Name: Ex vivo 폐 관류를 위한 돼지 모델에서의 심박출량 측정 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-06-28T13:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 10 s
Description: 학습하세요 돼지 모델에서 경정맥을 통한 열희석 카테터 삽입법으로 심박출량을 측정하는 방법을. 이 기술은 이식용 폐 보존을 위한 이소성 폐 관류 중 적절한 관류 흐름을 확보하는 데 활용됩니다.

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저자는 동물에 대한 기술 지원과 관련하여 귀중한 기술 지원을 해준 Roberto, Rueda 및 Sergio Martínez에게 감사를 표하고 싶습니다.

프로토콜(B09-17)은 INER(Instituto Nacional de Enfermedades Respiratorias "Ismael Cosio Villegas")의 생명윤리 위원회에서 승인되었습니다. 이 연구에는 체중이 20-25kg 사이인 임상적으로 건강한 재래종 돼지 23마리가 사용되었습니다. 동물은 공식 멕시코 표준17 의 실험동물 관리 및 사용에 대한 기술 사양과 미국18의 실험실 동물 관리 및 사용에 대한 가이드에 따라 처리되었습니다. 모든 동물은 Instituto Nacional de Enfermedades Respiratorias Ismael Cosio Villegas에서 입수했으며 물과 음식이 제공되는 동일한 환경 조건에서 개별 케이지에 수용되었습니다. 모든 동물에서 열희석 카테터를 오른쪽 경정맥에 삽입하고 동맥 카테터를 같은 쪽의 경동맥에 삽입하여 혈액 가스를 수집한 다음 CO를 계산했습니다. 사용된 시약 및 장비에 대한 자세한 내용은 재료 표에 나와 있습니다.
1. 실험적 준비
<ol><li>3개의 250mL 0.9% 염화나트륨 용액(식염수, SS) 각각에 1000IU의 헤파린을 희석합니다.</li>
	<li>생체 신호 모니터에 압력 변환기를 부착합니다. 각 변환기를 사용하여 열희석 카테터의 해당 포트에서 압력을 측정합니다.</li>
	<li>바늘 없는 정맥 주입을 통해 헤파린화된 용액을 변환기에 연결합니다. 그들이 청소되고 카테터에 연결할 준비가 되었는지 확인하십시오.</li>
	<li>포장에서 열희석 카테터를 제거합니다. 말단부를 0.9% NaCl에 담그어 풍선의 무결성을 확인합니다.</li>
	<li>원위 및 근위 카테터 연결부의 개통성을 확인합니다. 사용할 때까지 카테터를 수술 기구 테이블 위에 두십시오.</li>
</ol>2. 동물 준비
<ol><li>동물 준비실에 있는 모든 돼지에게 0.05mg/kg 아트로핀과 4mg/kg 틸레타민-졸라제팜을 근육 주사로 투여합니다(기관에서 승인한 프로토콜에 따름).</li>
	<li>돼지를 방해하지 않고 감시하에 두십시오. 돼지가 누워서 흥분의 징후나 통각 자극에 반응하지 않고 이 자세를 유지할 때까지 관찰하십시오.</li>
	<li>진정제를 투여한 동물을 엎드린 자세로 놓고 왼쪽 귀의 가장자리 정맥에 카테터를 삽입합니다.</li>
	<li>수술을 위해 동물을 수술실로 옮깁니다.</li>
	<li>동물을 등쪽에 놓고 4mg/kg 프로포폴 IV, 300μg/kg 베쿠로늄 브로마이드 및 0.1mg/kg 펜타닐 IV를 투여합니다.</li>
	<li>실험실 직원의 도움을 받아 돼지의 하악골을 내려 입을 벌리고 혀를 내밀 수 있도록 합니다.</li>
	<li>10% 리도카인을 성대에 분사하고, 고리 집게로 고정된 거즈로 축적된 타액을 제거하고, 후두개에서 후두개를 분리합니다.</li>
	<li>후두경과 3번 직선 칼날로 기관 입구를 확인한 다음 풍선으로 7 Fr 기관내관을 삽입합니다.</li>
	<li>풍선을 부풀리고 기도 내 위치를 확인한 후 튜브를 하악골에 고정합니다.</li>
	<li>돼지를 마취기에 연결하여 2.5%-3% 세보플루란으로 마취 상태를 유지합니다(그림 1).</li>
	<li>25회 호흡/분의 빈도, 6-8mL/kg 무게의 일회 호흡량, SaO2 를 90% 이상으로 유지하기 위해 50%-70%의 FiO2%, 2의 트리거, 5cmH2O의 호기말 양압(PEEP), 1:2s의 흡기 비율, 15L/min 및 최대 30L/min의 흡기 흐름으로 동물을 환기시킵니다.</li>
</ol>3. 열희석 카테터 배치 및 심박출량 측정
<ol><li>전신 마취 하에 동물을 등쪽 위치에 유지하고 요오도포비돈으로 자궁 경부 부위의 방부제를 수행합니다(그림 2). 전기소작용 연필을 이용하여 10cm의 정중주위 절개를 하고 피하조직을 절개하여 우측 외경정맥을 둔기로 노출시킵니다.</li>
