Om de progressie van een immuunrespons na verloop van tijd in dezelfde muis volgen, kunnen de lymfeklieren achter elkaar worden verwijderd door een operatie. Hier wordt beschreven hoe deze techniek kan worden uitgevoerd.
Methodenartikel
Om de progressie van een immuunrespons na verloop van tijd in dezelfde muis volgen, kunnen de lymfeklieren achter elkaar worden verwijderd door een operatie. Hier wordt beschreven hoe deze techniek kan worden uitgevoerd.
Op het gebied van de immunologie, om de progressie van een immuunrespons tegen een vaccin, een infectie of tumor te begrijpen wordt de reactie vaak tijd te volgen. Ook de studie van lymfocyten homeostase vergt tijd natuurlijk experimenten. Het uitvoeren van deze studies in dezelfde muis is ideaal om de experimentele variabiliteit en het aantal muizen gebruikt verminderen. Blood terugtrekking kan uitvoeren van tijdsverloop experimenten maar geeft slechts over circulerende lymfocyten en geeft een beperkt aantal cellen 1-4. Sinds lymfocyten circuleren door het lichaam en die woonachtig zijn in de lymfeklieren hebben verschillende eigenschappen, is het belangrijk om te onderzoeken beide locaties. De sequentiële verwijdering van lymfeklieren door een operatie biedt een unieke gelegenheid om een immuunrespons of immuun cel expansie in dezelfde muis over de tijd te volgen. De techniek levert tussen 1 2x10 6 cellen per lymfeknoop die voldoende is om ierform fenotypische karakterisering en / of functionele assays. Sequential lymfklier operatie of lymfadenectomie is met succes gebruikt door ons en anderen 5-11. Hier beschrijven we hoe de arm en lies lymfeklieren kan worden verwijderd door een kleine incisie in de huid van een narcose muis. Sinds de operatie is oppervlakkig en snel gedaan, de muis herstelt heel snel geneest goed en niet een overmatige pijn. Elke tweede dag, is het mogelijk om oogsten een of twee lymfeknopen waardoor tijdsverloop experimenten. Deze techniek is dus geschikt om de eigenschappen van lymfeknoop-verblijvende lymfocyten bestuderen tijd. Deze aanpak is geschikt voor verschillende experimentele ontwerpen en wij geloven dat veel laboratoria baat zouden hebben bij het uitvoeren van opeenvolgende lymfeknoop operaties.
1. Voorbereiding voor de operatie
Muizen werden behandeld in overeenstemming met de Canadese Raad voor Dierenaangelegenheden Care richtlijnen.
2. De operatie
3. Postoperatieve zorg
4. Lymfkliertest Handling
5. Representatieve resultaten
Een voorbeeld van voorwaartse en zijwaartse verstrooiing ppartij wordt getoond LNS geoogst van een verdoofd muizen door een operatie of een opgeofferd muis (figuur 2). Het profiel en de percentages van cellen in de live-lymfocyt gate zijn gelijk aan te tonen dat LN chirurgie is een geschikte techniek om te oogsten cellen.

Figuur 1. Lies en arm LN lokalisatie in de muis. A. de lies LN bevindt zich net boven de achterpoot, iets in de richting van de buik. B. De arm LN bevindt zich achter het voorbeen.

Figuur 2. Flowcytometrie profiel van lymfocyten die wordt verkregen na LN chirurgie. Vooruit en zijwaartse verstrooiing profielen worden getoond voor LNS geoogst van een Anesthetized muis door een operatie (A) of van een geofferd muis (B). LNS werden geoogst, gescheiden en geanalyseerd op een flow cytometer. Percentages van cellen in levende lymfocyten poort weergegeven.
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
We hebben beschreven een protocol van LN operatie die kan worden toegepast op een groot aantal experimentele systemen. Hoewel het zeer nuttig om te volgen immuunreacties of immuuncellen homeostase, deze techniek heeft een aantal beperkingen. Ten eerste kan slechts vier LNS worden geoogst. Ten tweede moet de bestudeerde immuunrespons zijn systemische of voorkomen in de oppervlakkige inguinale of brachiale (huid-drainage) LNS. Tenslotte wordt het aantal geoogste cellen beïnvloed door de kwaliteit van de LN verwijdering, t...
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Geen belangenconflicten verklaard.
Wij danken Sylvie Lesage en alle lab-leden voor de kritische lezing van het protocol. Dit werk werd ondersteund door een subsidie (MOP-77545) van de Canadese Institutes of Health Research (CIHR). Nathalie Labrecque wordt ondersteund door een FRSQ Senior Scholarship en Melissa Mathieu kreeg een NSERC Alexander Graham Bell Canada Graduate Scholarship.
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
| Naam | Bedrijf | Catalogusnummer | Opmerkingen |
|---|---|---|---|
| Reagens Naam | Vennootschap | Catalogusnummer | Reacties |
| Graefe Fine Patroon Premium tang | Harvard Apparatuur | 52-2144 | Sterk gebogen, 10 cm (4 in), 0,8 mm tip |
| Michel Clip toepassen en verwijderen tang | Harvard Apparatuur | 52-3779 | 12,5 cm (5 cm) |
| Michel Clip 100 | Harvard Apparatuur | 52-3746 | 7.5-1.75 mm |
| Temgesic (buprenorfinehydrochloride) | Schering-Plough | ||
| Vetalar (Ketamine hydrochloride) | Boniche Animal Healthcare | DIN: 01989529 | |
| Rompun (xylazine) | Bayer | DIN: 02169592 | |
| Isofluraan | ABBOTT | DIN: 02032384 | |
| Hypotears oogzalf | Novartis Ophtalmics | DIN: 02133288 | |
| Baxedin (Clorhexidine gluconaat 2% in isopropylalcohol 70%) | Omega | L0000017 | DIN: 02251477 |
Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.
Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken
Toestemming aanvragen