Name: 여러 개의 작은 유기체에서 자동화된 다중 모드 자극 및 동시 신경 기록 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-03-03T14:10:00.000+00:00
Duration: 8 min 28 s
Description: 학습하세요 Caenorhabditis elegans에서 다중 모드 자극 및 자동화된 신경 기록 방법을 통해 적응과 시간적 억제 현상을 탐구하는 기술입니다. 이 방법은 개체 간 신경 변이성을 분석하여 신경 과학 연구의 재현성을 향상시킵니다.

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이러한 프로토콜을 테스트하고 원고를 검토해 주신 Fox Avery와 프로그래밍 지원을 요청해 주신 Eric Hall에게 감사드립니다. 본원에 제시된 방법에 대한 자금은 미국 국립과학재단(National Science Foundation 1724026, D.R.A.)에 의해 부분적으로 제공되었다.

1. 신경 영상 장비
참고: 현미경 조명 타이밍, 이미지 획득 및 자극 전달을 제어하는 이미징 및 자극 시스템 구축에 대한 자세한 지침은 Lawler 및 Albrecht15를 참조하십시오(그림 1). 저렴한 Arduino Nano 자극 컨트롤러는 디지털 신호를 통해 밸브 컨트롤러에 대한 유체 밸브를 작동시키고 LED 컨트롤러에 대한 아날로그 전압 신호를 통해 광유전학적 조명을 제어합니다. 진동 모터 및 열 히터와 같은 다른 자극은 디지털 또는 아날로그 신호를 사용하여 제어할 수 있습니다. 자극 컨트롤러는 오픈 소스 Micro-Manager 현미경 제어 소프트웨어(μManager)16에 의해 지정된 대로 카메라 신호를 통해 자극 및 이미지 기록을 동기화합니다. 이 프로토콜에 사용된 모든 재료, 시약, 장비 및 유기체와 관련된 자세한 내용은 재료 표를 참조하십시오.
<ol><li>GFP 광학을 갖는 epifluorescence 현미경, 디지털 노출 출력 신호를 갖는 sCMOS 카메라, 및 자극 제어기(15)를 포함하는 신경 이미징 장비를 설정한다.</li>
	<li>디지털 또는 아날로그 신호를 통해 자극 컨트롤러를 원하는 시스템에 연결합니다. 아래 제시된 예에는 다음 시스템이 사용됩니다.<ol><li>화학적 자극을 위해 밸브 컨트롤러를 사용하십시오. 밸브 컨트롤러를 유체 솔레노이드 또는 핀치 밸브에 연결합니다(그림 1)15.</li>
		<li>현미경 단계 위에 장착된 광유전학적 자극을 위해 615nm 적색 LED와 컨트롤러를 사용합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>현미경 제어 소프트웨어로 컴퓨터를 설정하고, 장비 설정으로 구성 사전 설정을 만들고, 자극 제어15의 적절한 작동을 확인하십시오.</li>
</ol>2. 미세 유체 장치 제작
참고: 마스터 몰드를 얻거나 제작하고 미세 유체 장치의 생산, 사용 및 청소에 대한 자세한 정보는 Lagoy et al.17 을 참조하십시오. 이러한 단계는 아래에 요약되어 있습니다.
<ol><li>제공된 미세유체 설계 파일(albrechtlab.github.io/microfluidics)17을 사용하여 마스터 몰드를 얻거나 제작합니다. 젊은 성인 예쁜꼬마선충의 경우 채널 높이가 55-70μm인지 확인하십시오.</li>
	<li>PDMS 베이스와 경화제를 중량 기준으로 10:1 비율로 혼합하고 이송 피펫으로 완전히 혼합합니다.</li>
	<li>기포가 사라질 때까지 진공 데시케이터에서 30-60분 동안 가스를 제거합니다.</li>
	<li>마스터 몰드를 대형(직경 150mm) 페트리 접시에 놓고 탈기된 PDMS를 4-5mm(~100g) 깊이까지 붓습니다. 이송 파이펫으로 먼지나 기포를 검사하고 제거합니다.</li>
	<li>평평한 오븐 선반에서 65°C에서 3시간에서 밤새 굽습니다.</li>
	<li>경화되면 메스를 사용하여 PDMS를 금형에서 절단하고 직선 면도날을 사용하여 장치를 분리합니다.</li>
	<li>1mm 진피 펀치를 사용하여 입구 및 출구 구멍을 펀칭하고 dH 2 O, 에탄올 및 dH2O로 다시 청소하고 공기 흐름에서 장치를건조시킵니다(그림 2A 참조).</li>
	<li>접착 테이프로 PDMS 장치의 양면을 청소하고 먼지나 부스러기를 제거합니다.</li>
	<li>유리 슬라이드를 준비하여 설명된 바와 같이 미세유체 장치를 완성한다17. 다이아몬드 비트를 사용하여 상단 슬라이드에 입구 구멍을 뚫고 TFOCS 증기에 노출되거나 발수성 유리 처리를 적용하여 하단 슬라이드를 소수성으로 만듭니다(그림 2B).</li>
	<li>유리-PDMS 장치 샌드위치를 클램프에 조립합니다(그림 2C).</li>
</ol>3. 동물 준비
<ol><li>관심 뉴런에서 발현되는 유전적으로 암호화된 칼슘 지표를 가진 동물을 얻거나 만듭니다. 참고: 예를 들어, 라인 NZ1091(kyIs587 [gpa-6p::GCaMP2.2b; unc-122p::d sRed]; kyIs5662 [odr-7p::Chrimson:SL2:mCherry; elt-2p::mCherry]) AWA 감각 뉴런 쌍6에서 GCaMP 및 적색광에 민감한 양이온 채널 Chrimson을 표현합니다. 두 이식유전자 모두 모든 동물에서 안정적인 발현을 위해 게놈에 통합됩니다.</li>
	<li>실험 하루 전에 OP50 E. coli 잔디밭으로 파종된 선충 성장 배지(NGM) 한천 플레이트에 실험당 최소 20개의 L4 유충 단계 C. elegans를 놓습니다. 20°C로 유지될 때, 이것은 다음날 젊은 성충 단계에서 야생형 동물을 동기화할 것이다. 참고: 어레이 이식유전자의 경우 형광 입체경을 사용하여 동물을 선택하여 선택한 동물에서 이식유전자 발현을 보장합니다.</li>
