Name: 생쥐에서 급성 골수성 백혈병을 발생시키기 위한 복강내 이식 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-01-06T14:10:00.000+00:00
Duration: 10 min 2 s
Description: 배우세요 생쥐에서 급성 골수성 백혈병(AML)을 발생시키는 복강내 이식 방법을. Lin-negative 세포와 SK 세포를 이용한 이 기법은 기존 정맥주사보다 편리하고 비용 효율적인 대안입니다.

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저자는 적시에 기술 지원을 제공한 Huck Institute의 유세포 분석 핵심 시설과 펜실베니아 주립 대학의 수의학 및 의생명과학부 동물 진단 실험실의 조직병리학 핵심 시설에 감사드립니다. 이 연구는 미국 암 연구소 (KSP), 펜실베니아 주립 농업 과학 대학, 펜실베니아 주립 암 연구소, USDA-NIFA 프로젝트 4771, KSP 및 RFP에 대한 수탁 번호 00000005의 보조금으로 지원되었습니다.

<ol><li>Dohner, H., Weisdorf, D. J., Bloomfield, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+myeloid+leukemia%5BTitle%5D)+AND+%22The+New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">Acute myeloid leukemia.</a> The New England Journal of Medicine. 373 (12), 1136-1152 (2015).</li>
<li>Fortier, J. M., Graubert, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+models+of+human+acute+myeloid+leukemia%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Treatment+and+Research%22%5BJournal%5D)">Murine models of human acute myeloid leukemia.</a> Cancer Treatment and Research. 145, 183-196 (2010).</li>
<li>Ernst, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Definitive+hematopoiesis+requires+the+mixed-lineage+leukemia+gene%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Cell%22%5BJournal%5D)">Definitive hematopoiesis requires the mixed-lineage leukemia gene.</a> Developmental Cell. 6 (3), 437-443 (2004).</li>
<li>Fisher, J. N., Kalleda, N., Stavropoulou, V., Schwaller, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Impact+of+the+cellular+origin+in+acute+myeloid+leukemia%3A+learning+from+mouse+models%5BTitle%5D)+AND+%22Hemasphere%22%5BJournal%5D)">The Impact of the cellular origin in acute myeloid leukemia: learning from mouse models.</a> Hemasphere. 3 (1), 152(2019).</li>
<li>Zhan, Y., Zhao, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematopoietic+stem+cell+transplant+in+mice+by+intra-femoral+injection%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Hematopoietic stem cell transplant in mice by intra-femoral injection.</a> Methods in Molecular Biology. 430, 161-169 (2008).</li>
<li>Price, J. E., Barth, R. F., Johnson, C. W., Staubus, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Injection+of+cells+and+monoclonal+antibodies+into+mice%3A+comparison+of+tail+vein+and+retroorbital+routes%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+Society+for+Experimental+Biology%22%5BJournal%5D)">Injection of cells and monoclonal antibodies into mice: comparison of tail vein and retroorbital routes.</a> Proceedings of the Society for Experimental Biology. 177 (2), 347-353 (1984).</li>
<li>Yardeni, T., Eckhaus, M., Morris, H. D., Huizing, M., Hoogstraten-Miller, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retro-orbital+injections+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Animal%22%5BJournal%5D)">Retro-orbital injections in mice.</a> Lab Animal. 40 (5), 155-160 (2011).</li>
<li>Suckow, M. A., Danneman, P., Brayton, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSuckow%2C+MA+%22The+Laboratory+Mouse%22">The Laboratory Mouse</a>. , CRC Press Inc. (2001).</li>
<li>Barr, J. E., Holmes, D. B., Ryan, L. J., Sharpless, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Techniques+for+the+chronic+cannulation+of+the+jugular+vein+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacology%2C+Biochemistry%2C+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Techniques for the chronic cannulation of the jugular vein in mice.</a> Pharmacology, Biochemistry, and Behavior. 11 (1), 115-118 (1979).</li>
<li>Kang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+cancer+stem+cell+metastasis+in+xenograft+animal+models%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Analysis of cancer stem cell metastasis in xenograft animal models.</a> Methods in Molecular Biology. 568, 7-19 (2009).</li>
<li>Nungestee, W., Wolf, A., Jourdonais, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+gastric+mucin+on+virulence+of+bacteria+in+intraperitoneal+injections+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+Society+for+Experimental+Biology+and+Medicine%22%5BJournal%5D)">Effect of gastric mucin on virulence of bacteria in intraperitoneal injections in the mouse.</a> Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine. 30 (2), 120-121 (1932).</li>
