Name: 이식형 제세동기를 이용한 돼지 심정지 모델 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-01-09T13:15:00.000+00:00
Duration: 8 min 33 s
Description: 학습하세요 이식형 제세동기를 이용한 돼지 심정지 모델로 심실세동 유도 및 제세동 방법을. 반복적인 심정지 주기를 통해 동물 사용을 줄이고 정확한 심장 리듬 모니터링이 가능한 번역의학 연구에 활용하세요.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<ol><li>Cherry, B. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+cardiac+arrest+and+resuscitation+in+the+domestic+pig%5BTitle%5D)+AND+%22World+J+Crit+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Modeling cardiac arrest and resuscitation in the domestic pig.</a> World J Crit Care Med. 4 (1), 1(2015).</li>
<li>Burgert, J. M., Johnson, A. D., Garcia-Blanco, J. C., Craig, W. J., O'Sullivan, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Effective+and+Reproducible+Model+of+Ventricular+Fibrillation+in+Crossbred+Yorkshire+Swine+%28Sus+scrofa%29+for+Use+in+Physiologic+Research%5BTitle%5D)+AND+%22Comp+Med%22%5BJournal%5D)">An Effective and Reproducible Model of Ventricular Fibrillation in Crossbred Yorkshire Swine (Sus scrofa) for Use in Physiologic Research.</a> Comp Med. 65 (5), 444-447 (2015).</li>
<li>Schwarz, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neither+vasopressin+nor+amiodarone+improve+CPR+outcome+in+an+animal+model+of+hypothermic+cardiac+arrest%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Anaesthesiol+Scand%22%5BJournal%5D)">Neither vasopressin nor amiodarone improve CPR outcome in an animal model of hypothermic cardiac arrest.</a> Acta Anaesthesiol Scand. 47 (9), 1114-1118 (2003).</li>
<li>White, N. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coagulopathy+during+cardiac+arrest+and+resuscitation+in+a+swine+model+of+electrically+induced+ventricular+fibrillation%5BTitle%5D)+AND+%22Resuscitation%22%5BJournal%5D)">Coagulopathy during cardiac arrest and resuscitation in a swine model of electrically induced ventricular fibrillation.</a> Resuscitation. 82 (7), 925-931 (2011).</li>
<li>Euler, D. E., Whitman, T. A., Roberts, P. R., Kallok, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low+Voltage+Direct+Current+Delivered+Through+Unipolar+Transvenous+Leads%3A+An+Alternate+Method+for+the+Induction+of+Ventricular+Fibrillation%5BTitle%5D)+AND+%22Pacing+Clin+Electrophysiol%22%5BJournal%5D)">Low Voltage Direct Current Delivered Through Unipolar Transvenous Leads: An Alternate Method for the Induction of Ventricular Fibrillation.</a> Pacing Clin Electrophysiol. 22 (6), 908-914 (1999).</li>
<li>Ruemmler, R., Ziebart, A., Garcia-Bardon, A., Kamuf, J., Hartmann, E. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Standardized+Model+of+Ventricular+Fibrillation+and+Advanced+Cardiac+Life+Support+in+Swine%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Standardized Model of Ventricular Fibrillation and Advanced Cardiac Life Support in Swine.</a> J Vis Exp. (155), e60707(2020).</li>
<li>Xanthos, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiopulmonary+arrest+and+resuscitation+in+Landrace%2FLarge+White+swine%3A+a+research+model%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Cardiopulmonary arrest and resuscitation in Landrace/Large White swine: a research model.</a> Lab Anim. 41 (3), 353-362 (2007).</li>
