Name: 자발적으로 호흡하는 마우스에서 풍선 카테터를 사용하여 원격으로 트리거된 LAD 폐색 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-03-22T13:40:00.000+00:00
Duration: 7 min 17 s
Description: 배우세요 마우스 심근 허혈-재관류 손상 연구를 위한 폐쇄형 흉부 기법으로, 자발 호흡을 유지하며 실시간 영상으로 허혈 역학을 관찰합니다. 이 방법은 수술 외상을 줄이고 실험 재현성을 향상시킵니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<meta charset="utf8"></head><body>쥐 심근 허혈-재관류 손상에 대한 폐쇄 흉부 기술

<ol><li>Bryda, E. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+mighty+mouse%3A+The+impact+of+rodents+on+advances+in+biomedical+research%5BTitle%5D)+AND+%22Mo+Med%22%5BJournal%5D)">The mighty mouse: The impact of rodents on advances in biomedical research.</a> Mo Med. 110 (3), 207-211 (2013).</li>
<li>Fishbein, M. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+phase+acute+myocardial+infarct+size+quantification%3A+Validation+of+the+triphenyl+tetrazolium+chloride+tissue+enzyme+staining+technique%5BTitle%5D)+AND+%22Am+Heart+J%22%5BJournal%5D)">Early phase acute myocardial infarct size quantification: Validation of the triphenyl tetrazolium chloride tissue enzyme staining technique.</a> Am Heart J. 101 (5), 593-600 (1981).</li>
<li>Ibáñez, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evolving+therapies+for+myocardial+ischemia%2Freperfusion+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Coll+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Evolving therapies for myocardial ischemia/reperfusion injury.</a> J Am Coll Cardiol. 65 (14), 1454-1471 (2015).</li>
<li>Dąbrowska, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+immune+response+to+surgery+and+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Cent+Eur+J+Immunol%22%5BJournal%5D)">The immune response to surgery and infection.</a> Cent Eur J Immunol. 39 (4), 532-537 (2014).</li>
<li>Muthuramu, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Permanent+ligation+of+the+left+anterior+descending+coronary+artery+in+mice%3A+a+model+of+post-myocardial+infarction+remodelling+and+heart+failure%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Permanent ligation of the left anterior descending coronary artery in mice: a model of post-myocardial infarction remodelling and heart failure.</a> J Vis Exp. (94), e52206(2014).</li>
<li>Nickles, H. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+ventilation+causes+airway+distension+with+proinflammatory+sequelae+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol-Lung+C%22%5BJournal%5D)">Mechanical ventilation causes airway distension with proinflammatory sequelae in mice.</a> Am J Physiol-Lung C. 307 (1), L27-L37 (2014).</li>
<li>Reed, G. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+myocardial+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Acute myocardial infarction.</a> Lancet. 389 (10065), 197-210 (2017).</li>
<li>Rittié, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Method+for+picrosirius+red-polarization+detection+of+collagen+fibers+in+tissue+sections%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Method for picrosirius red-polarization detection of collagen fibers in tissue sections.</a> Methods Mol Biol. 1627, 395-407 (2017).</li>
<li>Schwarte, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+ventilation+of+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Basic+Res+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Mechanical ventilation of mice.</a> Basic Res Cardiol. 95 (6), 510-520 (2000).</li>
<li>Vaneker, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+ventilation+induces+a+Toll%2FInterleukin-1+receptor+domain-containing+adapter-inducing+interferon+%CE%B2-dependent+inflammatory+response+in+healthy+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Anesthesiology%22%5BJournal%5D)">Mechanical ventilation induces a Toll/Interleukin-1 receptor domain-containing adapter-inducing interferon β-dependent inflammatory response in healthy mice.</a> Anesthesiology. 111, 836-843 (2009).</li>