<li>Gargiulo, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mice+anesthesia%2C+analgesia%2C+and+part+I%3A+anesthetic+considerations+in+preclinical+research%5BTitle%5D)+AND+%22ILAR+journal%22%5BJournal%5D)">Mice anesthesia, analgesia, and part I: anesthetic considerations in preclinical research.</a> ILAR journal. 53 (1), 55-69 (2012).</li>
<li>Leong, S. -K., Ling, E. -A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Labelling+neurons+with+fluorescent+dyes+administered+via+intravenous%2C+subcutaneous+or+intraperitoneal+route%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">Labelling neurons with fluorescent dyes administered via intravenous, subcutaneous or intraperitoneal route.</a> Journal of Neuroscience Methods. 32 (1), 15-23 (1990).</li>
<li>Ma, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intraperitoneal+injection+of+magnetic+Fe3O4-nanoparticle+induces+hepatic+and+renal+tissue+injury+via+oxidative+stress+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Nanomedicine%22%5BJournal%5D)">Intraperitoneal injection of magnetic Fe3O4-nanoparticle induces hepatic and renal tissue injury via oxidative stress in mice.</a> International Journal of Nanomedicine. 7, 4809-4918 (2012).</li>
<li>Schwarze, S. R., Ho, A., Vocero-Akbani, A., Dowdy, S. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+protein+transduction%3A+delivery+of+a+biologically+active+protein+into+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">In vivo protein transduction: delivery of a biologically active protein into the mouse.</a> Science. 285 (5433), 1569-1572 (1999).</li>
<li>Muench, M. O., Chen, J. C., Beyer, A. I., Fomin, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+therapies+supplement%3A+the+peritoneum+as+an+ectopic+site+of+hematopoiesis+following+in+utero+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Transfusion%22%5BJournal%5D)">Cellular therapies supplement: the peritoneum as an ectopic site of hematopoiesis following in utero transplantation.</a> Transfusion. 51, Suppl_4 106-117 (2011).</li>
<li>Zhao, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravenous+injection+of+mesenchymal+stem+cells+is+effective+in+treating+liver+fibrosis%5BTitle%5D)+AND+%22World+Journal+of+Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">Intravenous injection of mesenchymal stem cells is effective in treating liver fibrosis.</a> World Journal of Gastroenterology. 18 (10), 1048(2012).</li>
<li>Yousefi, F., Ebtekar, M., Soleimani, M., Soudi, S., Hashemi, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+in+vivo+immunomodulatory+effects+of+intravenous+and+intraperitoneal+administration+of+adipose-tissue+mesenchymal+stem+cells+in+experimental+autoimmune+encephalomyelitis+%28EAE%29%5BTitle%5D)+AND+%22International+Immunopharmacol%22%5BJournal%5D)">Comparison of in vivo immunomodulatory effects of intravenous and intraperitoneal administration of adipose-tissue mesenchymal stem cells in experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE).</a> International Immunopharmacol. 17 (3), 608-616 (2013).</li>
<li>Cheng, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transplantation+of+bone+marrow-derived+MSCs+improves+cisplatinum-induced+renal+injury+through+paracrine+mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+and+Molecular+Pathology%22%5BJournal%5D)">Transplantation of bone marrow-derived MSCs improves cisplatinum-induced renal injury through paracrine mechanisms.</a> Experimental and Molecular Pathology. 94 (3), 466-473 (2013).</li>
<li>Castelo-Branco, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intraperitoneal+but+not+intravenous+cryopreserved+mesenchymal+stromal+cells+home+to+the+inflamed+colon+and+ameliorate+experimental+colitis%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Intraperitoneal but not intravenous cryopreserved mesenchymal stromal cells home to the inflamed colon and ameliorate experimental colitis.</a> PLoS One. 7 (3), 33360(2012).</li>
<li>Bazhanov, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intraperitoneally+infused+human+mesenchymal+stem+cells+form+aggregates+with+mouse+immune+cells+and+attach+to+peritoneal+organs%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Research+%26+Therapy%22%5BJournal%5D)">Intraperitoneally infused human mesenchymal stem cells form aggregates with mouse immune cells and attach to peritoneal organs.</a> Stem Cell Research & Therapy. 7, 27(2016).</li>
