Name: 병아리 배아의 신경관 폐쇄 중 조직의 기계적 진화 모니터링 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-11-10T15:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 51 s
Description: 배우세요 브릴루앙 현미경을 활용한 병아리 배아 신경관 폐쇄 중 조직 기계적 특성 측정 방법을. 이 비침습적 기술은 살아있는 배아의 조직 경도 변화를 실시간으로 모니터링하여 신경관 결손 예방 연구에 중요한 통찰을 제공합니다.

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이 연구는 유니스 케네디 슈라이버 국립 아동 보건 및 인간 발달 연구소(Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health and Human Development), 미국 국립보건원(National Institutes of Health, K25HD097288, R21HD112663)의 지원을 받습니다.

이 프로토콜은 Wayne State University의 Institutional Animal Care and Use Committee의 승인을 받았습니다.
1. 실험 준비
<ol><li>70% 에탄올 용액을 사용하여 가위와 핀셋을 청소하고 살균하십시오. 또한 일회용 피펫과 주사기를 준비하십시오.</li>
	<li>탈이온수 495mL에 NaCl 3.595g을 첨가하여 세척액을 준비합니다. 그런 다음 페니실린-스트렙토마이신 5ml(5U/mL)를 배지에 추가합니다. 100mm 페트리 접시에 세척제를 채우고 37°C로 데웁니다.</li>
	<li>전체 구성을 보여주는 그림 1에 따라 배양 접시를 준비합니다.<ol><li>여과지를 준비하여 약 17mm에서 20mm의 직사각형 모양으로 자르고 네 모서리를 제거합니다×. 배아를 고정하기 위해 여과지에 약 7mm × 10mm 크기의 빈 중심을 만듭니다(그림 1, 왼쪽). 참고: 배아 수집은 2단계에 설명되어 있습니다.</li>
		<li>시중에서 판매되는 링(Φ = 1인치, 재료 표 참조)을 플렉시블 필름(즉, 파라핀 필름) 층과 함께 부착하여 플렉시블 필름의 중심이 비어 있는지 확인합니다. 필름이 있는 이 링은 배아와 함께 여과지를 고정하는 데 사용됩니다.</li>
		<li>마지막으로 준비된 링을 35mm 페트리 접시에 넣습니다(그림 1, 오른쪽). 알림: 여과지는 여과지를 멤브레인에 놓고 배아를 중앙 중공 영역에 남겨 두어 추출된 배아를 고정하고 고정하기 위한 것입니다(2단계에서 자세히 설명). 네 모서리는 외부 링의 크기에 맞게 절단되었습니다(이미 장착된 경우 필요하지 않음). 더 나은 레이저 빔 전파를 위해 35mm 유리 바닥 배양 접시가 사용됩니다. 접시에는 내부 웰(Φ = 23mm)이 있으며, 이 웰은 외향 배양을 위해 알부민으로 채울 수 있습니다. 링의 직경은 내부 웰의 직경보다 커야 웰이 링의 유연한 필름으로 덮일 수 있습니다(그림 1, 삽입물). 여과지의 크기는 제한되지 않으며 선택한 링과 배양 접시의 크기에 따라 수정할 수 있습니다. 또는 접시 바닥을 아가로스 층(두께: ~1mm)으로 미리 코팅할 수 있습니다. 블레이드를 이용하여 층의 중심으로부터 아가로스를 제거함으로써, 알부민을 로딩하기 위한 플렉시블 필름의 중공 중심과 유사한 형상의 웰을 생성할 수 있다. 한 가지 중요한 점은 중공 여과지의 4면이 배아의 부착을 보장하기 위해 충분한 너비(> 5mm)를 가져야 한다는 것입니다.</li>