<li>Van Allen, N. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+volatile+anesthetics+in+cardioprotection%3A+A+systematic+review%5BTitle%5D)+AND+%22Med+Gas+Res%22%5BJournal%5D)">The role of volatile anesthetics in cardioprotection: A systematic review.</a> Med Gas Res. 2, 22(2012).</li>
<li>Kumar, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distinct+mouse+coronary+anatomy+and+myocardial+infarction+consequent+to+ligation%5BTitle%5D)+AND+%22Coron+Artery+Dis%22%5BJournal%5D)">Distinct mouse coronary anatomy and myocardial infarction consequent to ligation.</a> Coron Artery Dis. 16 (1), 41-44 (2005).</li>
<li>Bayat, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progressive+heart+failure+after+myocardial+infarction+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Basic+Res+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Progressive heart failure after myocardial infarction in mice.</a> Basic Res Cardiol. 97 (3), 206-213 (2002).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>2-0 실크 봉합</td>사 <td>Sharpoint Products</td><td>DC-2515N</td><td></td></tr><tr><td>5-0 폴리프로필렌 봉합사</td><td>Ethicon</td><td>8710H</td><td></td></tr><tr><td>7-0 폴리프로필렌 봉합</td>사 <td>Ethicon</td><td>8206H</td><td></td></tr><tr><td>ACCLARENT 풍선 팽창 장치</td><td>Johnson& Johnson MedTech</td><td>BID30</td><td></td></tr><tr><td>Acepromazine</td><td>Kela</td><td></td><td></td></tr><tr><td>BD Vialon 18 G</td><td>BD</td><td>381347</td><td></td></tr><tr><td>BD Vialon 20 G</td><td>BD</td><td>381334</td><td></td></tr><tr><td>Betadine Solution</td><td>Purdue Pharma</td><td>25655-41-8</td><td></td></tr><tr><td>부프레노르핀(부프레넥스 주사제)</td><td>Reckitt Benkiser Healthcare</td><td>NDC 12496-0757-1</td><td></td></tr><tr><td>잉어 줌 Styl Knijplood 2.1 g (납 낚시 무게)</td><td>Visdeal.nl</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dumont #3 집게</td><td>Fine Science Tools</td><td>11231-30</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #5 집게</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-30</td><td></td></tr><tr><td>Fine Scissors</td><td>Fine Science Tools</td><td>14040-10</td><td></td></tr><tr><td>Fucidine gel</td><td>Leo Pharma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Abbott</td><td>NDC 5260-04-05</td><td></td></tr><tr><td>KD 마우스/랫 아이 스페큘럼</td><td>월드 정밀 기기</td><td>501897</td><td></td></tr><tr><td>KD 마우스/랫 아이 스페큘럼</td><td>월드 정밀 기기</td><td>501897</td><td></td></tr><tr><td>케타민</td><td>데크</td><td></td><td></td></tr>라 <tr><td>광원</td><td>Zeiss</td><td>KL 1500 LCD</td><td></td></tr><tr><td>MRI 시스템&nbsp;</td><td>Bruker BioSpin, Ettlingen, Germany</td><td>BioSpec 70/30</td><td></td></tr><tr><td>NatriumChloride 0.9%</td><td>Baxter</td><td></td><td></td></tr><tr><td>야간 적외선 열 램프</td><td>Zoo Med Laboratories, Inc.</td><td>RS-75</td><td></td></tr><tr><td>ParaVision 소프트웨어&nbsp;</td><td>Bruker BioSpin</td><td>버전 6.0.1&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>폴리에틸렌 튜빙 PE-10</td><td>SAI 주입 기술</td><td>PE-10</td><td></td></tr><tr><td>폴리에틸렌 튜빙 PE-50</td><td>SAI 주입 기술</td><td>PE-50</td><td></td></tr><tr><td>원격 IRI 도구(PMMA)</td><td>수제</td><td></td><td></td></tr><tr><td>설치류 수술 모니터</td><td>인더스 기구</td><td></td><td></td></tr><tr><td>세그먼트 v4.0</td><td>Medviso, segment.heiberg.se</td><td>R12067</td><td></td></tr><tr><td>자체 게이트 그라디언트 에코 시퀀스&nbsp;</td><td>Bruker BioSpin, Ettlingen, Germany</td><td>IntraGate, ParaVision 6.0.1</td><td></td></tr><tr><td>슬림 길쭉한 바늘 홀더</td><td>Fine Science Tools</td><td>12005-15</td><td></td></tr><tr><td>Sure-Seal 마우스/쥐 유도 챔버</td><td>World Precision Instruments</td><td>EZ-178</td><td></td></tr><tr><td>튜빙 커넥터, 폴리, Y 모양</td><td>Westlab</td><td>072025-0001</td><td></td></tr><tr><td>Ultraverse 035 PTA 확장 카테터: 5mm x 40mm, 130cm 길이의 카테터에 17ATM RBP 풍선</td><td>Bard Peripheral Vascular, Inc.</td><td></td><td></td>00801741092671</tr><tr><td>Veet(제모 크림)</td><td>Reckitt Benkiser 헬스케어</td><td></td><td></td></tr><tr><td>인공호흡기, MiniVent 모델 845</td><td>Hugo Sachs</td><td>73-0043</td><td></td></tr><tr><td>Vidisic</td><td>BAUSCH & 롬 제약</td><td>685313</td><td></td></tr><tr><td>자일라진</td><td>바이엘</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

