Name: 글루칸 포스파타제의 기질 결합을 측정하기 위한 Concanavalin A 기반 침강 분석 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-12-23T14:50:00.000+00:00
Duration: 9 min 7 s
Description: 학습하세요 콘카나발린 A 기반 침강 분석법으로 글루칸 포스파타제의 기질 결합 친화도를 정량화하는 방법을. 이 기법은 밀리몰 범위의 약한 탄수화물-단백질 상호작용을 검출하여 효소 기능 연구에 활용됩니다.

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이 연구는 국립 과학 재단 상 MCB-2012074의 지원을 받았습니다. 저자는 귀중한 토론과 지원을 해준 플로리다 대학교 생화학 및 분자 생물학과의 Craig W. Vander Kooi 박사에게 감사드립니다. 저자는 또한 플로리다 대학교 생화학 및 분자 생물학과의 Matthew S. Gentry 박사에게 그의 지원에 감사드립니다. 웨스턴 블롯 이미징을 위해 LICOR C-digit 블롯 스캐너를 사용할 수 있도록 허락해 주신 Skidmore College Neuroscience 프로그램의 의장인 Sara Lagalwar 박사에게 감사드립니다.

1. ConA-Sepharose 비드의 제조
<ol><li>67mM HEPES(pH 7.5), 10mM MgCl2 및 0.2mMCaCl2를 포함하는 결합 완충액 250mL를 만듭니다. 1 M NaOH 용액을 사용하여 pH를 조절한다.</li>
	<li>ConA-Sepharose 비드 현탁액 250μL를 1.5mL 미세원심분리기 튜브에 피펫팅합니다. 내용물을 10,000 x g 에서 4°C에서 30초 동안 원심분리합니다. 상청액을 버리십시오. 참고: 분석에 사용된 각 아밀로펙틴 농도에 대해 250mL 미세 원심분리기 튜브에 1.5μL의 ConA-Sepharose 비드가 필요합니다.</li>
	<li>750 μL의 결합 완충액을 250 μL의 ConA-Sepharose 비드가 들어 있는 각 튜브에 추가합니다. 튜브를 10,000 x g 에서 4°C에서 1분 동안 원심분리합니다. 상청액을 제거합니다. 이 단계를 2x 반복하여 비드가 적절하게 세척되고 결합 완충액과 평형을 이루도록 합니다.</li>
</ol>2. 아밀로펙틴 용액의 제조
<ol><li>10mg/mL 감자 아밀로펙틴의 원액을 만드십시오. 아밀로펙틴은 수 불용성이며 열에 의해 용해 될 수 있습니다. 가용화하려면 감자 아밀로펙틴 0.1g을 증류수 10mL에 첨가한다. 현탁액을 80°C의 수조에서 1시간 동안 또는 용액이 더 이상 탁해지지 않을 때까지 가열합니다.</li>
	<li>용액이 뭉치는 것을 방지하기 위해 반복적인 볼텍싱과 함께 실온(RT)으로 돌아가도록 합니다.</li>
	<li>알코올-알칼리성 처리는 아밀로펙틴 기질을 가용화하는 대체 방법입니다. 이 방법을 사용하여 가용화하려면 아래 단계를 따르십시오.<ol><li>0.5g의 아밀로펙틴 기질을 5mL의 20% 에탄올과 5mL의 2M NaOH에 현탁합니다. RT에서 15-20 분 동안 내용물을 세게 저어줍니다.</li>
		<li>다음으로, 물 10 mL를 첨가하고, 2 M HCl을 첨가하여 용액의 pH를 6.5로 조정한다. 증류수로 결과 용액의 부피를 50mL로 올려 10mg/mL 아밀로펙틴 용액을 만든다.</li>
	</ol></li>
	<li>10mg/mL 가용화된 아밀로펙틴 용액을 희석하여 일련의 2mL의 희석된 아밀로펙틴 용액을 만듭니다. 예를 들어, 10mg/mL의 반감액을 수행하여 일련의 아밀로펙틴 농도(5mg/mL, 2.5mg/mL, 1.25mg/mL, 0.625mg/mL, 0.3125mg/mL, 0.156mg/mL, 0.078mg/mL, 0.039mg/mL, 0.019mg/mL 및 0mg/mL)를 준비합니다.</li>
</ol>3. ConA 세파로스의 제조 : 아밀로펙틴 비드