	</ol></li>
</ol>2. 닭 배아의 추출 및 외향 배양
참고: 이 단계는 이전에 게시된 보고서40,41에서 수정되었습니다.
<ol><li>사전 배양 후 인큐베이터에서 계란을 꺼내 계란 상자 트레이의 긴 축에 놓습니다. 달걀 껍질을 70% 에탄올로 세척하고 전체 표면을 덮은 다음 15분 동안 그대로 둡니다.</li>
	<li>계란을 짧은 축으로 잡고 바닥에서 깨뜨립니다. 그림 100과 같이 깨끗한 2mm 페트리 접시 위에 계란을 열어 내용물을 추출합니다. 계란을 잡고 깨는 동안 계란을 회전시키지 마십시오.</li>
	<li>피펫을 사용하여 약 10mL의 얇은 알부민(즉, 액체 알부민42)을 ex-ovo 배양 사용을 위해 15mL 튜브에 옮기고 수집합니다. 그림 3과 같이 배양 접시의 중앙 웰을 수집된 얇은 알부민(약 0.9mL)으로 채웁니다. 충전 과정은 우물 내부에 기포가 형성되지 않도록 느리게 이루어져야 합니다. 알부민이 포함된 배양 접시가 37°C로 예열되었는지 확인합니다. 알림: 이 접시는 배아 ex ovo를 배양하는 데 사용됩니다. 세척 배지로 채워진 새로운 배양 접시는 Brillouin 이미징 중에 사용됩니다(3단계 참조).</li>
	<li>티슈 페이퍼를 사용하여 그림 4와 같이 유리체 막에서 알부민을 조심스럽게 분리하여 배아에 부착된 두꺼운 알부민(즉, 점성 알부민)을 부드럽게 제거합니다. vitelline 멤브레인과의 직접적인 접촉을 피하십시오.</li>
	<li>두꺼운 알부민을 모두 제거한 후 여과지를 유리막에 조심스럽게 부착합니다. 배아의 몸체 축이 여과지의 중앙 직사각형의 긴 축과 정렬되는지 확인합니다. 가위를 사용하여 여과지를 둘러싼 멤브레인을 자릅니다.</li>
	<li>핀셋을 사용하여 분리된 여과지를 노른자에서 비스듬한 방향으로 부드럽게 잡아당깁니다. 여과지를 거꾸로 뒤집어 배아의 등쪽이 아래로 향하도록 배치합니다(도립 현미경 구성의 경우). 장축의 한쪽에서 전체 여과지를 세척 매체와 함께 비스듬히 100mm 페트리 접시에 조심스럽게 담급니다.</li>
	<li>깨끗한 피펫을 사용하여 세척제를 여과지와 평행하게 부드럽게 분사하여 남아 있는 노른자를 씻어냅니다. 세척 매체를 멤브레인에 직접 뿌리지 마십시오.</li>
	<li>노른자를 모두 제거한 후 세척제에서 여과지를 조심스럽게 제거하고 티슈 페이퍼를 사용하여 가장자리에서 여분의 매체를 흡수합니다. 그런 다음 배아가 있는 여과지를 배양 접시에 놓고 그림 5와 같이 배아의 등쪽이 아래를 향하도록 합니다. 습도를 유지하려면 물에 적신 티슈 페이퍼를 접시에 넣으십시오.</li>
	<li>배양 접시를 ex ovo 배양을 위해 무대 위 인큐베이터로 옮깁니다.</li>
</ol>3. 배아의 Brillouin 측정
<ol><li>다른 배양 접시 세트를 준비하고 세척 매체로 채웁니다. 세척 매체가 37°C로 예열되었는지 확인합니다.</li>
	<li>배아가 원하는 발달 단계에 도달하면 배아가 있는 여과지를 세척액으로 채워진 배양 접시로 옮깁니다. 배양 접시를 무대 위 s에 놓습니다.tage Brillouin 현미경의 인큐베이터( 재료 표 참조).<ol><li>Brillouin 측정을 수행하기 전에 참조용으로 전체 배아의 명시야 이미지를 저장하십시오. Brillouin 현미경의 세부 구성은 이전에 설명되었으며30 결과 섹션에 요약되어 있습니다(그림 6).</li>
