$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. Dier injecties
Voorafgaand aan de intraveneuze staartader injectie moet de staart huid worden gereinigd met isopropylalcohol scrubs voor sterilisatie doeleinden. Muizen dient dan te worden geïnjecteerd met 0,2 mL/20 g van een 20-mg jodium / ml jodiumhoudend contrastmiddel bloodpool (UEB 160XL, Binito Biomedical, Inc Ottawa, ON, Canada) via de distale staartader het gebruik van lage dode ruimte ½ CC U -100 28G ½ Insuline spuiten (Product # 329461, Becton Dickinson and Company, NJ, USA).
2. Dier Voorbereiding
Na 10 minuten van de injectie, moet de dieren worden voorbereid microCT beeldvorming. Ten eerste moet het dier verdoofd worden in een doos met 2% isofluraan in 100% zuurstof bij snelheid van 2,5 liter per minuut. Een oculaire smeren zalf moet worden toegepast op uitdrogen van de cornea te voorkomen tijdens de anesthesie. De lichaamstemperatuur moet worden gehandhaafd bij 37 ° C met een warmte-pads.
3. MicroCT Imaging
Muizen dan moeten worden gescand op een microCT eenheid in staat om levende dieren scans uit te voeren. Het minimaliseren van bewegingsartefacten en stabiliteit, kunnen muizen worden geplaatst in een commercieel verkrijgbare multi-modaliteit kamer (Numira Biosciences, Salt Lake City, UT) met een voorziening voor lucht-en uitlaat. Om te voorkomen dat een onderkoeld episode op het dier tijdens microCT scans, Gel Pads (Hot Koudetherapie Brace, CVS Apotheek Woonsocket, RI), Toe Warmer (Heat Factory, Vista, CA) of Thermipaq Clay Pads (Thermionics, Springfield, IL) kan worden worden gebruikt. Plaats deze verhitting pads onder het schuim bed om de muis te handhaven op 37 ° C terwijl het vermijden van direct contact met het dier. Vitale functies van het dier zoals lichaamstemperatuur, ademhaling en de hartslag moet worden gecontroleerd met behulp van de Small Animal Monitoring en Poortsignalen Systemen zoals SA Instruments (Stony Brook, NY).
De volgende imaging protocol kan worden gebruikt als een leidraad om te helpen bepalen van de juiste scan parameters voor elke microCT eenheden. De dieren die in dit experiment werden ingescand 93 micrometer resolutie op een volumetrische CT-scanner GE verkennen Locus (GE Healthcare, London, Ontario). Deze scanner maakt gebruik van een volumetrische 3500 x 1750 CCD detector voor Feldkamp cone-beam reconstructie. Het platform onafhankelijke parameters van stroom, spanning en belichtingstijd werden constant gehouden op 450 uA, 80 KVP en 100 ms, respectievelijk. De standaard parameters van de belichtingstijd, kunnen frames-per-view en het aantal views worden gevarieerd en kan 100 ms, 5-8, en 360 tot 720, respectievelijk met een totale scan tijd van ongeveer 20 minuten. Beelden werden gereconstrueerd met de eigendomsrechten van de fabrikant EVSBeam software.
4. Image Rendering
De gereconstrueerde microCT gegevens kunnen worden gebruikt voor geavanceerde isosurface, eendimensionale, of twee-dimensionale overdracht van de functie het renderen van afbeeldingen met behulp van Seg3D beeldverwerking software (Seg3D, http://www.sci.utah.edu/cibc/software ).
5. Representatieve resultaten
Zie de bijgevoegde figuur van een wild-type muizen gescand met eXIA160XL met de instellingen die in methoden sectie.

Figuur 1. Tweedimensionale Transfer Function (2DTF) rendering beeld van een wild-type muizen gemaakt met Seg3D beeldverwerking software (Seg3D, http://www.sci.utah.edu/cibc/software ). Het dier werd geïnjecteerd met eXIA160XL en 10 minuten later microCT gescand op 93 micrometer isometrische met een resolutie van de instellingen genoemd in methoden sectie.
Video 1. Tweedimensionale Transfer Function (2DTF) weergave op basis van 360 ° rotatie film van een wild-type muizen gemaakt met Imagevis3D beeldverwerking software (Imagevis3D, http://www.sci.utah.edu/cibc/software). Het dier werd geïnjecteerd met eXIA160XL en 10 minuten later microCT gescand op 93 micrometer isometrische met een resolutie van de instellingen genoemd in methoden sectie.
Klik hier om de video te bekijken