<ol><li>각 희석된 아밀로펙틴 용액 250μL를 결합 완충액에 미리 평형화된 ConA-Sepharose 비드 250μL가 들어 있는 1.5mL 미세원심분리기 튜브에 추가합니다. 내용물을 잘 섞는다. 해당 아밀로펙틴 농도로 튜브에 라벨을 붙입니다.</li>
	<li>4°C에서 30분 동안 회전하는 휠에서 내용물을 배양합니다. 참고: ConA-Sepharose:amylopectin 결합 복합체는 20분 후 시간이 지남에 따라 변화가 없습니다. 평형에 도달했는지 확인하기 위해 배양 시간을 10분에서 1시간까지 다양하게 하여 30분 배양 시간을 선택했습니다.</li>
	<li>튜브를 10,000 x g 에서 1분 동안 원심분리합니다. 새로 라벨이 붙은 1.5mL 미세 원심분리기 튜브에 상층액을 수집합니다. 이들 상청액 분획을 저장하여 D-글루코스 분석12 (아밀로펙틴의 산 가수분해에 이어 효소 분석을 통한 글루코스의 UV 측정)를 수행합니다. 이 단계는 모든 아밀로펙틴이 비드에 결합되도록 하는 데 필요합니다.</li>
	<li>750 μL의 결합 완충액을 ConA-Sepharose:amylopectin beads에 첨가합니다. 튜브를 10,000 x g 에서 1분 동안 원심분리합니다. 결합되지 않은 아밀로펙틴 분자를 제거하기 위해 상청액을 버립니다.</li>
	<li>충분한 세척을 위해 3.4단계를 반복합니다. 각 튜브에는 이제 다양한 양의 아밀로펙틴 기질에 결합된 ConA-Sepharose 비드가 포함되어 있습니다.</li>
</ol>4. ConA-Sepharose와 SEX4 배양 : 아밀로펙틴 비드
<ol><li>250μL의 ConA-Sepharose:amylopectin 비드를 10μg의 SEX4 단백질, 10mM 디티오트레이톨(DTT) 및 10μM 프로테아제 억제제 칵테일(PIC)을 포함하는 결합 완충액 100μL와 혼합합니다. 각 튜브의 총 부피는 350μL입니다. 참고: 프로테아제 억제제 칵테일은 불필요한 SEX4 분해를 방지하기 위한 예방 단계로 추가됩니다. 이 단계는 선택 사항입니다. 이 분석에서는 재조합 단백질인 Arabidopsis thaliana SEX4(AtSEX4)를 사용합니다. 정제된 단백질은 화학발광을 통해 단백질을 검출하는 데 필요한 N-말단 히스티딘 태그를 함유하고 있습니다. 글루칸 포스파타제 정제에 대한 상세한 정보는 이전 간행물 14,20,24에 기재되어 있다.</li>
	<li>단백질과 ConA-Sepharose:amylopectin 비드 현탁액을 4°C에서 45분 동안 부드럽게 회전시키면서 인큐베이션합니다. 참고: 복합체의 평형에 도달하기 위해 45분의 배양 시간이 선택됩니다.</li>
	<li>튜브를 10,000 x g 에서 1분 동안 원심분리합니다. 겔 로딩 팁을 사용하여 상층액 50μL를 새로운 1.5mL 미세원심분리 튜브에 조심스럽게 피펫팅합니다. 수집된 상층액 분획 50μL가 들어 있는 각 튜브에 4x SDS-PAGE 염료 20μL와 물 10μL를 추가합니다. 샘플을 95°C에서 10분 동안 가열합니다. SDS-PAGE 젤을 실행하기 위해 이러한 샘플을 저장합니다. "상층액(S)"이라고 표시된 10개의 새 튜브에 해당 기질 농도가 있는지 확인합니다.</li>
	<li>750μL의 결합 완충액을 ConA-Sepharose:amylopectin:SEX4 비드에 추가하여 비드에서 결합되지 않은 단백질을 제거합니다. 튜브를 10,000 x g 에서 1분 동안 원심분리합니다. 적절한 세척을 위해 이 단계를 한 번 더 반복합니다. 상청액을 버리십시오.</li>
	<li>세척된 ConA-Sepharose:amylopectin:SEX4 비드가 들어 있는 튜브에 4x SDS-PAGE 염료 20μL와 증류수 80μL를 추가합니다. 샘플을 95°C에서 10분 동안 가열하고 10,000 x g 에서 1분 동안 원심분리합니다.</li>
	<li>펠릿을 버리고 SDS-PAGE 젤을 실행하기 위해 상청액을 저장합니다. 상층액 80μL를 새 튜브에 피펫으로 넣고 "펠릿(P)"으로 표시합니다.</li>
</ol>5. SDS-PAGE 젤 실행
