Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Roux-en-Y Gastric Bypass operatie bij ratten

23.6K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/3940

⸱

11 juni 2012

 ,  ,  ,  , 
1Department of Surgery, University Hospital Zürich, 2Zürich Centre for Integrative Human Physiology, University of Zürich, 3Institute of Veterinary Physiology, Vetsuisse Faculty, University of Zürich, 4Imperial Weight Centre, Department of Investigative Medicine, Imperial College London

In dit artikel

Samenvatting

Tal van studies met behulp van maag-bypass rat modellen zijn onlangs uitgevoerd om de onderliggende fysiologische mechanismen van Roux-en-Y gastric bypass-operaties te ontdekken. Dit artikel beoogt aan te tonen en de technische en experimentele details van onze gepubliceerde gastric bypass rat model te bespreken voordelen en beperkingen van deze experimentele programma te begrijpen.

Samenvatting

Momenteel is de meest effectieve therapie voor de behandeling van morbide obesitas tot significante en onderhouden gewichtsverlies te induceren met een bewezen sterfte voordeel is bariatrische chirurgie 1,2. Bijgevolg is er een gestage toename van het aantal van bariatrische operaties gedaan over de hele wereld in de afgelopen jaren met de Roux-en-Y gastric bypass (gastric bypass) zijn de meest uitgevoerde operatie 3. Tegen deze achtergrond is het belangrijk om te begrijpen van de fysiologische mechanismen die gastric bypass induceert en handhaaft het lichaamsgewicht verliezen. Deze mechanismen zijn nog niet volledig begrepen, maar kan minder honger op te nemen en verhoogde verzadiging 4,5, verhoogde energie-uitgaven 6,7, veranderde voorkeur voor voedsel hoog in vet en suiker 8,9, gewijzigd zout en water behandeling van de nier 10 als maar ook veranderingen in de darmflora 11. Dergelijke veranderingen gezien na gastric bypass kan althans ten dele het gevolg zijn van hoede operatie verandert de hormonale milieu, omdat maag-bypass verhoogt de postprandiale afgifte van peptide-YY (PYY) en glucagon-like-peptide-1 (GLP-1), hormonen die door de darm uitgebracht in de aanwezigheid van nutriënten te dringen en dat het eten van 12.

Tijdens de laatste twee decennia tal van studies met behulp van ratten zijn uitgevoerd om verdere fysiologische veranderingen te onderzoeken na de gastric bypass. De gastric bypass rat-model heeft zich bewezen als een waardevol experimentele middel niet in het minst zijn als het nauw bootst het tijdschema en de omvang van het menselijk gewicht te verliezen, maar ook stelt onderzoekers in staat te controleren en te manipuleren kritische anatomische en fysiologische factoren, waaronder het gebruik van passende controles. Bijgevolg is er een breed scala van rat gastric bypass-modellen beschikbaar in de literatuur die elders in meer detail 13-15 beoordeeld. De beschrijving van de precieze chirurgische techniek van deze modellen loopt sterk uiteen en verschilt bijvoorbeeld in termen van het zakje te groot, de lichamelijke integriteitlengtes, en het behoud van de vagale zenuw. Als gemeld, sterfte lijken te variëren van 0 tot 35% 15. Bovendien is de operatie is uitgevoerd bijna uitsluitend bij mannelijke ratten van verschillende stammen en leeftijden. Pre-en postoperatieve diëten ook sterk gevarieerd.

De technische en experimentele variaties in gepubliceerde gastric bypass ratmodellen bemoeilijken de vergelijking en identificatie van potentiële fysiologische mechanismen die betrokken zijn bij maag-bypass. Er is geen duidelijk bewijs dat een van deze modellen is superieur, maar er is een groeiende behoefte aan standaardisatie van de procedure om een ​​consistente en vergelijkbare gegevens te bereiken. Dit artikel beoogt dan ook om samen te vatten en te bespreken technische en experimentele details van onze eerder gevalideerd en gepubliceerd gastric bypass rat model.