	<li>두 개의 2-0 실크 봉합사를 배치하는데, 하나는 절개된 혈관의 원위 부분에, 다른 하나는 근위 부분에 배치합니다(그림 3).</li>
	<li>목 부위에서 심장이 위치한 흉부까지 카테터를 체외로 삽입합니다. 폐동맥(PA)에 도달하기 위해 카테터의 표시를 사용하여 삽입 깊이를 측정합니다. 혈관의 원위 부분을 결찰하고 근위 부분에 이중 루프를 배치하여 삽입된 카테터를 고정합니다.</li>
	<li>홍채 가위를 사용하여 혈관의 복부 부분을 2mm 가로 절개합니다. Halsted's mosquito 지혈 겸자로 절개 부위의 가장자리를 열고 5Fr 열희석 카테터를 오른쪽 경정맥에 삽입합니다(그림 4, 그림 5 및 그림 6). 모니터에 표시된 곡선을 따라 카테터를 폐동맥(PA) 쪽으로 향하게 합니다.</li>
</ol>4. 동맥 카테터의 배치
<ol><li>정맥을 절개하고 기준 봉합사를 배치한 후에는 흉쇄근(흉쇄유돌근과 동일)을 측면으로 변위합니다.</li>
	<li>경동맥이 노출될 때까지 기관전(흉골) 근육을 절개합니다.</li>
	<li>경정맥과 유사한 경동맥을 캐뉼레이팅하고 전신 동맥압을 모니터링하기 위해 압력 변환기에 연결합니다.</li>
</ol>5. 평가
<ol><li>열희석 카테터를 우측 경정맥에 삽입하고 동맥 카테터를 같은 쪽의 경동맥에 배치하면 혈액 가스 분석을 위해 샘플을 채취합니다.</li>
	<li>혈액 가스 값을 얻고 열희석 방법, 신체 표면적 및 Fick의 방법을 사용하여 심박출량(CO)을 평가합니다. 참고: 자세한 절차는 이전에 발행된 보고서19-21을 참조하십시오.</li>
</ol>6. 통계 분석
<ol><li>분산 분석(ANOVA)을 사용하여 정규 분포를 보여주는 데이터를 분석하고 Tukey의 사후 검정을 수행합니다. 값을 평균 ± 표준 오차로 표현합니다. p 값 <0.05를 통계적 유의성을 나타내는 것으로 간주합니다.</li>
</ol>7. 열희석 측정
<ol><li>4°C에서 5mL의 Cold SS 볼루스를 4초 이내에 열희석 카테터의 근위 내강에 주입합니다.</li>
	<li>모니터 화면에서 열희석 곡선(온도/시간)을 관찰하십시오. 곡선은 급격한 상승 후 기준선까지 부드럽고 점진적인 하강을 보여야 하며 숫자 값이 소수점 이하 하나 또는 두 자리로 표시되어야 합니다.</li>
	<li>곡선이 유효하고 유사하며 평균값의 10% 이내가 될 때까지 Cold SS의 두 볼루스를 추가로 사용하여 볼루스 주입 과정을 반복합니다.</li>
	<li>곡선의 유효성과 유사성을 확인한 후 세 값의 평균을 계산하고 최종 CO 값(분당 리터)으로 기록합니다. Stewart-Hamilton 방정식21을 기반으로 한 계산을 사용하여 열희석 곡선에서 CO 및 기타 지수를 얻습니다.</li>
</ol>8. 신체 표면적(BSA) 또는 심박출률에 대한 조정된 심박출량 결정
<ol><li>조정된 심박출량(CI)을 결정하려면 DuBois-DuBois 공식19를 사용하여 신체 표면적(BSA)을 계산합니다. BSA = 0.007184 × (높이 (cm) 0.725) × (무게 (kg) 0.425).</li>
	<li>BSA가 얻어지면 공식20을 사용하여 CI를 계산합니다. CI = 일산화탄소/BSA. 알림: CO는 7단계에서 결정됩니다.</li>
</ol>9. Fick's method에 의한 심박출량 추정
<ol><li>Fick의 방법을 사용하여 심박출량(CO)을 계산하려면 산소 소비량(VO2)과 동맥(SaO2) 및 정맥(SvO2) 혈액 가스에서 얻은 산소 수준의 차이를 결정합니다. 공식 2를 사용하여 VO21을 계산합니다. VO2 = CO x (SaO2 - SvO2).</li>
	<li>그런 다음다음 공식을 사용하여 심박출량을 측정합니다. CO = VO2 / ([SaO2 - SvO2] × 10).</li>
</ol>10. 체중당 심박출량 추정
<ol><li>이전 보고서 8,15에 따라 동물의 체중당 심박출량을 결정합니다. 참고: EVLP 프로토콜에서 다양한 그룹에서 돼지의 체중당 추정 심박출량(CO)이 100mL/kg 8,15라고 보고했습니다.</li>
</ol>11. 안락사
<ol><li>모든 측정이 완료되면 경정맥초(기관에서 승인된 프로토콜에 따라)를 통해 펜토바르비탈나트륨(150mg/kg/IV)을 과다 투여한 모든 동물을 안락사시킵니다.</li>
	<li>심전도(ECG) 추적에서 심장 전기 활동이 나타나지 않을 때까지 전신 마취 및 심장 모니터링을 계속합니다17,18.</li>
</ol>

