Name: 부작용 위험이 낮은 쥐에 대한 카메라내 주사 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-05-31T14:10:00.000+00:00
Duration: 6 min 19 s
Description: 배우세요 쥐의 카메라내 주사 기법으로 전방방에 약물을 정확하게 전달하는 방법을. 중심각막 절개를 통해 조직 손상을 최소화하고 실험 안과학 연구의 재현성을 높입니다.

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프로토콜의 실험은 동물 과학에 대한 국가 허가 위원회(National Permit Committee)의 승인을 받았으며 안과 및 시력 연구에서 동물 사용에 대한 ARVO 성명을 준수합니다. 8-10 주 된 암컷 Sprague-Dawley 쥐는 본 연구에 사용되었으며 12/12 h 밝음-어두운주기에 노출되었습니다. 동물은 상업적 출처에서 얻었다( 재료 표 참조).
1. 동물 준비
<ol><li>케타민(0.8mL에 체중 80mg/kg)과 자일라진(0.2mL에 체중 4mg/kg)의 마취 혼합물을 준비하고 1회 주사로 복강내로 주입하여 쥐를 마취합니다.</li>
	<li>진통제인 부프레노르핀(0.03mg/kg)을 1회 주사로 복강내에 주입합니다.</li>
	<li>국소 안과 마취제 0.4% 옥시부프로카인을 양쪽 눈에 바릅니다.</li>
</ol>2. 자가 밀봉 각막 터널 만들기
<ol><li>외과용 안과 겸자로 각막 공막 접합부 옆의 수직 정중선에서 우수한 공막을 잡고 눈을 안정시킵니다.</li>
	<li>수술용 현미경으로 멸균된 0.8mm, 31G 스틸레토 블레이드를 수직 정중선(동공 중앙 위)의 중심 각막 영역에 수평에 가능한 한 가까운 각도로 평평한 위치에 놓습니다(그림 2).</li>
	<li>이 위치에서 각막을 뚫어 절개하고 전방의 중앙 영역으로 침투할 때까지 긴 터널(2-3mm)을 만듭니다. 렌즈를 만지지 마십시오(그림 2). 알림: 성공적인 터널은 수액의 누출과 전방의 얕음을 유발하지 않습니다.</li>
	<li>주사한 눈에 국소 0.3% 오플록사신과 0.1% 덱사메타손을 바릅니다.</li>
	<li>다음과 같이 슬릿 현미경으로 검사하십시오.<ol><li>주입된 눈의 전방 깊이를 주입되지 않은 눈과 비교하여 관찰합니다. 참고: 깊이는 비슷해야 합니다.</li>
		<li>주입된 눈의 수정체와 주입되지 않은 눈의 수정체를 비교하여 관찰합니다. 알림: 렌즈는 깨끗해야 합니다. 혼탁도는 수술 중 렌즈 손상을 반영할 수 있습니다.</li>
	</ol></li>