</ol>4. 용액 준비
<ol><li>1x 원액으로부터 1x S 기초 완충액(100 mM NaCl 및 0.05 M KPO4, pH 6.0)을 준비한다.</li>
	<li>1x S Basal에 1M 스톡을 희석하여 1mM 테트라미솔 완충액을 준비합니다. 이 마비 완충액을 사용하여 모든 자극을 준비하십시오. 실험에는 일반적으로 약 150mL가 사용됩니다.</li>
	<li>0.1-1 μg/mL 플루오레세인을 "대조군" 버퍼 저장소에 추가하여 유량을 시각화합니다.</li>
	<li>원하는 최종 농도로 연속 희석하여 자극 용액을 만듭니다. 예를 들어, 먼저 10-3 스톡을 생성하여 디아세틸 유인제의 10-7 희석을 생성합니다. 참고: 자극 타이밍을 확인하기 위해 자극 또는 완충액에 소량의 플루오레세인(0.1–1μg/mL)을 첨가할 수 있지만 신경 형광의 인공물을 피하기 위해 농도를 최소화해야 합니다.</li>
</ol>5. 미세 유체 장치 준비
참고: Reilly et al.9 에서 저수지 생성, 장치 설정 및 동물 로딩을 보여주는 비디오 프로토콜을 참조하십시오. Lagoy et al.17 참조: 많은 유용한 팁이 포함된 서면 프로토콜에 대해.
<ol><li>3 개 이상의 유체 저장소를 준비하십시오. 각각에 대해 30mL 또는 60mL 주사기 저장소, 3mL 프라이밍 주사기 및 바늘 스텁을 3방향 루어 밸브에 연결합니다(그림 2D). 끝에 금속 튜브가 장착된 마이크로보어 튜브에 바늘을 연결합니다. 저장소에 라벨을 붙이고 링 스탠드에 부착된 랙에 장착한 다음 해당 버퍼 또는 자극 유체로 채웁니다(그림 2E).</li>
	<li>조립된 미세유체 장치를 진공 데시케이터에서 ~1시간 동안 탈기합니다.</li>
	<li>프라이밍 주사기를 사용하여 저장소 튜브에서 기포를 채우고 제거합니다. 유출 튜브에 버퍼를 채웁니다.</li>
	<li>진공에서 미세 유체 장치를 제거하고 출구 튜브를 빠르게 삽입하고 하나의 입구에서 물방울이 나올 때까지 장치를 통해 유체를 주입합니다.</li>
	<li>이 입구에서 "drop-to-drop" 연결부(17 )를 사용하여 해당 유체 주입구 튜브를 삽입합니다(그림 2F). 기포가 유입되지 않도록 흡입 튜브와 장치 포트 구멍 모두에 액체 방울이 있는지 확인하십시오.</li>
	<li>배출구에서 더 많은 유체를 주입하고 다음 흡입구를 연결한 다음 모든 흡입구가 채워질 때까지 반복합니다. 사용하지 않는 입구와 웜 로딩 포트에 단단한 차단 핀을 삽입합니다.</li>
	<li>입구 및 출구 Luer 밸브를 열어 흐름을 시작합니다. 입구와 유리 바닥에서 누출이 있는지 장치를 검사하십시오. 라이브 모드에서 현미경 이미지 캡처 소프트웨어를 사용하여 유동 채널 또는 입구 내에 기포가 있는지 장치를 검사합니다. 알림: 기포가 있는 경우 기포가 PDMS 재료에 흡수될 때까지 기다리십시오.</li>
</ol>6. 동물 적재
참고: Lagoy et al.17 참조.
<ol><li>어린 성인 동물을 와이어 팁 "픽"을 사용하여 씨를 뿌리지 않은 NGM 한천 플레이트에 옮깁니다.</li>
	<li>동물이 헤엄칠 수 있도록 약 5mL의 1x S 기초 완충액으로 플레이트를 채웁니다.</li>
	<li>웜을 로딩 주사기(1x S Basal로 미리 채워진 튜브가 부착된 1mL 또는 3mL 주사기)에 넣습니다.<ol><li>입체경을 사용하여 한 손으로 튜브 끝을 액체 표면 아래로 원하는 각 동물에게 이동하고 다른 손에 든 주사기를 사용하여 튜브로 그립니다.</li>
		<li>웜을 주사기가 아닌 튜브에만 끌어들입니다. 참고: 튜브는 일반적으로 약 100μL만 수용합니다. 동물들은 지역으로 추방 된 다음 작은 부피로 튜브로 다시 끌어 들일 수 있습니다.</li>
	</ol></li>
	<li>출구 라인을 닫고 웜 로딩 핀을 제거한 다음 드롭 투 드롭 연결을 사용하여 웜 로딩 주사기를 장치에 연결합니다.</li>
	<li>동물을 경기장으로 부드럽게 흐르게 하고, 완충 흐름을 설정하고, 테트라미솔에 의한 고정을 위해 최대 1시간을 허용합니다. 알림: 고정 기간 동안 완충액만 경기장에 들어가도록 하십시오. 이 기간 동안 자극 및 제어 저장소를 끌 수 있지만 자극 시험을 실행하기 전에 열고 올바른 흐름을 확인하십시오.</li>
</ol>7. 자동 자극 및 신경 기록
<ol><li>자동 이미지 획득을 위한 자극 설정이 포함된 텍스트 편집기(예: 메모장)를 사용하여 "User Defined Acquisition Settings.txt"라는 자극 정의 텍스트 파일을 만듭니다( 그림 3의 예 참조). 설정은 두 섹션으로 나뉩니다.<ol><li>현미경 획득 설정: 실험 유형(단일 자극 또는 다중 패턴), 노출 및 여기 타이밍, 시험 기간 및 간격을 정의하고 디렉토리를 저장합니다.</li>
		<li>자극 설정: 자극 제어 파라미터를 정의합니다. "자극 명령"은 구문<문자 코드><프레임 번호>을 사용하여 특정 비디오 프레임에서 발생하는 동작을 지정하며, 여기서 문자 코드는 A = 밸브1, B = 밸브2, C = 밸브3, L = LED 조명입니다. 또한 대문자 = 켜기 및 소문자 = 끄기입니다. LED 강도는 문자 코드 "i"와 0(꺼짐)에서 255(최대 밝기)까지의 값으로 설정됩니다. 알림: 0에서 255까지의 LED 강도 값은 출력 아날로그 전압을 0V에서 5V로 설정합니다. 여기에 사용된 전류 컨트롤러에는 선형 강도 스케일링이 있으며 다른 컨트롤러는 라이트 파워 미터로 보정해야 합니다.<ol><li>반복되는 자극 명령이 하나만 있는 단일 자극 실험의 경우 그림 3A의 형식을 사용합니다.</li>
