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<ol><li>Li, X. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global%2C+regional%2C+and+national+burden+of+ischemic+stroke%2C+1990%E2%80%932021%3A+an+analysis+of+data+from+the+global+burden+of+disease+study+2021%5BTitle%5D)+AND+%22EClinicalMedicine%22%5BJournal%5D)">Global, regional, and national burden of ischemic stroke, 1990–2021: an analysis of data from the global burden of disease study 2021.</a> EClinicalMedicine. , (2024).</li>
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<li>Fluri, F., Schuhmann, M. K., Kleinschnitz, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+ischemic+stroke+and+their+application+in+clinical+research%5BTitle%5D)+AND+%22Drug+Des+Devel+Ther%22%5BJournal%5D)">Animal models of ischemic stroke and their application in clinical research.</a> Drug Des Devel Ther. , (2015).</li>
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<li>Shvedova, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modified+middle+cerebral+artery+occlusion+model+provides+detailed+intraoperative+cerebral+blood+flow+registration+and+improves+neurobehavioral+evaluation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Modified middle cerebral artery occlusion model provides detailed intraoperative cerebral blood flow registration and improves neurobehavioral evaluation.</a> J Neurosci Methods. , (2021).</li>
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</ol>

```html
<table><tbody><tr><td>2% TTC 염색 용액</td><td>Solarbio</td><td>G3005</td><td></td></tr><tr><td>Agorose</td><td>Biosharp</td><td>BS081</td><td></td></tr><tr><td>체온 유지 시스템 / 체온 모니터</td><td>RWD life Science</td><td>69002</td><td></td></tr><tr><td>두개골 나사</td><td>Zhongke Huida</td><td>23092007</td><td></td></tr><tr><td>데이터 수집 및 분석 소프트웨어(파이버 광도계)</td><td>RWD life Science</td><td>ORFs</td><td></td></tr><tr><td>데이터 수집 및 분석 소프트웨어(다중 채널 전기생리학)</td><td>Plexon</td><td>PlexControl, Offline Sorter, Neuroexplorer&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>디지털 실험실 스테레오탁틱 프레임</td><td>RWD life Science</td><td>68804</td><td></td></tr><tr><td>핀셋</td><td>FST</td><td>11252-00</td><td>핀셋 직경 0.005 mm &acute; 0.025 mm</td></tr><tr><td>레이저 전력 미터</td><td>Sanwa</td><td>LP10</td><td></td></tr><tr><td>레이저 스펙클 혈류 이미징 시스템</td><td>Pericam AB</td><td>Pericam PSI NR</td><td></td></tr><tr><td>마우스</td><td>Risemice</td><td>C57BL/6J</td><td></td></tr><tr><td>소형 휴대용 두개골 드릴</td><td>RWD life Science</td><td>78001</td><td></td></tr><tr><td>마우스 바이러스 마이크로 인젝터</td><td>RWD life Science</td><td>68025</td><td></td></tr><tr><td>옵트로드</td><td>사용자 정의</td><td>Kedou</td><td>16개의 텅스텐 전극과 1개의 광섬유로 구성된 사용자 정의</td></tr><tr><td>Prism</td><td>GraphPad</td><td>5.01 버전</td><td></td></tr><tr><td>R studio</td><td>Posit</td><td>버전 4.4.1</td><td></td></tr><tr><td>rAAV-GfaABC1D-GCaMP6s</td><td>BrainVTA</td><td>PT-2560</td><td>성상교세포 특이적 칼슘 표지자</td></tr><tr><td>rAAV-GfaABC1D-opto-vTrap</td><td>BrainCase</td><td>BC-2446</td><td>성상교세포 특이적 광유전학 바이러스 벡터</td></tr><tr><td>로즈 벤갈 염료</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>198250</td><td>혈전 유도용 광민감 염료/Sigma-Aldrich</td></tr><tr><td>트롤리 장착형 마취 워크스테이션</td><td>RWD life Science</td><td>R520</td><td>마우스용 제어 가능한 흡입 마취를 위한 마취기</td></tr></tbody></table>
```

광혈전성 뇌졸중 모델링과 행동하는 쥐의 신경 및 성상세포 활동의 생체 내 옵트로드 기록을 위한 통합 방법

An Integrated Method for Photothrombotic Stroke Modeling and In Vivo Optrode Recording of Neuronal and Astrocytic Activity in Behaving Mice

Investigating astrocyte-neuron dynamics following ischemic stroke is essential for understanding post-stroke recovery mechanisms. However, current ...