자발적으로 호흡하는 마우스에서 풍선 카테터를 사용하여 원격으로 트리거된 lad 폐색

Remotely Triggered LAD Occlusion Using a Balloon Catheter in Spontaneously Breathing Mice

허혈 유도 능력에 대한 검증은 트리페닐 테트라졸륨 클로라이드(TTC) 및 시리우스 레드(SR) 염색, 심장 트로포닌 I 측정, LGE(Late gadolinium enhancement) MR 영상의 4가지 테스트로 수행되었습니다. 통계적 유의성은 제한된 표본 크기를 고려하여 Mann-Whitney 비모수 검정을 사용하여 평가되었습니다. 통계적 유의성은 p &lt; 0.05에 기인하였다.
급성 실험(TTC 염색, n=15)에서는 기술적 결함이 없었으며, 모든 동물이 포함되었습니다. 이러한 급성 실험에는 즉각적인 후속 실험(심장 트로포닌 I, LGE MRI, 시리우스 적색 염색, n = 12)이 포함되었으며 4주 동안 원격 및 표준 교합 기법의 생존율이 각각 85% 및 80%였습니다.
트리페닐 테트라졸륨 클로라이드 염색 심장 허혈 재관류 손상의 마우스 모델에서 TTC(Triphenyl tetrazolium chloride) 염색은 탈수소효소의 기능 상실을 보여줌으로써 심근 생존력 현상을 거시적으로 측정합니다. 이 염색 방법은 허혈로 인해 아직 생존 가능한(살아 있는) 심장 부위와 생존 불가능하게 된 심장 부위를 구별하는 데 도움이 됩니다. 생존 가능한 심근은 TTC로 붉게 염색되는 반면, 허혈 부위는 탈수소효소가 더 이상 기능하지 않기 때문에 창백하거나 염색되지 않은 상태로 유지됩니다. 이는 허혈 발병 후 초기에 조직 손상 정도에 대한 중요한 정보를 제공합니다. 염색은 허혈 30분 직후 표준 IRI(n=7) 및 원격 IRI(n=8) 그룹에 대해 수행되었습니다. 그림 5 는 한 동물에 대한 대표적인 염색 절편을 보여주며, 조직 절편이 기저부에서 정점을 향해 횡단합니다. TTC 염색 결과는 그림 6 에 나와 있으며 두 IRI 기법 간에 큰 차이는 없습니다. TTC 염색은 Fishbein et al.7에 의해 설명된 대로 수행되었습니다.
후기 가돌리늄 향상 MRI 허혈 영역의 정도를 비침습적으로 측정하기 위해 표준 IRI(n=5) 및 원격 IRI(n=5) 그룹에 대해 폐색 후 24시간 동안 LGE MRI를 사용했습니다. 자세한 취득 세부 사항은 보충 파일 1에 나와 있습니다. 위험 영역은 보충 파일 1에 자세히 설명된 임계값 기준을 초과하는 가장 정점 3개 절편에서 좌심실의 % 조직으로 측정됩니다. 그림 7 의 그래픽 표현은 위험 영역 측정을 평가할 때 새로 제안된 원격 교합 기술과 기존의 '열린 가슴' 방법 간에 큰 차이가 관찰되지 않았음을 보여줍니다.
시리우스 레드 염색 심근 허혈의 결과인 심근 경색은 심장의 수축 질량을 감소시켜 혈액을 효율적으로 펌프질하는 능력을 손상시키기 때문에 허혈을 경험하는 개인에게 심각한 문제를 제시합니다. 그림 8 은 교합 후 4주 후에 Sirius Red 염색을 사용하여 LGE MRI로 표시된 위험 부위를 기반으로 흉터 형성 위치를 확인하고 흉터 조직의 범위를 측정함으로써 결과를 추가로 설명합니다. 염색은 표준 IRI(n=5) 및 원격 IRI(n=5) 그룹에 대해 수행하였다. 밝은 빨간색 부분은 경색의 괴사 중심부를 표시하고 주황색 부분은 생존 가능한 조직을 표시합니다. 마지막으로, 그림 9 는 두 기술 모두에서 Sirius Red 염색을 사용하여 측정된 최종 흉터 크기를 보고합니다. 흉터 크기는 염색된 경색의 면적을 2.4mm 두께의 정점 조직 단면 슬래브에서 좌심실 자유 벽의 총 면적으로 나눈 값으로 계산됩니다. Sirius Red 염색은 Rittié8에 따라 수행되었습니다.