<ol><li>결합되지 않은 단백질 샘플 40μL(2.3단계에서 제조, 표지된 S)를 가장 낮은 기질 농도에서 가장 높은 농도까지 4%-12% 프리캐스트 폴리아크릴아미드 겔 웰에 로드하되, 단백질 분자량 마커를 로드하기 위해 첫 번째 레인을 자유롭게 유지합니다. 두 번째 젤을 사용하여 2.5단계에서 만든 10개의 결합된 단백질 샘플(P로 표시됨)을 로드합니다.</li>
	<li>새로 준비된 1x SDS-PAGE 실행 버퍼를 장치의 두 챔버에 추가합니다. 150V에서 35분 동안 또는 염료 전면이 젤 바닥에 도달할 때까지 젤을 실행합니다.</li>
	<li>장치에서 런 젤을 제거하고 스페이서와 유리판을 제거합니다. 분리된 겔을 사용하여 웨스턴 블롯 분석을 실행합니다.</li>
</ol>6. 화학발광 검출을 위한 웨스턴 블로팅14,15
참고: 이 방법은 사용자가 실험실에 가지고 있는 웨스턴 블로팅 장비에 따라 쉽게 수정/조정할 수 있습니다.
<ol><li>트리스 염기 5.8g, 글리신 2.9g, SDS 0.37g, 메탄올 200mL를 포함하는 전사 완충액 1L를 만듭니다.</li>
	<li>크기가 분리된 단백질을 폴리아크릴아미드 겔에서 니트로셀룰로오스 막으로 옮깁니다. 스폰지, 여과지, 겔 및 니트로셀룰로오스 멤브레인을 웨스턴 전달 프로토콜14,15에 따라 간략하게 조립합니다. 70V에서 1시간 동안 작동합니다.</li>
	<li>비특이적 단백질 결합을 방지하기 위해 1%-5% 소 혈청 알부민(BSA) 또는 우유 단백질의 단백질 용액이 포함된 니트로셀룰로오스 막을 50mL의 TBST 완충액(20mM Tris[pH 7.5], 150mM NaCl, 0.1% Tween 20)에 1시간 동안 배양합니다. TBST 버퍼를 사용하여 멤브레인을 3배 세척하여 결합되지 않은 차단 용액을 제거합니다.</li>
	<li>양고추냉이 과산화효소(HRP) 결합 항체와 함께 1시간 동안 His-tagged 단백질을 특이적으로 배양합니다. 멤브레인을 TBST 완충액으로 3x 세척하여 결합되지 않은 항체를 제거합니다. 최적의 재현성과 감도를 위해 항체를 TBST에 1:2,000 희석하여 사용합니다.</li>
	<li>HRP 효소 결합 항체는 SEX4 단백질의 히스티딘 태그에 특이적으로 결합하여 화학발광 시약이 있는 상태에서 밴드를 생성합니다. 디지털 이미징의 경우 1.5mL 튜브에 화학발광 기질 용액(각각 750μL)을 동일한 비율로 혼합한 용액을 만듭니다. 용액에서 적어도 5분 동안 멤브레인을 배양합니다.</li>
	<li>멤브레인 단백질 면이 아래로 향하도록 블롯 스캐너에 놓고 수집 소프트웨어를 실행하여 펠릿 및 상청액 분획 모두에서 단백질을 정량화합니다.</li>
</ol>7. 데이터 분석
<ol><li>블롯 스캐너와 함께 수집 소프트웨어를 사용하여 정량적 신호 측정을 수행합니다. 상층액 및 펠릿 분획의 모든 정량적 측정을 로드된 총 단백질로 정규화합니다. 참고: 이 소프트웨어를 사용하면 상청액 및 펠릿 분획에서 각 단백질 밴드의 강도를 정량화할 수 있습니다.</li>
	<li>포화 결합 실험에서 단백질 결합 대 아밀로펙틴 농도의 백분율을 표시합니다. 데이터 분석 소프트웨어를사용하여 데이터를 Y = Bmax x X/(KD + X)에 피팅하고 KD를 계산합니다. 참고: Bmax는 최대 특이 결합, Y축은 백분율입니다.tage 결합된 단백질, X축은 아밀로펙틴 농도입니다.</li>
</ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64700/64700fig01.jpg"> 그림 1: ConA-Sepharose 침강 분석 워크플로우 개요. (a) ConA-Sepharose 비드의 제조. (B) 아밀로펙틴 기질을 사용한 배양. (C) SEX4 단백질로 배양. (D) 원심분리를 통한 결합 및 결합되지 않은 단백질 분획의 분리. (e) SDS-PAGE를 통한 단백질 분리. (F) 웨스턴 블롯 분석. (g) His-tagged SEX4 단백질의 화학발광 검출. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64700/64700fig01large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