돼지의 경정맥 열희석 카테터 배치를 위한 수술 기법

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<li>Cypel, M., Keshavjee, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ex+vivo+lung+perfusion%5BTitle%5D)+AND+%22Oper+Tech+Thorac+Cardiovasc+Surg%22%5BJournal%5D)">Ex vivo lung perfusion.</a> Oper Tech Thorac Cardiovasc Surg. 19 (4), 433-442 (2014).</li>
<li>Langmuur, S. J. J., Max, S. A., Çelik, M., Mahtab, E. A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ex+vivo+lung+perfusion%3A+A+procedural+guide%5BTitle%5D)+AND+%22Multimed+Man+Cardiothorac+Surg%22%5BJournal%5D)">Ex vivo lung perfusion: A procedural guide.</a> Multimed Man Cardiothorac Surg. 2023, 10.1510/mmcts.2023.011 (2023).</li>
<li>Kesseli, S. J., Davis, R. P., Hartwig, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Commentary%3A+Making+lungs+great+again-introducing+new+modifications+to+the+Toronto+ex+vivo+lung+perfusion+protocol%5BTitle%5D)+AND+%22J+Thorac+Cardiovasc+Surg%22%5BJournal%5D)">Commentary: Making lungs great again-introducing new modifications to the Toronto ex vivo lung perfusion protocol.</a> J Thorac Cardiovasc Surg. 161 (6), 1974-1975 (2021).</li>
<li>Roman, M. A., Nair, S., Tsui, S., Dunning, J., Parmar, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ex+vivo+lung+perfusion%3A+A+comprehensive+review+of+the+development+and+exploration+of+future+trends%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Ex vivo lung perfusion: A comprehensive review of the development and exploration of future trends.</a> Transplantation. 96 (6), 509-518 (2013).</li>
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</ol>

저자들은 상충되는 이해관계가 존재하지 않는다고 선언했다.