</ol><img alt="각막 절개를 보여주는 눈 수술 다이어그램; 라벨이 붙은 렌즈, 전방, 의료용 블레이드." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66662/66662fig02.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 2"> 그림 2: 칼날과 절개 각도 및 위치의 개략도. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66662/66662fig02large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
3. 옵션 1: 전방으로의 성공적인 주입을 평가하기 위한 trypan blue의 차내 주입
<ol><li>34G의 뭉툭한 바늘이 있는 멸균 10μL 유리 Hamilton 주사기에 트리판 블루 5μL를 넣습니다. 참고: trypan blue 주입은 모델 보정 또는 설정 단계에서 주입의 성공을 평가하는 수단으로 설명됩니다. 실험 설정에서 주사기에는 선택한 화합물의 용액이 로드될 수 있습니다.</li>
	<li>장전된 주사기 바늘을 섹션 2에서 만든 터널을 통해 전방으로 삽입합니다.</li>
	<li>주입 후 모든 액체가 맑아질 때까지 2-3초 동안 바늘을 주입하고 제자리에 유지합니다.</li>
	<li>각막 터널에서 누출을 방지하기 위해 바늘을 부드럽고 천천히 당겨 제거합니다.</li>
	<li>슬릿 현미경으로 검사하십시오. 전방의 깊이를 평가하여 얕은 곳을 배제하고 전방에 트리판 블루가 있는지 확인합니다.</li>
	<li>24시간, 48시간, 72시간 후에 슬릿 검사를 반복합니다.</li>
</ol>4. 옵션 2: 내피 세포층에 주입된 물질의 생체이용률을 평가하기 위한 Hoechst의 카메라내 주입
<ol><li>34G의 뭉툭한 바늘이 있는 멸균 10μL 유리 Hamilton 주사기에 5μL의 Hoechst를 로드합니다. 참고: Hoechst 주입은 내피 세포층으로의 흡수를 통해 주입된 물질의 생체이용률을 평가하는 수단으로 설명되며 모델 보정 또는 설정 단계에서 유용합니다. 실험 설정에서 주사기에는 선택한 화합물의 용액이 로드될 수 있습니다.</li>
	<li>장전된 주사기 바늘을 섹션 2에서 만든 터널을 통해 전방으로 삽입합니다.</li>
	<li>주입 후 모든 액체가 맑아질 때까지 2-3초 동안 바늘을 주입하고 제자리에 유지합니다.</li>
	<li>각막관 절개부에서 누출을 방지하기 위해 바늘을 부드럽고 천천히 당겨 제거합니다.</li>
	<li>주사 후 약 15-20분 후에 500mg/kg 나트륨 펜토바르비톤의 복강 내 주사로 쥐를 안락사시킵니다.</li>
	<li>양쪽 눈을 절삭하고 각막을 분리합니다. 주사되지 않은 각막을 대조군으로 채취합니다.</li>
	<li>내피 세포를 식별하기 위해 제조업체 지침에 따라 0.5% Alizarin Red S로 양쪽 각막을 염색합니다.</li>
	<li>광학 현미경으로 검사하여 내피 세포의 alizarin-red 염색을 이미지화하고 형광 현미경으로 Hoechst 염색을 관찰하기 위해 대조군으로 주입되지 않은 각막과 비교합니다.</li>
</ol>

