Name: A visual approach for inducing dolichoectasia in mice to model large vessel-mediated cerebrovascular dysfunction(대혈관 매개 뇌혈관 기능 장애를 모델링하기 위해 마우스에서 백우절충증을 유도하기 위한 시각적 접근법) (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-05-17T14:50:00.000+00:00
Duration: 4 min 29 s
Description: 배우세요 마우스에서 백우절충증을 유도하여 대혈관 확장을 지속시키는 방법을. 엘라스타제를 소뇌수막강에 주입하면 혈관 확장이 3개월간 유지되며, 이는 알츠하이머병과 혈관성 치매 연구에 활용됩니다.

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이 연구는 수술을 지원한 Stephanie Tam의 귀중한 기여 덕분에 가능했습니다. 우리는 그녀의 도움에 진심으로 감사를 표합니다. 이 연구를 지원한 미국 국립보건원(National Institutes of Health, AG066162).

이 연구에는 인간 아밀로이드 플라크를 생리학적 수준에서 발현하는 앱NL-F마우스(3개월령)가 사용되었지만, 이 시스템은 모든 설치류 모델과 함께 사용할 수 있습니다. 모든 동물 시술은 CAMH의 동물 보호 위원회(프로토콜 #843)의 승인을 받았으며 캐나다 동물 보호 위원회의 윤리 기준에 따라 진행되었습니다. 생쥐는 사내에서 사육되었으며 차우와 물에 대한 임시 접근 과 함께 12 시간의 밝음-어두운 주기로 유지되었습니다.
1. Cisterna magna (CM) 주입 절차
<ol><li>수술<ol><li>마우스(APPNL-F, 남녀 모두, 3개월)를 마취 유도실에 1분 동안 놓습니다. 알림: 5% 산소와 1% 산소가 혼합된 1% 이소플루란으로 챔버를 최소 1분 동안 세척합니다.</li>
		<li>마우스를 마취한 후 챔버에서 동물을 제거하고 새 수술용 드레이프에 놓고 코에 비강 원뿔을 배치하여 마취(이소플루란, 2.5%-3%)를 유지합니다. 알림: 반사 신경이 없는지 확인하기 위해 발가락을 꼬집어 마취 깊이를 확인하십시오.</li>
		<li>건조를 방지하기 위해 안과 연고를 바르십시오. 그런 다음 절개 부위에 bupivacaine 0.1mL(국소 마취제, 1-2mg/kg 0.125%, 희석 비율 1:2)와 Metacam(진통제, 5mg/kg, 희석 비율 1:10)을 피하 주사합니다. 수술 중 발생할 수 있는 출혈을 보상하기 위해 시술을 하기 전에 0.5mL의 식염수를 피하로 주입하여 동물에 수분을 공급하십시오.</li>
		<li>명확한 절개 부위를 위해 후두골 기저부의 목을 면도하고 멸균 PBS로 표면을 닦은 다음 피사체를 엎드린 자세의 입체 프레임으로 옮깁니다. 알림: 입체 노즈 콘을 통해 마취가 유지되는지 확인하십시오.</li>
		<li>입체 프레임의 코 막대를 마우스 위에 놓아 안정성을 제공하고 윗니가 고정되었는지 확인합니다.</li>
		<li>동물의 머리를 몸에서 120° 각도로 배치하여 목덜미를 들어 올리고 펴서 수술 관심 부위를 노출시킵니다.</li>
		<li>베타딘 스크럽 3회, 70% 에탄올 3회, 베타딘 용액 1회를 멸균 2인치 x 2인치 거즈로 수술 부위를 청소합니다.</li>
		<li>핀셋을 사용하여 피부를 부드럽게 접고 수술 용 가위를 사용하여 작은 절개 (1cm)를합니다. 알림: 이렇게 하면 목덜미의 정중선이 드러나야 합니다.</li>
		<li>근육을 자르기 위해 정중선을 따라 메스를 조심스럽게 실행합니다. 그런 다음 핀셋을 사용하여 근육을 좌우로 당겨 부드럽게 분리합니다. 참고: 이렇게 하면 두개골 기저부 아래에 위치한 Cisterna magna(역삼각형)가 드러납니다(그림 1).</li>
	</ol></li>
	<li>엘라스타제의 제조 참고: 주문한 엘라스타제(분말 형태) 패키지에는 250개(U)가 포함되어 있습니다. 각 동물에 주입되는 엘라스타제의 양은 2.5μL입니다. 2.5μL에 있어야 하는 엘라스타제의 양은 15milliUnits mU여야 합니다.<ol><li>먼저 주입할 용액의 농도를 계산합니다. 농도 = 질량 / 부피 = 15mU/2.5μL = 6mU/μL 따라서 필요한 농도는 6mU/μL입니다.</li>
		<li>엘라스타제의 양은 250U이고 연구는 milliUnits로 작동하므로 단위를 milliUnits로 변환하면 250000mU가 됩니다.</li>
		<li>250000mU의 질량과 6mU/uL의 농도를 얻은 후 엘라스타제를 희석하고 6mU/uL의 농도를 유지해야 하는 부피(PBS)를 파악합니다.</li>
		<li>위와 동일한 공식을 사용하여 볼륨을 해결하도록 재정렬합니다. 부피 = 질량/Conc. = 250000 mU/ 6 mU/μL = 41666.67 마이크로리터</li>
