Methodenartikel

Analyse van influenza-virusinternalisatie met behulp van een streptavidine-blokkeringsassay

18 weergaven

31 augustus 2026

In dit artikel

Samenvatting

Bron: Pohl, M. O. & Stertz, S. Het meten van aanhechting en internalisatie van influenza A-virus in A549-cellen via flowcytometrie. J. Vis. Exp. (2015) Deze video demonstreert het gebruik van een streptavidine-blockeringsassay om oppervlaktegebonden influenza-virus te onderscheiden van geïnternaliseerd virus in humane longepitheelcellen. Vergelijking van fluorescentiesignalen laat zien dat een hogere intensiteit na incubatie wijst op een succesvolle virale internalisatie. Pohl, M. O. & Stertz, S. Het meten van de aanhechting en internalisatie van influenzavirus A in A549-cellen middels flowcytometrie. J. Vis. Exp. (2015)

Deze video demonstreert het gebruik van een streptavidine-blockeringsassay om oppervlaktegebonden influenza-virussen te onderscheiden van geïnternaliseerde influenza-virussen in menselijke longepitheelcellen. Vergelijking van fluorescentiesignalen laat zien dat een hogere intensiteit na incubatie wijst op een succesvolle virale internalisering.

Protocol

1. Assay voor aanhechting/internalisatie

OPMERKING: Zorg ervoor dat alle reagentia zijn voorbereid voordat u met de assay begint. Voor de drie controlegroepen die in de resultaten sectie worden gepresenteerd (mock-geïnfecteerde cellen, neuraminidase-voorbehandelde cellen en met natriumazide behandelde cellen) zijn kleine wijzigingen in het protocol vereist.