<li>Liu, Q., Chen, L., Atkinson, J. M., Claxton, D. F., Wang, H. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atg5-dependent+autophagy+contributes+to+the+development+of+acute+myeloid+leukemia+in+an+MLL-AF9-driven+mouse+model%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Death+%26+Disease%22%5BJournal%5D)">Atg5-dependent autophagy contributes to the development of acute myeloid leukemia in an MLL-AF9-driven mouse model.</a> Cell Death & Disease. 7 (9), 2361(2016).</li>
<li>Wognum, A. W., Eaves, A. C., Thomas, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+isolation+of+hematopoietic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Medical+Research%22%5BJournal%5D)">Identification and isolation of hematopoietic stem cells.</a> Archives of Medical Research. 34 (6), 461-475 (2003).</li>
<li>Randall, T. D., Weissman, I. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+a+population+of+cells+in+the+bone+marrow+that+phenotypically+mimics+hematopoietic+stem+cells%3A+resting+stem+cells+or+mystery+population%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Characterization of a population of cells in the bone marrow that phenotypically mimics hematopoietic stem cells: resting stem cells or mystery population.</a> Stem Cells. 16 (1), 38-48 (1998).</li>
<li>Gott, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+of+Cs-137+gamma+rays+and+320-kV+X-rays+in+a+mouse+bone+marrow+transplantation+model%5BTitle%5D)+AND+%22Dose+Response%22%5BJournal%5D)">A comparison of Cs-137 gamma rays and 320-kV X-rays in a mouse bone marrow transplantation model.</a> Dose Response. 18 (2), 1559325820916572(2020).</li>
<li>Miner, N. A., Koehler, J., Greenaway, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intraperitoneal+injection+of+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Intraperitoneal injection of mice.</a> Applied Microbiology. 17 (2), 250-251 (1969).</li>
<li>Madisen, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+robust+and+high-throughput+Cre+reporting+and+characterization+system+for+the+whole+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">A robust and high-throughput Cre reporting and characterization system for the whole mouse brain.</a> Nature Neuroscience. 13 (1), 133-140 (2010).</li>
<li>Cardiff, R. D., Miller, C. H., Munn, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Manual+hematoxylin+and+eosin+staining+of+mouse+tissue+sections%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Protocols%22%5BJournal%5D)">Manual hematoxylin and eosin staining of mouse tissue sections.</a> Cold Spring Harbor Protocols. 2014 (6), 655-658 (2014).</li>
<li>Ronan, J. L., Wu, W., Crabtree, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((From+neural+development+to+cognition%3A+unexpected+roles+for+chromatin%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Review+Genetics%22%5BJournal%5D)">From neural development to cognition: unexpected roles for chromatin.</a> Nature Review Genetics. 14 (5), 347-359 (2013).</li>
<li>Qian, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interleukin-4+treatment+reduces+leukemia+burden+in+acute+myeloid+leukemia%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+Journal%22%5BJournal%5D)">Interleukin-4 treatment reduces leukemia burden in acute myeloid leukemia.</a> FASEB Journal. 36 (5), 22328(2022).</li>
<li>Krivtsov, A. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transformation+from+committed+progenitor+to+leukaemia+stem+cell+initiated+by+MLL-AF9%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Transformation from committed progenitor to leukaemia stem cell initiated by MLL-AF9.</a> Nature. 442 (7104), 818-822 (2006).</li>
<li>Chen, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Malignant+transformation+initiated+by+Mll-AF9%3A+gene+dosage+and+critical+target+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Cell%22%5BJournal%5D)">Malignant transformation initiated by Mll-AF9: gene dosage and critical target cells.</a> Cancer Cell. 13 (5), 432-440 (2008).</li>
<li>Somervaille, T. C. P., Cleary, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+characterization+of+leukemia+stem+cells+in+murine+MLL-AF9+acute+myeloid+leukemia%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Cell%22%5BJournal%5D)">Identification and characterization of leukemia stem cells in murine MLL-AF9 acute myeloid leukemia.</a> Cancer Cell. 10 (4), 257-268 (2006).</li>
</ol>