<li>Greenwood, J. C., et al. Carbon monoxide as a cellular protective agent in a swine model of cardiac arrest protocol. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGreenwood%2C+JC+%22PLoS+One%22">PLoS One</a>. Wang, M. 19 (5), e0302653(2024).</li>
<li>Vogel, U., Wanner, T., Bültmann, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extensive+pectoral+muscle+necrosis+after+defibrillation%3A+nonthermal+skeletal+muscle+damage+caused+by+electroporation%5BTitle%5D)+AND+%22Intens+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Extensive pectoral muscle necrosis after defibrillation: nonthermal skeletal muscle damage caused by electroporation.</a> Intens Care Med. 24 (7), 743-745 (1998).</li>
<li>Guensch, D. P., et al. Evidence for Acute Myocardial and Skeletal Muscle Injury after Serial Transthoracic Shocks in Healthy Swine. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGuensch%2C+DP+%22PLoS+One%22">PLoS One</a>. Akar, F. G. 11 (9), e0162245(2016).</li>
<li>Rubenstein, J. C., Gupta, M. S., Kim, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effectiveness+of+VF+induction+with+DC+fibber+versus+conventional+induction+methods+in+patients+on+chronic+amiodarone+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Interv+Card+Electrophysiol%22%5BJournal%5D)">Effectiveness of VF induction with DC fibber versus conventional induction methods in patients on chronic amiodarone therapy.</a> J Interv Card Electrophysiol. 38 (2), 137-141 (2013).</li>
<li>Fitzgibbon, E., Berger, R., Tsitlik, J., Halperin, H. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+the+noise+source+in+the+electrocardiogram+during+cardiopulmonary+resuscitation%5BTitle%5D)+AND+%22Crit+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Determination of the noise source in the electrocardiogram during cardiopulmonary resuscitation.</a> Crit Care Med. 30 (4), S148-S153 (2002).</li>
<li>Babaeizadeh, S., Firoozabadi, R., Han, C., Helfenbein, E. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analyzing+cardiac+rhythm+in+the+presence+of+chest+compression+artifact+for+automated+shock+advisory%5BTitle%5D)+AND+%22J+Electrocardiol%22%5BJournal%5D)">Analyzing cardiac rhythm in the presence of chest compression artifact for automated shock advisory.</a> J Electrocardiol. 47 (6), 798-803 (2014).</li>
<li>Ruiz de Gauna, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rhythm+analysis+during+cardiopulmonary+resuscitation%3A+past%2C+present%2C+and+future%5BTitle%5D)+AND+%22BioMed+Res+Int%22%5BJournal%5D)">Rhythm analysis during cardiopulmonary resuscitation: past, present, and future.</a> BioMed Res Int. 2014, 386010(2014).</li>
<li>Faldaas, B. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hands-free+continuous+carotid+Doppler+ultrasound+for+detection+of+the+pulse+during+cardiac+arrest+in+a+porcine+model%5BTitle%5D)+AND+%22Ressuc+Plus%22%5BJournal%5D)">Hands-free continuous carotid Doppler ultrasound for detection of the pulse during cardiac arrest in a porcine model.</a> Ressuc Plus. 15 (100412), 1-10 (2023).</li>
