Name: 췌장암 마우스 모델에서 종양 측정을 위한 다동물 자기공명영상 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-02-03T14:20:00.000+00:00
Duration: 9 min 18 s
Description: 학습하세요 췌장암 마우스 모델에서 다동물 MRI를 이용한 종양 측정 방법을. KRAS 기반 유전자 변형 마우스에서 췌장 선암종종양을 효율적으로 검출하고 치료 반응을 모니터링하는 비용 효율적인 기술입니다.

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<ol><li>Siegel, R. L., Giaquinto, A. N., Jemal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cancer+statistics%2C+2024%5BTitle%5D)+AND+%22CA+Cancer+J+Clin%22%5BJournal%5D)">Cancer statistics, 2024.</a> CA Cancer J Clin. 74 (1), 12-49 (2024).</li>
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<li>Miller, A. L., Garcia, P. L., Yoon, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developing+effective+combination+therapy+for+pancreatic+cancer%3A+an+overview%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacol+Res%22%5BJournal%5D)">Developing effective combination therapy for pancreatic cancer: an overview.</a> Pharmacol Res. 155, 104740(2020).</li>
<li>Dreyer, S. B., Beer, P., Hingorani, S. R., Biankin, A. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improving+outcomes+of+patients+with+pancreatic+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Clin+Oncol%22%5BJournal%5D)">Improving outcomes of patients with pancreatic cancer.</a> Nat Rev Clin Oncol. 22 (6), 439-456 (2025).</li>
<li>Nevala-Plagemann, C., Hidalgo, M., Garrido-Laguna, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((From+state-of-the-art+treatments+to+novel+therapies+for+advanced-stage+pancreatic+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Clin+Oncol%22%5BJournal%5D)">From state-of-the-art treatments to novel therapies for advanced-stage pancreatic cancer.</a> Nat Rev Clin Oncol. 17 (2), 108-123 (2020).</li>
<li>Koltai, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resistance+to+gemcitabine+in+pancreatic+ductal+adenocarcinoma%3A+a+physiopathologic+and+pharmacologic+review%5BTitle%5D)+AND+%22Cancers+%28Basel%29%22%5BJournal%5D)">Resistance to gemcitabine in pancreatic ductal adenocarcinoma: a physiopathologic and pharmacologic review.</a> Cancers (Basel). 14 (10), 2486(2022).</li>
<li>Casper, E. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phase+II+trial+of+gemcitabine+%282%2C2%E2%80%B2-difluorodeoxycytidine%29+in+patients+with+adenocarcinoma+of+the+pancreas%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+New+Drugs%22%5BJournal%5D)">Phase II trial of gemcitabine (2,2′-difluorodeoxycytidine) in patients with adenocarcinoma of the pancreas.</a> Invest New Drugs. 12 (1), 29-34 (1994).</li>
<li>Moore, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activity+of+gemcitabine+in+patients+with+advanced+pancreatic+carcinoma%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer%22%5BJournal%5D)">Activity of gemcitabine in patients with advanced pancreatic carcinoma: a review.</a> Cancer. 78 (3 Suppl), 633-638 (1996).</li>
<li>Ho, T. T. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combination+of+gemcitabine+and+anti-PD-1+antibody+enhances+the+anticancer+effect+of+M1+macrophages+and+the+Th1+response+in+a+murine+model+of+pancreatic+cancer+liver+metastasis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunother+Cancer%22%5BJournal%5D)">Combination of gemcitabine and anti-PD-1 antibody enhances the anticancer effect of M1 macrophages and the Th1 response in a murine model of pancreatic cancer liver metastasis.</a> J Immunother Cancer. 8 (2), e001367(2020).</li>