저자는 이해 상충을 선언하지 않습니다.

이러한 상술한 연구들은 Lin- 세포의 이식이 1° 쥐 AML의 생성에서 LSK 세포와 비슷하다는 것을 뒷받침하는 증거를 제공한다. 또한, 현재 데이터는 i.p. 주사는 정맥 주사(또는 r.o.) 주사에 비해 쥐 AML을 확립하는 효율적이고 편리한 방법입니다.
LSK 세포 외에도 과립구-단핵구 전구체(GMP), 일반 림프구 전구체(CLP) 및 일반 골수 전구체(CMP)와 같은 다른 집단이 다양한 배양 기간31,32를 갖는 1° MLL-AF9 유도 AML의 생성에서 기증자 세포로 대체되는 것으로 보고되었지만 정량적 비교가 부족하여 최적의 선택을 제안할 수 없습니다. 현재 연구에서, 동일한 기증자 마우스로부터 분리된 Lin- 및 LSK는 형질도입된 골수 전구 세포(Sca-1-)가 AML33...

급성 골수성 백혈병(AML)은 예후가 좋지 않은 다양한 병인의 혈액학적 악성 종양의 일종이다1. AML 동물 모델의 생성은 새로운 치료법을 발견하기 위한 노력의 일환으로 복잡한 변이와 병리학을 이해하기 위한 토대를 마련한다2. 생쥐의 백혈구 생성은 혼합 혈통 백혈병(mixed lineage leukemia, MLL) 유전자를 포함하는 융합체를 포함하여 융합 종양 단백질을 발현하는 공여 세포를 이식하여 AML을 강력하게 유도하여 인간의 질병을 모방하는 것을 포함한다3. MLL 유전자 관련 AML4의 이식에서 공여자 세포의 다양한 세포 기원이 보고되었으며, 질병 기원을 담당하는 세포에 대해서는 알려진 바가 거의 없습니다.
생쥐 이식을 위해 여러 경로가 개발되었습니다. 돌연변이 공여 세포를골수 내로 직접 도입하는 대퇴골 내 주사 5 대신, 정맥동 신경총, 꼬리 정맥 및 경정맥을 이용하는 정맥 주사가 쥐 AML 모델 6,7,8,9을 생성하는데 널리 사용되어 왔다. retro-orbital (r.o.) 주사의 경우, 부피 제한, 높은 기술적 요구, 반복적인 시도 또는 오류의 가능성 적음, 잠재적인 안구 손상과 같은 다양한 내재적 단점이 제한적이거나 실행 가능한 대안이 없는 주요 걸림돌이 되었습니다7. 꼬리 정맥 주사는 국소 부상 외에도 유사한 문제를 가질 수 있습니다. 시술을 용이하게 하기 위해, 생쥐는 종종 꼬리 정맥을 확장시키기 위해 워밍업을 할 필요가 있다10. 또한 추가 광원 없이는 꼬리 정맥을 찾기가 어려우며, 특히 C57BL/6 균주의 마우스에서 그렇습니다. 경정맥 주사의 경우 연구 인력은 정맥을 찾고 가능한 합병증을 제한하기 위해 충분한 교육이 필요합니다. 또한 정맥동과 경정맥 주사는 모두 마취하에 수행해야하므로 또 다른 수준의 복잡성이 추가됩니다. 따라서 AML 쥐 모델의 확립을 촉진하기 위해 이식을 위한 새로운 경로를 탐색하고 싶은 유혹이 있습니다.
복강내(i.p.) 주사는 일반적으로 약물, 염료 및 마취제를 투여하는 데 사용된다 11,12,13,14,15; 또한 이소성 조혈을 위한 조혈 세포를 도입하고(16) 다양한 마우스 모델(17,18,19,20,21)에서 골수 유래 중간엽 줄기 세포를 이식하는 데 사용되어 왔다. 그러나 마우스에서 조혈 악성 종양을 확립하는 데 자주 사용되지 않았으며, 특히 AML 질병 진행을 연구하는 데 사용되지 않았습니다.
본 연구는 기증자 세포로서 계통 음성(Lin-) 및 Lin-Sca-1+c-Kit+(LSK) 집단의 이식 효율을 비교하는 것 외에도 AML 마우스 모델 생성에서 IP 주입의 타당성을 설명합니다. 이러한 발견은 AML 및 관련 골수성 백혈병의 실험 모델을 생성하는 간단하고 효율적인 방법을 제공합니다. 이러한 방법은 질병 메커니즘에 대한 이해를 넓힐 뿐만 아니라 실험적 치료법을 테스트하기 위한 비교적 쉬운 모델을 제공할 수 있는 잠재력을 가지고 있습니다.