심장 트로포닌 I 이미징 및 염색 기술 외에도 이 연구는 심장 트로포닌 I을 마커로 사용하여 심장 손상을 평가했습니다. 표준 IRI(n=8) 및 원격 IRI(n=8) 그룹에 대해 수술 후 24시간에 혈액 샘플을 수집했습니다. 그림 10 은 심장 트로포닌 I 값을 보여주며, 새로운 원격 교합 기법과 표준 IRI 기법을 비교할 때 큰 차이가 없음을 보여줍니다.
제안된 개념의 실현 가능성을 입증하기 위해, 동시 비침습적 이미징으로 원격 위치에서 허혈을 유도하는 예비 결과도 제공됩니다. 이는 MRI 동물 요람 내에 배치되고 MR 스캐너 중앙에 배치된 맞춤형 원격 교합 도구를 활용하여 달성되었습니다. 그림 11 에 표시된 결과는 경색 영역과 비경색 영역 간의 이미지 대비(밝기 수준)의 차이를 보여줍니다. 동물이 MR 스캐너 내에 위치하는 동안 LAD의 성공적인 교합을 확인하는 마커로 전형적인 ST 상승을 보여주는 ECG 추적은 그림 12B에 제시되어 있으며, 그림 12A 는 교합 전의 ECG 추적을 보여줍니다.
이 포괄적인 접근 방식은 기존의 '열린 가슴' 방법과 비교하여 실험 모델에서 새로 제안된 원격 폐색 기술이 허혈, 괴사 및 심장 손상에 미치는 영향에 대한 자세한 이해를 제공합니다.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66386/66386fig01.jpg"> 그림 1: 프로토콜에 설명된 대로 동물의 준비를 보여주는 대표 이미지. (A) 늑골 견인기를 삽입하는 흉강절개술. (B) PE-10 튜브로 흉부를 닫고 흉부를 LAD 주위로 봉합사로 안내합니다. (C) 조립된 원격 IRI 도구 내에 동물을 배치하는 단계. 두 개의 2.1g 무게가 봉합사의 양쪽 끝을 고정하고 원격 IRI 크래들의 측면 부분에 놓여 있습니다. 측면 부품은 공구의 베이스 플레이트에 있는 컷아웃에 의해 배치되고 제자리에 고정됩니다. 혈관 풍선 카테터가 수축되었습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66386/66386fig01large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66386/66386fig02.jpg"> 그림 2: LAD(흰색 화살표)와 좌측 귓바퀴(검은색 화살표)의 생체 외 시각화. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66386/66386fig02large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66386/66386fig03.jpg"> 그림 3: 실험 설정의 개략적인 하향식 보기, 원격 폐색에 사용되는 도구의 위치를 보여줍니다. BioRender.com 로 만들어졌습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66386/66386fig03large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66386/66386fig04.jpg"> 그림 4: 측면도에서 원격 폐색을 위한 도구의 사용법을 보여주는 회로도. (A) 수술 시작부터 동물을 아랫부분에 놓습니다. 가슴을 닫은 후 측면 부분이 제자리에 설치됩니다. 이 시점에서 풍선은 여전히 수축되어 있고 무게는 아래쪽 부분에 놓여 있습니다. (B) 풍선 카테터를 팽창시키면 무게추(화살표로 표시)가 들어 올려지고 LAD의 폐색이 발생하고 심근에 허혈이 발생합니다. 성공적인 교합은 ECG 추적의 변화에서 볼 수 있습니다. 풍선의 공기를 빼면 LAD를 통한 혈류가 복원됩니다. BioRender.com 로 만들어졌습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66386/66386fig04large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66386/66386fig05.jpg"> 그림 5: 트리페닐 테트라졸륨 클로라이드(TTC)로 염색된 쥐 심장 절편의 대표 이미지. 