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<li>Doyle, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+binding+interactions+by+isothermal+titration+calorimetry%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Characterization of binding interactions by isothermal titration calorimetry.</a> Current Opinion in Biotechnology. 8 (1), 31-35 (1997).</li>
</ol>

저자는 이해 상충을 선언하지 않습니다.

이 연구는 글루칸-글루칸 포스파타제 상호작용의 결합 친화도를 측정할 수 있는 새로운 시험관 내 침강 분석의 성공적인 개발을 보여줍니다. 분석 설계는 포도당의 하이드록실 잔기를 통해 글루칸에 대한 렉틴 ConA의 특이적 결합을 활용하여 가용화된 탄수화물 기질을 세파로스 비드에 간접적으로 포획합니다. 이를 통해 원심분리를 통해 결합된 단백질 분획과 결합되지 않은 단백질 분획을 분리하고 가용화된 글루칸 기질과 글루칸 포스파타제의 결합 친화도를 측정할 수 있습니다. 테스트된 모든 글루칸 포스파타제는 아밀로펙틴에 특이적으로 결합하는 것으로 밝혀졌으며, 아밀로펙틴이 없는 경우 ConA-세파로스 비드에 검출할 수 있는 결합이 없었습니다. 
실험은 소량의 고정된 양의 SEX4 단백질과 ConA-Sepharose 비드에 부착된 다양한 아밀로펙틴 농도로 결합 친화도를 측정하기 위해 수행되었습니다. 과량의 ConA-세파로스 비드를 사용하여 비드에 결합...