본 연구에서는 행동 중인 마우스의 허혈성 뇌졸중 동안 성상교세포와 뉴런의 활동을 동시에 기록하는 통합 방법을 개발했습니다. 기존 방법들은 뉴런 또는 성상교세포를 개별적으로 기록했습니다. 본 프로토콜은 뇌졸중 발생 순간부터 성상교세포와 뉴런의 신호를 동시에 포착합니다.먼저, 깊게 마취된 C57BL/6J 마우스를 마취 마스크가 장착된 정위 고정 틀(stereotaxic frame)로 옮깁니다. 피드백 제어 가열 패드로 마우스의 체온을 36~37.5 °C로 유지하면서 10분마다 마취 깊이를 모니터링합니다. 눈에 안연고를 바른 후, 이어 바(ear bars)와 마우스 바(mouth bar)를 사용하여 마우스를 정위 고정 틀에 고정합니다.머리가 대칭적으로 고정되면 가볍게 확인하여 머리 고정 상태를 점검합니다. 제모 및 피부 무균 처리를 마친 후, 수술용 가위로 중앙 절개를 실시합니다. 생리식염수와 면봉으로 골막을 닦아내어 bregma와 lambda를 노출시킵니다.유리 마이크로피펫을 내려 Bregma와 Lambda에 순차적으로 접촉시킵니다. 디지털 버니어 캘리퍼스에서 Z 좌표를 확인한 후, 두 지점의 차이가 0.04 mm 미만이 될 때까지 마우스 바(mouth bar)를 조절합니다. 유리 마이크로피펫을 내려 Bregma에 접촉시킨 후 디지털 버니어 캘리퍼스를 0으로 리셋합니다.마이크로피펫을 브레그마(bregma) 기준 좌우로 각각 2.3 millimeters씩 차례로 이동시킵니다. Z 좌표를 기록한 후, 양측의 차이가 0.04 millimeters 미만이 될 때까지 이어바(ear bars)를 조정합니다. 브레그마에서 디지털 버니어 캘리퍼스를 0으로 리셋한 다음, 전후(anterior posterior) +1.5 millimeters, 내외(medial lateral) +0.74 millimeters 지점에 운동 피질 전지 영역(motor cortex forelimb area)을 표시합니다.마이크로 드릴과 0.5 millimeter 원형 팁 드릴 비트를 사용하여 표시된 위치에 직경 약 0.5 millimeters의 작은 구멍을 뚫습니다. 주입 전, 두 가지 아데노 부속 바이러스 벡터를 동일한 부피로 혼합하고 샘플을 짧게 원심 분리합니다. 마이크로 주입 펌프에 연결된 유리 마이크로 피펫을 뇌 표면으로부터 배측-복측 깊이 -0.94 millimeters의 표적 부위까지 내립니다.각 벡터 200 nanoliters가 포함된 바이

an-integrated-method-for-photothrombotic-stroke-modeling-vivo-optrode

Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

이 비디오는 감광성 염료 투여 후 손상되지 않은 두개골의 레이저 조명으로 마우스 모델에서 광혈전 스트로크를 생성하는 절차를 보여줍니다.

마우스 모델의 광혈전성 스트로크 모델링: 광혈전증을 유발하기 위해 감광성 염료 투여 후 마우스 두개골을 통한 레이저 조명 기술

출처: Maruoka, H., et. al. 깨어 있는 쥐의 미세아교세포 역학 및 신경 활동의 동시 이미징.J. Vis. Exp. (2022) 이 비디오는 시각적 자극 중 깨어 있는 쥐의 신경 활동과 미세아교세포 역학을 이미징하기 위한 이광자 현미경 절차를 보여주며 칼슘 과도 및 세포 상호 작용을 강조합니다.

깨어 있는 쥐에서 미세아교세포의 역학과 신경 활동의 동시 이미징(Simultaneous Imaging of Microglial Dynamics and Neuronal Activity in an Awake Mouse)

Photothrombosis 매우 재현성 방식으로 관심 분야의 작은 잘 구분 경색을 유도하기위한 빠르고, 최소 침습 기술입니다. 그것은 형질 전환 생쥐에서 뇌의 가소성을 기본 세포 및 분자 반응 연구를 위해 특히 적당하다.

Photothrombotic 국소 빈혈 : 마우스 스트로크 연구를위한 최소 침습 및 재현성 광화학 대뇌 피질의 병변 모델

여기에서는 생체 내 마우스의 체성 감각 피질에서 Rose Bengal 광혈전 혈전을 유도하기 위한 반침습적 광학 현미경 접근 방식을 설명합니다.  이미징 절차의 기술적 측면은 광혈전 이벤트의 유도에서 적용 및 데이터 수집에 이르기까지 설명됩니다.