<table><tbody><tr><td>a-유능한 세포 선택&nbsp;</td><td>Bioline</td><td>BIO-85027</td><td></td></tr><tr><td>염화암모늄 (NH4Cl)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>Cat# A-9434</td><td></td></tr><tr><td>암피실린</td><td>Sigma Aldrich</td><td>Cat# A0797</td><td></td></tr><tr><td>소 혈청 알부민 (BSA), 분획 V&mdash; 저내독소 등급</td><td>쌍둥이자리 바이오 제품</td><td>Cat# 700-102P</td><td></td></tr><tr><td>Ciprofloxacin HCl</td><td>GoldBio.com</td><td>Cat# C-861-100</td><td></td></tr><tr><td>DMEM, 고포도당, 글루타민 없음</td><td>Gibco</td><td>Cat# 11960-044</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco' s 인산염 완충 식염수 (PBS)</td><td>Corning</td><td>Cat# 21-031-CV</td><td></td></tr><tr><td>EDTA, 디소듐 염 (EDTA-2Na), 이수화물, 분자 생물학 등급</td><td>Calbiochem</td><td>Cat# 324503</td><td></td></tr><tr><td>태아 소 세럼 - 프리미엄 셀렉트</td><td>애틀랜타 생물학</td><td>Cat# S11550</td><td></td></tr><tr><td>홀로-트랜스페린, 소</td><td>시그마 알드리치</td><td>Cat# T1283</td><td></td></tr><tr><td>인슐린 용액 인간</td><td>시그마</td><td>Cat# I-9278</td><td></td></tr><tr><td>Iscove의 수정된 Dulbecco's Medium (IMDM)</td><td>Gibco</td><td>Cat# 12440-053</td><td></td></tr><tr><td>L-glutamine 200 mM (100&times;) 용액</td><td>HyClone, Gelifesciences</td><td>Cat# SH30034.01</td><td></td></tr><tr><td>LB 육수, Lennox</td><td>NEOGEN</td><td>Cat #: 7290A</td><td></td></tr><tr><td>LB 한천 (Miller)이 있는 LB 육수Sigma</td> <td>Aldrich</td><td>Cat# L-3147</td><td></td></tr><tr><td>마우스 anti-mouse CD45.1 (FITC)</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>Cat# 130-124-211</td><td></td></tr><tr><td>마우스 인터루킨-3 (IL-3)</td><td>제미니 바이오 제품</td><td>Cat# 300-324P</td><td></td></tr><tr><td>마우스 인터루킨-6 (IL-6)</td><td>제미니 바이오 제품</td><td>Cat# 300-327P</td><td></td></tr><tr><td>마우스 줄기 세포 인자 (SCF)</td><td>제미니 바이오 제품</td><td>Cat# 300-348P</td><td></td></tr><tr><td>페니실린-스트렙토마이신 용액, 100x</td><td>코닝</td><td>Cat# 30-002-CI</td><td></td></tr><tr><td>Phenix-Eco (pECO) 셀</td><td>ATCC</td><td>CRL-3214</td><td></td></tr><tr><td>Potassium Bicarbonate (KHCO3), Granular</td><td>JT. Baker</td><td>Cat# 2940-01</td><td></td></tr><tr><td>Rat anti-mouse CD117 (c-kit) (APC)</td><td>BioLegend&nbsp;</td><td>고양이 # 105812</td><td></td></tr><tr><td>쥐 안티 마우스 Ly-6A/E (Sca-1) (PE-Cy7)</td><td>BD Pharmingen</td><td>고양이# 558162</td><td></td></tr><tr><td>재조합 쥐 Flt3-Ligand</td><td>Pepro Tech, INC.</td><td>Cat# 250-31L</td><td></td></tr><tr><td>RetroNectin 재조합 인간 피브로넥틴 단편</td><td>TaKaRa</td><td>Cat# T100A</td><td></td></tr><tr><td>TransIT-293 시약</td><td>MirusBio</td><td>Cat# MIR 2705</td><td></td></tr><tr><td>TRI 시약</td><td>Sigma Aldrich</td><td>Cat# T9424</td><td></td></tr><tr><td>Trypan Blue Solution, 0.4%</td><td>Gibco</td><td>Cat # 15250061</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA (0.25%), 페놀 레드</td><td>Gibco</td><td>Cat# 25200-056</td><td></td></tr><tr><td>&beta;-Mercaptoethanol (BME)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>Cat# M3148</td><td></td></tr><tr><td>Commercial Assays&nbsp; </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>EasySep 마우스 조혈 전구 세포 분리 키트&nbsp;</td><td>StemCell Technologies</td><td>Cat# 19856A</td><td></td></tr><tr><td>고용량 cDNA 역전사 키트&nbsp;</td><td>써모 피셔&nbsp;</td><td>Cat# 4368813</td><td></td></tr><tr><td>PerfeCTa qPCR SuperMix</td><td>Quanta Bio</td><td>Cat# 95051-500</td><td></td></tr><tr><td>플라스미드 맥시 키트 (25)</td><td>Qiagen</td><td>Cat#:12163</td><td></td></tr><tr><td>Animals</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ai14TdTomato mice</td><td>Jackson Laboratory</td><td>Strain # 007914</td><td></td></tr><tr><td>CD45.1 C57BL6/J 마우스& 주의;</td><td>잭슨 실험실</td><td>균주 # 002014</td><td></td></tr><tr><td>CD45.2 C57BL6/J 마우스&nbsp;</td><td>잭슨 실험실</td><td>균주 # 000664</td><td></td></tr><tr><td>Instruments and Softwares</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Adobe illustrator&nbsp;</td><td>버전 25.2.3</td><td></td><td></td></tr><tr><td>BD accuri C6 유세포 분석기</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>FlowJo 10.8.0</td><td>BD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>GeneSys 소프트웨어 프로그램&nbsp;</td><td>버전 1.5.7.0</td><td></td><td></td></tr><tr><td>GraphPad Prism 버전 6&nbsp;</td><td>그래프패드</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hemavet 950FS&nbsp;</td><td>Drew Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>7300 실시간 PCR 시스템</td><td>응용 바이오시스템</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Syngene G:BOX Chemi XR5 화학발광 형광 이미징</td><td>G:Box Chemi</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