글루칸 포스파타제는 단백질 티로신 포스파타제(PTP) 슈퍼패밀리1 내에서 이중 특이성 포스파타제(DSP)의 기능적으로 다양한 서브패밀리의 구성원입니다. 그들은 광범위하게 발산하는 광합성 유기체, 인간, 척추 동물, 일부 무척추 동물 및 원생 생물을 포함한 대부분의 생명체에서 발견되었습니다 2,3,4. 식물에는 전분 과잉4 (SEX4), 성 4 (LSF1) 및 성 4 (LSF2) 5,6,7과 같은 세 가지 알려진 글루칸 포스파타제가 포함되어 있습니다. 글루칸 포스파타제가 결핍된 식물은 일시적인 전분 분해 및 잎의 전분 축적 비율이 감소합니다 8,9. Laforin은 척추 동물과 인간의 글리코겐을 탈인산화하는 글루칸 포스파타제 계열의 창립 멤버입니다 3,10. 라포린의 돌연변이는 신경퇴행성 라포라병을 유발하는데, 이는 치명적인 상염색체 열성 형태의 간질이다11. 글루칸 포스파타제는 글리코겐과 전분 대사에 필요하며 식물의 전분 함량을 조절하고 신경퇴행성 라포라병을 치료하는 중요한 효소로 부상했습니다12,13. 모델 글루칸 기질을 가진 글루칸 포스파타제에 대한 최근의 X선 결정학 연구는 기질 결합 및 글루칸 탈인산화의 촉매 메커니즘에 대해 밝혔습니다14,15,16,17. 그러나 글루칸 포스파타제가 생리학적 기질에 어떻게 결합하는지에 대한 현재의 이해는 불완전합니다.
전분은 80%-90% 아밀로펙틴과 10%-20% 아밀로오스로 만들어진 포도당의 불용성 중합체입니다18. 식물 글루칸 포스파타제의 기질은 글리코겐 및 전분 과립과 같은 인산화된 탄수화물 분자입니다. 인산화된 글루코실 잔기는 1:600 포스페이트:글루코실 잔기 비율로 존재한다. 흥미롭게도, 인산염은 아밀로펙틴 분자에만 존재한다19. 주요 식물 글루칸 포스파타제 SEX4는 전분 과립에 작용하여 아밀로펙틴 분자를 탈인산화합니다. 구조 유도 돌연변이 유발 연구와 결합된 SEX4의 X선 결정 구조는 글루칸 구조 내의 다양한 위치에 대한 SEX4의 고유한 기질 특이성을 입증했습니다15. 우리는 최근에 SEX4의 생물학적으로 관련된 활성이 가용화된 아밀로펙틴 기질에 작용할 때만 관찰될 수 있음을 보여주었습니다20. 그러나 글루칸-SEX4 상호작용을 이해하는 것은 기질의 구조적 복잡성, 더 넓은 결합 특이성, 단백질과 그 기질 사이의 낮은 결합 친화도로 인해 어려운 것으로 입증되었습니다. 이러한 문제는 등온 적정 열량측정법(ITC), 핵자기 공명(NMR) 분광법 및 효소 결합 면역흡착 분석법(ELISA) 기반 분석과 같은 단백질-리간드 상호작용에 일반적으로 사용되는 방법을 활용하는 능력을 방해했습니다.
흥미롭게도 탄수화물-단백질 상호 작용에 대한 우리의 이해의 대부분은 렉틴을 연구하는 데서 비롯되었습니다. 콘카나발린 A(ConA)는 원래 잭빈에서 추출한 콩과 식물 렉틴 계열의 단백질입니다. ConA는 높은 특이성으로 탄수화물을 결합하므로 약물 표적화 및 전달 응용 분야에 사용하기에 유리합니다. 비환원성 α-D-만노실 및 α-D-글루코실을 함유하는 다양한 기질에 대한 ConA의 결합이 광범위하게 연구되었다19,20. 상업적으로 이용 가능한 ConA-결합 세파로스 비드는 일반적으로 당단백질과 당지질을 정제하는 데 사용된다21. ConA는 포도당 잔기의 C3, C4 및 C6 하이드록실 그룹을 통해 이러한 글루칸에 결합합니다. ConA-Sepharose 비드는 또한 글리코겐-단백질 및 전분-단백질 상호작용의 결합을 측정하는 데 성공적으로 사용되었습니다22,23. 이 연구에서 우리는 ConA-Sepharose 비드를 사용하여 글루칸 포스파타제-아밀로펙틴 상호작용의 결합 특이성을 측정하기 위한 결합 분석을 개발했습니다.
이전에는 글루칸 포스파타제 기질 결합 능력 14,20,24를 평가하기 위해 ConA 기반 침강 분석이 사용되었습니다. 이 연구에서는 글루칸-글루칸 포스파타제와 탄수화물 상호작용의 결합 친화도를 결정하는 새로운 방법을 개발하는 데 동일한 전략이 사용되었습니다. 이 방법은 또한 다양한 가용화 탄수화물-단백질 상호 작용을 조사하는 데 이점이 있습니다.

<table><tbody><tr><td>6x-His Tag 단클론 항체(HIS. H8), HRP</td><td>Therm Fisher Scientific</td><td>MA1-21315-HRP</td><td></td></tr><tr><td>Biorad 젤 전기영동 및 웨스턴 블롯 키트</td><td>Biorad&nbsp;</td><td></td><td></td>1703930</tr><tr><td>염화칼슘</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>208291</td><td></td></tr><tr><td>C-Digit 블롯 스캐너</td><td>LICOR</td><td>3600-00</td><td>블롯 스캐너</td></tr><tr><td>완전한 프로테아제 억제제 칵테일</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>11836170001</td><td></td></tr><tr><td>Concanavalin A-sepharose beads</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C9017</td><td>이 제품에는 다음이 포함됩니다&nbsp; 0.1 M 아세테이트 완충액, pH 6, 1 M NaCl, 1 mM CaCl2, 1 mM MnCl2 및 1 mM MgCl2를 20% 에탄올에 포함&nbsp;</td></tr><tr><td>원심분리기</td><td>Eppendorf&nbsp;</td><td>5425R</td><td></td></tr><tr><td>Glycine</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP381-5</td><td></td></tr><tr><td>GraphPad Prism 8.0 소프트웨어</td><td>GraphPad&nbsp;</td><td>버전 8.0</td><td>데이터 분석 소프트웨어&nbsp;</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H8651</td><td></td></tr><tr><td>Image Studio</td><td>LICOR</td><td>3600-501</td><td>수집 소프트웨어</td></tr> 염화<tr><td>마그네슘</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M2670</td><td></td></tr><tr><td>메탄올</td><td>Fisher Scientific</td><td>A452SK-4</td><td></td></tr><tr><td>도데실황산나트륨</td><td>Fisher Scientific</td><td>PI28312</td><td></td></tr><tr><td>감자 아밀로펙틴</td><td>시그마-알드리치</td><td>A8515</td><td></td></tr><tr><td>프리캐스트 SDSPAGE 젤</td><td>Genscript</td><td>M00653S</td><td></td></tr><tr><td>Tris 베이스</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP154-1</td><td></td></tr><tr><td>트윈 20</td><td>Fisher Scientific</td><td>MP1TWEEN201</td><td></td></tr><tr><td>Westernsure 프리미엄 화학발광 기질&nbsp;</td><td>리코어</td><td>&nbsp; 926-95000</td><td></td></tr></tbody></table>