<li>Kempinska, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+ablation+of+microRNA-10b+improves+treatment+outcomes+in+mouse+models+of+pancreatic+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Genetic ablation of microRNA-10b improves treatment outcomes in mouse models of pancreatic cancer.</a> Cancer Res. 84 (6 Suppl), Abstract 467 (2024).</li>
<li>Fan, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Species-specific+hepatic+uptake+of+%5B64Cu%5DCu-EOB-NOTA%2C+a+newly+designed+hepatospecific+PET+agent%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Imaging+Biol%22%5BJournal%5D)">Species-specific hepatic uptake of [64Cu]Cu-EOB-NOTA, a newly designed hepatospecific PET agent.</a> Mol Imaging Biol. 27 (3), 305-312 (2025).</li>
<li>Ramirez, M. S., Esparza-Coss, E., Bankson, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiple-mouse+MRI+with+multiple+arrays+of+receive+coils%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Multiple-mouse MRI with multiple arrays of receive coils.</a> Magn Reson Med. 63 (3), 803-810 (2010).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>3D 프린터 & nbsp;</td><td>스트라타시스</td><td>J750&nbsp;</td><td>다동물 MRI 침대 인서트용</td></tr><tr><td>젬시타빈 HCl</td><td>에이펙스바이오</td><td>A1402-500</td><td>IP 주입에 대해... nbsp;</td></tr><tr><td>호로스</td><td>호로스</td><td>https://horosproject.org/</td><td>MRI 분석을 위해</td></tr><tr><td>이소플루란</td><td>코베트루스</td><td>11695067772</td><td>쥐 마취를 위해</td></tr><tr><td>아이소플루란 증기</td><td>SOMNI 사이언티브</td><td>VS6002</td><td>쥐 마취를 위해</td></tr><tr><td>저용량 U-100 인슐린 주사기</td><td>BD</td><td>14-826-79</td><td>IP 주입에 대해... nbsp;</td></tr><tr><td>루어 락 튜브 커플링, 나일론 직선 플러그, 1/16" 튜브 내경 x7 바브드</td><td>맥마스터</td><td>51525K521</td><td>다동물 MRI 침대 조립을 위한</td></tr><tr><td>루어 락 튜브 커플링, 플러그, 1/16" 바드드 튜브 ID x2</td><td>맥마스터</td><td>7466N11</td><td>다동물 MRI 침대 조립을 위한</td></tr><tr><td>수-수(male to mal) 루어 커넥터 x2</td><td>사이</td><td>MML</td><td>다동물 MRI 침대 조립을 위한</td></tr><tr><td>MR 호환 소동물 모니터링 및 게이팅 시스템</td><td>SAII</td><td>모델 1030</td><td>MRI 중 동물을 모니터링하세요</td></tr><tr><td>MRI 침대 어댑터</td><td>브루커</td><td>T150743</td><td>벤더가 제공하는 MRI 침대 구성 요소</td></tr><tr><td>MRI 코일, 내경 72mm</td><td>브루커</td><td>T20209V3</td><td>공급업체 제공 MRI 코일</td></tr><tr><td>멀티모달리티 요람 중간 쥐</td><td>브루커</td><td>T151629</td><td>공급업체 제공 MRI 침대</td></tr><tr><td>안과 윤활제&nbsp;</td><td>코베트루스</td><td>75848</td><td>마취 중 사용</td></tr><tr><td>파라비전 360 소프트웨어</td><td>브루커</td><td>https://www.bruker.com/en/products-and-solutions/preclinical-imaging/paravision-360.html</td><td>MRI 분석을 위해</td></tr><tr><td>PMOD 4.2</td><td>브루커</td><td>https://www.bruker.com/en/products-and-solutions/preclinical-imaging/pmod.html</td><td>MRI 분석을 위해</td></tr><tr><td>전임상 MRI 시스템&nbsp;</td><td>브루커</td><td>바이오스펙 70/30</td><td>MRI를 위해</td></tr><tr><td>스트라타시스 베로 클리어 수지</td><td>스트라타시스</td><td>RGD810</td><td>다동물 MRI 침대 제작을 위한</td></tr><tr><td>티 소켓 간 커넥터, 루어 락 튜브 x2</td><td>맥마스터</td><td>51525K443</td><td>다동물 MRI 실험에 대해,</td></tr><tr><td>튜빙 (내경 1/16", 외경 1/8")</td><td>브루커</td><td>T12330</td><td>다동물 MRI 침대 조립을 위한</td></tr></tbody></table>