생쥐에서 급성 골수성 백혈병을 발생시키기 위한 복강내 이식

Intra-Peritoneal Transplantation for Generating Acute Myeloid Leukemia in Mice

급성 골수성 백혈병(AML) 및 지속성 백혈병 줄기 세포(LSC)와 관련된 관련 재발을 치료하기 위한 새로운 치료법에 대한 미충족 수요가 있습니다. 수용자 마우스에 역궤도 주사를 통해 이러한 세포를 성공적으로 이식하는 것을 기반으로 하는 치료법을 테스트하기 위한 실험적 AML 설치류 모델은 도전 과제로 가득 차 있습니다. 이 연구의 목적은 복강 내 경로를 사용하여 AML의 강력한 쥐 모델을 생성하는 쉽고 신뢰할 수 있으며 일관된 방법을 개발하는 것이었습니다. 본 프로토콜에서, 골수 세포는 인간 MLL-AF9 융합 종양 단백질을 발현하는 레트로바이러스로 형질도입되었다. 원발성 AML의 발달에서 기증자 LSC로서 계통 음성(Lin-) 및 Lin-Sca-1+c-Kit+(LSK) 집단의 효율성을 테스트하고 AML을 생성하는 새로운 방법으로 복강내 주사를 채택했습니다. 복강내 주사와 안와후부 주사의 비교는 두 가지 방법을 비교하고 대조하기 위해 연속 이식에서 수행되었습니다. 인간 MLL-AF9 바이러스로 형질도입된 Lin- 및 LSK 세포는 모두 수용자의 골수와 비장에 잘 생착되어 완전한 AML로 이어집니다. 연속 이식 시 공여자 세포의 복강 내 주사로 수혜자에게 AML이 형성되었고, 유세포 분석, qPCR 및 조직학적 분석을 통해 수혜자의 혈액, 골수, 비장 및 간에서 AML 세포의 침윤이 검출되었습니다. 따라서, 복강내 주사는 기증자 백혈병 세포의 연속 이식을 이용한 AML 유도의 효율적인 방법이다.

r.o. 및 i.p.를 이용한 쥐 AML 세포의 이식 효율 비교 이식 경로 이전에는 MLL-AF9-형질도입된 LSK 세포로 안와후 후로 이식된 수용자 마우스에서 1° AML의 확립이 보고되었으며, 연속 이식에 의해 1° AML 세포의 이식 가능성이 입증되었습니다30. 본 연구는 골수 Lin-세포를 사용하여 이식을 수행할 가능성을 평가한 최초의 연구입니다. 비정상적인 백혈구 증가증(그림 2A)의 존재와 골수 및 비장에서 백혈병 세포(CD45.1+)의 침윤 증가(그림 2B)는 골수 Lin-세포를 사용하여 1° AML을 생성하는 타당성을 뒷받침합니다. 질환 유도 기간을 비교하기 위해, 수용자당 2마리의 공여자 마우스를 안락사시켜 LSK 또는 Lin-세포 중 어느 하나를 분리...

여기서, 백혈병 세포의 복강 내 주사는 마우스에서 급성 골수성 백혈병(AML)을 확립하고 전파하는 데 활용됩니다. 이 새로운 방법은 AML 세포의 연속 이식에 효과적이며 생쥐에서 정맥 주사에 어려움과 불일치를 경험할 수 있는 사람들을 위한 대안이 될 수 있습니다.

There is an unmet need for novel therapies to treat acute myeloid leukemia (AML) and the associated relapse that involves persistent leukemia stem cells ...