슬라이스는 맨 윗줄에서 시작하여 왼쪽에서 오른쪽으로 밑면에서 정점으로 이동합니다. (A) 표준 IRI. (B) 원격 IRI. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66386/66386fig05large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66386/66386fig06.jpg"> 그림 6: TTC 염색 결과. TTC 염색은 경색 크기를 측정하기 위해 교합 후 24시간 후에 수행하였다. 데이터 포인트는 표준 IRI(n = 7) 및 원격 IRI(n = 8) 그룹의 SEM을 사용하여 평균으로 표시됩니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66386/66386fig06large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66386/66386fig07.jpg"> 그림 7: 후기 가돌리늄 향상 MRI. LGE MRI로 얻은 3개의 가장 정점 절편(정점 자체 제외)에 설명된 교합 후 24시간 시점의 위험 영역. 데이터 포인트는 표준 IRI(n = 5) 및 원격 IRI(n = 5) 그룹의 SEM을 사용하여 평균으로 표시됩니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66386/66386fig07large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66386/66386fig08.jpg"> 그림 8: 허혈/재관류 절차 후 MRI에 의한 원격 교합 장치의 검증. 교합 후 1일째 LGE MR 이미지에 묘사된 위험 영역과 교합 후 4주에 Sirius Red로 염색된 최종 흉터 조직 간의 대표 비교. (AB까지) 각각 원격 및 벤치 폐색이 있는 동물의 짧은 축 조각입니다. 화살표는 위험에 처한 윤곽이 그려진 영역을 표시합니다. (C-D) 동일한 각 동물의 시리우스 레드(Sirius Red)로 염색된 조직학적 절편은 최종 흉터 형성이 교합 후 24시간 시점에 MRI로 위험 부위 묘사와 일치함을 확인합니다. LV = 좌심실. 스케일 바 = 200 μm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66386/66386fig08large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 9" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66386/66386fig09.jpg"> 그림 9: 시리우스 레드 염색 결과. 흉터 형성 정도를 측정하기 위해 교합 후 4주 후에 Sirius Red 염색을 수행했습니다. 데이터 포인트는 표준 IRI(n = 5) 및 원격 IRI(n = 5) 그룹의 SEM을 사용하여 평균으로 표시됩니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66386/66386fig09large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 10" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66386/66386fig10.jpg"> 그림 10: 폐색 후 24시간에 얻은 마우스 혈청 내 심장 트로포닌 I 농도의 정량화. cTnI의 데이터 포인트는 표준 IRI(n = 8) 및 원격 IRI(n = 8) 그룹의 SEM을 갖는 수단으로 표시됩니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66386/66386fig10large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 11" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66386/66386fig11.jpg"> 그림 11: 제안된 원격 교합 도구를 동시 MRI 획득과 함께 사용하여 얻은 예비 결과가 나와 있습니다. 