			<li>다중 자극 명령을 사용한 다중 패턴 실험의 경우 그림 3B의 형식을 사용합니다. 자극 패턴의 순서를 나타내는 숫자의 "패턴 시퀀스"를 포함합니다. 각 패턴에 대해 별도의 줄에 자극 명령을 입력합니다. 참고: 의사 난수 시퀀스 또는 m-시퀀스는 자극 이력 의존성을 조사하는 데 유용할 수 있습니다.</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
	<li>현미경 제어 소프트웨어를 실행합니다. 모든 유체 유입구가 열려 있는지, 경기장 내에서 흐름이 원하는 대로( 그림 2H 참조), 관심 있는 뉴런이 라이브 창 내에서 초점이 맞춰져 있는지 확인합니다.</li>
	<li>라이브 창을 닫고 소프트웨어 내에서 스크립트 "MultiPattern_RunScript.bsh"를 실행합니다. 참고: 적절한 흐름과 자극을 확인하기 위해 동물 없이 테스트 실험을 실행하는 것이 유용합니다. 각 자극액에 대해 다른 플루오레세인 농도를 대체하면 새로운 자극 패턴을 시각화하고 문서화하는 데 도움이 될 수 있습니다.</li>
	<li>실험 후 미세 유체 장치를 분해하고 모든 표면, 튜브 및 저장소를 물로 헹굽니다. 알림: 모든 구성 요소는 깨끗하게 유지하면 수십 번 재사용할 수 있습니다. 저장소, 튜브 및 미세 유체 장치가 막힐 수 있고 제거하기 어려운 염 결정화를 방지하기 위해 공기 흐름에서 젖거나 완전히 건조된 상태로 유지되도록 하십시오. 장치는 살균을 위해 에탄올에 보관할 수 있지만 재사용하기 전에 완전히 건조시켜야 합니다(65°C에서 >1시간)17.</li>
</ol>8. NeuroTracker를 이용한 데이터 분석
참고: NeuroTracker 4,18,19는 시험 중에 움직이는 여러 뉴런과 동물의 형광 강도를 추적하기 위한 ImageJ/FIJI 20 소프트웨어 플러그인입니다. 이 플러그인은 각 뉴런의 위치와 배경 보정 형광 강도(F)가 포함된 텍스트 파일로 데이터를 저장합니다. 형광 데이터는 기준선 형광(F0), 예를 들어 자극 전 몇 초의 평균으로ΔF/F 0 = (F -F 0)/F 0으로 정규화되며, 이는 모집단에 걸쳐 평균화될 수 있습니다.
<ol><li>지시에 따라 NeuroTracker 스크립트를 설치합니다(github.com/albrechtLab/Neurotracker).</li>
	<li>Plugins | 추적 | 뉴로트래커.</li>
	<li>가 포함된 폴더를 선택합니다. 추적할 TIF 비디오 파일을 선택하고 원하는 설정을 선택합니다. 참고: 비디오 파일의 하위 집합만 추적해야 하는 경우 프롬프트에서 분석할 파일의 숫자 범위를 선택합니다. 기본 추적 설정은 250pix/mm 해상도에서 운동성이 없는 동물에 적합합니다. 다른 해상도에 대해 매개변수를 비례적으로 조정합니다. 자세한 설정 정보는 사용 설명서19 를 참조하십시오.</li>
	<li>선택을 위해 뉴런을 볼 수 있도록 강도 임계값을 설정합니다(그림 4).</li>
	<li>Image를 사용하여 Brightness/Contrast (B/C) 및 Threshold 컨트롤 창을 엽니다 . 메뉴를 조정합니다 .</li>
	<li>B/C 창에서 뉴런을 명확하게 구분할 수 있을 때까지 최소값 및 최대값 슬라이더를 조정합니다(그림 4A).</li>
	<li>임계값(Threshold) 창에서 어두운 배경(Dark background) 및 범위를 재설정하지 않음(Don't Reset Range)을 선택합니다.</li>
	<li>프레임 슬라이더를 밀어 뉴런의 움직임과 강도 변화를 관찰하고, 다른 동물과의 겹침 등 추적에서 제외해야 할 동물을 확인합니다.</li>
	<li>추적할 뉴런을 식별합니다.</li>
	<li>각 동물에 대해 자극 전, 자극 중 및 자극 후의 모든 프레임에서 뉴런 위의 빨간색 임계값 영역이 보이도록 임계값 수준을 조정합니다.</li>
	<li>뉴런을 클릭하여 위치와 임계값 수준을 기록합니다.</li>
	<li>추적할 각 동물과 뉴런에 대해 임계값 조정 및 선택을 반복합니다. 좋은 임계값 수준 예는 그림 4C를 참조하고, 임계값 초과 및 임계값 미만 예는 그림 4D,E를 참조하십시오. 이전에 선택된 뉴런은 작은 상자로 표시됩니다.</li>
	<li>모든 뉴런이 선택되면 스페이스바 를 눌러 추적을 시작합니다. 참고: 추가 NeuroTracker 예제는 이전 참고 문헌 4,19를 참조하십시오.</li>
	<li>각 동물에 대한 추적 프로세스를 모니터링하고 필요한 수정을 수행합니다.</li>
	<li>NeuroTracker가 일시 중지되면 뉴런이 손실된 것입니다. 뉴런을 다시 클릭하고 필요에 따라 임계값 수준을 조정합니다.</li>
	<li>통합 상자가 근처의 다른 동물 또는 비뉴런 구조로 이동하면 스페이스바 를 눌러 일시 중지하고 슬라이더 를 첫 번째 잘못된 프레임으로 다시 이동한 다음 올바른 뉴런 위치를 다시 클릭합니다.</li>
</ol>9. 데이터 탐색 및 시각화
참고: MATLAB 분석 스크립트는 데이터 처리 및 시각화에 사용되며 각 분석에 대한 요약 PDF를 생성하는 데 사용됩니다.
<ol><li>MATLAB에서 "NeuroTrackerSummary_pdf.m" 파일을 실행하고, NeuroTracker 데이터 텍스트 파일이 들어 있는 폴더를 선택합니다.</li>
	<li>요약 PDF가 생성될 때까지 기다렸다가 추적 프로세스를 확인할 수 있습니다(그림 5). 동물은 숫자로 식별되며(그림 5A), 개체군 변동성을 평가하기 위해 각 동물 및 시험의 신경 반응을 볼 수 있습니다(그림 5B).</li>
	<li>"databrowse.m" 함수를 사용하여 시험 번호(그림 5C), 동물 수(그림 5D), 자극 패턴 또는 다른 범주별로 그룹화하는 등 신경망 데이터를 탐색할 수 있습니다.</li>
</ol>