Protocol

1. Preoperatieve zorg

  1. Verwijder voedsel van ratten 's nachts voor de operatie.
  2. Laten anesthesie in de kamer met 4-5% isofluraan en O2 flow van 2 l / min.
  3. Shave buik van borstbeen tot bekken met behulp van elektrisch scheerapparaat.
  4. Plaats verdoofde rat in rugligging op isothermische verwarmingskussen.
  5. Breng oogzalf (Vitagel) voor het plaatsen van de ratten 'snuit in de neuskegel.
  6. Houd anesthesie met isofluraan concentratie van 2-3% en O2 flow van 2 l / min.
  7. Desinfecteer de huid met Betadine-oplossing.
  8. Bevestig diepte van de anesthesie met een pincet snufje tussen de tenen van de achterpoten.
  9. Dien 5,7 mg / kg Enrofloxacine intraperitoneaal als perioperatieve antibioticaprofylaxe, en 1 mg / kg Flunixine voor pijnstilling.

2. Mediane Laparotomie

  1. Voer middellijn incisie met behulp van scalpel vanaf net onder xyphoid proces (Blade nr. 10).
  2. Mobiliseer de omtrek huid tegen Onderstrying buikspieren met behulp van Metzenbaum schaar.
  3. Open buikholte.
  4. Installeer oprolmechanismen het best mogelijke blootstelling van de operatie gebied te vergemakkelijken.

3. Biliopancreatische en Alimentary Limb

  1. Bepaal waar de twaalfvingerige darm of proximale jejunum loopt onder de dikke darm.
  2. Transect dunne darm ongeveer 10 cm aborally van hier en ligeren beide uiteinden van de darm (PDS 5-0).
  3. Plaats proximale stomp van de twee uiteinden in de linker bovenste kwadrant van de buik, maar wordt straks gebruikt worden om de biliopancreatische onderdeel van Roux-en-Y reconstructie te vormen.
  4. Plaats distale stomp van de twee uiteinden in de rechter bovenbuik van de buik want het zal later worden gebruikt om het maagdarmkanaal onderdeel van Roux-en-Y reconstructie te vormen.

4. Jejuno-jejunostomie

  1. Identificeer caecum met ileocoecal ventiel en ileum.
  2. Oraal Volg ileum voor ongeveer 25 cm. De jejuno-jejunostomie zullen hier worden geplaatst als uitgangspuntvan de gemeenschappelijke kanaal Roux-en Y-reconstructie.
  3. Ophalen biliopancreatische ledematen van links bovenste kwadrant van de buik en plaats het naast gemeenschappelijke kanaal waar je van plan bent jejuno-jejunostomie uit te voeren.
  4. Veilig biliopancreatische ledematen en gemeenschappelijk kanaal met behoud steek (PDS 6-0).
  5. Incisie beide lussen over ongeveer 10 mm met behulp van micro-schaar.
  6. Maak jejuno-jejunostomie door het uitvoeren van side-to-side anastomose met behulp van onderbroken hechtingen (PDS 6-0).
  7. Eerste volledige rugzijde en vervolgens ventrale zijde van anastomose.

5. Maag Pouch

  1. Identificeer gastro-oesofageale overgang.
  2. Mobiliseer dit gebied door het ontleden van maag-lever-en gastro-milt ligamenten met behulp van Metzenbaum schaar.
  3. Naar links maag slagader en vagale vezels van links para-oesofageale bundel zijdelings aan grote bloedingen en vagale schade aan de zenuwen wanneer kleine maag zakje is gemaakt te voorkomen.
  4. Expose gastro-oesofageale junction door het plaatsen van een wattenstaafje retro-oesophageally.
  5. Stollen kleine schepen van de frontale maag met behulp van commercieel beschikbare cauterisatie-apparaat - ook om bloedingen te voorkomen.
  6. Transect maag ongeveer 5 mm onder gastro-oesofageale overgang creëren van maag zakje met een omvang van niet meer dan 2-3% van de originele maag grootte met behulp van fijne, gebogen schaar.
  7. Sluiten maag overblijfsel (PDS 5-0).

6. Gastro-jejunostomie

  1. Ophalen voedings ledematen van rechts bovenste kwadrant van de buik en plaats hem naast de maag zakje.
  2. Maak Gastro-jejunostomie door het uitvoeren van end-to-side anastomose (PDS 7-0).
  3. Eerste complete achterkant en dan voorkant van anastomose.

