수염 유도

이 비디오에서는 실험적 자가면역 뇌척수염(EAE)을 사용하여 다발성 경화증의 마우스 모델을 구축합니다. 마우스에 뉴런 펩타이드와 보조제가 포함된 에멀젼을 주입하여 자가반응성 T세포를 활성화하는 면역 반응을 유발합니다. 그 다음에는 백일해 독소(PTX)를 주입하여 혈액뇌장벽 투과성을 높여 자가반응성 T세포가 뇌에 침투할 수 있도록 합니다. 이 침투는 궁극적으로 수초성 손상을 초래하는 신호 폭포를 시작하여 다발성 경화증의 탈수초성 상태를 모방합니다.

실험자가 면역 뇌척수염 (EAE)는 다발성 경화증의 설립 동물 모델입니다. C57BL / 6 마우스는 중추 신경계 자기 반응성 면역 세포에 의해 야기 오름차순 이완성 마비를 초래 미엘린 희소 돌기 아교 세포의 당 단백질 (MOG) 펩티드 35-55 (MOG 35-55)로 면역화된다. 질병 유도 및 모니터링을위한 프로토콜이 논의 될 것이다.

수초 희소 돌기 아교 세포 당 단백질 (MOG<sub&gt; 35-55</sub&gt;) C57BL / 6 쥐에 실험자가 면역 뇌척수염 (EAE) 유도

우리는 기본 실험실 장비만을 사용하여 마우스 Myelin Oligodendrocyte Glycoprotein을 포함하는 대량의 융합 단백질을 생성하고 정제하는 간단한 프로토콜을 설명합니다. 이 단백질은 T 세포와 B 세포 모두에 의해 유발되는 실험적인 자가면역 뇌척수염을 유도하는 데 사용할 수 있습니다.

실험자가 면역 뇌척수염 연구 간단하고 효율적인 생산 및 마우스 미엘린 희소 돌기 아교 세포 당 단백질의 정제

본 프로토콜은 미엘린 희소돌기아교세포 당단백질을 사용하는 마우스 모델에서 실험적 자가면역 뇌척수염의 유도 및 임상 스코어링 시스템을 사용하여 질환 과정을 모니터링하는 것을 설명한다. 실험적 자가면역 뇌척수염 관련 증상은 마우스 대퇴골 마이크로 컴퓨터 단층 촬영 분석 및 오픈 필드 테스트를 사용하여 분석되어 질병 과정을 종합적으로 평가합니다.

실험적 자가면역 뇌척수염의 유도 및 다양한 평가 지표

여기에서 우리는 열로 사멸된 Mycobacterium avium 아종 paratuberculosis를 포함하는 불완전한 Freund's adjuvant에 현탁된 면역원성 에피토프 미엘린 희소돌기아교세포 당단백질(MOG)35-55를 사용하여 C57BL/6 마우스에서 실험적 자가면역 뇌척수염을 적극적으로 유도하는 대체 프로토콜을 제시합니다.

실험적 자가면역 뇌척수염 동안 자가항원의 면역원성을 향상시키는 Mycobacterium paratuberculosis 의 보조 활성

실험적 자가면역 뇌척수염은 다발성 경화증에서 가장 널리 사용되는 쥐 모델 중 하나입니다. 현재 프로토콜에서는 남녀 모두의 C57BL/6J 마우스에 미엘린 희소돌기아교세포 당단백질 펩타이드를 면역하여 주로 꼬리와 팔다리의 상행 마비를 초래합니다. 여기서는 EAE 유도 및 평가 프로토콜에 대해 논의합니다.

두 성별의 다발성 경화증 모델링: MOG35-55-유도 실험적 자가면역 뇌척수염

학습하세요 실험적 자가면역 뇌척수염(EAE) 유도를 위한 표준화된 항원/보조 에멀젼 균질화 방법을 통해 다발성 경화증 동물 모델에서 재현성 높은 결과를 얻는 기법을 확인하세요.

실험적 자가면역 뇌척수염 유도를 위한 항원/보조 에멀젼을 제조하기 위한 빠르고 간단하며 표준화된 균질화 방법

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