<li>Faldaas, B. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+feedback+on+chest+compression+efficacy+by+hands-free+carotid+Doppler+in+a+porcine+model%5BTitle%5D)+AND+%22Ressusc+Plus%22%5BJournal%5D)">Real-time feedback on chest compression efficacy by hands-free carotid Doppler in a porcine model.</a> Ressusc Plus. 18, 100583(2024).</li>
<li>Faldaas, B. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+hands-free+carotid+Doppler+can+identify+spontaneous+circulation+without+interrupting+cardiopulmonary+resuscitation%3A+an+animal+study%5BTitle%5D)+AND+%22Intensive+Care+Med+Exp%22%5BJournal%5D)">A hands-free carotid Doppler can identify spontaneous circulation without interrupting cardiopulmonary resuscitation: an animal study.</a> Intensive Care Med Exp. 12 (1), 121(2024).</li>
<li>Ruiz De Gauna, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rhythm+Analysis+during+Cardiopulmonary+Resuscitation+Past%2C+Present%2C+and+Future%5BTitle%5D)+AND+%22BioMed+Res+Int%22%5BJournal%5D)">Rhythm Analysis during Cardiopulmonary Resuscitation Past, Present, and Future.</a> BioMed Res Int. 2014, 1-13 (2014).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>애보트 듀라타 7120 ICD 싱글 코일 리드</td><td>애보트, 애봇 파크, 일리노이</td><td>7120</td><td></td></tr><tr><td>애보트 갤런트 VR ICD</td><td>애보트, 애봇 파크, 일리노이</td><td>CDVRA500Q</td><td></td></tr><tr><td>애벗 멀린 프로그래머</td><td>애보트, 애봇 파크, 일리노이</td><td>3650</td><td></td></tr><tr><td>중심정맥 카테터 Certofix trio</td><td>B. 브라운 메디컬, 멜쥬겐, 독일</td><td>4167408-07</td><td></td></tr><tr><td>기관내관 포텍스 #7.0</td><td>스미스 메디컬, 록랜드, 매사추세츠</td><td>100/150/070</td><td></td></tr><tr><td>엑사곤 VET (펜토바르비탈 400 mg/mL)</td><td>VetViva Richter, 벨스, 오스트리아</td><td>해당 없음</td><td></td></tr><tr><td>헤파린 5000 IU/mL</td><td>프랑스 루이트르&에퀴트의 판파르마</td><td>ETI3M807-1</td><td></td></tr><tr><td>케타민 50 mg/mL</td><td>아브쿠르 AB, 헬싱보리, 스웨덴</td><td>LB-12355-01</td><td></td></tr><tr><td>미다졸람 5 mg/mL</td><td>B. 브라운 메디컬, 멜쥬겐, 독일</td><td>753-12612876-0621</td><td></td></tr><tr><td>모르핀</td><td>아브쿠르 AB, 헬싱보리, 스웨덴</td><td>LB-122184-01</td><td></td></tr><tr><td>정상 식염수 세척 용액</td><td>프레제니우스 카비, 웁살라, 스웨덴</td><td>B202382-05</td><td></td></tr><tr><td>펜토쿠르 (티오펜탈)</td><td>아브쿠르 AB, 헬싱보리, 스웨덴</td><td>LB-122564-01</td><td></td></tr><tr><td>말초 IV 카테터 20G Vasofix</td><td>B. 브라운 메디컬, 멜쥬겐, 독일</td><td>4268113B</td><td></td></tr><tr><td>PiCCO&nbsp; 모니터링 키트 (압력 변환기, 플러시 시스템 및 서미스터)</td><td>펄션, 펠트키르헨, 독일</td><td>PV8215</td><td></td></tr><tr><td>PiCCO 카테터 5 Fr 20 cm</td><td>펄션, 펠트키르헨, 독일</td><td>PV2015L20-A</td><td></td></tr><tr><td>압력 트랜스듀서 및 플러시 키트 TruWave</td><td>에드워즈 라이프사이언스, 어바인, 캘리포니아</td><td>PX272</td><td></td></tr><tr><td>구조 도플러</td><td>시몬 메디컬, 트론헤임, 노르웨이</td><td>해당 없음</td><td>독점적이며 상업적으로 이용 불가</td></tr><tr><td>링거 아세테이트</td><td>프레제니우스 카비, 웁살라, 스웨덴</td><td>B203150-02</td><td></td></tr><tr><td>요로 카테르 12 Ch</td><td>다양한</td><td>해당 없음</td><td></td></tr><tr><td>혈관 시막 도입기 Prelude 7.0 Fr</td><td>메릿 메디컬, 사우스 조던, 유타</td><td>PSI-7F-11-035-18G</td><td></td></tr><tr><td>뷰 초음파 젤</td><td>옵티멈 메디컬, 리즈, 유나이티드 킹딤</td><td>1157</td><td></td></tr></tbody></table>