	</ol></li>
	<li>물과 메탄올의 Brillouin 신호를 측정하며, 이는 교정 프로세스를 위해 4단계에서 사용됩니다.</li>
	<li>입사 레이저 출력 및 전자 곱셈 전하 결합 장치(EMCCD, 재료 표 참조) 카메라 노출 시간을 조정하여 최소 10,000카운트의 Brillouin 신호를 달성합니다. 명시야 이미지를 가이드로 사용하여 스캔 범위와 단계 크기를 설정합니다. 2D 병진 단계를 사용하여 배아를 스캔하여 관심 영역의 Brillouin 이미지를 획득합니다. 참고: 수평 스캐닝 범위는 명시야 이미지를 기반으로 결정할 수 있으며, 수직(즉, 깊이) 스캐닝 범위는 빠르고 거친 스캔에서 얻은 신호 강도를 기반으로 결정할 수 있습니다. 배아의 광손상을 방지하려면 입사 전력을 25mW로 제한하고 EMCCD 카메라의 노출 시간을 50ms로 설정합니다. 수평 방향으로 2 μm, 수직 방향으로 1 μm의 단계 크기를 선택하여 이미징 품질과 획득 시간의 균형을 맞출 수 있습니다.</li>
	<li>스캔을 완료한 후 배아와 함께 여과지를 조심스럽게 제거하고 티슈 페이퍼를 사용하여 과도한 세척액을 흡수합니다. 그런 다음 여과지를 얇은 알부민으로 채워진 배양 접시에 다시 넣어 온스테이지 인큐베이터에서 연속 배양합니다.</li>
	<li>일정한 시간 간격(예: 1.5시간)으로 3.2-3.5단계를 반복하여 배아가 발달함에 따라 타임랩스 Brillouin 이미지를 캡처합니다.</li>
	<li>4단계에 따라 2D Brillouin 이미지를 재구성합니다.</li>
</ol>4. Brillouin 이미지 재구성
<ol><li>분광계(30)의 자유 스펙트럼 범위(FSR) 및 픽셀-대 주파수 변환비(PR)를 계산하기 위해 물 및 메탄올의 Brillouin 신호를 사용하여 Brillouin 분광계를 교정한다. FSR 및 PR의 보정된 값은 각 픽셀에서 배아의 Brillouin 이동을 계산하는 데 사용됩니다. 참고: 그림 7A 는 EMCCD 카메라로 캡처한 원시 Brillouin 스펙트럼을 보여줍니다. 스펙트럼을 수직으로 합산한 다음 로렌츠 피팅을 수행하면 두 점의 피크 거리 Δd를 얻을 수 있습니다(그림 7B). 물 Δd물과 메탄올 Δd메탄올의 피크 거리를 구함으로써 FSR 및 PR은 방정식30에 따라 계산할 수 있습니다. PR = 2· (ω메탄올-ω물)/(Δd물-Δd메탄올), FSR = 2·ω물 + PR·Δd물, 660nm에서 물 ω물 = 6.01GHz 및 메탄올 ω메탄올 = 4.49GHz의 알려진 브릴루인 이동.</li>
	<li>샘플의 각 픽셀에서 Brillouin 신호의 피크 거리를 구합니다. 보정된 FSR 및 PR을 기반으로 Brillouin 이동을 계산합니다: ω샘플 = 0.5 (FSR - PR x Δd샘플)30, 여기서 ω샘플 은 샘플의 브릴루인 이동이고 Δd샘플 은 Brillouin 신호의 피크 거리입니다.</li>
	<li>모든 픽셀의 Brillouin 이동을 기반으로 2D Brillouin 이미지를 재구성합니다. 참고: 국소 분석을 수행하기 위해 획득한 Brillouin 이미지에서 관심 영역(예: 신경판)을 선택하고 기계적 특성을 정량화할 수 있습니다. 일반적인 접근 방식은 선택한 영역의 평균 브릴루앙 이동을 계산하는 것입니다.</li>
</ol>

