Methodenartikel

Nematodensynchronisatie: een methode om populaties wormen in identieke stadia van ontwikkeling te verkrijgen

30 april 2023

In dit artikel

Samenvatting

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bron: Sarasija, S. and Norman, K.R. Measurement of Oxygen Consumption Rates in Intact Caenorhabditis elegansJ.Vis. Exp. (2019).

In deze video laten we een methode zien om een ontwikkelingsgesynchronleerde populatie steriele volwassen C. elegans teproduceren. Het voorbeeldprotocol synchroniseert wormen om zuurstofverbruik bij levende dieren te bestuderen.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Dit protocol is een uittreksel uit Sarasija en Norman, Measurement of Oxygen Consumption Rates in Intact Caenorhabditis elegans, J. Vis. Exp. (2019).

1. Groei en synchronisatie van nematodenpopulatie

Deze dieren bereiken het L4 larvale stadium na ~42 uur. Verplaats op dit moment de L4-larven met behulp van een platinapriem naar OP50 gezaaide NGM-platen met 0,5 mg/ml 5-fluoro-2'-deoxyuridine (FUdR) om te voorkomen dat ze nakomelingen produceren.
OPMERKING Zorg ervoor dat binnen een experiment alle stammen gedurende een vergelijkbare tijd worden gesynchroniseerd. FUdR-behandeling steriliseert de dieren en voorkomt het leggen van eieren en de productie van nakomelingen, wat OCR kan beïnvloeden. Deze gesteriliseerde dieren worden de volgende dag (dag 1 volwassen dieren om ~66 uur) geanalyseerd voor de test. FUdR heeft naar verluidt invloed op de fysiologie en levensduur van bepaalde gemuteerde wormen. Daarom moet hiermee rekening worden gehouden wanneer het medicijn wordt gebruikt voor sterilisatie. Wormen kunnen ook gesteriliseerd worden door middel van feminizing mutaties zoals fem-1(hc17) of fem-3(e2006). Deze mutaties kunnen echter van invloed zijn op de mitochondriale functie.

  1. Breng L4-larven met de gewenste genetische achtergronden (bijv. N2 [wild type] en sel-12 dieren) over op nematodengroeimedia (NGM) platen (zie tabel 1 voor recept) vers gezaaid met een gazon van Escherichia coli (OP50). Gebruik ten minste twee platen van 100 mm of drie platen van 60 mm voor elke soort. Incubeer de wormen bij de juiste groeitemperatuur (tussen 15-25 °C) gedurende 3-4 dagen of totdat de platen zijn geconcentreerd met een groot aantal eieren en gravidwormen.
  2. Was de eieren en wormen van de platen met ongeveer 6 ml M9 buffer (zie tabel 1 voor recept) per 100 mm bord nematoden en breng ze over met glazen Pasteur pipetten in individuele 15 ml centrifugebuizen voor elke soort. Draai deze buizen 3 minuten naar beneden op 6.180 x g en aspireer de M9-buffer, waarbij alleen de dieren en de eierenkorrel behouden blijven.
  3. Voeg 3-4 ml bleekoplossing (zie tabel 1 voor recept) toe aan elke buis en draai met tussenpozen gedurende 6 minuten. Voeg M9-buffer toe om elke buis te vullen en draai gedurende 1 minuut op 6.180 x g en aspireer supernatant. Herhaal deze was drie keer met M9 en verplaats de eierkorrel naar een verse buis van 15 ml met ongeveer 9 ml M9-buffer.
  4. Synchroniseer de vers uitgebroede wormen door gedurende 16-48 uur bij 20 °C te noteren. Draai deze buizen gedurende 1,5 min op 6.180 x g en leg de gesynchroniseerde L1-dieren neer op individuele NGM-platen die vers zijn gezaaid met een gazon van OP50 (ongeveer 6.000-10.000 dieren per plaat van 100 mm) en houd ze op 20 °C.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tabel 1: Recepten voor NGM-platen, M9-buffer en bleekoplossing.

M9 buffer (1 L)
dH2O1.000 ml
Nacl5 g
KH2PO43 g
Na2HPO46 g

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Geen belangenconflicten aangegeven.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
100 mm; 60 mm Petri dishesKord-Valmark Labware Products2900; 2901
15 mL conical tubesCorning430791
50 mL conical tubesCorning430829
AgarFisher ScientificBP1423-2
Bacto peptoneBD; Bacto211677
Bacto tryptoneBD; Bacto211705
Bacto yeast extractBD; Bacto212705
BleachGeneric
Calcium chloride dihydrate (CaCl2·2H2O)Fisher ScientificC79-500
CholesterolFisher ScientificC314-500
Deionized water (dH2O)
Glass Pasteur pipettesKrackeler Scientific6-72050-900
Magnesium sulfate heptahydrate (MgSO4·7H2O)Fisher ScientificBP213-1
Potassium phosphate dibasic (K2HPO4)Fisher ScientificBP363-1
Potassium phosphate monobasic (KH2PO4)Fisher ScientificP285-500
Sodium chlorideFisher ScientificBP358-10
Sodium hydroxide (NaOH)Fisher ScientificBP359-500
Sodium phosphate dibasic anhydrous (Na2HPO4)Fisher ScientificBP332-1

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

C elegansL1 larvenL4 larvenbleekbehandelingM9 bufferFUdR behandelingNematode Growth Mediazuurstofverbruiksteriele volwassenen

Gerelateerde artikelen