돼지의 EVLP는 두 종의 크기, 생리학 및 게놈 서열의 유사성을 감안할 때 인간의 임상 실습에 직접 적용됩니다22. 연구자가 선택한 EVLP 프로토콜에 따르면 CO 측정은 폐를 관류하는 데 필요한 흐름을 결정하는 데 필수적입니다. 또한 사용 가능한 리소스와 지식에 따라 적절한 방법을 선택할 수 있습니다. 그러나 CO를 동시에 평가하는 방법을 참조 방법과 비교한 연구는 없습니다. 따라서 이 연구는 EVLP 동안 폐 흐름을 추정하기 위해 CO를 측정하는 네 가지 기술을 비교하도록 설계되었습니다. 실험적 혈류역학 실험실 연구에서 일반적으로 사용되는 두 가지 기법과 임상 치료에 사용되는 계산된 심혈관 매개변수를 사용하는 두 가지 기법을 포함했습니다. 이 연구는 건강한 돼지에서 네 가지 기술을 직접 비교했을 때 조정된 BSA 방법에 의해 생성된 값이 크게 다르다는 것을 보여주었습니다.
참조 방법인 열희석은 빠르고 쉽고 즉각적인 측정을 제공합니다. 따라서 측정 및 데이터 수집 기기에 액세스할 수 있고 프로토콜의 요구 사항에 따라 열희석 카테터가 이상적입니다. 또한, 이 방법은 간단한 물리적 원리에 기초하고 있으며, 혈류를 간접적으로 정량화하는 지표를 사용하기 때문에 매우 정확하다23. 이 방법은 1970 년에 처음 설명되었습니다. 폐동맥 카테터의 근위부에 미리 결정된 부피의 차가운 식염수를 주입한 후 혈액의 열 변화를 측정합니다. 이 연구에서는 피부를 절개하고 목 근육을 분리할 때 가시성이 용이하기 때문에 경정맥과 경동맥을 캐뉼레이션하는 데 개방혈관 절개를 사용했으며, 이로 인해 우리 실험실에서 이 기술을 일상적으로 사용하게 되었습니다. 이 실험 모델에서 Seldinger 기술을 사용할 수 있다는 점을 언급 할 가치가 있습니다. 그러나 추가 장비가 필요한 것 외에도 우리의 경험에 따르면 충분한 훈련이 부족하면 돼지에서 이 기술을 수행하기 어렵습니다.
열희석 기법의 장점은 Fick의 방법23에 필요한 혈액 샘플을 얻을 필요 없이 연속 측정을 수행할 수 있는 신뢰성과 용이성을 포함합니다. 반면에, 계산된 심혈관 매개변수는 심혈관계 상태를 평가할 때 직접 측정을 보완하는 중요한 임상 도구입니다. CI는 CO와 BSA가 어떻게 상관되어 있는지 보여주는 데 사용됩니다. 이 파생된 심혈관 지수는 중요하고 계산하기 쉽기 때문에 자원이 제한된 환경에서 의사 결정에 사용하기에 매력적입니다20. 그러나 이 연구에서 BSA 방법은 다른 방법보다 훨씬 더 큰 값을 산출했으며, 이는 다른 방법을 사용하여 얻은 흐름과 비교할 때 폐 관류 흐름의 과대 추정을 나타낼 수 있습니다.
Fick의 심박출량 측정은 1870년에 인간의 CO를 측정하는 방법으로 처음 설명되었습니다. Fick은 폐에 의한 산소의 총 흡수 또는 방출은 폐를 통한 혈류와 혈액 산소의 동정맥 차이의 산물이라고 가정했습니다. 이 기술은 매우 정확하고 수학적 모델을 기반으로 수치 추세에 대한 정보를 제공하기 때문에 심장 카테터 삽입 실험실에서 사용됩니다. 그러나 임상 환경에서 사용하거나 CO21,24의 연속 측정에는 실용적이지 않습니다.
가중치 방법으로 얻은 CO와 관련하여 이 값이 다른 방법보다 낮다는 것을 발견했지만 돼지에서 EVLP를 수행하는 사람들에게 유용할 수 있습니다. EVLP를 예측된 CO의 20%의 흐름과 비교한 Beller et al.8의 설명에 따르면, 이 접근법은 이식 후 폐 기능을 개선하고 부종을 줄이며 염증을 약화시키는 것으로 나타났습니다.
마지막으로, 문헌에 따르면 다양한 CO 모니터링 기술에는 고유한 한계가 있으며 어떤 장치도 모든 실습 요구 사항을 충족할 수 없습니다. 그러나 연구자의 필요에 따라 고급 측정 도구에 대한 접근이 제한된 경우 계산에 의한 CO 측정도 신뢰할 수 있고 간단하며 재현 가능하며 침습적 기술 2,20보다 시간이 덜 걸립니다. CO를 추정하는 이러한 방법은 신뢰할 수 있지만 이들 사이에는 상당한 차이점이 있습니다. 따라서 연구자는 어떤 방법이 프로토콜의 요구 사항을 충족하는지 결정하기 위해 각 방법을 평가해야 합니다.
본 연구는 도플러 기술(경흉부, 경식도, 심초음파) 또는 생체 임피던스-흉부 전기 생체 반응과 같이 널리 사용되는 다른 CO 측정 기술과의 비교가 여기에 포함되지 않았기 때문에 한계가 있음을 언급해야 합니다. 이러한 방법을 포함하면 이러한 기술과 돼지의 CO 측정을 위한 폐동맥 카테터화(PAC) 간의 일치에 대한 귀중한 통찰력을 제공할 수 있습니다.