병아리 배아 발달에서 신경판 역학의 종단 모니터링(Longitudinal Monitoring of Neural Plate Mechanics in Chick Embryo Development)

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</ol>

저자는 이해 상충이 없음을 선언합니다.

배아의 초기 발달은 외부 교란에 의해 쉽게 영향을 받을 수 있습니다. 따라서 시료 추출 및 이송 시 각별한 주의가 필요합니다. 한 가지 잠재적인 문제는 여과지에서 배아가 분리되는 것인데, 이로 인해 비텔린 막이 수축되어 Brillouin 이미징에서 신경판의 기울어진 아티팩트가 발생할 수 있습니다. 더욱이, 이러한 수축은 배아의 발달을 중단시킬 수 있습니다. 분리를 방지하기 위해 몇 가지 중요한 단계에주의를 기울여야합니다. 첫째, 2.4단계에서는 멤브레인 표면에서 알부민을 철저히 제거하는 것이 중요합니다. 임의의 잔류하는 알부민은 여과지(46,47)에 대한 막의 적절한 접착을 방해할 수 있다. 또한 세척 과정에서 세척 매체를 멤브레인과 평행한 방향으로 분무하는 것이 중요합니다. 액체 흐름으로 멤브레인을 직접 치면 멤브레인이 분리되거나 찢어질 수 있습니다. 또한 전체 세척 과정은 짧은 시간(예: <3분) 내에 완료되어야 하며, ...

신경관 결손(NTD)은 배아 발달 중 신경관 폐쇄(NTC)의 실패로 인해 발생하는 중추신경계의 심각한 선천적 결함이다1. NTD의 원인은 복잡합니다. 연구에 따르면 NTC는 수렴 확장, 신경판의 굽힘(예: 정점 수축), 신경주름 상승, 마지막으로 신경주름 유착을 포함한 일련의 형태발생 과정을 포함합니다. 이러한 과정은 여러 분자 및 유전 메커니즘에 의해 조절되며2,3 이러한 과정에서 오작동이 발생하면 NTD 4,5,6이 발생할 수 있습니다. NTC 3,7,8,9,10,11 동안 기계적 단서가 중요한 역할을 한다는 증거가 늘어나고 유전자와 기계적 단서 12,13,14 사이의 관계가 발견됨에 따라, 신경관형성 중 조직 생체역학을 조사하는 것이 필수적이다.
배아 조직의 기계적 특성을 측정하기 위해 레이저 절제(LA)15, 조직 해부 및 이완(TDR)16,17, 마이크로피펫 흡인(MA)18, 원자력 현미경(AFM) 기반 나노인덴테이션(19), 마이크로인덴터(MI) 및 마이크로플레이트(MP)20, 광학/자기 핀셋을 사용한 마이크로 유변학(MR)21,22,23 등 여러 기술이 개발되었습니다및 물방울 기반 센서(24)를 사용할 수 있다. 기존 방법은 세포 하에서 조직 규모에 이르는 공간 분해능에서 기계적 특성을 측정할 수 있습니다. 그러나 이러한 방법의 대부분은 샘플과의 접촉(예: MA, AFM, MI 및 MP), 외부 물질 주입(예: MR 및 액적 기반 센서) 또는 조직 해부(예: LA 및 TDR)가 필요하기 때문에 침습적입니다. 결과적으로, 기존 방법으로는 25번 제자리에서 신경판 조직의 기계적 진화를 모니터링하기가 어렵습니다. 최근에, 잔향 광간섭 엘라스토그래피(reverberant optical coherence elastography)는 높은 공간 분해능(26)을 갖는 비접촉식 기계적 매핑에 대한 가능성을 보여주었다.
Confocal Brillouin 현미경은 세포 내 분해능 27,28,29,30으로 조직 생체 역학의 비접촉 정량화를 가능하게 하는 새로운 광학 양식입니다. Brillouin 현미경은 입사 레이저 광과 재료 내의 열 변동에 의해 유도된 음파 사이의 상호 작용인 자발적 Brillouin 광 산란의 원리를 기반으로 합니다. 결과적으로, 산란광은 방정식31에 따라 Brillouin shift ωR로 알려진 주파수 이동을 경험합니다.
<img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/66117/66117eq01.jpg" style="margin: auto;"> (1)
여기서, <img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/66117/66117eq02.jpg" style="margin: auto;"> 는 물질의 굴절률, λ는 입사광의 파장, M'은 종계수, ρ는 질량 밀도, θ는 입사광과 산란광 사이의 각도입니다. 동일한 유형의 생물학적 물질에 대해 굴절률과 밀도 <img alt="Equation 3" src="/files/ftp_upload/66117/66117eq03.jpg" style="margin: auto;"> 의 비율은 대략 일정합니다 28,32,33,34,35,36. 따라서 Brillouin shift는 생리적 과정의 상대적인 기계적 변화를 추정하는 데 직접 사용할 수 있습니다. Brillouin 현미경의 타당성은 다양한 생물학적 샘플 29,37,38에서 검증되었습니다. 최근에, 살아있는 병아리 배아의 타임랩스 기계적 이미징이 브릴루앙 현미경과 무대 배양 시스템(39)을 결합함으로써 시연되었다. 이 프로토콜은 시료 전처리, 실험 구현, 데이터 후처리 및 분석에 대한 자세한 설명을 제공합니다. 우리는 이러한 노력이 배아 발달 및 선천적 결함의 생체역학적 조절을 연구하기 위한 비접촉식 Brillouin 기술의 광범위한 채택을 촉진하기를 희망합니다.