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<li>Galotto, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chitin+triggers+calcium-mediated+immune+response+in+the+plant+model+Physcomitrella+patens%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Plant-Microbe+Interactions%22%5BJournal%5D)">Chitin triggers calcium-mediated immune response in the plant model Physcomitrella patens.</a> Molecular Plant-Microbe Interactions. 33 (7), 911-920 (2020).</li>
<li>Qian, X., Song, H., Ming, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Brain+organoids%3A+Advances%2C+applications+and+challenges%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Brain organoids: Advances, applications and challenges.</a> Development. 146 (8), 166074(2019).</li>
<li>Ventimiglia, D., Bargmann, C. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diverse+modes+of+synaptic+signaling%2C+regulation%2C+and+plasticity+distinguish+two+classes+of+C.+elegans+glutamatergic+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22eLife%22%5BJournal%5D)">Diverse modes of synaptic signaling, regulation, and plasticity distinguish two classes of C. elegans glutamatergic neurons.</a> eLife. 6, 31234(2017).</li>
<li>Boulin, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reporter+gene+fusions%5BTitle%5D)+AND+%22WormBook%22%5BJournal%5D)">Reporter gene fusions.</a> WormBook. , (2006).</li>
</ol>

저자는 공개할 이해 상충이 없습니다.

이 프로토콜에서 우리는 다양한 자극 패턴의 시간적으로 정확한 전달을 사용하여 신경 활동 현상을 평가하기 위한 개방형 현미경 시스템을 설명합니다. 미세 유체 플랫폼은 수십 마리의 동물을 현미경 시야에 유지하면서 반복 가능한 자극을 전달합니다. 다양한 자극 타이밍 패턴을 쉽게 프로그래밍할 수 있는 상용 현미경 소프트웨어 패키지는 거의 없으며, 각 패턴 또는 독점 파일 형식을 수동으로 입력해야 하는 경우가 많습니다. 대조적으로, 실험은 이 시스템에서 텍스트 파일로 정의되며, 이는 컴퓨터로 생성될 수 있고 분석 소프트웨어에서 읽을 수 있습니다. 여기에서 우리는 다중 모드 자극 동안 시간적 억제, 적응 및 누화와 같은 신경 현상을 평가하기 위해 가변 자극 패턴을 사용하는 유용성을 보여줍니다. 데이터 분석 파이프라인은 대규모 현미경 비디오 파일을 인구 변동성(그림 5B), 시간 경과에 따른 변화(그림 7C 및 그림 8C, D)...

칼슘 이미징 기술은 형광 현미경 및 표적 세포에서 발현된 유전적으로 인코딩된 칼슘 지표를 사용하여 실시간으로 생체 내 신경 역학을 비침습적으로 기록할 수 있게 해주었다 1,2,3. 이러한 센서는 일반적으로 GFP-칼모듈린-M13 펩타이드(GCaMP) 패밀리와 같은 녹색 형광 단백질(GFP)을 사용하여 신경 활성화 및 세포 내 칼슘 수치 상승 시 형광 강도를 증가시킵니다. 칼슘 이미징은 선충 C. elegans에서 뉴런과 신경 회로가 살아 있고 행동하는 동물 4,5,6,7,8,9,10에서 어떻게 기능하는지 조사하는 데 특히 강력했습니다. 이러한 기술은 종종 작은 물리적 규모에서 생물학적, 화학적, 물리적 현상을 연구하기 위해 정밀하게 제어된 환경을 제공하는 미세유체 장치를 사용한다11,12. 신경 활동을 측정하기 위한 미세 유체 장치는 풍부하며 새로운 디자인이 지속적으로 개발 중이며 연구실에서 쉽게 제작할 수 있습니다. 그러나 많은 설계가 한 번에 한 마리의 동물을 가두어 실험 처리량을 7,9,13으로 제한합니다. 신경 반응은 종종 이전 경험의 차이, 스트레스 또는 배고픔과 같은 내부 상태 또는 유전자 발현 수준과 같은 확률적 요인으로 인해 동물마다 크게 다릅니다. 이러한 차이로 인해 많은 동물을 자극하고 관찰하는 동시에 개체로부터 정보를 추출할 수 있는 방법이 필요합니다4.
또한, 특정 신경조절 현상은 자극이 빠르게 연속적으로 발생할 때 반응의 짧은 억제를 의미하는 시간적 억제(temporal inhibition)14와 같은 특정 자극 조건에서만 명백해진다. 전기생리학적 시스템은 이러한 목적을 위해 광범위한 자극 공간에서 신경 활동을 유도할 수 있으며, 예를 들어 주기적 자극 트레인의 전기 펄스 전류, 전압, 주파수, 파형, 듀티 사이클 및 타이밍을 변조할 수 있습니다. 자연적으로 감지된 자극 또는 광유전학적 시스템에 의한 간접 자극은 유사한 범위의 제어 메커니즘으로부터 이익을 얻을 것입니다. 현재, 많은 자연적 자극은 유연성을 추가하는 데 느린 상용 시스템을 사용하여 냄새 표현 및 제거와 같은 간단한 "온-오프" 방식으로 제공됩니다. 그러나 저렴한 마이크로 컨트롤러는 이제 연구원의 요구에 맞게 사용자 정의 할 수있는 방식으로 여러 유형의 자극 전달을 자동화 할 수 있습니다. 미세 유체 공학과 결합 된이 시스템은 실험 처리량과 유연성을 증가시켜 많은 동물에서 다양한 정밀 자극에 대한 신경 반응을 동시에 측정 할 수 있도록하는 목표를 달성했습니다 4,6. 멀티모달 자극(multimodal stimulation)은 약물 노출과 같은 직교 섭동 전, 도중, 후에 지속적으로 자극할 때 신경 흥분성의 변화를 모니터링하는 것과 같이 신경 회로를 추가로 조사하는 데 사용할 수 있다4. 저렴한 개방형 현미경 시스템의 이점은 과학 연구를 발전시키는 데 분명하지만 실제로는 부품 소싱, 구성 및 성능 검증의 필요성이 이러한 기술의 채택을 방해할 수 있습니다.
이 프로토콜은 이러한 기술적 문제 중 일부를 완화하는 것을 목표로 합니다. 이전 프로토콜은 미세유체 장치 사용 및 기본 자극에 초점을 맞추었지만 9,15,17, 여기서는 이전에 설명한 미세유체 장치 4를 사용하는 예쁜꼬마선충 또는 기타 작은 유기체의 신경 이미징을 위한 유연하고 자동화된 다중 모드 자극 전달 시스템의 구성 및 사용을 설명합니다. 오픈 소스 시스템은 실험을 정의하기 위해 간단한 텍스트 파일을 통해 프로그래밍되며 NeuroTracker 데이터 분석 프로그램은 현미경 비디오에서 신경 활동 데이터를 반자동으로 추출합니다. 우리는 광유전학적 빛에 민감한 이온 채널을 발현할 때 다양한 음식 냄새에 반응하거나 빛에 반응하여 탈분극하는 화학감각 뉴런 AWA를 사용하여 시간적 억제, 탈억제 및 자극 누화를 평가하는 예를 통해 이 시스템을 보여줍니다 5,6.