폐 이식 센터에서 체외 폐 관류(EVLP)는 이식을 위한 표준 기준을 충족하지 않는 폐의 기증 가능성을 높이는 데 도움이 되는 도구입니다1. 이는 뇌사 또는 심정지가 있는 기증자의 폐 기능을 보존하고 개선하며, 이식 전 폐 성능을 평가함으로써 달성됩니다 2,3,4. EVLP에서 체외 순환 펌프를 사용하면 막 가스 교환기와 백혈구 포집 필터5를 통해 폐의 관류를 이식할 수 있습니다.
현재까지 여러 EVLP 프로토콜(Toronto, Lund 및 Organ Care System)이 설명되었습니다. 이는 사용된 관류 용액의 유형, 관류 중 좌심방이 열려 있거나 닫혀 있는지 여부, 그리고 기증자 6,7,8의 추정 심박출량(CO)의 40%에서 100%(사용된 기술에 따라 다름)까지 변하는 관류 흐름에 의해 구별됩니다. 일산화탄소(CO)는 분당 심장이 펌프질하는 혈액의 양이다.9 그리고 조직 관류가 유지되는 메커니즘이다. 따라서 CO 모니터링은 적절한 조직 산소화를 보장합니다. 심박수와 스트로크 볼륨의 곱인 CO는 리터10,11,12로 측정됩니다. 그러나 조직 관류를 유지하기 위한 이러한 접근법은 정맥 순환, 말초 산소 사용, 전신 혈관 저항, 호흡, 총 혈액량 및 신체 위치와 같은 다른 요인에 의존하기도 한다12.
CO를 측정하고 모니터링하기 위한 여러 장치가 있으며, 그 중 일부는 간단한 물리적 원리를 사용하고 다른 일부는 수학적 모델을 사용합니다. 이러한 방법에는 Fick 원리, 열희석(경폐 또는 리튬 희석), 스트로크 부피(SV)를 추정하기 위한 동맥압파 분석, 도플러 또는 흉부 생체 반응과 같은 덜 침습적인 방법이 포함됩니다. 그러나, 어떠한 CO 모니터링 장치도 해당 모니터링 기법(10,13)의 한계로 인해 모든 임상적 요구사항을 충족시킬 수 없다.
심장 경열 희석에 의한 CO 측정은 돼지에서 간단하고 쉽게 재현 가능한 방법입니다. 그것은 폐 동맥에 서미스터가 있는 카테터를 삽입하고 혈액의 온도보다 낮은 양의 액체를 주입하는 것을 포함합니다. 서미스터는 시간 경과에 따른 온도 변화를 감지한 다음 곡선 형태로 표시되며 곡선 아래 영역은 분 부피14를 나타냅니다. 다양한 연구에 따르면 EVLP 동물 모델의 경우 CO는 중량(100mL/kg)15, 열희석 및 Fick의 방법10,13으로 계산할 수 있습니다. 그러나 클리닉에서 CO는 기증자의 신체 표면적(16)에 맞게 조정된 CO인 심장 지수(CI)를 사용하여 계산됩니다. 그럼에도 불구하고 실험용 돼지 모델에서 이러한 방법을 비교한 연구는 없습니다.
이 연구의 목적은 돼지에서 열희석에 의한 CO 측정을 재현하고 EVLP 중 관류 흐름을 설정하기 위해 BSA, 무게 및 Fick의 방법으로 조정된 CO를 사용하여 얻은 정밀도와 정확도를 비교하는 것이었습니다.