한 동물의 단축 방향에서 교합 전, 교합 시점 및 직후에 동일한 심실 중간 절편이 제시됩니다. 왼쪽의 대표적인 이미지 슬라이스는 실험 시작 시(IRI를 트리거하기 전) 심근 테두리를 보여줍니다. 중간에는 원격 유도 허혈이 30분 후에 동일한 단축 슬라이스가 표시됩니다. 염화망간(MnCl)을 경색 영역(노란색으로 표시)을 강조하기 위한 조영제로 사용되었습니다. 밝기는 수동으로 조정되고 포화되어 다양한 조직 영역을 강조했습니다. 중격과 측면 자유 벽(노란색으로 표시) 사이의 밝기 차이에 유의하십시오. 오른쪽에는 이전과 동일한 밝기 설정을 사용하여 폐색 후 20분(재관류 단계)에 동일한 단축 슬라이스가 표시됩니다. 화살표는 교합 시간에 비해 밝기가 증가한 영역을 나타내며, 재관류 단계에서 조영제의 흡수와 교합 시간에 묘사된 초기 저농도 영역의 수축을 규정합니다. LV = 좌심실. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66386/66386fig11large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 12" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66386/66386fig12.jpg"> 그림 12: 허혈 발병을 확인하기 위해 MRI 모니터링 시스템을 사용하여 캡처한 ECG 추적. (A) 원격 교합 전에 캡처된 정상 ECG 추적. (B) 같은 동물에서 풍선 팽창 직후에 포착된 ECG 추적. 화살표는 일반적으로 성공적인 허혈 발병의 마커로 간주되는 ST 세그먼트의 고도를 가리킵니다. 신호 진폭의 감소 외에도 심장 및 호흡수의 증가도 관찰됩니다. 동물은 교합 및 재관류 단계에서 MR 스캐너의 중앙에 위치합니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66386/66386fig12large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
보충 그림 1: 분동 구성. Balloon 원격 시스템(파란색)을 사용한 동력계 변위 함수의 모든 가중치 플롯 vs. 원래 풀리 시스템(주황색). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66386/Supplementary%20Figure%201.zip" target="_blank">이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.</a>
보충 그림 2: 원격 IRI 도구 설계. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66386/Supplementary%20Figure%202.zip" target="_blank">이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.</a>
보충 파일 1: IRI 도구의 속성과 이미지 획득 및 분석 기술에 대한 세부 정보. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66386/Supplementary%20File%201.zip" target="_blank">이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.</a>