<table><tbody><tr><td><강한>세균 균주</강한></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>E.&nbsp; coli (OP50)</td><td>Caenorhabditis Genetics Center (CGC)</td><td>Cat# OP50</td><td></td></tr><tr><td>Experimental models: Organisms/strains</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>C.&nbsp; 원하는 뉴런에서 GCaMP(및 선택적으로 Chrimson)를 발현하는 예쁜꼬마선><충</td><td>Caenorhabditis Genetics Center(CGC) 또는 출판된</td><td>논문 NZ1091</td>의 교신 저자(예: <td></td></tr><tr><td>Chemicals, Treatments, and Worm Preparation Supplies</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>2,3-Butanedione</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Cat# B85307</td><td>diacetyl, example chemical 자극</td></tr><tr><td>염화칼슘, CaCl2</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Cat# C3881</td><td></td></tr><tr><td>플루오레세인, 나트륨염</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Cat# F6377</td><td></td></tr><tr><td>유리 방수</td><td>Rain-X</td><td>Cat #800002250</td><td>유리 소수성 처리(일회용)</td></tr>염화<tr><td>마그네슘, MgCl2</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Cat# M2393</td><td></td></tr><tr><td>선충 성장 매체 (NGM) 한천</td><td>Genesee</td><td>Cat #: 20-273NGM</td><td></td></tr><tr><td>페트리 접시 (60&nbsp; mm)</td><td>Tritech</td><td>Cat #T3305</td><td></td></tr><tr><td>폴리(디메틸 실록산)(PDMS): Sylgard 184</td><td>Dow Chemical</td><td>Cat# 1673921</td><td></td></tr><tr><td>인산칼륨 일염기</td>성 <td>Sigma-Aldrich</td><td>Cat# P5655</td><td></td></tr><tr><td>인산칼륨 이염기성</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Cat# P8281</td><td></td></tr><tr><td>염화나트륨, NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Cat# S7653</td><td></td></tr><tr><td>(트리데카플루오로-1,1,2,2-테트라하이드로옥틸)트리클로로실란(TFOCS)</td><td>겔레스트</td><td>CAS# 78560-45-9</td><td>유리 소수성 처리(내구성)</td></tr><tr><td>소프트웨어 및 알고리즘</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Arduino IDE</td><td>Arduino</td><td>https://www.arduino.cc/en/software</td><td></td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>NIH</td><td>https://imagej.nih.gov/ij/</td><td></td></tr> <tr><td>MATLAB</td><td>MathWorks</td><td>https://www.mathworks.com/products/matlab.html</td><td></td></tr><tr><td>Micro-manager</td><td></td><td>https://micro-manager.org/</td><td></td></tr> <tr><td>현미경 제어 소프트웨어</td><td>Albrecht Lab</td><td>https://github.com/albrechtLab/MicroscopeControl</td><td></td></tr><tr><td>Neurotracker 데이터 분석 소프트웨어</td><td>Albrecht Lab</td><td>https://github.com/albrechtLab/Neurotracker</td><td></td></tr><tr><td>Automated Microscope and Stimulation System</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Axio Observer.A1 도립 현미경 셋업 (GFP 필터 큐브, 5&times; 대물렌즈 또는 유사)</td><td>Zeiss</td><td>Cat #491237-0012-000</td><td></td></tr><tr><td>Excelitas X-cite XYLIS LED illuminator</td><td>Excelitas</td><td>Cat #XYLIS</td><td></td></tr><tr><td>Orca Flash 4.0 Digital sCMOS camera</td><td>Hamamatsu</td><td>Cat #C11440-22CU</td><td></td></tr><tr><td>Arduino nano</td><td>Arduino</td><td>Cat #A000005</td><td></td></tr><tr><td>3방향 미니어처 디아프라그람 격리 밸브 (LQX12)</td><td>Parker</td><td>Cat #LQX12-3W24FF48-000</td><td>밸브 1: 제어</td></tr><tr><td>2방향 상시 닫힘(NC) 핀치 밸브</td><td>Bio-Chem Valve Inc</td><td>Cat #075P2-S432</td><td>밸브 2: 유출</td></tr><tr><td>3방향 핀치 밸브</td><td>NResearch</td><td>Cat #161P091</td><td>밸브 3: 자극 </td></tr><tr><td>선택: 광유전학적 자극 LED 및 컨트롤러(615nm)</td><td>Mightex</td><td>Cat #PLS-0625-030-S 및 #SLA-1200-2</td><td></td></tr><tr><td>ValveLink 8.2 디지털/수동 밸브 컨트롤러</td><td>AutoMate Scientific</td><td>Cat #01-18</td><td></td></tr><tr><td>다양한 전선 및 커넥터</td><td>Cell</td><td>STARS Protocol(Lawler, 2021)</td><td></td>의 그림 2 참조</tr><tr><td>Microfluidic Device Preparation</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dremel 가변 속도 로터리 커터 4000&nbsp;</td><td>Dremel</td><td>Cat #F0134000AB</td><td>유리 절단 속도를 5k RPM으로 설정</td></tr><tr><td>Dremel 드릴 프레스 회전 도구 워크스테이션</td><td>Dremel</td><td>Cat #220-01</td><td></td></tr><tr><td>다이아몬드 드릴 비트</td><td>Dremel</td><td>Cat #7134</td><td></td></tr><tr><td>유리 슬라이드, 1&nbsp; mm 두께</td><td>VWR</td><td>Cat # 75799-268</td><td></td></tr><tr><td>유리 스크라이브 (다이아몬드 스크라이버)</td><td>Ted Pella</td><td>Cat # 54468</td><td></td></tr><tr><td>Luer 3-way stopcock</td><td>Cole-Parmer</td><td>Cat #EW-30600-07</td><td></td></tr><tr><td>Luer 23 G 뭉툭한 바늘</td><td>VWR</td><td>Cat # 89134-100</td><td></td></tr><tr><td>Microfluidic device</td><td>이 기사와 관련된 CAD 파일에서 작성자 또는 제작</td><td>해당 없음</td><td></td></tr><tr><td>미세유체 장치 클램프</td><td>워너 인스트루먼트(또는 기계 공장)</td><td>P-2</td><td></td></tr><tr><td>미세유체 튜브, 0.02&프라임; ID</td><td>콜-파머</td><td>캣 #EW-06419-01</td><td></td></tr><tr><td>튜브 19 g, 0.5&프라임;</td><td>뉴잉글랜드 소형 튜브</td><td>고양이 #NE-1027-12</td><td></td></tr></tbody></table>