<meta charset="utf8"></head><body>조직 손상 감소를 위해 최적화된 Rat Intracameral 주입 기술

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</ol>

국소 투여를 통해 눈 표면으로 전달되는 화합물의 생체이용률은 일반적으로 &lt;5%로 매우 제한적입니다1. 점안액에 의해 투여되는 화합물은 주로 배액, 유도 눈물 흘림, 눈물액 회전 및 결막 흡수에 의해 제거됩니다. 또한, 안구 표면을 통한 화합물의 투과는 각막-결막 장벽 1,2,3에 의해 크게 제한됩니다. 각막은 세 개의 주요 층으로 구성되어 있습니다: 가장 바깥쪽 상피, 중간 기질, 가장 안쪽 내피. 표재성 각막 상피는 강하고 단단한 접합부로 상호 연결되어 있으며 물질 투과성에 대한 주요 장벽인 높은 세포주위 저항을 생성합니다. 다중 상피층은 각막 상피의 세포 간 공간을 통한 친수성 및 대형 분자의 투과를 더욱 제한합니다. 상피를 계승하는 기질은 콜라겐 섬유로 구성되어 있으며 수성 기공을 포함하고 있습니다. 각막 상피와 대조적으로, 기질은 친수성 약물의 이동을 허용합니다. 그러나 친유성 화합물 1,2,3에는 크게 불침투성입니다. 각막 상피와 기질층은 함께 약물 흡수를 제한하는 주요 조직 장벽을 존재합니다. 각막 내피는 약물 수송을 제한하는 것으로 간주되지 않습니다.
각막 전달 경로의 대안은 결막 경로입니다. 결막은 눈꺼풀의 안쪽과 공막의 앞쪽을 덮고 있는 다상피층입니다. 결막은 각막 상피보다 단단한 연접이 적어 친수성 약물의 투과성이 우수하다는 특징이 있습니다. 그러나, 결막의 혈관화는 투여된 분자의 많은 부분이 전신적으로 흡수되는 결과를 초래하며, 다시 전방(anterior chamber)1,2으로 전달된 화합물의 생체이용률을 크게 제한한다. 외부 안구 투과성 장벽을 우회하는 효율적인 방법은 약물을 관심 영역으로 직접 전달하는 것입니다. 예를 들어, 유리체강내 주입은 유리체액으로의 전달을 위해 일반적이다4. 마찬가지로, 전방(anterior chamber)5으로의 전달을 위해 카메라내 주사가 이용된다. 전방에서 효율적인 농도를 확립하는 것은 항생제의 안내 주입에 의한 감염 치료 및 백내장 수술에서 수술 후 항염증 치료와 같은 다양한 임상 상황에서 매우 중요합니다. 카메라내 주사에 의해 부여되는 향상된 물질 생체이용률의 이점에도 불구하고, 고려해야 할 주요 안전성 문제가 있습니다. 예를 들어, 카메라내 약물 주입은 안압 상승, 독성 전안부 증후군 및 독성 내피 세포 파괴 증후군을 유발할 수 있다 5,6. 따라서 전임상 연구에서 혈관 내 주사로 전달되는 약물의 효능과 안전성을 신중하게 평가하여 치료 효율성을 극대화하고 환자에 대한 잠재적 부작용을 최소화하는 것이 중요합니다.
실험 동물 모델은 새로운 치료법을 연구하기 위한 전임상 연구에서 필수적입니다. 생쥐 및 쥐와 같은 작은 설치류는 이러한 목적으로 가장 일반적으로 사용되는 실험실 동물입니다. 이 동물들은 인간의 해부학 및 생리학과 많은 유사점을 보여 귀중한 통찰력을 제공합니다. 더욱이, 그들의 사용은 작은 크기, 유지 관리의 용이성, 빠른 임신 및 많은 수의 자손을 생산할 수 있는 능력으로 인해 경제적으로 유리하다7.
안과 질환 모델에서 작은 설치류가 널리 사용됨에도 불구하고, 그들의 독특한 눈 치수와 해부학적 구조는 실험적 조작 중에 상당한 문제를 제기합니다. 예를 들어, 인간에게는 비교적 간단하지만 생쥐와 쥐에서는 기술적으로 까다로워지는 카메라 내 주사와 같은 시술이 가능합니다. 이러한 문제는 수액의 작은 부피, 상대적으로 크고 유연하지 않은 수정체, 설치류의 눈 안에서 수정체의 폐쇄적인 위치 및 곡률과 같은 요인에서 비롯됩니다(그림 1)8. 이러한 문제는 설치류에서 카메라내 주사 중 손상 위험을 증가시켜 잠재적인 부작용을 초래하고 연구 결론의 타당성에 영향을 줄 수 있는 실험적 변동성을 유발합니다. 우리의 연구에서, 우리는 쥐에 있는 안전한 intracameral 주입을 위한 절차를 성공적으로 개발했습니다. 이 기술은 각막에 전방으로 들어가는 길고 평평한 자체 밀봉 터널을 만드는 것을 포함합니다. 이 방법은 정밀도를 보장할 뿐만 아니라 실험 재현성을 향상시켜 작은 설치류의 주입 기술과 관련된 문제를 해결합니다.
<img alt="쥐 대 인간의 눈 해부학도; 홍채, 동공, 수정체, 각막, 전방 비교." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66662/66662fig01.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 1"> 그림 1: 쥐와 사람 눈의 해부학적 전방 분절 특징의 개략도. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66662/66662fig01large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