자발적으로 호흡하는 마우스에서 풍선 카테터를 사용하여 원격으로 트리거된 LAD 폐색

Acute myocardial infarction (AMI) is a prevalent and high-mortality cardiovascular condition. Despite advancements in revascularization strategies for ...

remotely-triggered-lad-occlusion-using-balloon-catheter-spontaneously

Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

이 동영상은 심근 국소 빈혈의 pathobiological 및 pathophysiological 프로세스를 연구하기위한 빠르고 안정적​​인 모델을 사용하는 방법을 보여줍니다.

내사 - 결합 : 심근 경색의 Murine 모델

쥐 호흡 생리학과기도 염증 세포의 샘플링의 반복 측정이 바람직하지만, 일반적으로 가능하지 않습니다. 여기 구두기도 염증 세포의기도 기능 항 진성과 샘플링의 반복 측정을 허용 쥐를 intubating에 대한 반복 방법을 설명합니다.

에어웨이 저항 측정 및 마우스에 Bronchoalveolar 세척 유체 샘플링에 대한 가역, 비침습 방법

심근 국소 빈혈 및 허혈성 preconditioning에 대한 murine 모델은 중요한 도구 연구 cardioprotective...

마우스의 관상 동맥 폐색에 대한 한깅 무게 시스템의 사용

증거가 축적되고, 그 허혈 (PC) - 뇌에 대한 비 손상 허혈성 도전 - 후속 손상 허혈성 모욕을 과도 전압 보호 기능을 부여. 우리는 C57BL6 / J 생쥐의 일시적인 국소 대뇌 허혈 (중간 대뇌 동맥 폐색, MCAO에 의한)에 초기 허혈 내성 (IT) 유도 컨디셔닝 자극으로 양측 경동맥 폐색 (BCCAO)를 설립했다.

초점 대뇌 국소 빈혈에 조기 허혈성 공차를 유도하기 위해 적절한 전처리 자극으로 양측 경동맥 동맥 폐색

이 비디오는 자연 뇌사를 모방하여 풍선 카테터를 통해 제어된 두개내압을 증가시켜 마우스 모델에서 뇌사를 유도하는 절차를 보여줍니다.

풍선 카테터를 사용한 마우스 모델에서 뇌사 유도

우리는 2.0 mm 검경과 이경을 사용하여 직접 후두경을 통해 마우스에서 기관 내 삽관을위한 간단하고 신뢰할 수있는, 그리고 상대적으로 저렴한 방법을 개발했습니다. 이 기술은 atraumatic이고 만성 실험에서 반복 측정에 사용될 수있다. 우리는 우수한 기관 절개 또는 이전에 비수술 적 방법을보고 찾을 수 있습니다.

마우스의 기관 내 삽관<em&gt;를 통해</em이경 사용&gt; 직접 후두경

우리는 마우스 모델에서 좌측 전방 하행 동맥(LAD) 결찰에 대한 신뢰할 수 있는 방법을 제공합니다. 이 방법은 기관 내 삽관, 좌측 개흉술 접근법 및 흉강천자를 포함하는 다른 방법보다 상대적으로 덜 침습적입니다. 이 방법은 급성 및 만성 심근 경색(MI)에 대한 모델로 사용할 수 있습니다.

쥐 왼쪽 앞쪽에 내림차순 (LAD) 관상 동맥 결찰 : 심근 경색에 대한 개선 및 단순화 된 모델

여기, 선물이 측면 thoracotomy 통해 가로 대동맥 수축 (TAC)의 프로토콜. 이 기술은 압력 과부하 및 마우스 활용 표준 전술 실험실 설정에서에서 심장 마비를 시뮬레이션을 최소 침 습, 닫힌 가슴 수술입니다.

마우스에 가로 대동맥 수축 유도를 폐쇄 가슴 모델

쥐에서 실험제의 INTracheal (IT) 투여는 종종 말단 폐에 비대칭 전달을 초래한다.  이 보고에서는, 우리는 살아있는 마우스에 있는 각 폐를 비 작동가능하게 캐뉼기 위하여 직접적인 기관내 (IB) 접근을 기술합니다.  이러한 접근법은 하나의 폐에 제제를 선택적으로 투여하기 위해 사용될 수 있거나 또는 두 폐에 대한 대칭에이전트 전달을 개선하기 위해 적응될 수 있다.

마우스 폐 내 선택적 에이전트 침착을 개선하기 위한 직접 기관내 투여

이 프로토콜은 최적화된 마취 요법과 미세하게 조정된 내시경 조작 기술을 사용하여 호흡 및 삼키는 동안 후두의 클로즈업, 방해받지 않는 비디오 이미징을 허용하는 마우스와 쥐를 위한 연속 경구강 후두경 접근 방식을 설명합니다.

최소 침습적 쥐 후두경(Minimally Invasive Murine Laryngoscopy)은 호흡과 삼킴 중 후두 움직임을 클로즈업하여 촬영합니다.

배우세요 마우스 심근 허혈-재관류 손상 연구를 위한 폐쇄형 흉부 기법으로, 자발 호흡을 유지하며 실시간 영상으로 허혈 역학을 관찰합니다. 이 방법은 수술 외상을 줄이고 실험 재현성을 향상시킵니다.

자발적으로 호흡하는 마우스에서 풍선 카테터를 사용하여 원격으로 트리거된 LAD 폐색

더 많은 동영상 탐색