1. Transfectie van HEK293-cellen met recombinant adeno-geassocieerd virus 9 (rAAV9)-plasmiden
- Bereid een 1 µg/µl lineaire polyethylenimine (PEI)-oplossing voor. Los PEI-poeder op in endotoxine-vrij dH2O dat is verhit tot 70-80 °C. Neutraliseer de oplossing na afkoeling tot RT naar pH 7,0 met 1 M HCl. Steriliseer de oplossing door filtratie (0,2 µm). Verdeel de 1 µg/µl PEI-stockoplossing in aliquoten (1.40 µl/buisje) en bewaar de oplossing bij -20 °C.
- Kweek HEK293-cellen in Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) met 10% foetaal kalfsserum (FBS) en 1% penicilline/streptomycine. Kweek de cellen in een incubator bij 37 °C met 5 ± 0,5% kooldioxide (CO2).
- Plate op dag 0 de HEK293-cellen in tien 150-mm schalen 18-20 uur voor transfectie door > 90% conflueente cellen in een 1:2 verdunning te splitsen.
OPMERKING: Op dag 1 moeten de cellen een confluentie van 90% hebben bereikt. - Transfecteer op dag 1 de HEK293-cellen met het rAAV9-plasmide (bijv. rAAV9.cTNT::GFP of rAAV6.U6::shRNA constructen), het Ad-Helper-plasmide en het AAV-Rep/Cap-plasmide met behulp van PEI.
- Meng voor 10 schalen cellen met 90% confluentie 70 µg AAV-Rep/Cap-plasmide, 70 µg rAAV9-plasmide en 20 µg Ad-Helper-plasmide in een centrifugebuis van 50 ml.
- Pas de DNA-hoeveelheid proportioneel aan als de cellen minder confluent zijn. Als de cellen bijvoorbeeld 75% confluent zijn, verminder dan de DNA-hoeveelheid proportioneel (75/90 van de hoeveelheid vermeld in stap 1.4.1): meng 70 x 75/90 = 58,3 µg AAV-Rep/Cap-plasmide, 70 x 75/90 = 58,3 µg rAAV9-plasmide en 20 x 75/90 = 16,7 µg Ad-Helper-plasmide in een centrifugebuis van 50 ml.
- Voeg 49 ml RT DMEM (zonder FBS) toe aan de buis van 50 ml en meng goed.
- Voeg 1.360 µl PEI-oplossing toe zodat de PEI:DNA-ratio (v/w) 4:1 bedraagt. Meng goed. Incubeer bij RT gedurende 15 - 30 min.
- Voeg 5 ml van het mengsel dat in stap 1.4.4 is bereid toe aan elke 150-mm schaal (50 ml van het mengsel voor tien 150-mm schalen).
- Kweek de cellen in een incubator bij 37 °C met 5 ± 0,5% CO2 gedurende 60-72 uur.