<table><tbody><tr><td>알리자린 레드&nbsp;</td><td>알파 에자르</td><td>042040.5</td><td></td></tr><tr><td>부프레노르핀&nbsp;</td><td>리히터 제약</td><td>102047</td><td></td></tr><tr><td>덱사메타손 0.1%&nbsp;</td><td>Fisher Pharmaceutical</td><td>393102-0413</td><td></td></tr><tr><td>Hamilton 유리 주사기 10 &mu; 엘&nbsp;</td><td>해밀턴 (주)</td><td></td><td></td>721711</tr><tr><td>Hoeschst</td><td>Merck</td><td>B2261</td><td></td></tr><tr><td>케타민</td><td>Bremer 제약 GMBH (medimarket)</td><td>17889</td><td></td></tr><tr><td>Ofloxacin 0.3% 안약</td><td>Allergan</td><td>E92170</td><td></td></tr><tr><td>Oxybuprocaine Hydrochloride 0.4%&nbsp;</td><td>Fisher Pharmaceutical</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>펜토바르비탈 나트륨 200 mg/mL</td><td>CTS</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>슬릿 현미경&nbsp;</td><td>Haag-streit 베른</td><td>b-90019115</td><td></td></tr><tr><td>Sprague-Dawley Rats</td><td>Envigo</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>스틸레토 블레이드 31 G 0.8 mm&nbsp;</td><td>Tecfen medical (skymed)</td><td>QKN2808</td><td></td></tr><tr><td>수술용 현미경</td><td>Zeiss</td><td>OPMI-6 CFC</td><td></td></tr><tr><td>Trypan Blue</td><td>Sartorius</td><td>03-102-1B</td><td></td></tr><tr><td>Xylazine</td><td>Eurovet Animal Health&nbsp;</td><td></td><td></td>615648</tr></tbody></table>

부작용 위험이 낮은 쥐에 대한 카메라내 주사

Intracameral Injection in Rats with Low Risk of Adverse Effects

Sprague Dawley 랫트는 위에서 설명한 프로토콜에 따라 5μL의 트리판 블루를 카메론내 주입했습니다. 주입 직후 세극등 검사에서 챔버가 트리판 블루로 염색된 것으로 나타났으며, 이는 주입된 물질이 전방 챔버에 도달했음을 나타냅니다(그림 3). 또한, 전방 깊이는 온전했는데, 이는 주사가 수액의 누출을 일으키지 않고 챔버의 얕음을 유발하지 않았음을 시사합니다.
<img alt="안과 연구를 위한 쥐 눈의 현미경 이미지, 각막 구조 분석을 강조합니다." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66662/66662fig03.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 3"> 그림 3: 카메라내 주입 후 온전한 전방. 트리판 블루(Trypan blue)를 쥐의 전방(anterior chamber)에 주입하였다. 슬릿 현미경 검사는 전방의 누출이나 얕은 틈 없이 트리판 블루의 존재를 보여줍니다. 눈금 막대 = 1mm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66662/66662fig03large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
다음으로, DNA와 결합하고 세포핵을 염색하는 세포 투과성 형광 염료인 Hoechst를 주입하여 설명된 카메라내 주입 경로로 전달되는 약물의 생체이용률을 평가했습니다. 내피 세포에 의한 Hoechst의 흡수는 각막을 분리하고 형광 현미경으로 관찰하여 주입 후 15분 후에 평가되었습니다. 내피 세포를 식별하기 위해 각막은 내피 세포층의 세포 간 경계를 염색하는 Alizarin Red S로 염색되었습니다.  대조군으로서, 우리는 같은 쥐의 주입되지 않은 눈을 검사했다. 우리의 결과는 주입 후 내피 세포층이 손상되지 않았다는 것을 보여주며, 설명된 절차가 내피에 손상을 일으키지 않는다는 것을 뒷받침합니다. 또한, 내피 세포는 Hoechst 핵 염색에 대해 양성이었으며, 이는 안내 주입 후 주입된 Hoechst의 흡수를 보여주었습니다(그림 4).
<img alt="염색 세포 현미경: Alizarin Red, Hoechst, 병합; 이미징 과정; 현미경 결과." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66662/66662fig04.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 4"> 그림 4: 내피 세포층에 주입된 물질의 생체이용률. Hoechst를 쥐의 전방에 주입했습니다. 주사 후 15분 후에 각막을 분리하고, 내피 세포를 관찰하기 위해 Alizarin Red S로 염색하고, Hoechst 염색을 관찰하기 위해 형광 현미경으로 이미징했습니다. 오버레이 이미지는 각막 내피 세포의 핵 Hoechst 염색을 보여줍니다. 스케일 바 = 50 μM. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66662/66662fig04large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

Intracameral injection is a standard administration routine in ophthalmology. The application of intracameral injection in rodents for research is ...