<table><tbody><tr><td>100mm 페트리 접시&nbsp;</td><td>Fisherbrand</td><td>FB0875713</td><td></td></tr><tr><td>2D 전동 스테이지&nbsp;</td><td>Prior Scientific</td><td>H117E2</td><td></td></tr><tr><td>35 mm 페트리 접시</td><td>세계 정밀 기기</td><td>FD35-100</td><td></td></tr><tr><td>Brillouin 현미경 on-stage 인큐베이터</td><td>N/A</td><td>N/A</td> 이것은 Ref. 30 Chicken eggs University of Connecticut N/A <td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CMOS 카메라</td><td>Thorlabs</td><td>CS2100M-USB</td><td></td></tr>를 기반으로 한 맞춤형 Brillouin 현미경 시스템입니다.<tr><td>EMCCD 카메라</td><td>Andor</td><td>iXon</td><td></td></tr><tr><td>에탄올</td><td>Decon Laboratories, Inc.</td><td>#2701</td><td></td></tr><tr><td>여과지</td><td>Whatman</td><td>1004-070</td><td></td></tr><tr><td>인큐베이터 in ovo culture</td><td>GQF Manufacturing Company Inc.&nbsp;</td><td>GQF 1502년&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Ring</td><td>Thorlabs</td><td>SM1RR</td><td></td></tr><tr><td>현미경 본체</td><td>Olympus</td><td>IX73</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S9888</td><td></td></tr><tr><td>무대 위 인큐베이터</td><td>Oko labs</td><td>OKO-H301-PRIOR-H117</td><td></td></tr><tr><td>Parafilm</td><td>Bemis</td><td>PM-996</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin</td><td>Gibco</td><td>15070-063</td><td></td></tr><tr><td>피펫</td><td>Fisherbrand</td><td>13-711-6M</td><td></td></tr><tr><td>가위</td><td>Artman 악기</td><td>N/A</td><td>3pc 마이크로 가위 5</td></tr><tr><td>주사기</td><td>BD</td><td>305482</td><td></td></tr><tr><td>티슈 페이퍼</td><td>Kimwipes</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>튜브</td><td>Corning</td><td>430052</td><td></td></tr><tr><td>핀셋</td><td>DR Instruments</td><td>N/A</td><td>미세해부 펜치 세트&nbsp;</td></tr></tbody></table>

병아리 배아의 신경관 폐쇄 중 조직의 기계적 진화 모니터링

Monitoring the Mechanical Evolution of Tissue During Neural Tube Closure of Chick Embryo

신경관 폐쇄(NTC)는 배아 발달 과정에서 중요한 과정입니다. 이 과정에서 실패하면 신경관 결손이 발생하여 선천성 기형 또는 사망에 이를 수 있습니다. NTC는 유전적, 분자적, 기계적 수준에 대한 일련의 메커니즘을 포함합니다. 기계적 조절은 최근 몇 년 동안 점점 더 매력적인 주제가 되었지만, 3D 배아 조직의 현장 기계적 테스트를 수행하는 데 적합한 기술이 부족하기 때문에 대부분 탐구되지 않은 상태로 남아 있습니다. 이에 대응하여 우리는 비접촉 및 비침습적 방식으로 닭 배아 조직의 기계적 특성을 정량화하기 위한 프로토콜을 개발했습니다. 이는 컨포칼 Brillouin 현미경과 무대 배양 시스템을 통합함으로써 달성됩니다. 조직 역학을 조사하기 위해 사전 배양된 배아를 수집하여 난자 배양을 위한 무대 내 인큐베이터로 옮깁니다. 동시에, 신경판 조직의 기계적 이미지는 발달 중 서로 다른 시점에서 Brillouin 현미경에 의해 획득됩니다. 이 프로토콜에는 시료 전처리, Brillouin 현미경 실험 구현, 데이터 후처리 및 분석에 대한 자세한 설명이 포함되어 있습니다. 이 프로토콜을 따름으로써, 연구자들은 발달 중 배아 조직의 기계적 진화를 종단적으로 연구할 수 있습니다.