공 초점 광학 이미징에 의해 로즈 벵갈 Photothrombosis<em&gt; 생체</em&gt; : 단일 선박 스트로크의 모델

이 비디오는 Thy1-GFP 형질전환 라인에서 생체 내 2광자 현미경을 사용하여 마우스 후비장 피질의 뉴런을 만성적으로 이미징할 수 있는 개두술 절차를 보여줍니다. 이 접근법은 mCherry 발현 아데노 관련 바이러스를 배측 해마에 주입하는 것과 결합됩니다. 이러한 기술을 통해 RSC에서 경험 의존적 구조적 가소성을 장기간 모니터링할 수 있습니다.

동시에 두 광자<em&gt; 생체</em&gt; 마우스 Retrosplenial 코어 텍스에서 시냅틱 입력의 이미징 및 시냅스 대상

이 프로토콜은 대뇌 thromboemboli을 시각화 결합 된 근적외선 형광 (NIRF) 이미징 및 마이크로 컴퓨터 단층 촬영 (microCT)의 응용 프로그램을 설명합니다. 이 기술은 혈전 부담과 진화의 정량화 할 수 있습니다. microCT 기술은 금 나노 입자를 사용하여 살아있는 동물 내부 혈전 가시화하면서 NIRF 이미징 기술은 형광 절제 뇌 혈전 표지 가시화.

직접 대뇌 Thromboemboli 시각화를위한 결합 된 근적외선 형광 이미징 및 마이크로 계산 된 단층 촬영

여기에 설명된 광혈증 뇌졸중 모델은 감광성 염료투여 후 레이저 조명을 이용하여 영구 미생물 폐색을 유도하여 손상되지 않은 두개골을 통해 뇌졸중이 생성된다.

마우스에서 뇌졸중 모델링: 포심 피질 병변

여기에서 우리는 깨어 있는 마우스에서 소교세포 역학과 신경 활동의 동시 이미징을 위해 아데노 관련 바이러스 주입과 두개골 창 이식을 결합한 프로토콜을 설명합니다.

깨어 있는 생쥐의 소교세포 역학 및 신경 활동의 동시 이미징

밀리미터 크기의 코일과 결합된 저비용 뇌파 기록 시스템은 생체 내에서 마우스 뇌의 경두개 자기 자극을 유도하기 위해 제안되었습니다. 맞춤형의 유연한 다중 전극 어레이 기판이 있는 기존의 나사 전극을 사용하여 경두개 자기 자극에 대한 반응으로 마우스 뇌에서 다중 부위 기록을 수행할 수 있습니다.

생체 내에서 마우스 뇌를 경두개로 자극하기 위해 밀리미터 크기의 코일과 결합된 저비용 뇌파 기록 시스템

이 프로토콜은 형광 스티렌 미세구를 이용한 생 체 내 2광자 현미경 영상에 최적화된 만성 두개골 창문 및 미세혈관 색전증 마우스 모델에 대한 단계별 접근법을 상세히 설명하고 있습니다.

형광 폴리스티렌 미세구를 이용한 생체 내 2광자 현미경용 미세혈관 색전증 마우스 모델

모든 광학 접근 방식을 사용하여 허혈성 뇌졸중을 유도하는 동시에 깨어 있고 행동하는 마우스의 새로운 뇌졸중 코어에서 형광 바이오센서를 사용하여 신경 Ca2+ 활동을 기록합니다.

행동하는 마우스에서 허혈성 뇌졸중을 유도하고 모니터링하기 위한 동시 광혈전증 및 섬유 측광

133 조회수.  Guangzhou University of Chinese Medicine. 우리의 연구는 행동하는 생쥐의 허혈성 뇌졸중 동안 항성교세포와 뉴런 활동을 동시에 기록하는 통합 방법을 개발합니다. 이전 방법은 뉴런이나 항성교세포를 별도로 기록했습니다. 우리의 프로토콜은 뇌졸중 발생 순간부터 항성교세포와 뉴런 신호를 동시에 포착합니다.시작하기 위해, 깊은 마취를 받은 C57BL/6J 생쥐를 마취 마스크가 장착된 스테레오탁시 프레임으로 ?...

광혈전성 뇌졸중 모델링과 행동하는 쥐의 신경 및 성상세포 활동의 생체 내 옵트로드 기록을 위한 통합 방법

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