		<li>41666.67 μL를 피펫팅하는 것은 어렵기 때문에 1000으로 나누어 밀리리터로 변환하면 41.66667 mL가 얻어져 1x 용액을 얻을 수 있습니다.<ol><li>용액을 더 농축하려면 10배 또는 100배로 늘리십시오.</li>
			<li>작업하기가 더 간단하므로 10x 솔루션을 만드십시오(아래 참조). 용액 10x ---------- 4.166667mL(계속)</li>
		</ol></li>
		<li>250U를 5mL 분취액 튜브에 넣고 4.167mL의 멸균 PBS를 분취액 튜브에 넣어 10x 원액액을 만듭니다.</li>
		<li>10 μL의 원액을 피펫팅하고 1000 μL의 4.167 mL 원액을 제공하는 분취액 튜브에 넣습니다. 튜브를 -20 °C에서 보관하십시오.</li>
		<li>나머지 원액은 튜브당 100μL의 부분 표본 튜브에 보관하고 -20°C의 냉동고에 보관합니다. 참고: 용액은 -20°C에서 최대 6개월 동안 안정하며 심각한 활성 손실 없이 유지됩니다. 또한 엘라스타제의 과도한 동결 및 해동은 안정성을 감소시킬 수 있다는 점에 유의하는 것이 중요합니다. 따라서 이러한 일이 발생하지 않도록 하기 위해 동결 전에 원액을 분할하여 주입을 위해 한 번에 하나의 샘플만 해동하면 되도록 할 수 있습니다.</li>
		<li>10x 용액 10μL가 포함된 부분 표본 튜브 중 하나를 해동한 후 90μL의 멸균 PBS를 추가하여 100μL 1x 용액을 얻습니다.</li>
		<li>100μL의 10x 용액이 포함된 부분 표본 튜브를 대신 해동한 경우 900μL의 PBS를 추가하기만 하면 1x 용액인 1000μL가 됩니다. 두 용액 중 하나를 4°C에서 1주일 동안 보관합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>Cisterna magna에 주입 알림: 엘라스타제를 적재하기 전에 증류수 5배, 에탄올 5배, 마지막으로 증류수 5배를 장전하고 흡입하여 Hamilton 주사기를 청소합니다.<ol><li>Hamilton 주사기에 2.5μL의 엘라스타제(농도 15mU)를 주입하고 기포가 없는지 확인합니다.</li>
		<li>베벨이 위쪽을 향하도록 주사기를 Cisterna magna의 중앙에 천천히 삽입합니다. 알림: Cisterna magna를 가로지르는 혈관에 구멍을 뚫지 마십시오.</li>
		<li>펑크 후 베벨을 제거하십시오. 이것은 소량의 뇌척수액(CSF)의 방출을 촉진합니다. 멸균 면봉을 사용하여 과도한 CSF를 흡수하십시오.</li>
		<li>베벨을 천자 부위에 다시 삽입하고 엘라스타제 또는 차량을 Cisterna magna에 1분 이상 천천히 주입하고 엘라스타아제의 누출을 방지하기 위해 바늘을 1분 동안 제자리에 두십시오.</li>
		<li>베벨을 제거한 후 비흡수성 수술용 봉합사(3/8" 바늘이 있는 #4-0)로 절개 부위를 봉합하고 마취제를 끕니다.</li>
		<li>입체적 틀에서 동물을 제거하고 피험자가 회복될 때까지 37°C로 설정된 따뜻한 열 패드에 놓습니다. 참고: 수술 후 회복 중 통증을 완화하기 위해 수술 후 Metacam을 한 번 더 복용하는 것이 좋습니다.</li>
	</ol></li>
</ol>2. 실리콘고무 화합물 주입 및 조직 수확
<ol><li>아베르틴(1mL, 125-250mg/kg)을 과다 투여하여 동물을 마취시킵니다. 알림: 반사가 멈추도록 발가락을 꼬집습니다.</li>
	<li>동물을 기저귀에 앉히고 흉강이 위를 향하도록 수술용 테이프로 모든 팔다리를 고정합니다.</li>
	<li>핀셋과 가위를 사용하여 흉강을 열어 심장을 노출시킵니다.</li>
	<li>23G의 뭉툭한 바늘을 심장의 좌심실에 삽입하고 헤파린(100U/mL)이 주입된 PBS를 4분 동안 관류하여 미세 관류 펌프를 사용하여 혈관을 청소합니다.</li>
	<li>버퍼 병을 4% 파라포름알데히드(PFA)(PBS로 구성)가 포함된 병으로 교체하고 4분 더 관류합니다.</li>
	<li>50mL 튜브에 5mL의 화합물과 5mL의 희석제를 결합하여 실리콘 고무 화합물(노란색) 용액을 준비합니다. 사용하기 전에 철저히 섞으십시오.</li>
	<li>10mL 주사기에 10mL의 실리콘 고무 압축기를 채웁니다. 23G의 뭉툭한 바늘에 연결된 호스에 주사기를 부착하고 용액을 심장에 수동으로 조심스럽게 주입합니다. 알림: 실리콘 고무 화합물의 점도가 높기 때문에 더 큰 배럴 주사기를 사용하는 것이 중요하며 그렇지 않으면 압력이 너무 커서 플런저를 밀 수 없습니다.</li>
	<li>주입 후 마우스의 머리를 제거하고 실리콘 고무 화합물이 용기에서 경화될 수 있도록 4°C에서 밤새 보관합니다.</li>
	<li>다음 날, 쥐의 두개골을 부드럽게 제거하고(가급적 미세한 핀셋 사용) 뇌를 추출한 다음 실온(RT)에서 밤새 4% PFA로 배양합니다.</li>
	<li>PFA에서 24시간 배양한 후 PBS 3x에서 뇌를 세척하고 30% 자당을 넣고 4°C에서 보관합니다.</li>
</ol>3. 정량 분석