췌장암 마우스 모델에서 종양 측정을 위한 다동물 자기공명영상

Multianimal Magnetic Resonance Imaging for Tumor Measurements in Pancreatic Cancer Mouse Models

KPC 동물들은9주 이후 췌장종양이 발생합니다. 다심 MRI 침대를 사용하여 KPC 마우스의 종양 선별검사를 10주에 시작하였습니다. 이를 통해 약 200mm3 크기의 종양을 가진 동물을 게임시타빈 치료의 전임상 연구에 모집할 수 있었습니다. 종양 속도학과 종양 증상의 차이가 관찰되었습니다. 대부분의 KPC 종양은 단일 또는 우세 초점을 가진 견고한 성장 패턴을 보였으며(그림 4A), 이는 치료 및 종양 부피 평가를 위한 동물 모집을 용이하게 했습니다. 그러나 췌장 전체에 걸쳐 여러 개의 작은 고형 종양이 퍼진 동물도 관찰되었습니다(그림 4A). 일부 PDAC 사례는 종양 내 액체가 채워진 낭포성 병변과 함께 종양 주위 비종양성 낭포성 병변과 담낭 및/또는 췌장의 관성 폐쇄로 인한 체액 저류를 동반할 수 있습니다. (그림 4A).
모집 후, 동물들은 무작위로 두 개의 실험군에 배정되었습니다: 치료를 받지 않은 대조군과 주 2회 100 mg/kg 용량의 복강 내 투여(ip.) 투여를 받은 치료군입니다. 총 23마리의 적격 동물 중 여성 4마리와 수컷 7마리가 대조군에, 암컷 6마리와 수컷 6마리가 치료군에 배정되었습니다. 다동물 침대 시스템을 이용한 주간 MRI 스캔(그림 5A)을 통해 대조군과 치료군 모두에서 종양 성장 속도론 변화를 지속적으로 모니터링할 수 있었습니다(그림 5B).
처리된 영상 데이터는 젬시타빈 치료 KPC 모델의 종양이 치료받지 않은 대조군에 비해 성장 패턴이 느린 것으로 나타났으며(그림 5C), 이는 치료 집단의 전체 생존율이 통계적으로 유의하게 증가한 것으로 나타났습니다(로그 순위 검정, p = 0.04). 치료받지 않은 KPC의 중간 생존 기간은 20주였으나, 치료군은 중앙값 생존 기간이 23주 이상 연장되었습니다(그림 5D).
<img alt="그림 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69927/69927fig1.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 1"> 
그림 1: 다동물 자기공명영상 절차, 영상 처리 및 분석의 워크플로우. 다동물 MRI 프로토콜의 주요 단계는 사전 스캔 준비부터 영상 유도 전임상 연구까지 강조됩니다. 최대 4마리의 동물을 유도 챔버(사전 촬영 준비)에서 마취시키고, 다동물 침대(다동물 MRI 침대 설치)에 배치할 준비를 합니다. 2 x 2 배열(상단 구획에 2명, 아래 구획에 2명)로 동물을 촬영한 후 자기공명 스캔(MR 영상)을 촬영합니다. 각 동물의 영상 데이터는 개별 파일로 저장되어 독립적으로 분석됩니다(이미지 분석). 영상 소결과 종양 크기를 이용해 전임상 연구를 위한 동물을 선정하고 치료 반응(전임상 시험)을 모니터링합니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69927/69927fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보시려면 여기를 클릭해 주세요.</a>
<img alt="그림 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69927/69927fig2.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 2"> 
그림 2: 다중 동물 MRI의 설정부터 스캔까지의 주요 단계. (A) 맞춤형 다동물 MRI 침대 시스템 조립 상단 패널. 맞춤형 3D 프린팅 침대 인서트와 통합 마취 포트가 표준 단일 쥐 PET/MRI 침대 홀더에 장착됩니다. 하단 패널에서는 이 3D 프린팅 인서트가 침대를 두 개의 챔버로 나누어 최대 네 마리의 동물을 동시에 촬영할 수 있습니다: 동물 1, 2는 상단 인서트 위에 있고, 3과 4는 하단 인서트 위에 위치합니다. STL 뷰어에서 3D 프린터 인서트의 횡면과 전면 변형 평면이 보여집니다. (B) 쥐를 다방 MRI 침대에 순차적으로 배치(위에서 아래까지). 상단 이미지는 3D 프린팅 인서트의 하단(좌우) 복쪽 위치에 두 마리의 동물을 배치한 모습으로, 이는 공급업체가 제공한 PET/MRI 침대 안에 있습니다. 중간 이미지에서 나머지 두 마우스는 3D 프린팅 인서트의 상단(왼쪽과 오른쪽) 복부 위치에 배치되어 있습니다; 상단 인서트 왼쪽에 위치한 마우스에는 호흡 모니터가 부착되어 있습니다. 아래 이미지: 덮개를 위에 올려놓은 네 마리 동물의 완성된 조립 모습. 모든 동물은 마취를 유지하기 위해 코 콘에 머리를 고정합니다(1.5-2% 이소플루란, 0.8-2 L/분의 산소). 마취 전달, 온수기, 생체 모니터링 시스템을 갖춘 MRI 침대 홀더에 네 동물 모두를 최종 배치하여 한 세션에서 모든 동물의 MRI 스캔과 데이터 수집을 가능하게 합니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69927/69927fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보시려면 여기를 클릭해 주세요.</a>