글루칸 포스파타제의 기질 결합을 측정하기 위한 concanavalin a 기반 침강 분석

Concanavalin A-Based Sedimentation Assay to Measure Substrate Binding of Glucan Phosphatases

글루칸 포스파타제는 동물의 글리코겐 및 식물의 전분과 같은 글루칸 기질을 탈인산화하는 이중 특이성 포스파타제(DSP)의 더 큰 계열에 속합니다. 모델 글루칸 기질을 가진 글루칸 포스파타제의 결정 구조는 DSP와 탄수화물 결합 도메인으로 만들어진 뚜렷한 글루칸 결합 계면을 나타냅니다. 그러나 생리학적으로 관련된 기질과의 글루칸-글루칸 포스파타제 상호작용의 정량적 측정은 글루칸 포스파타제 효소 계열의 생물학적 이해와 에너지 대사 조절의 기본입니다. 이 원고는 다른 글루칸 기질에 대한 글루칸 포스파타제의 기질 결합 친화도를 검출하도록 설계된 Concanavalin A(ConA) 기반 시험관 내 침강 분석을 보고합니다. 개념 증명으로서, 글루칸 포스파타제 Arabidopsis thaliana Starch Excess4 (SEX4) 및 아밀로펙틴의 해리 상수(KD)를 측정하였다. SEX4 돌연변이 및 글루칸 포스파타제 효소 계열의 다른 구성원의 특성화는 단백질-탄수화물 상호 작용의 차등 결합을 평가하기 위한 이 분석의 유용성을 추가로 입증합니다. 이러한 데이터는 광범위한 전분 및 글리코겐 상호작용 단백질을 특성화하기 위한 이 분석의 적합성을 입증합니다.

글루칸 포스파타제 단백질 계열의 주요 특징 중 하나는 글루칸 기질에 결합하는 능력입니다. 먼저, ConA-Sepharose:amylopectin beads에 대한 SEX4의 결합능을 SDS-PAGE를 이용하여 분석하였다(도 2A). 소 혈청 알부민(BSA)은 ConA-Sepharose:amylopectin 비드에 대한 단백질의 비특이적 결합을 검출하기 위한 음성 대조군 역할을 했습니다. 단백질의 SDS-PAGE 분석은 펠렛 분획에서 SEX4 단백질의 존재와 상청액 분획에서 BSA의 존재를 보여주었습니다. 글루칸 결합 능력이 현저히 감소된 것으로 알려진 SEX4 돌연변이인 W278A도 분석에 포함되었습니다. W278A 돌연변이는 상청액 분획에 나타났으며, 이는 SEX4 단백질의 글루칸 결합 능력을 검출하기 위한 이 분석의 유용성과 특이성을 나타냅니다. SDS-PAGE가 SEX4 단백질을 시각화하는 동안 작은 글루칸 포스파타제의 민감도와 사용에 대한 우려가 있었습니다. 예를 들어...

이 방법은 글루칸 포스파타제와 아밀로펙틴의 결합 친화도를 정량화하기 위한 렉틴 기반 시험관 내 침강 분석을 설명합니다. 이 공동 침강 분석은 글루칸 포스파타제 기질 결합을 측정하는 데 신뢰할 수 있으며 다양한 가용화된 글루칸 기질에 적용할 수 있습니다.

글루칸 포스파타제의 기질 결합을 측정하기 위한 Concanavalin A 기반 침강 분석

Glucan phosphatases belong to the larger family of dual specificity phosphatases (DSP) that dephosphorylate glucan substrates, such as glycogen in animals ...