<ol><li>뇌 전체에서 Circle of Willis의 고품질 이미지를 캡처하려면(그림 3):<ol><li>자당 용액에서 뇌를 제거합니다. 표면 수분을 흡수하기 위해 종이 타월을 사용하여 뇌를 완전히 말리십시오.</li>
		<li>뇌 슬라이서에 뇌를 배치합니다. 카메라가 장착된 광학 현미경 아래에 뇌 슬라이서를 놓습니다.</li>
		<li>Circle of Willis의 선명한 고해상도 해상도로 현미경의 초점을 맞춥니다.</li>
	</ol></li>
	<li>10cm 눈금자 참조와 함께 이미지 분석 소프트웨어를 사용하여 약 1cm를 측정하고 픽셀 수를 확인합니다. 이 측정을 기반으로 1cm 눈금을 설정한 다음 기저동맥의 두께를 수평으로 측정하여 직경을 찾습니다.</li>
	<li>표준 픽셀 밀도 측정 소프트웨어를 사용하여 이미지를 분석합니다. 이미지 분석 소프트웨어를 사용하여 기저 동맥의 5개 개별 판독값을 측정(센티미터 단위)하고 평균을 계산하여 기저 동맥 직경을 정확하게 표현합니다.</li>
	<li>2-way 분산 분석(ANOVA)을 사용하여 엘라스타제와 대조군 간의 평균 직경 변화를 비교합니다.<ol><li>아래 21 공식을 사용하여 직경의 백분율 변화를 계산하십시오. <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/66792/66792eq01.jpg" style="margin: auto;"> C = 상대적 변화 X1 = 초기값(차량) X2 = 최종 값(엘라스타제) 통계적으로 유의한 0.05 미만의 P 값을 고려합니다. 통계 분석 소프트웨어를 사용하여 모든 통계 분석을 수행합니다.</li>
	</ol></li>
</ol>4. 알코올 탈수를 이용한 실리콘 고무 화합물 제거
참고: 혈관에서 과도한 실리콘 고무 화합물을 제거하는 데 도움이 되도록 뇌를 탈수하는 것이 중요하며, 이는 잠재적으로 면역염색의 품질을 향상시킬 수 있습니다.
<ol><li>PBS로 뇌를 3번 씻어 자당을 제거합니다.</li>
	<li>뇌를 25%, 50%, 75%, 95% 및 절대 에탄올에 각 농도에서 24시간 동안 총 5일 동안 배치합니다.</li>
	<li>조직을 탈수한 후 조직을 메틸 살리실레이트(conc. ≤100%)에 12-24시간 동안 넣습니다. 에탄올과 메틸 살리실레이트는 조직에서 과도한 실리콘을 제거할 수 있습니다.</li>
	<li>PBS 3x로 뇌를 씻어 잔류 화학 물질을 제거하고 신선한 PBS에서 4 ° C의 로커에서 밤새 그대로 두십시오.</li>
	<li>뇌를 자당에 넣고 절편 및 면역염색 전에 4°C에서 보관합니다.</li>
</ol>5. 면역조직화학적 염색
<ol><li>뇌의 절편<ol><li>면역 절편술을 하기 전에, 뇌가 자당으로 채워진 튜브의 바닥에 가라앉도록 합니다.</li>
		<li>드라이아이스로 둘러싸인 최적 절단 온도(OCT) 화합물을 사용하여 마이크로톰 플랫폼에서 뇌를 동결합니다. 마이크로톰 블레이드를 사용하여 뇌를 40μm 섹션으로 자릅니다.</li>
		<li>끝이 가는 붓을 사용하여 동결을 방지하기 위해 동결 보호제가 들어 있는 96웰 플레이트에 각 섹션을 옮깁니다.</li>
		<li>96웰 플레이트를 플라스틱 랩으로 단단히 밀봉합니다. 밀봉된 플레이트를 -20 °C 냉동고에 보관하십시오.</li>
	</ol></li>
	<li>면역형광 염색(NeuN을 예로 사용)<ol><li>섹션을 24웰 플레이트에 놓습니다. 동결 보호제를 제거하기 위해 PBS로 세 번 세척하십시오.</li>
		<li>비특이적 결합을 방지하기 위해 2% 염소 혈청, 0.1% Triton-X 100 및 1% BSA를 함유한 차단 용액을 사용하여 RT에서 1시간 동안 배양합니다.</li>
		<li>PBS에서 모든 구성 요소를 준비합니다. 참고: 사용된 주요 항체에는 1:500 희석된 단클론 마우스 anti-NeuN이 포함되었습니다. 사용된 2차 항체에는 1:200 희석된 다클론 염소 항-마우스 568이 포함되었습니다.</li>
		<li>위에서 언급한 차단 용액에 단클론 마우스 anti-NeuN을 희석합니다.</li>
		<li>희석된 항체를 각 웰에 추가합니다. 4 °C에서 호일로 빛으로부터 차폐된 상태에서 밤새 배양합니다.</li>
		<li>1차 배양 후 PBS로 절편을 3번 세척합니다. polyclonal goat anti-mouse 568을 동일한 차단 용액에 희석합니다.</li>
		<li>희석된 항체를 각 웰에 추가합니다. 호일로 빛으로부터 차폐된 실온에서 2시간 동안 배양합니다.</li>
		<li>2차 배양 후 PBS로 절편을 3회 세척합니다.</li>
		<li>가는 붓을 사용하여 섹션을 슬라이드로 천천히 옮겨 장착을 준비합니다. 모든 섹션이 건조되도록 합니다.</li>
		<li>섹션이 건조되면 125-150 μL의 페이드 방지 장착 매체를 적용합니다. 커버슬립을 부드럽게 놓습니다.</li>
		<li>슬라이드를 어두운 곳에서 RT에서 24시간 동안 건조시키고 매니큐어로 가장자리를 밀봉합니다. 이미징 소프트웨어를 사용하여 형광 이미지를 캡처합니다.</li>
	</ol></li>
</ol>