<table><tbody><tr><td>마취 기계</td><td>General Electric</td><td>Carescape 620</td><td></td></tr><tr><td>Atropine</td><td>Amixteria, Stern Pharma GmbH</td><td></td><td></td></tr><tr><td>카테터 Insyte Autoguard 20 GA</td><td>Becton Dickinson</td><td>381434</td><td></td></tr><tr><td>Electrocautery pencil</td><td>BBraun Aesculap</td><td>GN211</td><td></td></tr><tr><td>7 Fr 풍선이 있는 기관내 튜브</td><td>Rush</td><td>MG 027770 002</td><td></td></tr><tr><td>펜타닐</td><td>Janssen-Cilag</td><td></td><td></td></tr><tr><td>요오드포비돈</td><td>Degasa</td><td>NDC6732635208</td><td></td></tr><tr><td>후두경</td><td>Riester</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lidocaine 스프레이</td><td>Pisa</td><td></td><td></td></tr><tr><td>압력 트랜스듀서</td><td>Edwards Lifesciences</td><td>PX260</td><td></td></tr><tr><td>프로포폴</td><td>Pisa</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sevofluorane</td><td>Pisa</td><td></td><td></td></tr><tr><td>실크 봉합사 2-0</td><td>Covidien</td><td>GS833</td><td></td></tr><tr><td>나트륨 펜토바르비탈</td><td>화이자</td><td></td><td></td></tr><tr><td>후두경의 스트레이트 블레이드 #3</td><td>밀러; Riester</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Swan-Ganz 5Fr 열희석 카테터</td><td>Arrow 열희석 Ballon 카테터</td><td>Ref AI-07165</td><td></td></tr><tr><td>틸레타민-졸라제팜</td><td>Virbac</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vecuronium bromide</td><td>Pisa</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

ex vivo 폐 관류를 위한 돼지 모델에서의 심박출량 측정

Determination of Cardiac Output in a Porcine Model for Ex Vivo Pulmonary Perfusion

인간과 생리학적으로 유사하기 때문에 돼지는 체외 폐 관류(EVLP)의 실험 모델로 사용됩니다. EVLP는 체외 순환 펌프를 통해 이식에 적합하지 않은 폐를 관류하여 기능을 개선하고 생존력을 높이는 기술입니다. 기존 EVLP 프로토콜은 체표면적(BSA)에 따라 추정 심박출량(CO)의 40%-100%까지 변하는 관류 용액 및 관류 흐름의 유형에 따라 차별화됩니다. CO를 측정하는 장치는 간단한 물리적 원리와 기타 수학적 모델을 사용합니다. 동물 모델에서의 열희석은 단순성과 재현의 용이성 때문에 CO를 추정하기 위한 참조 표준이 되고 있습니다. 따라서 본 연구의 목적은 돼지에서 열희석에 의한 CO 측정값을 재현하고 그 정밀도 및 정확도를 BSA, 중량 및 Fick's 방법으로 얻은 것과 비교하여 EVLP 중 관류 흐름을 설정하는 것이었습니다. 23마리의 돼지에서 열희석 카테터를 오른쪽 경정맥에 삽입하고 같은 쪽의 경동맥을 캐뉼러로 삽입했습니다. gasometry를 위해 혈액 샘플을 얻었고 CO는 열 희석, 조정된 신체 표면적, Fick의 원리 및 체중당 추정했습니다. BSA에 의해 얻어진 CO는 다른 방법으로 얻어진 것보다 컸다(p =0.0001, ANOVA, Tukey). 우리는 이 연구에서 CO를 추정하는 데 사용된 방법이 신뢰할 수 있지만 그들 사이에는 상당한 차이점이 있다는 결론을 내렸습니다. 따라서 어느 것이 프로토콜의 요구 사항을 충족하는지 결정하기 위해 조사자가 각 방법을 평가해야 합니다.

