$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. Labeling Erytrocyten met fluoresceïne isothiocyanaat isomeer I (FITC)
Alle experimentele protocollen gebruikten we zijn goedgekeurd door de Animal Care Comite van Keio University School of Medicine.
- Verdoof een donor muizen, en na het maken van een incisie celiotomy volbloed terug te trekken uit de vena cava inferior met een 1-ml spuit met kleine hoeveelheid heparine. De muis werd onmiddellijk door euthanasie natriumpentobarbital injectie (100 mg / kg ip).
- Tweemaal wassen geheel bloed met PBS (pH 7,4) door centrifugeren gedurende 5 minuten bij 400 g in een zwaaiende-bucket rotor.
- Los 10 mg FITC in 5 ml 100 mM Na 2 HPO 4 en filteren met een membraan met 0,22 um poriën.
- In een reageerbuis gemengd 1 ml van de oplossing met FITC 0,15 ml 3 mM glucose, 0,25 ml 180 mM NaH 2 PO 4 en 1,5 ml 100 mM Na 2 HPO 4. Voeg 0,2 ml van de RBC pellet, en tik op de buis voor het mengen.
- Houd de buis gedurende 2 uur bij 4 ° C en vervolgens tweemaal wassen de gekleurde RBC in PBS.
- Breng een kleine hoeveelheid van de RBC vering op een dia gras en zien of de RBC's zien er gezond uit (dat wil zeggen, dat hun vorm en grootte normaal zijn) en dat de fluorescentie-intensiteit is voldoende.
- Hang de 0,1 ml RBC in 0,9 ml PBS bij pH 7,4, en houd de vering bij 4 ° C tot injectie.
2. Voorbereiding van de zuurstof-gevoelige Dye
- Los 500 mg BSA in 10 ml PBS bij pH 7,4.
- Voeg 30 mg van Pd (II) meso-tetra-(4-carboxyfenyl) porfine (Pd-TCPP) de BSA oplossing en roeren gedurende de nacht.
- (Optioneel) Extract BSA-gebonden Pd-TCPP met behulp van de zwaartekracht-flow chromatografie of een spin kolom te scheiden van de gratis Pd-TCPP.
- Centrifugeer de oplossing te verwijderen onopgeloste Pd-TCPP, en filteren het supernatant met een membraan filter met 0,22-um poriën.
- Winkel 1 ml porties in buizen bij -20 ° C. Vermijd herhaaldelijk vries-dooi cycli.
3. Toebereiding van dieren
- Voor de microscopische observatie van de microcirculatie bereiden een kunststof plaat met een gat 20 mm in diameter, en tape een 30-mm-vierkant vierkante dekking van glas over het gat.
- Verdoof een muis, verwijder de vacht, en prep de huid. Plaats een katheter in de staart tevergeefs drugsinjectie met een 30 G naald verbonden met een 10-cm polyethyleen (PE 10) katheter vol gehepariniseerde PBS.
- Na het mediane incisie, het uitbreiden van een van de belangrijkste lobulus van de lever op de kunststof plaat, en zet de muis in borstbeen decubitus.
- Bereid kleine slips met keuken wrap (3 mm x 8 mm) en tegel ze rond de rand van de lever kwab te remmen verplaatsen van de lever met de ademhaling en het houden van het uit te drogen.
- Let op de hepatische microcirculatie onder een microscoop (met doorvallend licht), en bevestigen dat de blood stroom geen stilstand in het gezichtsveld van ten minste 15 minuten.
- Injecteer langzaam 0,2 ml van fluorescent gelabelde rode bloedcellen voor de doorbloeding observatie of 0,2 ml van Pd-TCPP oplossing voor pO 2-meting. Dit bedrag van FITC-gelabelde rode bloedcellen telt mee voor 1/50 van alle RBC's in omloop in de gevisualiseerde regio.
4. Blood Flow Visualisatie
- Opwekken FITC door bestralen met kwiklamp licht dat is via een banddoorlatend filter (450-490 nm) 1.
- Noteer de tl-beeld met een CCD-camera.
5. PO 2 Meting
Pd-TCPP fosforescentie relatief zwak en worden gedetecteerd met een hoge gevoeligheid detector. Alle experimenten moeten worden uitgevoerd in een donkere kamer.
- De absorptie pieken van Pd-TCPP zijn bij 410 nm en 532 nm, dus de tweede-harmonische golflengte 532 nm wordt aanbevolen voor excitatie. Deze golflengte kan worden opgewekt door een Nd: YAG laser 2 puls.
- Voer de straal van de Nd: YAG laser in de juiste poort op de omgekeerde microscoop, en pas de lichtstraal heeft om een centrale positie in het brandvlak. De ruimtelijke resolutie is afhankelijk van de laserspot omvang, die is gewijzigd door het passeren van de bundel door een pinhole.