Dolichoectasia: 혈관성 치매 및 알츠하이머

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</ol>

이해 상충이 없습니다.

이 논문은 뇌혈관 확장을 위한 개선된 프로토콜을 보여주며, 생쥐의 Cisterna magna에 엘라스타제 주입을 위한 정확하고 간단한 접근 방식을 제공합니다. 이 해부학적 지점은 뇌척수액으로 가는 직접적인 관문 역할을 하여 다양한 신경 질환을 조사할 수 있는 귀중한 길을 제공합니다. 이 수정된 기술의 주요 장점 중 하나는 생쥐의 Cisterna 마그나에 엘라스타제의 단일 용량을 주입하면 반복 가능한 주사나 캐뉼라를 이식할 필요 없이 적어도 3개월 동안 큰 혈관의 확장을 일으키고 유지할 수 있었다는 것입니다. AD 마우스 모델에 엘라스타제를 투여하는 접근 방식은 특히 뇌의 아밀로이드 플라크 침착을 가속화하는 또 다른 주목할만한 이점입니다. 일반적으로 AppNL-F 마우스(이 연구에서 사용됨)와 같은 AD 모델은28세 6개월에 플라크 형성을 보였습니다. 이 모델은 이 마우스가 정상적인 노화 조건에서 자연적으로 인간과 같은 아밀로이드 침착을 나타내기 때문에 선택되었습니다. 생후 3개월에 Cisterna magna에 엘라스타제를 주입하면 대뇌 혈류가 감소하고16 혈액뇌장벽 파괴가 증가하여 알츠하이머병 병리학이 악화될 수 있다12,13.
Cisterna magna에 물질을 주입하는 것은 CSF 압력에 의해 방해받을 수 있다는 점에 유의하는 것이 중요합니다. 우리는 뇌로의 엘라스타제 전달에 대한 뇌척수액(CSF)의 잠재적인 간섭을 제거할 수 없다는 것을 인식하고 그 영향을 최소화하는 것을 목표로 하는 방법을 개발하여 이러한 한계를 해결했습니다. 엘라스틴을 소화하는 엘라스타제의 능력은 동맥 경직을 감소시켜 동맥을 약화시키고 혈관을 연장하고 구불구불하게 만듭니다29,30, 백운석증을 유발하는 데 적합한 중재입니다.
일반적으로 마우스 당 Cisterna magna에 외과적 주입을 완료하는 데 약 20분이 걸립니다. 이 과정에서 마우스는 전신 마취로 사용되는 1.5%-2% 이소플루란으로 마취됩니다. 섬세하고 중요한 단계인 작업 중 마우스 헤드의 안정성과 견고성을 보장하기 위해 치아 막대와 이어 막대가 있는 입체 프레임을 사용하는 것이 좋습니다. 입체 프레임에 잘못된 위치를 지정하면 머리가 기울어지고 부정확한 전달이 발생할 수 있을 뿐만 아니라 혈관에 부딪힐 가능성이 있습니다. 지저분할 수 있는 메스로 피부를 자르는 대신 가는 핀셋으로 피부를 끼고 수술용 가위로 깔끔하게 잘라 목덜미의 정중선이 드러나도록 합니다. 그런 다음 메스를 정중선을 따라 깔끔하게 자르고 가는 핀셋을 사용하여 근육을 분리했습니다. 전반적으로 이것은 출혈을 최소화하여 마우스가 훨씬 더 빨리 회복하는 데 도움이 됩니다.
우리는 15mU와25mU 투여량 사이에 차이가 없음을 입증한 이전 연구 20의 결과를 기반으로 15mU 용량의 엘라스타아제를 선택했습니다. 더욱이, 그들은 농도가 높을수록 사망률이 증가한다는 점에 주목했다. 15mU 투여 시 28%의 사망률이 보고되었지만,20 이 연구에서 사용된 방법으로는 코호트에서 사망률이 발생하지 않았다. 모든 마우스의 전체 수술 과정에서 사망률이 0이었고 수술 후 3개월까지 5-10%의 사망률을 보였습니다. 그러나 이 연구의 주요 초점은 큰 혈관의 확장인 백운절충증을 이해하는 데 있습니다. 이러한 강조로 인해 우리는 기저동맥(basilar artery)을 확장을 측정하기 위한 주요 기준으로 집중하게 되었습니다. 또한 생쥐의 Cisterna magna에 엘라스타제를 주입하면 큰 혈관과 작은 혈관을 모두 확장시키는 광범위한 효과를 유도합니다.
모든 동물의 수조 마그나에 주입할 때 바늘로 뇌가 손상되지 않도록 뇌 조직과 수조 마그나 공간 사이의 거리를 고려하는 것이 중요합니다. 마우스의 거리가 상대적으로 짧기 때문에 주사기의 경사면만 Cisterna magna에 삽입합니다. 감염 위험을 최소화하려면 쥐를 마취한 상태에서 멸균 수술 장비를 사용하여 시술을 수행해야 합니다. 시술 전에 부피바카인과 메타캠을 투여하면 수술 후 불편함을 줄이고 동물의 빠른 회복을 촉진하는 데 도움이 될 수 있습니다. 두개골 기저부에 위치한 Cisterna magna는 멸균 면봉으로 수술 부위를 철저히 건조시켜 볼 수 있습니다. 현재 연구에서 수술 부위는 약 1cm 크기이며, 이는 Cisterna magna를 명확하게 볼 수 있는 최대 영역입니다. 또한 절개 부위가 작기 때문에 동물이 더 빨리 치유할 수 있습니다.
Cisterna magna 공간 내에서 약물 머무름을 극대화하는 것이 중요합니다. 선행연구에서는 엘라스타제 투여 후 주사 부위에 면봉을 배치하여 약물 누출을 방지하려고 시도하였다21. 그러나 이 방법의 효능에 대해 우려하고 있는데, 이는 사출 부위에서 면의 흡수성 특성으로 인해 사출 후 재흡수하여 엘라스타제의 효과를 잠재적으로 손상시킬 수 있기 때문입니다. 마찬가지로, 또 다른 연구20에서는 엘라스타제를 Cisterna magna에 주입한 후 바늘을 빠르게 제거했으며, 이는 최적의 약물이 Cisterna magna 공간으로 들어가도록 하는 데 또 다른 잠재적인 문제를 제기하여 잠재적으로 뇌척수액으로 엘라스타제 누출로 이어질 수 있습니다. 따라서 여기에서 제안하는 방법은 Cisterna magna에 구멍을 뚫어 뇌척수액(CSF)을 방출한 다음 천자 부위에 멸균 면봉을 놓아 과도한 뇌척수액을 흡수하고 공간 내 압력을 완화하는 것으로 시작합니다. 그 후, 면봉을 제거하고 바늘을 같은 부위에 다시 삽입하여 면봉을 다시 바르지 않고 수조 공간에 엘라스타제를 주입합니다. 또한, 우리는 주사 후 1-2분 동안 바늘을 제자리에 유지하여 엘라스타제가 Cisterna 마그나 전체에 적절하게 확산되도록 한 후 부드럽게 빼내기로 결정했습니다. 그러나 이 기술은 Cisterna magna에 구멍을 뚫고 엘라스타제를 천천히 주입하면서 주입하지 않은 손과 바늘의 안정적인 고정을 수행해야 한다는 점에 유의해야 합니다. 또한 주사 시 수조 마그나를 가로지르는 큰 혈관을 손상시키지 않는 것이 중요한데, 이는 수술 후 빙빙 도는 등의 합병증을 유발할 수 있으며, 이는 종점이며 안락사가 필요합니다. 전반적으로, 이 방법은 Cisterna magna로의 단일 엘라스타제 주입으로부터 최대 3개월 동안 지속되는 팽창을 보여주며, 이는 이전 방법에서 관찰된 2주 팽창을 능가합니다20,21. 결론적으로, 이 접근법은 확장 기간을 연장할 뿐만 아니라 엘라스타제와 같은 물질을 뇌에 직접 지속적으로 전달합니다. 이 방법은 혈액-뇌 장벽을 통해 물질을 운반하는 최소 침습적 접근 방식으로 인해 선호되며, 중추 신경계로의 약물 전달을 위해 더욱 확장할 수 있으므로 추가적인 이점을 제공합니다.