모든 동물은 수술 과정과 연구 시간을 견뎌냈다. 한 동물(4.3%)은 카테터 삽입 중 과도한 견인으로 인해 경정맥 파열이 발생했습니다. 더욱이, 개입된 혈관 중 어느 곳에서도 출혈이 나타나지 않았다. 연구된 동물에서 PA에 도달하기 위해 평균 25-30cm의 카테터 삽입이 필요했습니다. 3건(13%)에서 카테터는 돼지의 오른쪽 상지를 향했습니다. 이 경우 카테터를 삽입 부위로 접고, 돼지의 상지를 머리 쪽으로 재배치하고, 경정맥을 수동으로 폐색하여 카테터를 심장 쪽으로 안내했습니다. 2마리(8.6%)에서 카테터 삽입 중 빈맥과 부정맥이 발생했다. 이러한 증상은 저절로 해결되며 약물 관리가 필요하지 않았습니다. 네 가지 방법으로 얻은 CO를 비교할 때 신체 표면적(p &lt; 0.05; ANOVA, Tukey)는 열희석법으로 얻은 것보다 컸고 CO는 중량으로 조정되었습니다(그림 7).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66798/66798fig01.jpg"> 그림 1: 삽관 및 마취 설정. 돼지를 삽관하고 흡입 마취 기계에 연결했습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66798/66798fig01large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66798/66798fig02.jpg"> 그림 2: 자궁 경부 부위의 방부제. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66798/66798fig02large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66798/66798fig03.jpg"> 그림 3: 경정맥 절제술. 경정맥을 절개하고 그 주위에 기준 봉합사를 배치했습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66798/66798fig03large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66798/66798fig04.jpg"> 그림 4: 카테터 삽입. 경정맥의 복부 부분의 횡방향 절개 부위에 카테터를 삽입합니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66798/66798fig04large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66798/66798fig05.jpg"> 그림 5: 열희석 카테터 삽입 추적. 열희석 카테터 배치 중 정상적인 삽입 추적. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66798/66798fig05large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66798/66798fig06.jpg"> 그림 6: 최종 카테터 삽입. 경정맥(A)과 경동맥(B)의 카테터 배치 끝. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66798/66798fig06large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66798/66798fig07.jpg"> 그림 7: 심박출량 추정치. 조정된 신체 표면적 방법으로 추정한 최고 심박출량(평균 ± 표준 오차). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66798/66798fig07large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

이 프로토콜은 돼지의 경정맥을 통해 열희석 카테터를 삽입하여 심박출량을 추정하고 체외 폐 관류(EVLP) 동안 적절한 폐 관류를 보장하는 데 사용되는 수술 기술을 설명합니다.

Ex vivo 폐 관류를 위한 돼지 모델에서의 심박출량 측정

Due to their physiological similarities to humans, pigs are used as experimental models for ex vivo lung perfusion (EVLP). EVLP is a technique that ...

determination-cardiac-output-porcine-model-for-ex-vivo-pulmonary

Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

이 비디오는 산소가 함유된 영양이 풍부한 관류액 용액으로 분리된 돼지 심장을 관류하여 보존하는 현장 기술을 설명합니다. 이 기술을 사용하면 생리학적 조건에서 심장 성능을 종합적으로 평가할 수 있습니다.