7. Abdominale Sluiting

  1. Verminder anesthesie door het verminderen van isofluraan concentratie tot 1,5%.
  2. Sluit spierlaag van buikwand met een continue hechtingen (PDS 4-0).
  3. Dien 100 pi van 0,3 mg / mlbuprenorfine subcutaan oplossing voor pijnstilling.
  4. Verder terug te dringen isofluraan concentratie tot 1%.
  5. Sluit de huid met behulp van onderbroken hechtingen (Vicryl 4-0).

8. Postoperatieve zorg

  1. Stop met isofluraan en ga verder met O2.
  2. Dien 5 ml warme zoutoplossing voor vloeistof substitutie in drie subcutane depots.
  3. Positie rat onder rood licht tot volledig herstel.
  4. Zet de rat om naar huis te kooi.

9. Representatieve resultaten

Dieren en huisvesting

Mannelijke Wistar ratten (Harlan Laboratories Inc, Sleedoorn, Verenigd Koninkrijk;. Elevage Janvier, Le-Genest-St Isle, Frankrijk) met een gewicht tussen 350 en 500 g werden individueel gehuisvest in een 12 uur / 12 uur licht-donker cyclus bij een kamertemperatuur 21 ± 2 ° C. Water en standaard chow waren ad libitum beschikbaar, tenzij anders vermeld. Alle experimenten werden uitgevoerd onder een vergunning van de Home Office, Verenigd Koninkrijk (PL70-6669) of goedgekeurd door de Veterinair Bureau van het kanton Zürich, Zwitserland. Alle ratten kregen een week acclimatiseren alvorens te worden gerandomiseerd naar gastric bypass of sham-operatie. Na de operatie, ratten ontvangen vloeibaar dieet gedurende 3 dagen voor de toegang tot de normale chow werd opnieuw geïnstalleerd.

Lichaamsgewicht

De gegevens van onze rat gastric bypass-model zijn in overeenstemming met eerdere bevindingen die de maag-bypass operatie effectief is om het lichaamsgewicht te verminderen en vooral voor gewichtsverlies (figuur 2) te behouden. Gemiddelde pre-operatieve lichaamsgewicht van ratten gebruikt voor maag-bypass en sham-activiteiten was gelijk (sham: 433,4 ± 8,3 g vs bypass: 420,7 ± 8,4 g, p = 0,28). Vijf dagen na de operatie schijn bediende woog aanzienlijk meer in vergelijking met gastric bypass ratten (sham: 422,2 ± 8,3 g vs bypass: 374,7 ± 7,6 g, p <0,001). Op postoperatieve dag 60, verschil in lichaamsgewicht was bijna 170 g (sham: 533,2 ± 8,1 g vs bypass: 366,2 ± 10,8 g, p <0,001).

De inname van voedsel

Voedselinname gevolgd dergelijke patronen lichaamsgewicht en werd verminderd maagbypass ratten ten opzichte van schijn-geopereerde ad libitum gevoede ratten. Figuur 3 toont de gemiddelde dagelijkse voedselopname beide groepen (postoperatieve dag 1-60). Dagelijkse inname van voedsel was consequent lager na gastric bypass (sham: 29,9 ± 0,2 g vs bypass: 25,7 ± 0,3 g, p <0,001).

Darmhormonen

Bloed van alle ratten werd verzameld op de dag van stopzetting van het onderzoek 8,16. Dieren hadden ad libitum voedsel Toegang tot de avond voor en werden onthoofd in het begin van het licht cyclus op dag 60 na de operatie. Blood verkregen onmiddellijk gecentrifugeerd bij 3000 rpm gedurende 10 minuten bij 4 ° C, en bewaard bij -20 ° C werden de monsters in tweevoud in een punt. PYY-achtige immunoreactiviteit was meadoeld orgaan een specifieke en gevoelige radioimmunoassay, welke maatregelen zowel de volledige lengte (PYY1-36) en fragment (PYY3-36). GLP-1 werd gemeten door opgericht in-house radioimmunoassays 17,18. Verschillen in inname van voedsel kan gedeeltelijk worden verklaard door de verhoogde postprandiale plasmaspiegels van peptide YY (PYY) en glucagon-like peptide 1 (GLP-1) als gastric bypass ratten toonde significant hogere niveaus voor PYY (sham: 26 ± 2 pmol / l vs . bypass: 141 ± 14 pmol / L, p <0,001) en GLP-1 (sham: 40 ± 5 pmol / L versus bypass: 215 ± 23 pmol / L, p <0,001; figuur 4).