대뇌 모세혈관을 둘러싸고 있는 미세혈관 내피 세포는 혈액뇌장벽(BBB)1을 형성하는 주요 구성 요소로, 뇌 순환을 통해 말초부로 들어오고 나가는 것을 조절하는 데 중요한 역할을 합니다. 신경 조직에 필요한 필수 영양소는 BBB로 들어갈 수 있으며, 글루타메이트와 같은 일부 필수 아미노산은 뇌에서 배출되는데, 이는 고농도가 뇌 조직에 영구적인 신경 흥분성 손상을 일으킬 수 있기 때문입니다2. 정상적인 생리적 조건에서 BBB는 알부민 3,4 및 프로트롬빈과 같은 혈장 단백질이 뇌로 들어가는 것을 제한하는데, 이는 해로운 영향을 미칠 수 있기 때문입니다 5,6,7. 마지막으로, BBB는 음식이나 환경의 생체 이물(xenobiotics)과 같이 주변부에서 순환하는 신경독으로부터 뇌를 보호한다1. 전반적으로, 뇌 조직의 손상은 돌이킬 수 없으며, 낮은 수준의 신경 발생과 상관관계가 있는 노화는 신경 퇴행성 과정을 가속화하는 모든 요인을 보호하고 예방하는 데 있어 BBB의중요성을 강조한다.
백운확장증(dolichoectasia, 또는 대혈관 확장)에서는 혈관 탄력성의 감소가 관찰되며, 이로 인해 혈관의 형태학적 변화가 일어나 혈관이 기능 장애를 일으키고9 뇌의 혈류를 감소시킨다. 이러한 혈류의 감소는 산소와 포도당 공급을 감소시키고, 궁극적으로 반응성 성상세포(reactive astrocyte)의 활성화를 통해 BBB에 손상을 유발한다10. 혈관의 내부 엘라스틴층이 백구확장증에 의해 손상된 경우혈관신생을 위해 혈관내피성장인자(VEGF)의 반복적인 자극이 필요하다. 이는 누출 혈관의 형성으로 이어질 수 있으며 궁극적으로 결함이 있는 혈관의 발달을 특징으로 하는 병리학적 혈관 신생을 초래할 수 있다12. 병리학적 혈관신생 중에 혈관에 결함이 생기면 보상 메커니즘이 단단한 접합 단백질을 상향 조절하여 혈관 무결성을 복원하는 것으로 보입니다. 그러나 이 과정은 혈관의 구조적 무결성이 손실될 때 의도치 않게 BBB를 방해할 수 있다13. 이는 BBB를 더욱 파괴하고 아밀로이드 플라크(amyloid plaque)의 생성을 촉진함으로써 발생할 수있다 14. 또한, 말초로부터의 누출은 신경 염증을 유발할 수 있으며,15 이는 신경 세포 퇴화와 그에 따른 기억 상실을 초래합니다.
구조적으로 BBB가 제공하는 보호는 혈액 이종이뇌로 유입되는 생체 이물질을 막는 단단한 접합부를 통해 이루어집니다. 특정 물질이 뇌에 들어갈 수 있도록 할 때, BBB는 주로 두 가지 주요 과정, 즉 수동 확산 또는 특정 채널(예: 이온 채널 및 수송체)을 통해 이를 수행합니다1. 알츠하이머병의 경우, 연구에 따르면 혈관 시스템의 기능 장애가 질환의 진행에 중요한 역할을 한다는 것이 밝혀졌습니다12,13. 아밀로이드-베타(Aβ) 플라크의 형성과 신경 퇴행은 BBB12,13의 파괴와 대뇌 혈류의 장애로 인해 발생할 수 있다16. 뇌혈류의 감소는 혈관성 치매와 AD17,18 진단을 받은 노인에서 볼 수 있습니다. 대뇌 혈류(CBF)의 기능 장애와 함께 혈액-뇌 장벽(BBB)의 손상은 말초 순환계로부터의 이물질의 침투를 동반하여 뇌에서 Aβ 농도의 증가에 기여할 수 있다19.
알츠하이머병 및 혈관성 치매(VaD)와 같은 신경 질환의 발병 기전을 조사하기 위해 질병을 복제하는 모델을 개발합니다. In vitro 모델은 광범위하게 사용되지만 혼합 세포 집단과 같은 광범위한 질병 모델링을 위한 생물학적 환경이 부족하여 in vivo 모델의 중요성이 필요합니다. 마우스는 질병에서 인간과 유사한 특성(예: 병리학)을 생성하는 데 있어 유전자 조작이 용이하기 때문에 일반적으로 사용됩니다. 지금까지의 진전으로 인해 대혈관 확장과 같은 질병 표현형과 알츠하이머병에서의 역할을 모방하기 위한 개선된 모델에 대한 지속적인 필요성이 있습니다. 이를 위해 우리는 기회를 보고 생쥐20,21의 Cisterna magna에 엘라스타제를 주입하는 기술을 수정했습니다. 엘라스타제(Elastase)는 결합 조직(22)과 주변의 단단한 연접(23)에서 엘라스틴을 분해하는 것으로 나타난 효소이다. Cisterna magna는 뇌에서 가장 큰 혈관인 Willis의 원 바로 위에 위치하기 때문에 주사 지점으로 선택되었습니다. Cisterna magna에 엘라스타제를 주입함으로써 단단한 접합부를 파괴하고 혈관의 확장을 유도하여 BBB와 혈관을 손상시킬 수 있습니다(Willis의 원)24,25. 알츠하이머병의 혈관 구성 요소에 대한 발병 기전에 대한 이해를 높이기 위해 이 기술을 AD 마우스 병리학 모델과 결합하면 이 두 가지 별개의 병리학 간의 복잡한 상호 작용과 영향에 대한 귀중한 통찰력을 제공할 수 있습니다.
이전 연구에서는 환자가 알츠하이머병과 내수능의 병리학적 특징을 모두 보이는 사례를 보여주었는데, 이는 일반적으로 혼합성 치매라고 불리는 상태이다26,27. 따라서 두 질환 사이의 상호 연결된 메커니즘을 이해하면 이러한 신경퇴행성 질환의 진행과 발현에 대한 보다 포괄적인 관점을 제공할 수 있으며, 기본 메커니즘과 잠재적인 치료 전략에 대한 이해를 높일 수 있습니다. 이를 위해 AD 병리학 마우스 모델(AppNL-F)에서 엘라스타제를 적용하여 혈관 변화를 식별하는 방법을 시연합니다.