그림 6 은 Brillouin 현미경의 개략도를 보여줍니다. 이 시스템은 660nm 레이저를 광원으로 사용합니다. 아이솔레이터는 레이저 헤드 바로 뒤에 배치되어 역반사광을 차단하고 중성 밀도(ND) 필터를 사용하여 레이저 출력을 조정합니다. 초점 거리가 각각 f1 = 16mm 및 f2 = 100mm인 한 쌍의 렌즈 L1 및 L2가 레이저 빔을 확장하는 데 사용됩니다. 반파장판(HWP)과 선형 편광판(편광판 1)을 사용하여 편광 빔 스플리터(PBS) 후 샘플 또는 보정 물질(예: 물과 메탄올)에 비추는 빔의 출력을 조정합니다. 레이저를 샘플에 초점을 맞추고 후방 산란광을 수집하기 위해 개구수(NA)가 0.6이고 배율이 40인 대물 렌즈(OBJ2)가 사용됩니다. 입사광과 후방 산란광은 쿼터 파장판(QWP2)을 사용한 편광 조정 후 동일한 PBS로 분리됩니다. 마찬가지로 OBJ1 및 QWP1은 레이저 빔을 보정 재료로 안내하는 데 사용됩니다. Brillouin 신호는 분석을 위해 ...

이 프로토콜은 병아리 배아 신경 형성 중 신경판 조직의 기계적 특성을 종단적으로 모니터링하기 위해 개발되었습니다. Brillouin 현미경과 무대 배양 시스템의 통합을 기반으로 하며, 배 양된 병아리 배아에서 신경판 조직의 실시간 기계적 이미징을 가능하게 합니다.

Neural tube closure (NTC) is a critical process during embryonic development. Failure in this process can lead to neural tube defects, causing congenital ...

이 연구의 범위는 살아있는 배아의 조직 역학을 측정할 수 있는 새로운 도구를 개발하는 것입니다. 이 도구를 사용하여 배아가 뉴런 튜브 폐쇄를 경험할 때 조직 역학이 어떻게 진화하는지 이해하고자 합니다. 이것은 배아 발달의 기계적 규정을 이해하는 데 도움이 될 수 있습니다.조직 강성을 측정하기 위해 원자력 현미경, 나노아이덴션 및 마이크로피펫 흡인과 같은 현재 방법은 샘플과 물리적으로 접촉하고 힘을 가하여 변형시켜야 합니다. 이는 살아있는 배아의 조직 역학을 in situ 측정하는 데 매우 어렵습니다. 여기서는 Brillouin 현미경이라는 광학 기술을 사용했습니다.다른 기술과 비교했을 때, Brillouin 현미경 검사는 초점 빔만 사용하여 조직 역학을 측정합니다. 따라서 이것은 비접촉 및 비침습적 방법이며 약간의 미세 공간 분해능을 가지고 있습니다. 이를 통해 현장에서 살아있는 배아의 타임랩스 기계적 이미지를 캡처할 수 있습니다.앞으로 우리는 배아 발달에서 조직 역학의 역할을 철저히 이해하고자 합니다. 구체적으로, 우리는 유전적 요인, 생화학적 신호 전달 경로 및 조직 역학이 형태 형성에서 어떻게 서로 조화를 이루는지 연구하고자 합니다. 이것은 뉴런 튜브 결손과 같은 선천적 질병 제공에 대한 새로운 통찰력을 제공할 수 있습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Developmental Biology

발생생물학

신경 유도는 뇌의 형성의 첫 단계입니다. 그것은 Hensen의 노드 (주최자), 신경 운명을 채택할에 인접한 조직을 지시하는 메커니즘이며, 신경 계통을 일으키다하는 즉. 이 비디오는 여자의 배아에서 신경 유도에 대한 분석을 보여줍니다.