이 프로토콜은 동일한 공여자 마우스로부터 분리된 린-음성 세포 및 SK 세포가 MLL-AF9 유도 AML의 생성에 명백한 차이가 없었기 때문에 중요하다. 또한, 백혈병 세포의 IP 주입은 AML의 마우스 모델을 성공적으로 개발할 수 있다. 기존의 이식 방법에 비해이 기술은 더 편리하고 저렴합니다.시작하려면 8-10 주 된 CD45.1 암컷 C57BL / 6J 마우스를 70 % 에탄올로 멸균하십시오. 스티로폼 보드의 멸균 수술용 패드에 마우스를 놓고 마우스 발 패드를 통해 다리를 고정합니다. 정중선에서 복강 위의 피부를 자르고 날카로운 끝 멸균 가위로 뒷다리쪽으로 피하 공간을 넓힙니다.복부 정중선에서 발목까지 절개를 확장하고 날카로운 가위로 뒷다리 아래의 피하 공간을 넓힙니다. 날카로운 가위로 아킬레스 건을 자릅니다. 이빨이 있는 집게를 사용하여 힘줄을 잡고 대퇴골에 부착된 다른 쪽 끝을 잘라 비복근을 제거합니다.날카로운 가위로 무릎에 부착 된 대퇴사 두근 힘줄을 자릅니다. 힘줄을 잡고 대퇴골에 부착된 근육머리를 잘라 비복근을 제거합니다. 경골에 부착된 끝에서 대퇴골을 둘러싼 다른 근육을 절단합니다.그런 다음 날카로운 가위로 발목을 잘라 경골이 손상되지 않도록합니다. 대퇴골의 말단부를 잡고 날카로운 가위로 고관절을 절단하여 대퇴골두가 손상되지 않도록 합니다. 경골과 대퇴골을 15밀리리터 튜브의 유동 완충액으로 옮깁니다.손으로 무릎을 부러 뜨려 경골과 대퇴골을 분리하십시오. 슬개골, 연골 및 대퇴골 과두를 제거하여 경골 고원과 원위 대퇴골을 노출시킵니다. 멸균 거즈를 사용하여 근육을 제거하고 뼈를 흐름 완충액에 담그십시오.대퇴골 경부를 절단하고 23게이지 바늘이 있는 10밀리리터 주사기를 사용하여 대퇴골 양쪽 끝의 흐름 완충액으로 골수 세포를 플러시합니다. 다음으로, 경골 복사뼈를 절단하고 경골의 양쪽 끝에서 유동 완충액으로 골수 세포를 플러시합니다. 18 게이지 바늘이 있는 10밀리리터 주사기를 사용하여 위아래로 피펫팅하여 세포를 분산시킵니다.단일 세포 현탁액을 섭씨 4도 및 400G에서 3분 동안 원심분리합니다. 상층액을 버리고 5밀리리터의 적혈구 또는 적혈구 용해 완충액에 세포를 재현탁하여 적혈구를 3분 동안 용해시킵니다. 용해를 중지하기 위해 5밀리리터의 유동 버퍼를 추가합니다.그런 다음 세포 현탁액을 원심분리하고 펠릿을 5밀리리터의 유동 완충액에 재현탁합니다. 70 미크론 셀 스트레이너를 50 밀리리터 튜브에 놓고 현탁액을 스트레이너를 통해 통과시켜 세포를 수집합니다. 유동 완충액으로 세포 농도를 둥근 바닥 폴리프로필렌 튜브에서 밀리리터당 10 내지 8배로 조정합니다.제조업체의 지침에 따라 마우스 조혈 세포 분리 키트를 사용하여 계통 음성 세포를 선택합니다. 완료되면 분류된 조혈 줄기 세포와 분류되지 않은 계통 음성 세포를 원심분리하고 역환원제 코팅 접시에 2X의 사이토카인, IMDM 배지 및 바이러스 상청액 3밀리리터 3밀리리터에 재현탁합니다. 섭씨 37도의 가습된 5% 이산화탄소 인큐베이터에서 6시간 또는 24시간 동안 접시를 배양합니다.형질도입 후, 원심분리에 의해 세포를 수확한다. 필요한 경우 트립신을 사용하여 접시 바닥에 부착된 세포를 수집합니다. 상청액을 버리고 예열된 PBS에 펠릿을 재현탁합니다.27 게이지 하프 니들을 사용하여 1차 수용자 마우스에 역궤도 또는 복강내 세포를 주입합니다. 매일 마우스를 모니터링하십시오. 1개월 후, HEMAVET의 전체 혈구 수를 평가하여 백혈구 증가증을 모니터링하기 위해 안와후 출혈로 매주 혈액을 수집합니다.엄지와 검지로 눈을 돌출시킨 다음 내부 안각을 통해 멸균 된 헤마토크릿 모세 혈관으로 정맥동 신경총을 관통합니다. EDTA 혈액 수집 튜브에 20-25 마이크로 리터의 혈액을 모으고 눈꺼풀을 닫아 출혈을 멈 춥니 다. gentamycin sulfate 점과 용액 한 방울을 눈에 바릅니다.