이식형 제세동기를 이용한 돼지 심정지 모델

Porcine Cardiac Arrest Model Using an Implantable Defibrillator

This study presents a reproducible porcine cardiac arrest model utilizing an implantable cardioverter-defibrillator (ICD) for reliable induction and ...

우리는 더 안정적인 결과를 제공하고 소생 연구에 사용되는 동물의 수를 줄일 수 있는 단순하고 신뢰할 수 있는 심실세동 및 제세동 모델을 개발하고자 했습니다. 우리는 이식형 제세동기를 사용하여 심실세동을 안정적으로 유도하고, 제세동 및 심내 심전도 검사를 수행합니다. 돼지를 준비한 후, 깊은 마취 상태의 동물을 앙와위로 눕히고 거즈 붕대를 사용하여 사지를 고정합니다.에탄올에 5 mg/mL 농도로 희석된 클로르헥시딘을 사용하여 목, 턱, 서혜부 및 복부를 소독하고, 소독된 부위를 멸균 드레이프로 덮습니다. 후지(뒷다리)를 펴서 장골동맥을 신전시킵니다. 초음파를 이용하여 장골동맥의 위치를 확인하고, 셀딩거 기법을 사용하여 5 French 펄스 인덱스 연속 심박출량 동맥 카테터를 삽입합니다.동맥 카테터를 미리 충전된 압력 트랜스듀서 및 플러싱 세트에 연결합니다. 트랜스듀서를 영점 조정한 후, 동맥압 파형이 적절하게 나타나는지 확인하고 뒷다리를 풀어줍니다. 돼지를 트렌델렌부르크 자세(Trendelenburg position)로 기울이고, 인공호흡기의 호기말 양압(positive-end expiratory pressure)을 10 cmH₂O로 높여 목 정맥을 확장시킵니다.초음파 가이드 하에 우측 외경정맥의 위치를 확인하고 Seldinger 기법을 사용하여 7 French 혈관 도입기를 삽입합니다. 정맥 환류를 확인한 후 도입기를 식염수로 세척합니다. 다음으로 지혈 밸브가 포함된 9 French 2-루멘 중심정맥 액세스 세트를 삽입합니다.루멘을 통해 정맥 환류가 있는지 확인합니다. 진정제 및 수액 주입 경로를 카테터로 전환합니다. 그런 다음 카테터 루멘 중 하나에 압력 트랜스듀서를 연결하여 중심 정맥압 파형을 확인합니다.인공호흡기의 호기말 양압(positive-end expiratory pressure)을 5 cmH₂O로 낮춥니다. 혈관 도입기를 통해 단일 코일 삽입형 제세동기(ICD) 전극을 삽입하고 우심실 첨단까지 전진시킵니다. 그런 다음 전용 커넥터를 사용하여 ICD 리드를 페이싱 시스템 분석기에 연결합니다.심내 R파 진폭이 6 millivolts보다 큰지 확인하십시오. 메스를 사용하여 왼쪽 쇄골 아래에 4 centimeter 길이의 수평 피부 절개를 가합니다. 그 다음 전기 소작술 후 손가락을 이용한 둔성 박리를 통해 ICD를 수용할 수 있을 만큼 충분한 크기의 피하 포켓을 만듭니다.리드선을 ICD에 연결하고 장치를 피하 포켓에 넣습니다. 우심실 리드선이 안정적인 위치에 있는지 확인합니다. ICD를 프로그래머에 연결한 후 페이싱 모드를 원하는 설정으로 프로그래밍하고, R파 페이싱 임계값과 임피던스를 검토합니다.그런 다음 빈맥성 부정맥 치료 파라미터를 설정합니다. 프로그래머 화면에서 Test 아이콘을 선택하고 Ventricular Fibber 및 NIPS 폴더를 엽니다. Ventricular Fibber 항목에서 DC Fibber를 선택하고, 심실세동을 유도하기 위해 7.5 volts로 2초 동안 설정합니다.심실세동이 유도되면, 장치가 설정된 파라미터에 따라 치료를 제공할 수 있도록 자동 전달 기능을 사용하십시오. Ventricular NIPS 아이콘을 선택하여 심실 빈맥을 유도하십시오. Burst 아이콘을 선택하고 240 milliseconds와 같이 원하는 주기 길이를 설정하십시오.그런 다음 Hold를 눌러 최대 20초 동안 burst를 적용합니다. 심실 빈맥 또는 심실 세동이 유도되면 Tachy 폴더의 프로그램 설정에 따라 치료를 실시합니다. Parameters 아이콘을 선택하여 설정을 검토하고 동리듬이 회복되었는지 확인합니다.장골동맥 카테터를 통해 동맥압을 모니터링하십시오. 이에 더해, 핸즈프리 프로브를 왼쪽 경동맥에 수직으로 배치하여 혈류의 연속 도플러 모니터링을 병행하십시오. 도플러 디스플레이에 경동맥 혈류 파형이 명확하게 나타나는지 확인하십시오.다음으로, 접착 테이프를 사용하여 프로브를 철저히 고정합니다. 페이스메이커에서 얻은 심내 전극도와 모니터에 표시되는 체표 전극도를 통해 심장 리듬을 모니터링합니다. 심실세동 또는 심실빈맥을 유도한 후, 도플러 추적 관찰을 통해 경동맥 혈류의 정지를 확인하고 연구 프로토콜에 따라 무혈류 기간을 유지합니다.그 후 수동 심폐소생술, 기계적 압박 또는 기타 중재를 시작합니다. 침습적 동맥압과 비침습적 초음파 유도 혈류 속도를 이용하여 자발 순환 회복 여부를 확인합니다. 필요한 경우, 수동 DC 쇼크를 전달하여 돼지의 심장 리듬을 동리듬으로 전환합니다.성공적인 전환 가능성을 최대화하기 위해 120초 이내에 심실세동을 종료하십시오. 동물이 심실빈맥 상태인 경우, 항빈맥 페이싱 또는 동기화 심장충격법을 사용하십시오. 마지막으로, 동물을 휴식시키고 혈압, 호기말 이산화탄소 및 pH를 포함한 생리학적 파라미터가 정상화되었는지 확인하십시오.Ventricular Fibber 모드는 11마리의 동물 모두에서 심실세동 또는 심실빈맥을 유발했습니다. ICD가 치료를 제공한 후 모든 동물에서 동성 리듬과 자발순환이 회복되었습니다. 유도된 심실세동 후 자발순환 회복을 달성한 평균 성공률은 약 92%였습니다. ICD는 동물당 평균 18회의 심실 부정맥을 유발했으며, 여기에는 심실세동과 심실빈맥이 포함되었습니다.다른 방법들과 비교했을 때, 본 연구의 접근 방식은 심폐소생술 중 인공 리듬 모니터링을 통해 92%의 혈액 순환 회복 성공률을 달성했습니다. 주요 과제는 ICD 삽입 및 프로그래밍을 위한 전문 장비와 숙련된 운영자가 필요하다는 점입니다. 본 모델은 소생 성공률을 약 50%에서 90%로 높여, 동물당 심실세동, CPR, 심율동전환 주기의 반복 수행을 가능하게 하며 동물 사용량을 현저히 줄여줍니다.