칙의 배아에서 신경 유도에 대한 분석

이 문서는 craniofacial 개발 중에 신호 및 표면 두부 ectoderm의 patterning 속성을 테스트하도록 설계되었습니다 조직 이식 기술을 설명합니다.

Craniofacial 개발 과정 Ectodermal 상피 조직의 신호 특성을 평가

초기 여자는 배아에서 Morphogenetic 조직 Deformations 추적

산모 신진 대사를 무시 neurulation 동안 마우스 배아의 직접적인 약리 조작에 대한 허용하는 방법을 설명합니다. 이 기술은 시점과 약리 에이전트를 변화하여 neurulation의 다양한 측면을 연구하기 위해 적용할 수 있습니다.

마우스 배아 전체 문화 신경 튜브 폐쇄

실시간 이미징 배아 조직은 오랜 기간 동안 도전합니다. 여기에서 우리는 높은 공간과 시간적 해상도를 가진 오랜 기간 동안 여자가 척수의 세포와 하위 세포 변화를 감시하기위한 분석을 제시. 이 기술은 신경계와 개발 배아의 다른 지역에 맞게 조정 할 수 있습니다.

개발 Neuroepithelium의 세포 문제의 고해상도 라이브 영상

두개골 mesenchyme 가능성이 신경 주름 상승을위한 원동력을 제공 극적인 morphogenic의 움직임을...

두개골 Mesenchyme의 셀룰러 행동을 평가하기위한 Explant 분석

이 비디오는 병아리 배아의 중뇌 영역에서 두개골 신경 주름을 분리하는 기술을 보여줍니다. 신경 주름의 상세한 해부 과정, 그 위치 및 피브로넥틴으로 코팅된 커버슬립에 부착된 후 신경 주름에서 신경능선 세포의 이동을 관찰합니다.

신경 능선 세포 배양을 위해 병아리 배아에서 두개골 신경 주름 분리

발달 중에 닭 배아를 보고 접근하는 것은 어려울 수 있습니다. 우리는 간단하고 비용 효율적이며 교실이나 연구 환경에서 쉽게 사용할 수 있는 ex ovo 방법을 개발했습니다. 이 방법은 배아가 배아 발달의 후기 단계로 들어갈 수 있도록 합니다(HH 40).

최적화 전 비켜 개발의 고급 단계에 병아리 배아의 배양

여기에서 우리는 혈관 내 DiI 주입과 결합된 병아리GFP 신경관 내종 이식을 사용하여 신경 문장 세포 및 혈관의 이중 라벨을 보고합니다. 이 실험 기술은 우리가 동시에 시각화하고 유기 발생 동안 NCC 파생 (장내) 신경계와 혈관 시스템의 개발을 연구 할 수 있습니다.

병아리GFP 신경관 이식 및 카르보시아닌 염료 DiI 주입을 사용하여 닭 배아 내신경염 세포 및 혈관의 이중 라벨링

여기, 우리는 일련의 새로운 전 비켜 실험 및 초기 여자 배아 뇌 비틀림 동안 morphogenesis의 역학을 공부에 대 한 물리적 모델링 접근법을 소개 하는 프로토콜을 제시.

초기 여자 배아 Morphogenesis 물리적 힘의 역할을 프로 빙

이 다목적 프로토콜은 병아리 배아에서 두개골 신경 주름의 절제를 통해 이식 신경 볏 세포 (NCC)의 분리를 설명합니다. 도금 및 배양 시 이동 NCC가 신경 접힘 외식편에서 나와 단순화된 2D 환경에서 세포 형태 및 이동을 평가할 수 있습니다.

병아리 두개골 신경 볏 세포 배양의 준비 및 형태학적 분석

배우세요 브릴루앙 현미경을 활용한 병아리 배아 신경관 폐쇄 중 조직 기계적 특성 측정 방법을. 이 비침습적 기술은 살아있는 배아의 조직 경도 변화를 실시간으로 모니터링하여 신경관 결손 예방 연구에 중요한 통찰을 제공합니다.

병아리 배아의 신경관 폐쇄 중 조직의 기계적 진화 모니터링

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