이 concanavalin A 기반 시험관 내 침강 분석은 다양한 STA 기질에 대한 글루칸 포스파타제의 결합 친화도를 측정하도록 설계되었습니다. 이 방법에서 얻은 정보는 글루칸 포스파타제 효소 계열을 이해하는 데 기본입니다. 탄수화물 단백질 상호작용은 상대적으로 약하기 때문에 현재의 방법으로는 글루칸 포스파타제와 글루칸 상호작용을 검출할 수 없습니다.당사의 렉틴 기반 응고 분석은 밀리몰 범위의 결합 친화도를 감지할 수 있습니다. SEX4 돌연변이체와 글루칸 포스파타제 효소 계열의 다른 구성원의 특성화는 단백질 탄수화물 상호작용을 정량화하는 이 분석의 능력을 보여줍니다. 분석에서 가장 어려운 부분 중 하나는 기질의 농도 범위를 최적화하는 것입니다.아이디어를 얻기 위해 더 넓은 범위로 시작한 다음 특정 범위로 좁히는 것이 좋습니다. 시작하려면 250마이크로리터의 ConA-세파로스 비드 현탁액을 1.5밀리리터 미세원심분리기 튜브에 피펫팅합니다. 섭씨 4도에서 30 초 동안 10, 000 G에서 내용물을 원심 분리합니다.상청액을 버린 후, 750 마이크로리터의 결합 완충액을 250 마이크로리터의 ConA-세파로스 비드를 함유하는 각 튜브에 첨가한다. 튜브를 섭씨 4도에서 1 분 동안 10, 000 G에서 원심 분리하고 상청액을 제거합니다. 다음으로, 가용화된 아밀로펙틴 용액의 2배 희석액을 제조하여 일련의 2밀리리터 희석된 아밀로펙틴 용액을 만든다.ConA-세파로스 아밀로펙틴 비드를 제조하기 위해, 250 마이크로리터의 ConA-세파로스 비드 사전 평형 및 결합 완충액을 함유하는 튜브에 각각의 희석된 아밀로펙틴 용액 250 마이크로리터를 첨가한다. 내용물을 잘 섞고 해당 아밀로펙틴 농도로 튜브에 라벨을 붙입니다. 튜브 내용물을 섭씨 4도에서 30 분 동안 회전하는 휠에서 배양하고 튜브를 10, 000 G에서 1 분 동안 원심 분리합니다.250 마이크로리터의 ConA-세파로스 아밀로펙틴 비드를 10 마이크로그램의 전분 과잉 4 또는 SEX4 단백질, 10 밀리몰의 디티오트레이톨 및 10 마이크로몰의 프로테아제 억제제 칵테일을 함유하는 결합 완충액 100 마이크로리터와 혼합합니다. 내용물을 섭씨 4도에서 45분 동안 부드럽게 회전시키면서 배양합니다. 그런 다음 튜브를 10, 000G에서 1 분 동안 원심 분리하고 50 마이크로 리터의 상청액을 새로운 1.5 밀리리터 마이크로 원심 분리기 튜브에 조심스럽게 피펫합니다.수집 된 상청액 분획 50 마이크로 리터를 함유 한 각 튜브에 4X SDS 페이지 염료 20 마이크로 리터와 증류수 10 마이크로 리터를 추가하고 S.유사하게 20 마이크로 리터의 4X SDS 페이지 염료와 80 마이크로 리터의 증류수를 세척 된 ConA-sepharose amylopectin SEX4 비드가 들어있는 튜브에 첨가하십시오. 염료와 물을 첨가한 후 모든 샘플을 섭씨 95도에서 10분 동안 가열합니다. ConA-sepharose amylopectin SEX4 비드가 10, 000 G에서 1 분 동안 원심 분리되면 상청액을 저장하고 S로 표지 된 결합되지 않은 단백질 샘플의 P.Load 40 마이크로 리터를 가장 낮은 기질 농도에서 가장 높은 기질 농도에서 가장 높은 것까지 4-12 % 프리 캐스트 폴리 아크릴 아미드 젤 웰로 P.Load 라벨을 붙입니다.두 번째 젤을 사용하여 P.Add 새로 준비된 SDS 페이지 실행 버퍼를 장치의 두 챔버에 넣고 150 볼트에서 35 분 동안 또는 염료 전면이 젤의 바닥에 도달 할 때까지 젤을 실행합니다. 그런 다음 장치에서 겔 카세트를 꺼내 스페이서와 유리판을 제거하여 웨스턴 블롯 분석을 위해 겔을 분리합니다. 트리스 염기 5.8g, 글리신 2.9g, SDS 0.37g 및 메탄올 200ml를 포함하는 1리터의 전달 완충액을 만듭니다.