- Om de fosforescentie detecteren hechten long pass filter (> 620 nm) en een fotomultiplicatorbuis (PMT) naar de andere aansluiting van de microscoop. De PMT moet gevoelig zijn voor rood golflengten, vooral rond 700 nm.
- Proef de fosforescentie-signaal (500 punten bemonsterd op 200 kHz) en bereken de tijdconstante van het verval door het plaatsen van een exponentiële functie om het verval.
- Voor de kalibratie voor te bereiden twee reeks monsters van Pd-TCPP oplossing met pO 2 150 mmHg en 0 mmHg. Voeg dithioniet natrium 1% in volume te proeven de afwezigheid van zuurstof te produceren. Houd de pH van de monsters 7,4 en de temperatuurtuur bij 37 ° C gedurende kalibratie.
- Bevestig de Stern-Volmer k q en zuurstofvrije luminescentie vervaltijd τ 0 in de vergelijking (1) 3. In ons geval met Pd-TCPP oplossingen bij 37 ° C en een pH van 7,4, k q 374 mmHg -1 s -1 en τ 0 is 0,74 ms. Deze meting parameters afhankelijk van de apparatuur (laser, detector, optische toestellen) en de signaalverwerking methode, zodat kalibratie nodig per meetsysteem 4.
τ 0 / τ = 1 + k q • τ 0 • pO 2 (1) - Zet de muis op de plaat op de microscoop podium, leven zij de hepatische microcirculatie, en pas de positie van het doel microvaatje tot het punt van de laser ter plekke.
6. Hepatitis Model
- Snel muizen met vrije toegang tot water 's nachts.
- Bereid een20 mg per ml oplossing van paracetamol (APAP) in DMSO.
- Intraperitonealy Injecteer het op 1 ml/100 g lichaamsgewicht (dat wil zeggen, 200 mg / kg lichaamsgewicht). Na de injectie, kan de muis worden de vrije toegang tot voedsel en water 5.
- 24 uur na de injectie, verdoven de muis en bloot de lever door het maken van een mediane incisie. Als hepatitis is bereikt, zal necrose in de pericentral regio goed zichtbaar met het blote oog.
7. Representatieve resultaten
Voorbeeld beelden lever microcirculatie worden getoond in Figuur 1, waarbij (a) een doorvallend licht beeld en (b) een fluorescentie beeld. Individuele FITC-gelabelde erytrocyten worden waargenomen in de video-film, en portal venulen, sinusoiden, en centrale venulen zijn erkend door de bloedstroom richtingen.
Zoals getoond in figuur 2, de laserspot bestralen van een centrale venule door een x100 objectieflens is approximdellijk 10 pm in diameter. Intravasculaire pO 2 in de lever microcirculatie werd gemeten bij mannelijke C57BL / 6 muizen, en figuur 3 (a) toont de relaties tussen PO 2 en de bloedvaten in de portal en het centrum van venulen. De PO 2 gradiënt van portaal naar het centrum van venulen geeft aan dat RBC het vrijkomen van zuurstof efficiënt tijdens het passeren van sinusoïden. Zoals in figuur 3 (b) de gemiddelde pO 2 was 59,8 mmHg portaal vaten, 48.2 mmHg sinusoiden en 38,9 mmHg centrale venules.
Wanneer we acute hepatitis geproduceerd door het injecteren van APAP intraperitonealy, intravasculaire PO 2 was significant verhoogd in elk deel van de lever microcirculatie: p <0,05 in portaalsite aderen en p <0,01 in sinusoiden en centrale aderen (figuur 3 (c)).

Figuur 1. Lage vergroting images zien lever microcirculatie met (a) doorvallend licht en (b) fluorescentie.

Figuur 2. Afbeelding van laserspot bestralen een gerichte centrale venule voor pO 2-meting.

Figuur 3. PO 2 gradiënt in de lever microcirculatie van gezonde muizen en muizen met paracetamol geïnduceerde leverbeschadiging. (A) toont pO 2 in plaats van bloedvaten voor portal venulen (PV) en centrale venulen (CV), en (b) toont de zuurstof gradiënt van PV naar CV via sinusoïden (S). De PO 2 verschil tussen PV en CV weerspiegelt de zuurstofverbruik van hepatocyten of andere parenchymcellen. (C) blijkt dat bij hepatitis omstandigheden veroorzaakt door APAP administratie, pO 2 aanzienlijk werd verhoogd in PV, S, en CV en de PO 2gradiënt is gedaald, wat aangeeft dat de lever het zuurstofverbruik in gevaar was.