figure-protocol-1
Figuur 1. Gastric bypass anatomie. Schematische weergave van de dunne darm anatomie voor (A) en na (B) gastric bypass operatie. De verschillende tinten rood ongeveer vertegenwoordigen overeenkomstige segmenten van de dunne darm met het medium rode die de voordarm(Slokdarm, maag twaalfvingerige darm en proximale jejunum), de lichtrode die de middendarm (proximale en midden jejunum, proximale ileum) en de donkerrode die de einddarm (ileum, caecum).

figure-protocol-2
Figuur 2. . Gewichtsverlies na de maag-bypass operatie bij ratten verandering in lichaamsgewicht voor een representatieve groep van ratten na gastric bypass (-) (n = 52) en schijn-geopereerde ratten (-) (n = 52) gedurende een observatieperiode van 60 dagen. Gegevens werden samengevoegd vorige publicaties 6,8-10 en wordt als gemiddelden ± SEM (*** = p <0,001).

figure-protocol-3
Figuur 3. Gemiddelde inname van voedsel na de maag-bypass operatie bij ratten. Gemiddelde dagelijkse inname van voedsel van een representatieve groep van ratten na gastric bypass (zwart, n = 52) en sham-geopereerde ratten (wit, n = 52) gedurende eenpostoperatieve periode van 60 dagen. Gegevens werden samengevoegd vorige publicaties 6,8-10 en wordt als gemiddelden ± SEM.

figure-protocol-4
Figuur 4. Postprandiale PYY en GLP-1 serumspiegels na de maag-bypass operatie bij ratten. Postprandiale PYY en GLP-1 serum niveau voor gastric bypass ratten (zwart, n = 18) en sham-geopereerde ratten (wit, n = 22). Gegevens werden samengevoegd vorige publicaties 8,16 en wordt als gemiddelden ± SEM.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

De Roux-en-Y gastric bypass procedure bij de mens werd voor het eerst beschreven door Mason in 1967 en aangepast aan de huidige vorm door Torres in 1983 19. Momenteel is de procedure bestaat uit een kleine maag zakje en de bypass van de proximale dunne darm. Een schematische weergave van de voor-en postoperatieve anatomie wordt gegeven in Figuur 1.

Gastric bypass bij de mens veroorzaakt en handhaaft het lichaamsgewicht verlies van ongeveer 15-30% 2. Het...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

Geen belangenconflicten verklaard.

Dankbetuigingen

Marco Bueter en Florian Seyfried werden gesteund door de Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG). Thomas A Lutz werd gesteund door de Zwitserse Nationale Research Foundation (SNF). Marco Bueter en Thomas Lutz Een verdere financiering ontvangen van het National Institute of Health (NIH) en van het Zurich Center for Integrative Menselijke Fysiologie (ZIHP). Carel W le Roux werd ondersteund door een ministerie van Volksgezondheid clinicus Scientist Award. Imperial College in Londen krijgt de steun van de NIHR Biomedical Research Centre subsidieregeling.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Soortnaam Merknaam Vennootschap Catalogusnummer
Enrofloxacine Baytril 2,5% Provet AG 1036
Flunixine Finadyne Graeub 908040
Buprenorphin Temgesic Reckitt Benckiser 138976
Isofluraan IsoFlo Graeub 902035
Vitamine A Vitagel Bausch & Lomb 690
Jodiumoplossing Betadine Mundipharma 111141
NaCl 0,9% NaCl 0,9% B. Braun 534534

Tabel 1. Drugs.

Naam Grootte Vennootschap Catalogusnummer
PDS II 4-0 Ethicon Z924H
PDS II 5-0 Ethicon Z925H
PDS II 6-0 Ethicon PUU2971E
PDS II 7-0 Ethicon Z1370E
Vicryl 4-0 Ethicon V451H

Tabel 2. Hechtingen.