<table><tbody><tr><td>23 G 카테터</td><td>University Medstore</td><td>2546-CABD305145</td><td>관류에 필요&nbsp; (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)</td></tr><tr><td>절대 에탄올</td><td>대학 Medstore</td><td>https://www.uoftmedstore.com/index.sz</td><td>microfil</td></tr><tr><td>베타 딘 스크럽</td> 제거<td>를 위해#</td><td>https://www.pittsborofeed.com/products/betadine-surgical-scrub</td><td>살균</td></tr><tr><td>베타 딘 솔루션</td><td>아마존</td><td>https://www.amazon.ca/Povidone-Iodine-10-Topical-Solution-100ml/dp/B09DTKJGHW</td><td>살균</td></tr><tr><td>부피 바카인</td><td>동물 시설 제공</td> N<td>/A</td><td>진통제</td></tr><tr><td>클리퍼</td><td>BrainTree Scientific Inc</td><td>CLP-41590</td><td>면도 모피</td></tr><tr><td>면 Q-tip</td><td>University Medstore</td><td>1962</td><td>수술용 (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)</td></tr><tr><td>Elastase</td><td>Sigma-aldrich</td><td>&nbsp; E7885</td><td>혈관 확장에 사용</td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>University Medstore</td><td>39752-P016-EAAN</td><td>살균 (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)</td></tr> <tr><td>염소 안티 마우스 568</td><td>Invitrogen</td><td>A11004</td><td>성숙한 뉴런 염색 Graphpad</td></tr><tr><td>프리즘 10 Graphpad 프리즘</td><td>10</td><td>https://www.graphpad.com/</td> <td>통계 분석 소프트웨어</td></tr><tr><td>Hamilton 주사기</td><td>Sigma-aldrich</td><td>28614-U</td><td>주입 엘라스타제</td></tr><tr><td>열 패드</td><td>Amazon</td><td>https://www.amazon.ca/iPower-Temperature-Controller-Terrarium-Amphibians/dp/B08L4DBFFZ</td><td>체온 유지</td></tr><tr><td>ImageJ 소프트웨어</td><td>피지 Imagej 소프트웨어</td><td>imagej.net (미국)</td><td>이미지 분석 소프트웨어</td></tr><tr><td>유도 챔버</td><td>동물 시설 제공</td><td>N/A</td><td>마취 </td></tr><tr><td>동물 시설</td><td>N/A</td><td>진통</td><td></td></tr><tr><td>메틸 살리실레이트</td><td>Sigma-aldrich</td><td>M6752</td><td>마이크로필 제거용</td></tr><tr><td>Metacam Microfil</td><td>Flow Tech, Carver, Massachusetts</td><td>https://www.flowtech-inc.com/order/</td><td>&nbsp; 염료 (노란색)</td></tr><tr><td>마우스 단클론 항 NeuN</td><td>Millipore Sigma</td><td>MAB377</td><td>성숙한 뉴런 염색용</td></tr><tr><td>Olympus VS200 슬라이드 스캐너 및 VSI 소프트웨어.</td><td>Olympus 생명 과학</td><td>https://www.olympus-lifescience.com/en/downloads/detail-iframe/?0[다운로드][id]=847254104</td><td>이미징 소프트웨어</td></tr><tr><td>파라포름알데히드</td><td>대학 Medstore</td><td>PAR070.1</td><td>단백질 고정용&nbsp; (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)</td></tr><tr><td>관류 펌프</td><td>VWR International</td><td>https://pr.vwr.com/store/product/4787969/vwr-variable-speed-peristaltic-pumps</td><td>관류에 필요</td></tr><tr><td>Scalpel</td><td>University Medstore</td><td>2580-M90-10</td><td>수술 (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)</td></tr> <tr><td>입체 택시</td><td>동물 시설</td><td>제공 N / A</td><td>수술을 위해 동물을 확보</td></tr>하십시오 <tr><td>외과 가위</td><td>University Medstore</td><td>22751-A9-240</td><td>수술 (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)</td></tr><tr><td>수술 테이프</td><td>University Medstore</td><td>https://www.amazon.ca/3M-Micropore-Tape-1530-2-Rolls/dp/B0082A9GS2</td><td>기저귀에 동물을 고정</td></tr>하십시오 <tr><td>봉합사</td><td>University Medstore</td><td>2297-VS881</td><td>수술 (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)</td></tr> <tr><td>X2 핀셋</td><td>University Medstore</td><td>7731-A10-612</td><td>수술용 (https://www.uoftmedstore.com/index.sz)</td></tr></tbody></table>

a visual approach for inducing dolichoectasia in mice to model large vessel-mediated cerebrovascular dysfunction(대혈관 매개 뇌혈관 기능 장애를 모델링하기 위해 마우스에서 백우절충증을 유도하기 위한 시각적 접근법)

A Visual Approach for Inducing Dolichoectasia in Mice to Model Large Vessel-Mediated Cerebrovascular Dysfunction

