2025년 3월 28일
CD8 T 세포 생체 에너지학은 Mito Stress Test를 사용하여 조사할 수 있습니다. 이 방법론은 급성 및 만성 대사 프로그래밍을 연구하는 데 사용할 수 있습니다. 이 프로토콜은 T 세포 수용체 생물학과 생체 에너지 분석 간의 관계를 조사하는 접근 방식을 설명합니다.
본 연구실에서는 림프구에 의한 면역관용, 면역감시, 항원수용체 신호전달을 연구하고 있습니다. 우리는 리소포스파티딕산이 CD8 T 세포독성을 방해하여 효과기 세포의 대사 유연성을 감소시켜 말초 내성을 촉진한다는 것을 발견했습니다. 우리는 기술을 사용하여 CD8 T 세포의 미토콘드리아 대사와 에너지 용량을 측정합니다.
본 연구실에서는 리소포스파티드산이 CD8 T세포의 대사 적합성을 조절하고 T세포 표현형의 중요한 결정 요인이 될 수 있음을 보여주었습니다. 여기에 설명된 프로토콜은 T 세포 수용체 신호의 기능적 대사 및 생체 에너지학을 실시간으로 평가합니다. 시작하려면 유틸리티 플레이트의 각 웰에 200마이크로리터의 증류수를 추가합니다.
유틸리티 플레이트 위에 센서 카트리지를 놓고 적절한 수화를 위해 센서 카트리지의 끝이 물에 잠기도록 합니다. 센서 카트리지가 있는 유틸리티 플레이트를 섭씨 37도에서 이산화탄소가 없는 인큐베이터에서 최소 10시간 동안 배양합니다. 다음으로, 50ml 원뿔형 튜브에 50ml의 캘리브런트 용액을 채우고 배양합니다.
다음날 접시를 튕겨 증류수를 제거합니다. 200마이크로리터의 캘리브러트로 플레이트를 재수화합니다. 유틸리티 플레이트 상단의 센서 카트리지를 교체하고 유틸리티 플레이트를 이산화탄소가 없는 인큐베이터에 다시 넣습니다.
다음으로, 멀티채널 피펫을 사용하여 4.5ml의 완전한 배지에 1,000만 개의 CD8 T-Cell을 다시 현탁시킵니다. 각 웰에 90 μl의 현탁액을 피펫 한 다음 전처리 중에 well 당 지정된 매체 90 μl를 주입합니다. 증발을 방지하기 위해 180 마이크로 리터의 완전한 매체를 코너 웰에 피펫으로 넣습니다.
그런 다음 CD8 T-Cells가 있는 마이크로플레이트를 이산화탄소가 아닌 인큐베이터에 넣습니다. 플레이트 어댑터를 센서 카트리지에 단단히 놓습니다. 배양 후 플레이트 어댑터를 사용하여 Oligomycin, FCCP, Rotenone 및 Antimycin A를 각 포트에 피펫팅합니다.
분석을 시작하기 1시간 전에 마이크로플레이트를 비이산화탄소 인큐베이터에 넣습니다. 마이크로플레이트를 로드하기 30분 전에 소프트웨어를 열고 기기 분석기를 교정합니다. 웰에 레이블을 지정하고 소프트웨어 시스템에서 주입 계획을 검토합니다.
그런 다음 보정하는 동안 센서 카트리지를 기기에 로드합니다. 소프트웨어를 통해 분석을 실행합니다. 추가 주입의 경우 주입을 위한 추가 챔버를 사용하여 주입 방식을 수정하십시오.
anti-CD3 및 anti-CD28을 센서 카트리지의 포트 A에 로드합니다. 올리고마이신을 포트 B에, FCCP를 포트 C에, 로테논 및 안티마이신 A를 포트 D.For 개별 항-CD3 및 항-CD28 자극을 위해, 밀리리터당 10마이크로그램으로 20마이크로리터의 비오틴화된 항-CD3를 센서 카트리지의 지정된 웰에 피펫으로 넣습니다. 20마이크로리터의 항-CD28 및 스트렙타비딘을 지정된 웰에 피펫팅합니다.
항-CD3 또는 CD28 자극을 위해 20마이크로리터의 비오틴화된 항-CD3, 항-CD28 및 스트렙타비딘을 지정된 웰에 결합하고 피펫팅합니다. 매체를 주입하여 제어 웰을 준비합니다. 결합된 anti-CD3 및 CD-28 자극을 위해 일대일 비드 대 세포 비율을 사용하고 웰당 200, 000개의 세포를 포함하는 지정된 웰에 5마이크로리터의 anti-CD3 CD-28 마그네틱 비드를 피펫팅합니다.
주입용 매체로만 제어 웰을 준비합니다. 최종 주입 후 농도를 달성하기 위해 각 포트의 독극물을 조정합니다. 마이크로플레이트를 기기에 로드하기 전에 주입 계획에 업데이트된 시점이 반영되어 있는지 확인합니다.
총 140분 동안 급성 TCR 자극 분석을 실행하도록 소프트웨어를 프로그래밍합니다. 올리고마이신을 주입하기 전에 10개의 시점 측정값을 포함하도록 체계를 수정합니다. 스트렙타비딘 및 항-CD3 및/또는 CD-28 마그네틱 비드 자극과 함께 비오틴화된 항-CD3 및/또는 항-CD28을 사용한 급성 TCR 자극은 매체 단독 대조군에 비해 산소 소비율과 세포 외 산성화 속도를 증가시켰습니다.
항-CD3 및 CD-28 자기 비드 자극은 산소 소비율 및 세포 외 산성화 속도에서 유사한 증가와 함께 비오틴화된 항-CD3 및 CD-28 주사와 유사한 대사 반응을 보였습니다.
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본 연구는 리소포스파티딕산(lysophosphatidic acid)이 CD8 T 세포의 세포독성과 대사 유연성에 미치는 영향을 조사합니다. 방법론으로는 T 세포의 생체 에너지학 및 수용체 신호 전달을 분석하기 위한 Mito Stress Test가 포함됩니다.
naïve 및 effector CD8 T 세포의 미토콘드리아 기능을 정량적으로 평가함으로써 초기 발견 단계에서 면역대사 타겟의 기전적 리스크를 제거할 수 있습니다. 실시간 바이오에너지 프로파일링은 T 세포의 기능적 상태에 대한 예측 신뢰도를 높여 타겟 검증 및 중개 연구의 연속성을 제공합니다. 본 워크플로우는 면역대사를 포트폴리오 선별 및 면역 조절 전략의 핵심 축으로 설정합니다.
이 생체 에너지 분석 방법은 초기 발견 단계부터 리드 화합물 도출 및 전임상 면역 조절 연구까지 통합적으로 적용됩니다.