Naam Vennootschap Catalogusnummer
Scalpel handvat nr. 3 Aesculap BB073R
Scalpelmesjes Geen. 10 Swann-Morton 0301
Naaldhouder Aesculap BM124R
Tissue tang Aesculap BD555R
Metzenbaum schaar, recht Aesculap BC022R
Metzenbaum schaar, gebogen Aesculap BC023R
Delicate schaar, gebogen Aesculap BC061R
Artery tang, gebogen Aesculap BH109R
Artery tang, gebogen, 1x2 tanden Aesculap BH121R
Probe, met twee uiteinden Aesculap BN113R
Micro naaldhouder Aesculap FM-541R
Micro tang Aesculap FM571R
Micro schaar AESCulap FM470R
Wegwerp oog cauterisatie John Weiss International 0111122
Wattenstaafjes Hartmann AG 9679369

Tabel 3. Chirurgische apparatuur.

Referenties

  1. Adams, T. D., Gress, R. E., Smith, S. C. Long-term mortality after gastric bypass surgery. N. Engl. J. Med. 357, 753-761 (2007).
  2. Sjostrom, L., Lindroos, A. K., Peltonen, M. Lifestyle, diabetes, and cardiovascular risk factors 10 years after bariatric surgery. N. Engl. J. Med. 351, 2683-2693 (2004).
  3. Buchwald, H., Oien, D. M. Metabolic/bariatric surgery Worldwide. Obes. Surg. 19, 1605-1611 (2008).
  4. Welbourn, R., Werling, M. Gut hormones as mediators of appetite and weight loss after Roux-en-Y gastric bypass. Ann. Surg. 246, 780-785 (2007).
  5. le Roux, C. W., Aylwin, S. J., Batterham, R. L. Gut hormone profiles following bariatric surgery favor an anorectic state, facilitate weight loss, and improve metabolic parameters. Ann. Surg. 243, 108-114 (2006).
  6. Bueter, M., Lowenstein, C., Olbers, T. Gastric bypass increases energy expenditure in rats. Gastroenterology. 138, 1845-1853 (2010).
  7. Stylopoulos, N., Hoppin, A. G., Kaplan, L. M. Roux-en-Y Gastric Bypass Enhances Energy Expenditure and Extends Lifespan in Diet-induced Obese Rats. Obesity (Silver Spring). 17, 1839-1847 (2009).
  8. Bueter, M., Miras, A. D., Chichger, H. Alterations of sucrose preference after Roux-en-Y gastric bypass. Physiol. Behav. 104, 709-721 (2011).
  9. le Roux, C. W., Bueter, M., Theis, N. Gastric bypass reduces fat intake and preference. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 301, 1057-1066 (2011).
  10. Bueter, M., Ashrafian, H., Frankel, A. H. Sodium and water handling after gastric bypass surgery in a rat model. Surg. Obes. Relat. Dis. 7, 68-73 (2011).
  11. Li, J. V., Ashrafian, H., Bueter, M. Metabolic surgery profoundly influences gut microbial-host metabolic cross-talk. Gut. 60, 1214-1223 (2011).
  12. Ashrafian, H., le Roux, C. W. Metabolic surgery and gut hormones - a review of bariatric entero-humoral modulation. Physiol. Behav. 97, 620-631 (2009).
  13. Ashrafian, H., Bueter, M., Ahmed, K. Metabolic surgery: an evolution through bariatric animal models. Obes. Rev. 11, 907-920 (2010).
  14. Rao, R. S., Rao, V., Kini, S. Animal models in bariatric surgery--a review of the surgical techniques and postsurgical physiology. Obes. Surg. 20, 1293-1305 (2010).
  15. Seyfried, F., le Roux, C. W., Bueter, M. Lessons learned from gastric bypass operations in rats. Obes. Facts. 4, 3-12 (2011).
  16. Fenske, W. K., Bueter, M., Miras, A. D. Exogenous peptide YY3-36 and Exendin-4 further decrease food intake, whereas octreotide increases food intake in rats after Roux-en-Y gastric bypass. Int. J. Obes. (Lond). , (2011).
  17. Kreymann, B., Williams, G., Ghatei, M. A. Glucagon-like peptide-1 7-36: a physiological incretin in man. Lancet. 2, 1300-1304 (1987).
  18. le Roux, C. W., Batterham, R. L., Aylwin, S. J. Attenuated peptide YY release in obese subjects is associated with reduced satiety. Endocrinology. 147, 3-8 (2006).
  19. Torres, J. C., Oca, C. F., Garrison, R. N. Gastric bypass: Roux-en-Y gastrojejunostomy from the lesser curvature. South Med. J. 76, 1217-1221 (1983).