여러 개의 작은 유기체에서 자동화된 다중 모드 자극 및 동시 신경 기록

Automated Multimodal Stimulation and Simultaneous Neuronal Recording from Multiple Small Organisms

형광 유전적으로 인코딩된 칼슘 지표는 개별 뉴런 수준에서 전체 뇌 회로에 이르기까지 신경 역학에 대한 우리의 이해에 크게 기여했습니다. 그러나 신경 반응은 이전 경험, 내부 상태 또는 확률적 요인으로 인해 달라질 수 있으므로 한 번에 많은 개인의 신경 기능을 평가할 수 있는 방법이 필요합니다. 대부분의 기록 기술은 한 번에 한 마리의 동물을 검사하는 반면, 우리는 광시야 현미경을 사용하여 한 번에 수십 개의 예쁜꼬마선충 또는 기타 서브밀리미터 규모의 유기체로 신경 기록을 확장하는 방법을 설명합니다. 오픈 소스 하드웨어 및 소프트웨어는 화학적, 광학적, 기계적, 열적 및 전자기 자극을 포함한 다양한 자극 유형의 강도와 타이밍을 제어하는 완전 자동화된 실험을 프로그래밍하는 데 뛰어난 유연성을 제공합니다. 특히, 미세유체 유동 장치는 초 미만의 시간 분해능으로 화학감각 자극의 정밀하고 반복 가능하며 정량적인 제어를 제공합니다. 그런 다음 NeuroTracker 반자동 데이터 분석 파이프라인은 개별 및 인구 전체의 신경 반응을 추출하여 신경 흥분성 및 역학의 기능적 변화를 발견합니다. 이 논문은 뉴런 적응, 시간적 억제 및 자극 누화를 측정하는 예를 제시합니다. 이러한 기술은 자극의 정밀도와 반복성을 높이고, 개체군 변동성을 탐색할 수 있으며, 세포 및 오가노이드에서 전체 유기체 및 식물에 이르기까지 소규모 생물 시스템의 다른 동적 형광 신호로 일반화할 수 있습니다.

우리는 시간적 억제, 적응 및 탈억제를 포함하여 다양한 신경 현상을 평가하는 자극 패턴의 몇 가지 예를 제시합니다. 시간적 억제는 초기 발현 직후에 발생하는 두 번째 자극 제시에 대한 신경 반응의 일시적인 억제이다14. 이 현상을 테스트하기 위해 쌍 펄스 실험에서 0초에서 20초 범위의 간격으로 분리된 두 개의 1초 냄새 펄스로 구성된 8개의 패턴이 제시되었습니다(그림 6B, 해당 자극 제어 파일은 그림 3B 참조). 경기장은 단일 자극 유체(1.1μM 디아세틸), 완충액 및 제어 흐름 튜브로 설정되었으며 사용되지 않은 입구 포트는 단단한 핀으로 막혔습니다(그림 6A). 밸브 1을 켜면 제어 유체가 ctrl1 입구로 들어가 자극이 경기장으로 들어가도록 유체 흐름을 이동시킵니다. 밸브...

우리는 많은 Caenorhabditis elegans 벌레의 유연한 화학적 및 다중 모드 자극과 동시 신경 활동의 기록 방법을 제시합니다. 이 방법은 미세 유체 공학, 오픈 소스 하드웨어 및 소프트웨어, 감독 자동화 데이터 분석을 사용하여 적응, 시간적 억제 및 자극 누화와 같은 신경 현상을 측정할 수 있습니다.

Fluorescent genetically encoded calcium indicators have contributed greatly to our understanding of neural dynamics from the level of individual neurons ...