porcine-cardiac-arrest-model-using-an-implantable-defibrillator

Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

허혈성 심장 마비의 치료를위한 유전자 전달의 방법은 심근 경색의 돼지 모델을 사용하여 설명합니다. 우리 간단하고 재현성 방법은 우리가 쉽게 매우 간단하고 재현성 방법으로 다양한 유전자 전송의 효능을 평가할 수 있습니다.

잠복기 모델에서 허혈성 심장 마비에 대한 유전자 전송

이 프로토콜은 재관류 다음 좌전 하행 동맥 (LAD)의 90 분 폐쇄 가슴 관상 동맥 풍선 폐쇄를 사용하여 돼지의 심근 경색 (MI) 모델에 대해 설명합니다. 또한, 이러한 심장 기능, 혈류 역학, 미세 혈관 저항 및 경색 크기 등 여러 가지 결과 매개 변수에 대한 프로토콜도 제공됩니다.

돼지의 심근 경색 및 기능적 결과의 평가

이 논문은 갑작스런 심정지와 기존의 심폐 소생술을 시뮬레이션하는 흉부 압박, 인공호흡 및 전기 충격에 의한 전기적으로 유도된 심실세동 및 소생술의 쥐 모델을 설명합니다. 이 모델을 통해 심정지의 병태생리학에 대한 통찰력을 수집하고 새로운 소생술 전략을 탐색할 수 있습니다.