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

Intravitreous 주사는 안구 질환 또는 현지 치료의 직접적인 응용 프로그램으로 시각 과학 연구에 널리 사용되는 기법입니다. 이 동영상은 유리 피펫과 1ml 주사기를 사용하여 intravitreous 사출을위한 프로토콜을 보여주었다. 과다 출혈 및 렌즈 손상을 피하에 대한 유용한 팁은 주어집니다.

안구 질환 모델 구축을위한 Intravitreous 사출

연구 설치류와 함께 안전하고 편안하게 일하는 것은 처리 및 규제 방법의 핵심 역량이 필요합니다. 이 문서는 안전하게 처리하고 효과적으로 마우스 및 쥐에 화합물을 관리하는 데 필요한 기본 원칙을 제시합니다.

수동 규제와 마우스 및 쥐 일반적인 합성 관리 경로

망막하 주사는 단백질 및 바이러스 벡터와 같은 큰 치료제를 광수용체와 망막 색소 상피에 전달하는 가장 일반적인 기술입니다. 최소한의 부수적 손상과 빠른 회복 시간으로 망막하 공간을 성공적으로 표적으로 삼는 마우스의 대체 방법이 여기에 설명되어 있습니다.

망막 하 공간에 액세스하기위한 대안의 검증 사출 방법<i&gt;를 통해</i&gt;를 Transcleral 후방 접근

이 프로토콜은 신생아 기간 동안 쥐와 생쥐에서 사용할 수 있는 재현 가능한 정맥 투여 경로를 입증하는 것을 목표로 합니다. 이 절차는 주로 정맥 투여를 사용하는 신생아 치료실에서 약물 투여를 미러링하고자 하는 전임상 설치류 연구에 중요합니다.

후안와 정맥 주입의 신생아 설치류 모델

어린 쥐의 요추 수조에 주사를 놓는 수술 절차가 설명되어 있습니다. 이 접근법은 유전자 치료 벡터의 척수강내 전달에 사용되어 왔지만, 이 접근법은 세포 및 약물을 포함한 다양한 치료제에 사용될 수 있을 것으로 예상됩니다.

Intrathecal vector delivery in juvenile rats via lumbar cistern injection(요추 수조 주입을 통한 어린 쥐의 척수강내 벡터 전달)

이 논문은 쥐의 망막하 주사 방법을 설명하며, 주사 부위와 망막 박리 부위를 모두 제어하기 위해 수술 중 시각화를 활용합니다.

쥐의 망막하 주사 및 망막 박리에 대한 수술 중 시각화

이 프로토콜은 주사를 위해 쥐의 시신경에 접근하기 위해 경결막 접근법을 사용하는 독특한 기술을 설명합니다.

쥐의 시신경에 주입하기 위한 경결막 접근법

이 연구는 성체 쥐의 망막과 시신경에 치료제를 전달하는 방법론을 제시합니다. 또한, 성체 쥐의 시신경과 망막을 하향식으로 일괄적으로 수집하기 위해 독특한 조직 회수 방법이 도입되었습니다.

성체 쥐의 안구 치료 전달 및 고급 조직 회수(Ocular Therapeutic Delivery and Advanced Tissue Retrieval in adult rats)

이 비디오에서는 실험자가 면역 질환 encephalomyelitis와 쥐의 중추 신경계에서 mononuclear 세포를 분리하는 방법을 보여줍니다.

EAE와 쥐의 중추 신경계에서 Mononuclear 세포의 분리

여기 우리는 성인 zebrafish에서 역전사 궤도 주사를하는 방법을 보여줍니다.

성인 Zebrafish에서 레트로 - 궤도 분사

배우세요 쥐의 카메라내 주사 기법으로 전방방에 약물을 정확하게 전달하는 방법을. 중심각막 절개를 통해 조직 손상을 최소화하고 실험 안과학 연구의 재현성을 높입니다.

부작용 위험이 낮은 쥐에 대한 카메라내 주사

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