신경 반응은 뇌 활동에 대한 통찰력을 제공하지만 실험과 개인에 따라 다를 수 있습니다. 이 프로토콜은 자극 기록 및 분석을 자동화하고 다양한 유형 및 패턴의 자극 프로그래밍을 단순화함으로써 도움이 됩니다. 자동화된 기술을 통해 여러 뉴런과 유기체를 동일한 미세유체 형식으로 병렬로 기록할 수 있습니다.이것은 기록의 반복성을 향상시키고 집단 전반에 걸친 신경 가변성을 탐색할 수 있게 해줍니다. 적응 및 감각 통합과 같은 신경 현상을 나타내기 위해서는 다양한 자극 패턴이 필요합니다. 이 방법은 세포와 오가노이드에서 유기체와 식물에 이르는 다른 동적 신호로 일반화할 수 있습니다.시작하려면 현미경을 켜고 프라이밍 주사기를 사용하여 저장소 튜브에서 기포를 채우고 제거한 다음 유출 튜브에 버퍼를 채웁니다. 진공 건조기에서 미세 유체 장치를 제거합니다. 장치를 현미경에 놓고 배출 튜브를 빠르게 삽입합니다.출구 주사기를 부드럽게 눌러 입구에서 물방울이 나올 때까지 장치에 유체를 주입합니다. 이 물방울이 나타난 입구에서 드롭 투 드롭 연결을 사용하여 해당 유체 입구 튜브를 삽입하고 기포가 유입되는 것을 방지하기 위해 입구 튜브와 장치 포트홀 모두에 액체 방울이 존재하도록 합니다. 다음 흡입 튜브를 다음 물방울에 연결합니다.필요한 경우 배출구에서 더 많은 유체를 주입하고 모든 흡입구가 채워질 때까지 반복합니다. 사용하지 않는 입구와 웜 로딩 포트에 단단한 차단 핀을 삽입합니다. 화면의 흐름을 확인하여 흐름이 원하는 방향으로 진행되는지 확인합니다.밸브 컨트롤러에서 밸브 1을 뒤집고 미세 유체 영역으로 흐르는 자극 흐름을 관찰합니다. 흐름이 불균형하면 저장소 높이를 조정하십시오. 와이어 팁 픽을 사용하여 어린 성인 동물을 씨를 뿌리지 않은 선충 성장 배지 또는 NGM 한천 플레이트에 옮긴 다음 동물이 수영할 수 있도록 약 5밀리리터의 XS 기초 완충액으로 플레이트를 범람시킵니다.하나의 XS 기본 버퍼로 미리 채워진 부착된 튜브를 사용하여 1-3밀리리터 로딩 주사기에 웜을 그립니다. 입체경을 사용하여 한 손으로 튜브를 액체 표면 아래로 원하는 각 동물에게 옮기고 다른 손에 들고 있는 주사기를 사용하여 튜브로 끌어들입니다. 출구 윤곽을 닫고 웜 로딩 핀을 제거한 다음 드롭 투 드롭 연결을 사용하여 웜 로딩 주사기를 장치에 연결합니다.그런 다음 동물을 경기장으로 부드럽게 흘립니다. 버퍼 흐름을 설정하고 테트라미솔에 의한 고정화를 위해 최대 1시간을 허용합니다. 텍스트 편집기를 사용하여 userdefinedacquisitionsettings라는 자극 정의 텍스트 파일을 만듭니다.TXT에는 자동 이미지 획득을 위한 자극 설정이 포함되어 있습니다. 이 파일은 노출 및 여기 타이밍, 시험 기간, 간격 및 저장 디렉토리와 같은 현미경 획득 매개변수를 정의합니다. 또한 실험 유형 및 자극 타이밍 설정을 정의합니다.단일 자극 실험의 경우 반복 자극 명령이 하나만 있는 형식을 사용합니다. 다중 패턴 실험의 경우, 자극 패턴의 순서를 나타내는 숫자의 패턴 시퀀스를 포함하여 다중 자극 명령이 있는 형식을 사용합니다. 각 패턴에 대해 별도의 줄에 자극 명령을 입력합니다.그런 다음 현미경 제어 소프트웨어를 실행합니다. 모든 유체 흡입구가 열려 있는지, 경기장 내에서 흐름이 필요한지, 관심 있는 뉴런이 라이브 창 내에서 초점이 맞춰져 있는지 확인합니다. 그런 다음 라이브 창을 닫고 multipatternrunscript 스크립트를 실행합니다.소프트웨어 내에서 bsh. 데이터를 분석하려면 플러그인을 순차적으로 클릭한 다음 추적한 다음 NeuroTracker를 클릭하여 NeuroTracker를 실행합니다. 추적할 tiff 비디오 파일이 포함된 폴더를 선택하고 처리할 파일 범위를 선택합니다.그런 다음 이미지 및 조정 메뉴를 사용하여 밝기 대비 및 임계 값 제어 창을 엽니 다. 어두운 배경을 확인하고 임계값 창에서 범위를 재설정하지 않고 임계값 지정 방법을 기본값으로 설정하고 시각화를 빨간색으로 설정합니다. 그런 다음 뉴런 가시성을 위해 밝기 대비 창에서 자동을 클릭합니다.밝기 대비 창에서 뉴런을 명확하게 구분할 수 있을 때까지 최소 및 최대 슬라이더를 조정합니다. 그런 다음 모든 뉴런이 다른 물체와 분리된 작은 붉은 점으로 나타날 때까지 임계값 수준을 조정합니다. 프레임 슬라이더를 조정하여 뉴런의 움직임과 강도 변화를 관찰하고, 다른 동물과의 겹침 등 추적에서 제외해야 할 동물을 확인합니다.추적할 뉴런을 식별한 후 필요한 경우 각 동물의 임계값 수준을 조정하여 뉴런 위의 빨간색 임계값 영역이 모든 프레임에서 보이도록 합니다. 뉴런을 클릭하여 위치와 임계값 수준을 기록합니다. 모든 뉴런이 선택되면 스페이스바를 눌러 추적을 시작합니다.각 동물에 대한 추적 프로세스를 모니터링하고 필요한 수정을 수행합니다. NeuroTracker가 일시 중지되면 뉴런이 손실됩니다. 필요에 따라 임계값 수준을 조정하고 뉴런을 다시 클릭합니다.통합 상자가 근처의 다른 동물 또는 비신경 구조로 이동하면 스페이스바를 눌러 일시 중지합니다. 슬라이더를 첫 번째 잘못된 프레임으로 다시 이동하고 올바른 뉴런 위치를 다시 클릭합니다. neurotrackersummarypdf를 실행합니다.m 파일을 열고 NeuroTracker 데이터 텍스트 파일이 포함된 폴더를 선택합니다. 요약 PDF가 생성될 때까지 기다렸다가 추적 프로세스를 확인할 수 있습니다. 동물은 각 동물 및 시험의 수와 신경 반응으로 식별할 수 있으며 개체군 변동성을 평가하기 위해 관찰할 수 있습니다.DataBrowse 함수를 사용합니다. m을 사용하여 시험 번호, 동물 번호, 자극 패턴 또는 다른 범주별로 그룹화된 신경 데이터를 탐색합니다. 시간적 억제 현상은 0에서 20초 범위의 간격으로 분리된 2개의 1초 냄새 펄스로 구성된 8개의 패턴을 생성하는 쌍 펄스 실험에서 테스트되었습니다.첫 번째 1초 냄새 펄스는 디아세틸 감지 AWA 뉴런에서 동일한 반응 크기를 유도했으며 두 번째 펄스의 반응은 자극 간 간격에 따라 다양했습니다. 탈억제는 디아세틸 자극에 대한 적응이 관찰된 캐치 시험 실험에 의해 평가되었지만 새로운 2-메틸피라진 자극의 제시는 강력한 탈억제 효과를 이끌어내지 못했습니다. 테스트된 다중 모드 자극은 화학적 자극만으로는 적응을 유발하는 반면 광학 자극 단독으로는 적응을 일으키지 않는 것으로 나타났습니다.그러나 결합된 다중 모드 자극 패턴은 광유전자 반응이 화학적으로 유도된 적응에 취약하다는 것을 보여주었습니다. 두 개의 영역을 포함하도록 미세유체 설계를 수정함으로써 일치하는 참조와 함께 유전적 또는 기타 섭동을 동시에 비교할 수 있습니다. 일단 설정되면 시스템을 여러 가지 방법으로 수정할 수 있습니다.예를 들어, 우리는 화학 물질 투여 반응과 수면 상태와 깨어있는 상태 사이와 같은 신경 활동에 대한 상태 의존적 변화를 자동으로 측정했습니다.