기존의 폐쇄 가슴 기술에 의해 쥐의 심실 세동의 모델 및 소생

우리는 심낭 공간/유체 내에서 약리학적 제제의 표적 전달을 위한 돼지 모델을 개발했습니다. 이 접근법을 사용하여 유도 심방세동, 상대적 불응성 기간 및/또는 허혈성 보호에 대한 투여제의 상대적 이점을 조사할 수 있습니다.

돼지 일에 심막 대상 배달 모델에 약리 에이전트의 효능을 테스트

여기 심근 국 소 빈 혈 또는 reperfusion 상해의 병 태 생리학의 이해에 변환 값을 증가 하기 위하여 급성 심근 경색의 설립된 돼지 모델의 샘플링 절차를 표준화 프로토콜 설명 그리고 새로운 약 후보자를 테스트 합니다.

조직 및 혈액 샘플링 절차의 표준화에 의해 닫힌된 가슴 돼지 심근 경색 모델의 개선

여기, 선물이 tachycardia 유발 심근 돼지에서 생산 하는 프로토콜. 이 모델은 진보적인 만성 심장 마비의 hemodynamics 및 적용 된 치료의 효과 공부 하는 강력한 방법을 나타냅니다.

돼지에서 만성 심장 마비 모델로 tachycardia 유발 심근

심폐 소생술과 제세동은 심실 세동으로 인한 심정지 시 유일하게 효과적인 치료 옵션입니다. 이 모형은 돼지 모형에 있는 이 생리적인 상태를 유도하고, 평가하고, 취급하기 위하여 표준화한 식이요법을 제출합니다, 따라서 데이터 수집 및 분석을 위한 각종 기회를 가진 임상 접근을 제공합니다.

돼지의 심실 세동 및 고급 심장 생명 지원의 표준화 모델

우리는 심방 근 병증과 심방 세동 (AF)을 연구하기 위해 미니 피그에서 멸균 심낭염 모델을 설명합니다. 우리는 외과 및 마취 기술, 혈관 접근 전략 및 AF의 유도성을 연구하기위한 프로토콜을 제시합니다.

Aachener Minipigs의 멸균 심낭염 심방 근 병증 및 심방 세동을위한 모델로서

인간에서 질병의 자연 과정을 모방하는 심근 경색 (MI) 동물 모델은 병리 생리학 적 메커니즘을 이해하고 새로운 응급 요법의 안전성과 효능을 테스트하는 데 중요합니다. 여기에서는 경피 색전술 코일을 배치하여 만든 MI 돼지 모델에 대해 설명합니다.

돼지 모델에서 경피 색전술 코일 배치에 의한 심근 경색

본 프로토콜은 돼지 모델에서 심장 활성 치료제를 투여하는 세 가지 방법을 설명합니다. 암컷 재래종 돼지는 (1) 개흉술 및 경심막 주사, (2) 카테터 기반 경심 주사 또는 (3) 경정맥 삼투압 미니 펌프 를 통한 정맥 주입을 통해 치료를 받았습니다.

돼지 심근 경색 모델에서 심장 활성 치료제 전달

이 프로토콜은 심폐 우회술(CPB)의 신생아 돼지 모델을 설명하며, 순환 정지 및 심장 정지를 CPB에 이차적인 심각한 뇌 손상 및 기타 합병증을 연구하기 위한 도구로 사용합니다.

장기간의 순환 정지 후 체외 심폐 소생술의 소아 동물 모델

학습하세요 이식형 제세동기를 이용한 돼지 심정지 모델로 심실세동 유도 및 제세동 방법을. 반복적인 심정지 주기를 통해 동물 사용을 줄이고 정확한 심장 리듬 모니터링이 가능한 번역의학 연구에 활용하세요.

이식형 제세동기를 이용한 돼지 심정지 모델

더 많은 동영상 탐색