Ex situ heart perfusion: 고립된 돼지 심장 기능을 보존하는 기술

랑겐도르프 기구와 관련된 대부분의 연구는 대형 포유류에 대한 시스템의 복잡성이 증가하기 때문에 작은 동물 모델을 사용합니다. 우리는 인간을 포함한 다양한 종에 걸쳐 사용할 수 있고 비교적 쉬운 데이터 수집을 허용하는 대형 동물 모델을 위한 Langendorff 시스템에 대해 설명합니다.

큰 동물 모델에 대한 격리 된 작업 심장 시스템

신뢰할 수 있고 정확한 결과 평가는 임상 적 치료에 대한 임상 치료의 번역을위한 열쇠입니다. 현재의 논문은 돼지 급성 심근 경색 모델에서 심장 성능과 손상의 세 가지 임상 적으로 일차 결과 변수를 평가하는 방법에 대해 설명합니다.

급성 심근 경색의 돼지 모델의 주요 결과 평가

여기에서, 우리는 새로운 심장 보호 전략을 조사하기 위하여 확고하게 확립되고 이용된 정형포피성 심혼 이식의 전임상 대형 동물 (돼지) 모형을 기술합니다.

정형외 심장 이식의 전 임상 돼지 모델

이 프로토콜은 순환기 사망 후 기증의 대형 동물(돼지) 모델을 설명하고, 심장 이식의 임상 시나리오를 면밀히 시뮬레이션하고 치료 연구 및 전략을 촉진할 가능성이 있는 흉복부 정상 체온 국소 관류를 설명합니다.

순환기 사망 후 기증의 대형 동물 모델 및 심장 평가를 위한 정상 국소 관류

이 프로토콜은 진혈성 돼지/새끼 돼지의 중심 정맥에 결정체를 지속적으로 투여하는 것이 어떻게 급성 부피 과부하의 생리학적 영향을 적절하게 조사할 수 있는지 보여줍니다.

Adult and Pediatric Porcine Model of Acute Volume Overload(성인 및 소아 돼지 급성 부피 과부하 모델)

관상동맥 질환에 대한 선별 검사는 확장된 기준을 가진 기증자 심장의 조달을 증가시킬 수 있습니다. ex-situ heart perfusion 동안 재현성 있는 관상동맥 조영술을 수행하기 위한 프로토콜이 돼지 모델에서 본원에 설명되어 있다.

돼지 모델에서 Ex-Situ Heart Perfusion 중 관상 동맥 조영술

이 프로토콜은 좌심실의 직접 로딩이 이식편 건강에 대한 평가 기법 역할을 하는 동시에 이식편 기능에 대한 전체적인 평가를 제공할 수 있는 돼지 체외 심장 관류 시스템을 설명합니다. 시스템 설계 및 가능한 평가 메트릭에 대한 설명도 제공됩니다.

이식편 평가를 위한 Passive Left Atrial Pressurization 및 Passive Afterload를 사용한 심장 부하

본 프로토콜은 동종이식편의 체외 관류를 활용하여 순환기 사망 후 기증 후 심장 이식의 고충실도 돼지 모델을 설명합니다.

순환기 사망 후 기증에 따른 정형소 심장 이식의 고충실도 돼지 모델

여기에서는 기존 플랫폼의 높은 비용과 제한된 유연성을 극복하도록 설계된 오픈 소스의 수정 가능한 규범 보온 외 관류 시스템에 대한 프로토콜을 제시하여 전임상 생물 의학 연구에서 보다 접근하기 쉽고 비용 효율적이며 반복적인 사용을 가능하게 합니다.

연구 과학자를 위해 설계된 오픈 소스 normothermic 관류 시스템

학습하세요 돼지 모델에서 경정맥을 통한 열희석 카테터 삽입법으로 심박출량을 측정하는 방법을. 이 기술은 이식용 폐 보존을 위한 이소성 폐 관류 중 적절한 관류 흐름을 확보하는 데 활용됩니다.

Ex vivo 폐 관류를 위한 돼지 모델에서의 심박출량 측정

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