automated-multimodal-stimulation-simultaneous-neuronal-recording-from

Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

의 전극 제작 및 주입 Aplysia californica 손상, 자유롭게 행동 동물의 다중 채널 및 신경 근육질 레코딩을위한

anesthetized 쥐의 실리콘 프로브를 사용하는의 연결 활동의 세포외 녹음이 설명됩니다. 이 기법은 동시에 100 개 이상의 뉴런에서 여러 뇌 영역에 걸쳐 정보를 얻을 수 있습니다. 그것은 여러 지역의 회로에의 연결을 ensembles 역학에 대한 단세포 해상도 정보를 제공합니다.

Anesthetized 쥐의 실리콘 프로브와 함께 대규모의 연결 Ensembles 녹음하기

우리는 대규모 다중 단일 단위 기록 및 실리콘 프로브와 설치류 동물 행동은 현지 필드 가능성에 대한 방법을 설명합니다. 드라이브 제조, 드라이브 및 프로브 주입 공정에 프로브 첨부 파일은 쉽게 복제에 대한 충분한 세부 사항에 그림하고 있습니다.

설치류를 행동에 이동 가능한 실리콘 프로브에 의한 뉴런의 대규모 녹화

이 비디오는 뉴런 특이적 형광 단백질을 포함하는 형질전환 뇌 절편에서 전기 활동을 동시에 이미징하고 기록하는 방법을 설명합니다. 이 절차에는 폭기된 인공 뇌척수액이 있는 관류 챔버에서 뇌 절편을 유지하고, 광원을 사용하여 형광 표지된 세포를 여기시키고, 다중 채널 프로브 및 패치 클램프로 전기 신호를 기록하는 것이 포함됩니다.

뇌 절편에 있는 신경 세포의 동시 광학 및 전기 생리학적 모니터링

이 비디오는 통합 마이크로 드라이브 어레이를 사용하여 쥐의 여러 뇌 영역에서 동시 전기 생리학적 기록을 보여줍니다. 기록 전극은 후각구에, 참조 전극은 전두엽 피질에, 마이크로 드라이브 어레이 전극은 해마에 배치됩니다. 쥐는 자유롭게 먹이를 찾을 수 있으며, 이식된 모든 전극의 동시 기록은 어레이를 사용하여 기록됩니다.

여러 뇌 영역의 전기생리학적 기록을 위한 마이크로 드라이브 어레이 방법

하나의 단위 전기 생리학 녹음에 사용하기 위해 microwires의 조직 배열을 주입하는 기술 문제를 안겨준다. 이 기술과 필요한 장비를 수행하는 방법이 설명되어 있습니다. 또한, 높은 공간 선택과 별개의 신경 하위 영역에서 기록하는 조직 마이크로 와이어 어레이의 유익한 사용을 설명합니다.

동물 행동하자, 깨어있는 단일 단위 레코딩을위한 Microwires의 조직 된 배열을 주입하기위한 절차

두 개의 서로 다른 뇌 neuropiles 또는 두 개의 서로 다른 해부학 책자에서 동시 세포 장기 기록은 꿀벌에 설립되었다. 이 기록은 다른 뇌 영역 하나의 신경 세포에서뿐만 아니라 행동 동물의 앙상블 수준에서 신경 세포의 처리 시간 측면의 조사를 할 수 있습니다.

행동을 한 꿀벌 두 신경 처리 단계에서 동시 장기 녹음

무선, 멀티 채널 신경 녹음 및 자유롭게 쥐 행동에 자극에 대 한 양방향 시스템 도입. 시스템은 가볍고 콤팩트, 따라서 animal´s 행동 레 퍼 토리에 최소한의 영향을 미치고. 또한,이 양방향 시스템 두뇌 활성화 패턴 및 행동 간의 인과 관계를 평가 하는 정교한 도구를 제공 합니다.

무선, Vivo에서 녹음 하 고 자유롭게 행동 하는 쥐에서 신경 활동의 자극에 대 한 양방향 인터페이스

이 연구는 두뇌, 심전도, 근, 로컬 필드 전위의 동시 녹음 하 고 자유롭게 움직이는 쥐의 신호를 호흡 하는 방법을 소개 합니다. 이 기법을 실험 비용 절감 및 데이터 분석을 단순화, 뇌 및 말 초 기관 간의 상호 작용의 이해에 기여할 것입니다.

대뇌 피 질의 로컬 필드 전위, 심전도, 치십시오, 그리고 자유롭게 움직이는 쥐에서 리듬 호흡의 동시 녹음

여기서는 HD-MEA를 사용하여 대규모 신경 앙상블, 특히 해마, 후각 전구 회로 및 인간 신경 네트워크의 계산 역학을 탐구합니다. 계산 도구와 결합된 시공간 활동을 캡처하면 신경 앙상블 복잡성에 대한 통찰력을 얻을 수 있습니다. 이 방법은 뇌 기능에 대한 이해를 높여 잠재적으로 신경 장애에 대한 바이오마커 및 치료법을 식별합니다.

CMOS 통합 고밀도 미세전극 어레이에서 Multimodal Large-Scale Neuronal Ensemble Dynamics 기록 및 분석

우리는 전극 제조를 위한 간단하고 비용 효율적인 접근 방식을 개발했으며 자유롭게 움직이는 마우스에서 여러 영역에 걸쳐 신호를 기록했습니다. 다중 지역 전기 생리학 및 칼슘 신호 기록과 함께 광유전학을 활용하면 발작 점화 모델에서 여러 지역의 신경 활동을 밝힐 수 있었습니다.

Multi-Region In vivo Recording을 위한 유연하고 편리한 전기생리학적 Optrodes를 제작하기 위한 통합 방법

학습하세요 Caenorhabditis elegans에서 다중 모드 자극 및 자동화된 신경 기록 방법을 통해 적응과 시간적 억제 현상을 탐구하는 기술입니다. 이 방법은 개체 간 신경 변이성을 분석하여 신경 과학 연구의 재현성을 향상시킵니다.

여러 개의 작은 유기체에서 자동화된 다중 모드 자극 및 동시 신경 기록

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