<img alt="그림 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69927/69927fig3.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 3"> 
그림 3: 다동물 MRI 스캔을 통한 데이터 수집 및 처리. (A) 네 동물 모두의 초기 MRI 스캔의 대표적인 모습(내측면). (B) 다중 체실 침대 내 네 마리 쥐의 MRI 스캔(배면): 3D 프린팅 인서트의 하단(3, 4)에 두 마리의 마우스, 상단(1, 2)에 두 마리의 마우스. (C) 각 마우스 스캔의 최종 고해상도 MRI 파일. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69927/69927fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 확대판을 보시려면 여기를 클릭하세요.</a>
<img alt="그림 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69927/69927fig4.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 4"> 
그림 4: PDAC 종양의 다양한 증상: 통합 MRI 및 조직학 분석. (A) PDAC 종양의 해부학적 변이성을 보여주는 대표적인 MRI 이미지(배측면): 정상 췌장, 액체가 채워진 낭포성 병변이 있는 다발성 종양, 고형 종양 덩어리. 해부학적 장기는 다음과 같이 색상으로 구분됩니다: 위(노랑), 비장(초록색), 종양(보라색), 관막힘으로 인한 체액 축적(파랑). 흰색 눈금 막대 = 1 cm. (B) 컴퓨터 지원 훈련된 분류기 오버레이를 기반으로 한 H&amp;E 염색 종양의 조직학적 절편과 세포 분류 분류 그룹을 나란히 하여 MRI 소견과 일치하는 종양의 조직병리학적 특징을 강조합니다. 종양이 있을 때 모든 샘플에 대해 검은색으로 윤곽선으로 표시된 종양(T) 영역. 세포 분류는 색상으로 표시되어 있습니다: 정상 췌장 조직(회색), 종양(빨간색), 면역 세포(노란색). 검은색 스케일 바 = 0.5 cm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69927/69927fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 확대 버전을 보시려면 여기를 클릭해 주세요.</a>
<img alt="그림 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69927/69927fig5.jpg" data-altupdatedat="1783400419000" data-alt="Figure 5"> 
그림 5: 젬시타빈 치료 중 동물 모집 및 종양 성장 모니터링을 위한 다동물 MRI 응용 프로그램. (A) 실험 설계 일정: 14+주 된 동물을 MRI 스캔에서 200 mm3≥ 종양이 발견된 후 모집되었습니다. 치료군 쥐들은 안락사 기준에 도달할 때까지 젬시타빈(100 mg/kg, I.P., B.I.W.)을 투여받았습니다. 실험 기간 동안 모든 동물을 대상으로 종양 성장 반응학을 모니터링하기 위해 다중 동물 MRI 스캔이 수행되었습니다. (B) 실험 0일부터 마지막 날까지 종양 진행 경향을 보여주는 대표성 MRI 이미지(등쪽면). 흰색 척도 바 = 1 cm. (C,D) 대조군에서 종양 성장 속도(C, n = 4 [2 F, 2 M] 대 4 [2 F, 2 M]) 및 전체 생존율(D, n = 11 [4 F, 7 M] vs. 12 [6 F, 6 M])을 보여주는 그래프. Kaplan-Meier 생존 곡선의 통계적 유의성은 Log-rank(Mantel-Cox) 검정(* p &lt; 0.05)으로 결정되었습니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69927/69927fig5large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보시려면 여기를 클릭해 주세요.</a>
보충 파일 1: 표준 단일 쥐 PET/MRI 침대 홀더에 맞는 마취 포트가 통합된 하단 인서트의 3D 프린팅용 STL 파일입니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69927/MSU%204%20mouse%20bed%20bottom.stl" target="_blank">이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭해 주세요.</a>
보조 파일 2: 표준 단일 쥐 PET/MRI 침대 홀더에 맞는 통합 마취 포트가 있는 상단 인서트의 3D 프린팅용 STL 파일입니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69927/MSU%204%20mouse%20bed%20top.stl" target="_blank">이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭해 주세요.</a>