  1. Bereid 16 deepwell-buisjes voor die elk 20.0 A549-cellen bevatten. Naast de experimentele set bestaande uit 4 buisjes zijn er 3 controlecondities, elk met 4 buisjes: mock-geïnfecteerde cellen, neuraminidase (NA)-voorbehandelde cellen en natriumazide-behandelde cellen. Elke groep bestaat uit 4 buisjes gelabeld als '0 min', '0 min + streptavidine (STV)', '30 min' en '30 min + STV'.
  2. Centrifugeer de buisjes 3 min bij 450 x g bij 4 °C. Verwijder het supernatant en resuspendeer het pellet in 20 µl fosfaatgebufferde zoutoplossing (PBS).
  3. Centrifugeer de buisjes bij 4 °C bij 450 x g. Verwijder het supernatant en resuspendeer het pellet in 20 µl Dulbecco's modified Eagle medium (DMEM) bevattende 0,3% runderalbumine (BSA), 20 mM 4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethansulfonzuur (HEPES) en 1% penicilline-streptomycine (incubatiemedium). Incubeer 30 min bij 37 °C.
    OPMERKING: Voor de neuraminidasecontrole: Gebruik bacteriële neuraminidase (bijv. sialidase van Vibrio cholera) in een concentratie van 20 mU/ml verdund in incubatiemedium om de cellen te resuspenderen.
  4. Centrifugeer de buisjes 3 min bij 450 x g bij 4 °C. Verwijder het supernatant en resuspendeer het pellet in 20 µl PBS. Herhaal deze stap nogmaals en koel de buisjes vervolgens 10 min op ijs af.
  5. Centrifugeer de buisjes 3 min bij 450 x g bij 4 °C. Verwijder het supernatant en resuspendeer het pellet in 10 µl gebiotineerd virus (gebruik de virusconcentratie zoals bepaald in sectie 2, verdund in infectie-PBS). Incubeer 1 uur op ijs.
  6. Centrifugeer de buisjes 3 min bij 450 x g bij 4 °C. Verwijder het supernatant en resuspendeer het pellet in 20 µl PBS. Herhaal deze stap nogmaals.
    OPMERKING: Voor de mock-geïnfecteerde controle: Gebruik infectie-PBS zonder virus. Voor de natriumazidecontrole: Gebruik virus verdund in infectie-PBS aangevuld met 0,1 % natriumazide.
  7. Verwerking van de monsters na de infectie op ijs:
    1. Volg voor de '0 min'-monsters stap 2.5 en bewaar de monsters bij 4 °C totdat de overige monsters zijn gefixeerd.
    2. Centrifugeer voor de '0 min + STV'-monsters de buisjes 3 min bij 450 x g bij 4 °C. Verwijder het supernatant en resuspendeer de pellets in 50 µl STV (gebruik de concentratie zoals bepaald in sectie 3) verdund in PBS bevattende 2% BSA en 0,1% natriumazide (om internalisatie tijdens het verwerken van het monster te voorkomen). Incubeer 30 min op ijs.
    3. Centrifugeer de buisjes 3 min bij 450 x g bij 4 °C. Verwijder het supernatant en resuspendeer het pellet in 20 µl PBS. Herhaal deze stap nogmaals.
    4. Centrifugeer de buisjes voor fixatie 3 min bij 450 x g bij 4 °C. Verwijder het supernatant en resuspendeer het pellet in 10 µl 3,7% paraformaldehyde (PFA). Incubeer 10 min bij RT. Herhaal daarna de wasstap zoals beschreven in 1.6) en bewaar de monsters bij 4 °C.
    5. Centrifugeer voor de '30 min'-monsters de buisjes 3 min bij 450 x g bij 4 °C. Verwijder het supernatant en resuspendeer het pellet in 20 µl PBS bevattende 2% BSA. Incubeer 30 min bij 37 °C. Volg stappen 1.7.3-1.7.4 en bewaar de monsters bij 4 °C.
      OPMERKING: Voor de natriumazidecontrole: Gebruik PBS aangevuld met 2 % BSA en 0,1 % natriumazide voor de incubatie van 30 min bij 37 °C.
    6. Centrifugeer voor de '30 min + STV'-monsters de buisjes 3 min bij 450 x g bij 4 °C. Verwijder het supernatant en resuspendeer het pellet in 20 µl PBS bevattende 2% BSA. Incubeer 30 min bij 37 °C. Centrifugeer daarna de buisjes 3 min bij 450 x g bij 4 °C. Verwijder het supernatant en resuspendeer de pellets in 50 µl STV (gebruik de concentratie zoals bepaald in sectie 3) verdund in PBS bevattende 2% BSA en 0,1% natriumazide (om internalisatie tijdens het verwerken van het monster te voorkomen). Incubeer 30 min op ijs. Volg stappen 1.7.3-1.7.4 en bewaar de monsters bij 4 °C.
      OPMERKING: Voor de natriumazidecontrole: Gebruik PBS aangevuld met 2 % BSA en 0,1 % natriumazide voor de incubatie van 30 min bij 37 °C.
  8. Centrifugeer de buisjes voor permeabilisatie 3 min bij 450 x g bij 4 °C. Verwijder het supernatant en resuspendeer het pellet in 10 µl PBS bevattende 0,5% Triton X-10. Incubeer 6 min bij RT. Herhaal daarna de wasstap zoals beschreven in 1.6).
  9. Centrifugeer de buisjes 3 min bij 450 x g bij 4 °C. Verwijder het supernatant en resuspendeer het pellet in 50 µl 2% BSA verdund in PBS bevattende STV-Cy3. (Let op: de juiste concentratie STV-Cy3 moet vóór aanvang van het experiment worden bepaald. Begin met een concentratie van 1:20 en test 2-voudige verdunningen tot 1:2.40. In onze praktijk bleek een verdunning van 1:1.00 optimaal te zijn.)
  10. Incubeer 1 uur in het donker bij RT. Herhaal daarna de wasstap zoals beschreven in 1.6, maar resuspendeer het pellet in 20 µl 2% BSA verdund in PBS.
  11. Analyseer de monsters via flowcytometrie. Bepaal het percentage Cy3-positieve cellen in elk monster.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
DMEMLife Technologies41966-052 
FBSLife Technologies10270-106 
Penicilline-streptomycineLife Technologies15140-163 
PBSLife Technologies14190-169 
BSAVWR Calbiochem126579 
HEPESLife Technologies15630-100 
D-sucroseFluka84100 
Bio Rad Protein Bio AssayBio Rad500-0006 
Deepwell-buisjes (1,2 ml microtubes)Milian82 00 001 
PFALucerna chem Electron microscopy sciences15710 
UltracentrifugebuizenHemotec GmbH253070 
Triton X-10Fluka93420 
STV-Cy3Life Technologies43-4315 
STVLife Technologies43-4302 
NatriumazideFluka71290 
Bacteriële neuraminidase/sialidaseSigma-AldrichN6514-1UN 

Trefwoorden

Flowcytometriemenselijk longepitheelgebiotinyleerd virusoppervlaktgebonden virusvirale opnamecelpermeabilisatiefluorescentieanalyse