폴리아크릴아미드 겔에서 니트로셀룰로오스 막으로 크기 분리된 단백질을 전달하기 위해 웨스턴 전달 프로토콜에 따라 스폰지, 여과지, 겔 및 니트로셀룰로오스 막을 조립하고 70볼트에서 1시간 동안 실행합니다. 겔을 실행한 후 니트로셀룰로오스 막을 1 내지 5%소 혈청 알부민 또는 우유 단백질의 단백질 용액에 50밀리리터의 TBST 완충액에 1시간 동안 배양하여 비특이적 단백질 결합을 방지한다. TBST 버퍼를 사용하여 멤브레인을 세 번 세척하여 결합되지 않은 차단 용액을 제거합니다.다음으로, 히스티딘 태그가 붙은 단백질에 특이적으로 희석된 양고추냉이 퍼옥시다아제 연결 항체와 함께 1시간 동안 멤브레인을 배양한다. 그런 다음 멤브레인을 TBST 완충액으로 세 번 세척하여 결합되지 않은 항체를 제거합니다. 디지털 이미징의 경우, 1.5 밀리리터 튜브에 각각 750 마이크로 리터의 화학 발광 기질 용액을 동일한 비율로 용액을 만들고 용액에서 최소 5 분 동안 멤브레인을 배양합니다.멤브레인 단백질 면이 아래로 향하도록 블롯 스캐너에 놓고 수집 소프트웨어를 실행하여 펠릿 및 상청액 분획 모두에서 단백질을 정량화합니다. 데이터를 수집하려면 블롯 스캐너와 함께 수집 소프트웨어를 사용하여 정량적 신호 측정을 시작하십시오. 상층액 및 펠릿 분획의 모든 정량적 측정을 로드된 총 단백질로 정규화합니다.포화 결합 실험에서, 결합 된 단백질 대 아밀로펙틴 농도의 백분율을 플롯하고 데이터 분석 소프트웨어를 사용하여 데이터를 피팅하여 해리 상수를 계산하고, Kd.The SEX4의 결합 능력을 ConA-sepharose amylopectin beads에 SDS 페이지를 사용하여 분석했습니다. 펠렛 분획에서 SEX4 단백질의 존재와 상청액 분획에서 소 혈청 알부민의 존재가 주목되었다. 현저히 감소된 글루칸 결합 능력을 갖는 알려진 SEX4 돌연변이체인 W278A가 상청액 분획에 나타났으며, 이는 이 분석의 유용성과 특이성을 나타냅니다.웨스턴 블랏팅 분석에서 SEX4 검출이 크게 증가한 것으로 나타났으며, 이 방법은 말단 히스티딘 태그로 글루칸 포스페이트를 검출하는 데 특이적입니다. cosedimentation 분석은 세 가지 다른 SEX4 농도에서 테스트되었습니다. 2마이크로그램의 SEX4는 화학발광 검출을 통해 시각화하기에 충분하지만, 5마이크로그램 또는 10마이크로그램의 SEX4를 사용하면 보다 정확한 검출이 가능합니다.또한, 증가 된 아밀로펙틴 농도와 함께 증가 된 SEX4 결합이 주목되었다. 상이한 농도에서 아밀로펙틴 및 SEX4 야생형 단백질의 결합 친화도를 측정하고, 특정 부위 결합 모델에 결합된 단백질 퍼센트 데이터는 밀리리터당 대략 1.03 밀리그램의 Kd를 생성하였다. 감자 아밀로펙틴에 대한 라포린, LSF2, 옥수수 SEX4 및 감자 SEX4의 결합을 측정하기 위한 이 방법의 적용 가능성을 평가했습니다.결과는 농업학적으로 중요한 작물에서 테스트된 단백질도 아밀로펙틴에 차별적으로 결합되어 있음을 입증했습니다. 펠릿 및 상청액 분획의 모든 정량적 측정을 로드된 총 단백질로 정규화하는 것을 기억하는 것이 중요합니다. 모든 아밀로펙틴이 비드에 결합되도록 하려면 상청액 분획을 저장하여 나중에 심포도당 분석을 수행합니다.글루칸 포스파타제는 탄수화물을 결합하고, 위치를 파악하고, 탈인산화하는 뚜렷한 메커니즘을 사용합니다. 이 방법을 사용하면 위치 특이적 탈인산화를 위해 대형 고분자 복합체 내의 다양한 구조 도메인에 대한 글루칸 포스파타제의 결합을 탐색할 수 있습니다.

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연구

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Biochemistry

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