Advanced in vivo imaging modalities, such as magnetic resonance imaging (MRI), are essential research tools to effectively detect tumors in preclinical ...

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Research

연구

JoVE Journal

Cancer Research

암 연구

이 비디오는 마우스의 직교 이방성 췌장 종양 이종 이식편을 위한 DCE-MRI 기술을 설명합니다. DCE-MRI는 표적 조직의 미세혈관 구조를 분석하는 비침습적 방법이며, 새로운 요법 후 종양의 혈관 반응을 평가하는 데 유용합니다. 이 방법은 연구자가 정소성 위장관 암 마우스 모델에 DCE-MRI를 적용하는 데 도움이 됩니다.

정소성 췌장 종양 이종이식편의 DCE-MRI: 표적 종양 조직의 미세혈관 구조를 평가하는 방법

이 비디오는 종양 진행의 비침습적 모니터링을 위해 국소 세포 전달 및 생체 내 생물 발광 이미징을 위해 Matrigel을 활용하는 췌장암의 정소성 모델을 보여줍니다. 정소성 모델은 신유전 및 이종 이식 모델 모두에 적합하며 원발성 췌장 종양의 성장 및 전이에 대한 새로운 항암 치료제의 영향을 조사하기 위한 전임상 시험에 사용할 수 있습니다.

생물 발광 직소성 췌장암 마우스 모델: 마우스의 암 진행을 모니터링하기 위한 비침습적 기술

이 프로토콜의 목표는 마우스의 정소성 췌장 종양 이종 이식편에 동적 대비 강화 자기 공명 영상(DCE-MRI)을 적용하는 것입니다. DCE-MRI는 표적 조직의 미세혈관 구조를 분석하는 비침습적 방법이며, 새로운 요법 후 종양의 혈관 반응을 평가하는 데 유용합니다.

