Deze video toont een protocol methode voor het genereren van transgene Xenopus laevis Door de introductie van transgenen in spermakernen gevolgd door nucleaire transplantatie in onbevruchte eieren.
Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.
Methodenartikel
Deze video toont een protocol methode voor het genereren van transgene Xenopus laevis Door de introductie van transgenen in spermakernen gevolgd door nucleaire transplantatie in onbevruchte eieren.
Stabiele integratie van gekloonde gen producten in de Xenopus genoom is nodig om de tijd en plaats van meningsuiting controle, om genen te uiten in een later stadium van de embryonale ontwikkeling, en om te bepalen hoe enhancers en initiatiefnemers van genexpressie reguleren binnen het embryo. Het protocol blijkt hier kan gebruikt worden om efficiënt te produceren transgene Xenopus laevis embryo's. Deze transgenese wordt in drie delen: 1. Spermakernen zijn geïsoleerd van volwassen X. laevis testis door behandeling met lysolecithin, waarbij het sperma plasmamembraan permeabilizes. 2. Ei extract wordt bereid door lage snelheid centrifugeren, toevoeging van calcium aan het extract zorgen om de voortgang te interfase van de celcyclus, en een high-speed centrifugatie om interfase cytosol isoleren. 3. Nucleaire transplantatie: de kernen en extract worden gecombineerd met de gelineariseerde plasmide DNA worden ingevoerd als het transgen en een kleine hoeveelheid van de restrictie-enzym. Tijdens een korte reactie, ei-extract decondenses gedeeltelijk het sperma chromatine en de restrictie-enzym genereert chromosomale breekt dat recombinatie van het transgen te bevorderen in het genoom. De behandelde spermakernen worden vervolgens getransplanteerd in onbevruchte eieren. Integratie van het transgen gebeurt meestal voorafgaand aan de eerste embryonale klieving zodanig dat de ontstane embryo's niet chimerisch zijn. Deze embryo's kunnen worden geanalyseerd zonder dat te fokken voor de volgende generatie, waardoor een efficiënte en snelle generatie van transgene embryo's voor analyses van de promotor en gen functie. Volwassen X. laevis als gevolg van deze procedure ook propageren het transgen door de kiembaan en kan gebruikt worden om lijnen van transgene dieren voor meerdere doeleinden te genereren.
Gewijzigde versies van deze transgenese aanpak werden in eerste instantie beschreven in 1 en 2.
A. spermakernen voorbereiding
Deze kernen bereidingsmethode is een bewerking van Murray 3, maar de proteaseremmers zijn weggelaten omdat ze interfereren met verdere ontwikkeling van eieren getransplanteerd met sperma kernen. Porties worden ingevroren bij -80 ° C en kan gebruikt worden voor transplantaties voor ongeveer 6 maanden.
Alle oplossingen moeten worden voorbereid en op ijs geplaatst voorafgaand aan het begin van de voorbereiding.
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Voor elke transgene construct te testen, hebben we over het algemeen transplantatie kernen in 500-1000 eieren, op deze schaal, kunnen we het genereren van transgene embryo's uitdrukken tot 10 verschillende constructen per dag, afhankelijk van het aantal vrouwtjes worden aangezet om eieren te leggen. Van deze transplantaties, ongeveer een derde van de eieren aankleven en 60-80% van deze embryo's splitsen normaal verder door gastrulatie. Afhankelijk van de gebruikte reactie-omstandigheden, tussen de 10-50% van dez.......
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Experimenten op dieren werden uitgevoerd in overeenstemming met de richtlijnen en voorschriften uiteengezet door de Animal Care set en gebruik Comite aan de Washington University School of Medicine.
Financiering voor ons werk wordt geleverd door de NIH, de March of Dimes, en de American Cancer Society.
....Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
A. spermakernen voorbereiding
Reagentia:
Uitrusting:
B. Bereiding van High Speed Extract
Reagentia:
Uitrusting:
C. Celkerntransplantatie.
Reagentia:
Uitrusting:
Agarose gerechten voor injectie: In een 60 mm plastic petrischaaltje lag een klein bootje 35mmX35mm wegen op gesmolten 2,5% agarose in water 0.1XMMR om een depressie te maken met een agarose-gecoate bodem voor het vullen met eieren. Zodra agarose is uitgehard, wikkel in parafilm en bewaren bij 4 ° C tot gebruik. Maak 2-3 gerechten op voorhand voor elke reactie transgene u van plan bent te doen.
Infusiepomp: We maken gebruik van een enkele spuit infusiepomp van Harvard Apparatuur, voorzien van een 3 cc spuit / naald gevuld met minerale olie (Sigma M-8410). Stompe de naald tip (om te voorkomen dat perforeren de slang) en bevestig de fijne Tygon slang. Laat de pomp op ~ 10nl/sec, dit gaat ervan uit dat de tijd dat de naald in elk ei zal niet groter zijn dan 1 sec. Pomp moet worden pre-run gedurende enkele minuten vóór het begin van transgenese voor de dag om te verzekeren dat de zuiger van de spuit is gelijk met de zuiger en dat de gestage positieve stroom van olie uit de slang zich voordoet.
Naalden voor nucleaire overdrachten. Met behulp van een micropipet trekker, het genereren van naalden met lange, schuin tips. Clip deze met een pincet in een dissectiemicroscoop uitgerust met een oculair micrometer tot een ~ 80 micron opening te verkrijgen met een schuine vorm.
Andere apparatuur: Xenopus laevis vrouwen, stereomicroscoop, incubator, micromanipulator, micro-injectie naald puller (bijv. Model P-87, Sutter), injectienaalden (26 gauge), glas micro-injectie naalden, oculair micrometer voor gekalibreerde knippen van micro-injectie naald tips om 80μm diameter, petrischalen, wegen boten 35mm, Tygon slangen (ID = 1 / 32 inch, OD = 3 / 32 inch)
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.