백혈구가 마이크로리터당 4배 10 내지 4개의 세포에 도달하면, 대퇴골 및 경골을 유동 완충액으로 플러싱하여 골수 세포를 분리하고, 앞서 기술한 바와 같이 RBC 용해를 수행한다. 다음으로, 비장 세포를 채취하기 위해 마우스를 스티로폼 보드의 멸균 수술 패드에 놓고 마우스 발 패드를 통해 다리를 고정합니다. 마우스를 70 % 에탄올로 소독하십시오.정중선에서 피부와 근육을 잘라 뾰족한 멸균 가위로 복강을 노출시킵니다. 비장을 분리하고 15 밀리리터 튜브의 흐름 완충액에 넣습니다. 3 밀리리터의 유동 완충액이있는 6 센티미터 접시에 70 미크론 여과기를 통해 비장을 메쉬합니다.세포를 접시에서 15 밀리리터 튜브로 옮긴 다음, 단일 세포 현탁액을 원심 분리하고, 상청액을 버리고, 펠렛을 5 밀리리터의 RBC 용해 완충액에 3 분 동안 재현탁시킨다. 5 밀리리터의 유동 완충액을 첨가하여 용해를 중지하고 세포 현탁액을 원심 분리합니다. 펠릿을 5 밀리리터의 유동 완충액에 재현 탁하고, 혼합하고 70 미크론 셀 스트레이너를 통과시켜 세포를 50 밀리리터 튜브에 수집한다.원발성 급성 골수성 백혈병 또는 AML 세포를 FITC 접합 항-마우스 CD45.1 항체로 염색하고 유세포 분석기 상에서 검출하여 세포를 확인한다. 세포는 먼저 FSC-A, FSC-H 및 FSC-A SSC-A에서 게이트되어 단일항을 획득합니다. CD45.1 양성 집단은 염색되지 않은 세포와 비교하여 FL1 플롯에서 게이팅됩니다.2차 이식의 경우, PBS에서 1차 역안와 수용자로부터 CD45.1 AML 비장 세포를 재현탁하고 CD45.2 수컷 마우스에 역안와로 주사합니다. 비정상적인 백혈구 증가증의 존재와 골수 및 비장에서 백혈병 세포의 침윤 증가는 골수 계통 음성 세포를 사용하여 원발성 AML을 생성할 수 있는 가능성을 뒷받침합니다. LSK 또는 계통 음성 세포로 번역된 1차 수혜자에서는 유의미한 차이가 관찰되지 않았습니다.AML 세포는 혼합 계통 백혈병 또는 MLL-AF9 형질도입된 계통 음성 세포에 의해 1차 수혜자의 복강 내에서 퍼집니다. 이러한 결과는 또한 백혈구 증가증의 형태로 형질도입된 골수 계통 음성 세포의 복강내 주사를 통해 원발성 AML의 확립과 수용자 마우스의 골수 및 비장에서 AML 세포의 존재를 확인했습니다. 그러나 복강내 주사를 통한 1차 이식은 동일한 수의 기증자 세포에도 불구하고 안와 후 주사를 통한 것보다 AML이 발생하는 데 더 오래 걸렸습니다.2차 수혜자는 이식 후 1개월 이내에 백혈구 증가증과 상당한 간비종대를 보였습니다. AML 세포는 복강뿐만 아니라 말초 혈액, 골수 및 비장에서도 검출되었습니다. 5개의 AML 세포에 8배의 10배의 복강내 주사는 5개의 AML에 8배의 10배의 후안와주사에 필적하는 생착을 달성하였다.3차 수용자 마우스는 백혈구 증가증 및 간비종대를 포함하는 AML 징후를 급성으로 나타내었고, 혈액, 골수 및 비장에 백혈병 세포의 존재를 나타냈으며, 대퇴골 및 비장의 조직학적 관찰은 백혈병 세포의 침윤을 추가로 입증했습니다. 2차 및 3차 이식에 비해 3차 이식은 2차 이식보다 훨씬 빠르게 진행되었습니다. 현재 모델의 경우 LSK 셀을 정렬할 필요가 없습니다.Lin-음성 세포는 6시간 또는 24시간 동안 AML 바이러스로 형질도입될 수 있습니다. 모델 설정의 효율성에는 영향을 미치지 않습니다.

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Research

연구

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배우세요 생쥐에서 급성 골수성 백혈병(AML)을 발생시키는 복강내 이식 방법을. Lin-negative 세포와 SK 세포를 이용한 이 기법은 기존 정맥주사보다 편리하고 비용 효율적인 대안입니다.

생쥐에서 급성 골수성 백혈병을 발생시키기 위한 복강내 이식

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