동소 이식 췌장 암 마우스 모델의 동적 대비 강화 된 자기 공명 영상

Balb-c Ola Hsd-Fox1nu 마우스의 췌장에 녹색 형광 단백질 발현 췌장암 세포(PANC-1 GFP)를 항소적으로 이식하여 종양 진행 및 전이를 평가하는 절차가 여기에 나와 있습니다.

췌장암의 형광 동소 이식 마우스 모델

이 문서에서는 유전자 조작된 췌장암 쥐에서 고해상도 초음파의 활용. 기본 목표 탐지 및 내 인 성 췌 장 종양의 평가 대 한 자세한 지침을 제공 하는.

고해상도 초음파 모니터 종양 발병 및 성장 췌장암 유전자 조작된 모델에서을 활용 하 여

Murine 방광 종양 N-butyl-N-(4-hydroxybutyl) nitrosamine 발암 물질 (BBN)으로 유발 됩니다. 방광 종양 생성은 이기종; 따라서, 종양 짐의 정확한 평가 랜덤 실험적인 치료를 하기 전에 필요 하다. 여기 우리는 빠르고, 신뢰할 수 있는 MRI 프로토콜 종양 크기 및 단계 평가를 제시.

발암 물질 유발 Murine 방광 종양의 자기 공명 영상 평가

우리는 모린 유래 췌장 선암 세포주를 직접 네이티브 종양 부위로 유도하는 초음파 유도 이식프로토콜을 설명합니다. 이 접근법은 주사 후 2-4주 이내에 초음파 스캐닝에 의해 검출가능한 췌장 종양을 초래하고, 외과 정형외과 이식에 비해 각막벽에 종양 세포 파종을 현저히 감소시켰다.

뮤린 췌장 연성 선암의 초음파 유도 정형 외 이식

두개 내 뇌 전이 모델링은 정확하고 시기 좋은 방법으로 치료에 종양 크기와 반응을 모니터링할 수 없다는 것에 의해 복잡합니다. 제시된 방법론은 자기 공명 화상 진찰 분석과 두개 내 종양 주입을 결합할 때, 정확하고 일관된 주사, 향상된 동물 감시 및 정확한 종양 부피 측정을 육성합니다.

두개 내 주입 및 자기 공명 이미징을 통해 뇌 전이를 모델링

임상 맥락에서, 국소췌암을 가진 환자는 부주 처리를 선행한 pancreatectomy를 겪게 될 것입니다. 여기에서 보고된 이 프로토콜은 말단 판생성 절제술 및 비장 절제술다음에 췌장암의 정형소 이식을 통해 누드 마우스에서 이 임상 시나리오를 모델링하는 안전하고 효과적인 방법을 확립하는 것을 목표로 합니다.

췌장암의 정형소 절제술 마우스 모델

우리는 인간 췌장암 세포의 초음파 유도 주사와 초음파 영상에 의한 생체 내 종양 성장의 후속 모니터링에 의해 최소 침습 동종 췌장암 모델을 생성하는 프로토콜을 제시합니다.

초음파 유도 주사에 의한 췌장암 세포의 동종 이종이의 생성

여기에서 우리는 간동맥 결찰을 포함하거나 포함하지 않는 동소 간세포 암종 이종이식편을 만들고 [18 F]플루오로미소니다졸([18 F]FMISO) 및 [18F]플루오로데옥시글루코스([18F]FDG).

간세포 암종의 동소 마우스 모델에서 비침습적 PET/MR 이미징

학습하세요 췌장암 마우스 모델에서 다동물 MRI를 이용한 종양 측정 방법을. KRAS 기반 유전자 변형 마우스에서 췌장 선암종종양을 효율적으로 검출하고 치료 반응을 모니터링하는 비용 효율적인 기술입니다.

췌장암 마우스 모델에서 종양 측정을 위한 다동물 자기공명영상

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