혈액-뇌(BBB)는 말초와 함께 선택적 뇌 순환을 조절하는 중요한 시스템으로, 필요한 영양소가 뇌로 들어가 과도한 아미노산이나 독소를 배출할 수 있도록 합니다. 혈관성 치매(VaD) 또는 알츠하이머병(AD)과 같은 질병에서 BBB가 어떻게 손상될 수 있는지 모델링하기 위해 연구원들은 혈관 확장을 모델링하는 새로운 방법을 개발했습니다. 이러한 질병 상태에서 손상된 BBB는 해로울 수 있으며 BBB의 조절 장애를 초래하여 뇌 기능에 영향을 미치는 바람직하지 않고 병리적인 결과를 초래할 수 있습니다. 우리는 Cisterna magna(CM)에 직접 주입하여 엘라스타아제를 사용하여 혈관 확장을 유도하고 BBB의 단단한 접합부(TJ)를 파괴할 수 있는 기존 기술을 수정할 수 있었습니다. 이 방법을 통해 일관된 혈관 확장, 사망률 감소 또는 회복 개선, 실리콘 고무 화합물인 충전제/불투명제, 확장 분석을 위한 혈관 라벨링을 위한 전달 개선 등 이전 기술에 비해 다양한 성공 지표를 확인할 수 있었습니다. 이 수정된 최소 침습 방법은 주입 후 2주에서 3개월까지 마우스의 대형 혈관의 지속적인 확장이 19%-32% 증가하여 유망한 결과를 얻었습니다. 이러한 개선은 이전 연구에서 2주째에만 확장이 증가한 것으로 나타났던 것과 대조를 이룹니다. 추가 데이터에 따르면 9.5개월 후에도 지속적인 확장을 시사합니다. 이러한 증가는 엘라스타제(elastase)와 차량 주입 그룹의 혈관 직경을 비교함으로써 확인되었다. 전반적으로 이 기술은 동물 모델을 사용하여 중추신경계(CNS)에 영향을 미치는 병리학적 장애를 연구하는 데 유용합니다.

우리는 쥐를 입체 프레임에 조심스럽게 배치하고 근육을 해부한 후 두개골의 후두부 아래에 있는 Cisterna magna를 찾는 데 성공했습니다. 역삼각형을 닮고 노란색으로 강조된 이 해부학적 구조는 두개골 기저 아래에 있습니다(그림 1). 정밀도를 보장하고 뇌 조직의 손상을 방지하기 위해 Hamilton 주사기 베벨 1-2mm를 Cisterna magna에 부드럽게 삽입했습니다.
엘라스타제 주입 후, 동물은 2주, 1개월, 3개월의 세 가지 뚜렷한 시간 간격으로 PBS와 4% PFA를 관류했습니다. 그 후, 그림 2와 같이 혈관의 시각화를 개선하기 위해 실리콘 고무 화합물로 혈관을 고정했습니다. 질적으로, 엘라스타제에 의한 확장은 차량 주사를 받은 대조군에 비해 윌리스 서클(Circle of Willis) 주변의 작은 혈관과 커지고 구불구불한 기저 동맥의 가시성이 증가했음을 보여줍니다(그림 3).
정량 분석 결과, 엘라스타제 투여군과 대조군 간에 유의미한 차이가 나타났으며, 엘라스타제 투여군의 혈관 확장은 주사 후 2주(32% 증가; p-값= 0.019), 1개월(19% 증가; p-값= 0.020), 3개월(20% 증가; p-값= 0.020)에 나타났다(그림 4). 에탄올 농도의 점진적인 증가를 통한 뇌의 후속 탈수와 메틸 살리실레이트에 담그면 과도한 실리콘 고무 화합물의 제거가 촉진되고 조직학적 염색의 품질이 향상되었습니다(그림 5).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66792/66792fig01.jpg"> 그림 1 : Cisterna magna의 위치. 향상된 시각화는 인접한 목 근육에서 분리된 Cisterna magna를 드러내어 뇌 및 두개골 구조, 특히 후두골과 관련된 위치를 보여줍니다. 노란색 삼각형으로 강조된 Cisterna magna는 역삼각형과 유사하여 해부학적 묘사에 명확성을 제공합니다. 눈금 막대: 5mm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66792/66792fig01large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66792/66792fig02.jpg"> 그림 2: 노란색 염료 주입. 조직학적 염색을 위해 조직을 준비하기 위해 심경 관류를 이용하였다. (A) 생쥐에 대한 관류 설정에는 혈액을 제거하기 위해 4분 동안 PBS를 체내로 펌핑한 다음 단백질 고정을 위해 4분 동안 PFA를 펌핑하는 것이 포함되었습니다. (B) 관류 후 쥐의 좌심실에 염료를 주입하면 뇌 혈관의 가시성이 향상되어 육안으로 쉽게 관찰할 수 있습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66792/66792fig02large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66792/66792fig03.jpg"> 그림 3: 엘라스타제와 PBS를 주입한 뇌의 상형도. 시각화는 대조군(PBS)과 비교하여 엘라스타제 주입 후 BA의 확대와 CW 주변의 비틀림 증가를 보여줍니다. CW, 윌리스의 서클; BA, 기저 동맥. 눈금 막대: 3mm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66792/66792fig03large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66792/66792fig04.jpg"> 그림 4: 엘라스타아제에 의해 유도되고 3개월 동안 지속된 혈관 확장. PBS로 치료한 대조군과 비교했을 때, 3개월 된 쥐의 Cisterna magna에 엘라스타제를 한 번 주사한 후 3개월 동안 지속된 상당한 혈관 확장을 관찰했습니다. 기저동맥은 엘라스타제 주입 후 2주, 1개월, 3개월에 측정하였다. 데이터는 평균± SD입니다. 2-way Anova, Sidak (사후 테스트); *P &lt; 0.019 (2 주), *P &lt; 0.020 (1 개월), *P &lt; 0.020 (3 개월). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66792/66792fig04large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66792/66792fig05.jpg"> 그림 5: 과도한 노란색 염료 제거 후 탈수된 뇌의 NeuN 염색. 뇌를 에탄올과 메틸 살리실레이트의 농도를 각각 24시간 동안 증가시킨 후, 마이크로톰을 사용하여 뇌를 절편하고 신경 마커 NeuN을 염색했습니다. 다이어그램에서 흰색 화살표로 표시된 것처럼 (A) 탈수되지 않은 뇌는 (B) 탈수된 뇌에 비해 더 눈에 띄는 혈관을 나타내는 것이 분명합니다. 이렇게 하면 혈관과 관련된 배경 간섭을 줄여 이러한 섹션을 보다 정확하게 분석할 수 있습니다. 스케일 바: 3 μm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66792/66792fig05large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

뇌혈관 기능 장애를 조사하기 위한 모델로 생쥐의 대혈관 확장을 화학적으로 유도하는 것을 시연하고 있으며, 이는 혈관성 치매 및 알츠하이머병 모델링에 사용할 수 있습니다. 또한 실리콘 고무 화합물을 주입하여 혈관 구조를 시각화하고 혈관 크기의 변화를 측정하기 위한 명확한 시각적 지침을 제공하는 방법을 보여줍니다.