  20. Guijarro, A., Suzuki, S., Chen, C. Characterization of weight loss and weight regain mechanisms after Roux-en-Y gastric bypass in rats. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 293, R1474-R1489 (2007).
  21. Roberts, K., Duffy, A., Kaufman, J. Size matters: gastric pouch size correlates with weight loss after laparoscopic Roux-en-Y gastric bypass. Surg. Endosc. 21, 1397-1402 (2007).
  22. Hajnal, A., Kovacs, P., Ahmed, T. Gastric bypass surgery alters behavioral and neural taste functions for sweet taste in obese rats. Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 299, G967-G979 (2010).
  23. Shin, A. C., Zheng, H., Pistell, P. J. Roux-en-Y gastric bypass surgery changes food reward in rats. Int. J. Obes. (Lond). 35, 642-651 (2011).
  24. Tichansky, D. S., Rebecca, G. A., Madan, A. K. Decrease in sweet taste in rats after gastric bypass surgery. Surg. Endosc. 25, 1176-1181 (2011).
  25. Olbers, T., Lonroth, H., Fagevik-Olsen, M. Laparoscopic gastric bypass: development of technique, respiratory function, and long-term outcome. Obes. Surg. 13, 364-370 (2003).
  26. Madan, A. K., Harper, J. L., Tichansky, D. S. Techniques of laparoscopic gastric bypass: on-line survey of American Society for Bariatric Surgery practicing surgeons. Surg. Obes. Relat. Dis. 4, 166-172 (2008).
  27. Bueter, M., Lowenstein, C., Ashrafian, H. Vagal sparing surgical technique but not stoma size affects body weight loss in rodent model of gastric bypass. Obes. Surg. 20, 616-622 (2010).
  28. Korner, J., Bessler, M., Cirilo, L. J. Effects of Roux-en-Y gastric bypass surgery on fasting and postprandial concentrations of plasma ghrelin, peptide YY, and insulin. J. Clin. Endocrinol. Metab. 90, 359-365 (2005).
  29. Schwartz, M. W., Woods, S. C., Porte, D. Central nervous system control of food intake. Nature. 404, 661-671 (2000).
  30. Abbott, C. R., Monteiro, M., Small, C. J. The inhibitory effects of peripheral administration of peptide YY(3-36) and glucagon-like peptide-1 on food intake are attenuated by ablation of the vagal-brainstem-hypothalamic pathway. Brain Res. 1044, 127-131 (2005).
  31. Adrian, T. E., Ballantyne, G. H., Longo, W. E. Deoxycholate is an important releaser of peptide YY and enteroglucagon from the human colon. Gut. 34, 1219-1224 (1993).
  32. Nakatani, H., Kasama, K., Oshiro, T. Serum bile acid along with plasma incretins and serum high-molecular weight adiponectin levels are increased after bariatric surgery. Metabolism. 58, 1400-1407 (2009).
  33. Ashrafian, H., le Roux, C. W. Metabolic surgery and gut hormones - a review of bariatric entero-humoral modulation. Physiol. Behav. 97, 620-631 (2009).
  34. Choban, P. S., Flancbaum, L. The effect of Roux limb lengths on outcome after Roux-en-Y gastric bypass: a prospective, randomized clinical trial. Obes. Surg. 12, 540-545 (2002).
  35. Gleysteen, J. J. Five-year outcome with gastric bypass: Roux limb length makes a difference. Surg. Obes. Relat. Dis. 5, 242-247 (2009).
  36. Lee, S., Sahagian, K. G., Schriver, J. P. Relationship between varying Roux limb lengths and weight loss in gastric bypass. Curr. Surg. 63, 259-263 (2006).
  37. Hayes, M. R., Kanoski, S. E., De Jonghe, B. C. The common hepatic branch of the vagus is not required to mediate the glycemic and food intake suppressive effects of glucagon-like-peptide-1. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 301, R1479-R1485 (2011).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Tags

Gastric Bypass RatmodelCreatie van Gastrische PouchBilio pancreatische LusAlimentary LusSide to side AnastomosePeptide YY VrijgaveGLP 1 SecretieReductie van VoedselinnameLichaamsgewichtverlies
Roux-en-Y Gastric Bypass operatie bij ratten
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan de bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleidsoverzicht

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.