A visual approach for inducing dolichoectasia in mice to model large vessel-mediated cerebrovascular dysfunction(대혈관 매개 뇌혈관 기능 장애를 모델링하기 위해 마우스에서 백우절충증을 유도하기 위한 시각적 접근법)

The blood-brain (BBB) is a crucial system that regulates selective brain circulation with the periphery, as an example, allowing necessary nutrients to ...

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Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

이 문서에서는, 우리는 수행하기 쉽고 이미지가 성인 마우스 뇌의 혈관 트리를 활용할 수 뇌혈관 캐스팅에 대한 간단한 실용적인 기술을 제시한다.

3D 이미징 및 형태학의 분석을위한 성인 마우스 뇌혈관 캐스팅

목을 절개하여 양측 총경동맥을 노출시키고 느슨하게 결찰합니다.

형광 추적자를 사용한 마우스의 허혈 중 대뇌 혈류 시각화

출처: Kim, D., et. al. 대뇌 혈전색증을 직접 시각화하기 위해 근적외선 형광 이미징과 마이크로 컴퓨터 단층 촬영을 결합했습니다. J. Vis. Exp. (2016)이 비디오는 마이크로 컴퓨터 단층 촬영(micro-CT) 이미징을 사용하여 마우스의 뇌 혈전을 시각화하는 방법을 보여줍니다. 대뇌 혈전 마우스 모델에는 조영제 역할을 하는 피브린 표적 금 나노 입자가 주입됩니다. 마우스를 마이크로 CT 기계의 침대에 놓고 여러 각도에서 이미지를 획득합니다. 적절한 소프트웨어를 사용하여 이미지를 재구성하고 처리합니다.

Visualization of a Cerebral Thrombus in a Mouse Using Micro-Computed Tomography Imaging(마이크로 컴퓨터 단층 촬영 이미징을 사용한 마우스의 대뇌 혈전 시각화)

여기에서는 신생혈관 연령 관련 황반변성(AMD)의 혈관 특징을 재현하는 실험 모델인 마우스 레이저 유도 맥락막 신생혈관화(CNV) 프로토콜을 제시합니다. 일단 마스터하면 다양한 실험 측정을 테스트하기 위한 모델 시스템으로 CNV를 안정적이고 효과적으로 유도할 수 있습니다.

레이저에 의한 맥락막 신생 혈관에 대한 마우스 모델

이 논문은 in vivo 및 ex vivo 이광자 현미경을 사용하여 뇌의 혈관 구조를 정량화할 수 있는 방법을 설명합니다.

HIV 유도 된 신경 염증의 마우스 모델에서 이광자 현미경을 사용하여 뇌 혈관 구조의 정량

여기서는 Willis의 마우스 서클을 분리하기 위한 재현 가능한 프로토콜을 설명합니다.

윌리스의 마우스 원을 분리하는 프로토콜

말단 중간 대뇌 동맥 분기 (MCAO)의 수술 폐색 실험 뇌졸중 연구에서 자주 사용하는 모델입니다. 이 논문은 마우스에서 생체 내에 길이 현미경을위한 기회를 제공하는 측의 두개 창에 삽입, 결합 영구 MCAO의 기본적인 기술을 설명한다.

측면 만성 두개골 창 준비 활성화 생체 마우스의 말초 중간 대뇌 동맥 폐색에 따라 관측

이 원고는 세로 두 광자 현미경을 사용하여 생체 내에서 아밀로이드 플라크 축적 동안 cerebrovasculature의 리모델링을 추적하는 절차를 설명합니다. 얇아진 두개골 제제는 알츠하이머 질환의 마우스 모델에서 뇌 손상의 진행을 평가하기 위해, 형광 염료의 시각화를 가능하게한다.

종<em&gt; 생체</em&gt;은 Cerebrovasculature의 이미징 : CNS 질환에 관련성

이 문서에서는 전체 마운트 망막 제제및 증식 및 비증식 망막병에서 자주 변경되는 혈관 매개 변수의 정량적 측정에 필요한 프로토콜에 대해 잘 확립되고 재현 가능한 렉틴 얼룩 분석법에 대해 설명합니다.

비증식 및 증식 망막증을 가진 마우스의 전체 산 망막에 있는 혈관 매개변수의 정량화

생쥐의 망막 혈관 구조는 혈관 패턴 형성의 메커니즘을 이해하는 데 특히 흥미롭습니다. 이 프로토콜은 광학 디스크에서 고정된 거리에서 형광 혈관 조영술 안저 영상에서 마우스 망막 혈관의 직경을 자동으로 측정합니다.

Mouse Fluorescent Angiography 이미지에서 망막 혈관 직경 측정

혈관 인지 장애 및 치매에 대한 마우스 모델을 만들기 위해 비대칭 양측 총경동맥 협착증의 바늘 방법이 제안됩니다. 이는 이전에 확립된 모델에 비해 장기적인 결과를 가져오며 실시간 MRI와 호환됩니다. 절차를 보여주는 시각적 표현은 수술을 마스터하기 위한 지침을 제공합니다.

A Mouse Model for Vascular Cognitive Impairment and Dementia Based on Needle-guided Asymmetric Bilateral Common Carotid Artery Stenosis(바늘 유도 비대칭 양측 공통 경동맥 협착증에 기반한 혈관 인지 장애 및 치매에 대한 마우스 모델)

배우세요 마우스에서 백우절충증을 유도하여 대혈관 확장을 지속시키는 방법을. 엘라스타제를 소뇌수막강에 주입하면 혈관 확장이 3개월간 유지되며, 이는 알츠하이머병과 혈관성 치매 연구에 활용됩니다.

A visual approach for inducing dolichoectasia in mice to model large vessel-mediated cerebrovascular dysfunction(대혈관 매개 뇌혈관 기능 장애를 모델링하기 위해 마우스에서 백우절충증을 유도하기 위한 시각적 접근법) (동영상) | JoVE Journal

A visual approach for inducing dolichoectasia in mice to model large vessel-mediated cerebrovascular dysfunction(대혈관 매개 뇌혈관 기능 장애를 모델링하기 위해 마우스에서 백우절충증을 유도하기 위한 시각적 접근법)

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