1. Ex ovo Cultuur
- Verse bevruchte eieren worden gelegd op hun lange zijde worden in een heteluchtoven-ontwerp van incubator (BSS160, Ehret, Duitsland) bij 37,5 ° C met 60% vochtigheid voor incubatie. Eieren opgeslagen bij 12 ° C langer dan een week niet worden gebruikt.
- Na incubatie gedurende 2,5 dag (ongeveer stadium HH17), neem de eieren en het etiket van de top met een potlood om richting aan te geven voor het kraken.
- Voor het kraken, giet ongeveer 20 ml steriel gedistilleerd water in een schone grote Petri-schaal (diameter van 145 mm, Greiner Bio-One GmbH, Duitsland).
- Plaats een andere kleine steriele petrischaal (diameter van 94 mm, Greiner Bio-One GmbH) in de grote petrischaal.
- Breek de eieren op de bodem tegen een scherpe metalen rand, voorzichtig open de eieren en breng de volledige inhoud van elk ei in de kleine petrischaal.
- Dek de grote petrischaal met een deksel en zet het in een andere incubator (Binder GmbH, Tuttlinge, Duitsland)verdere cultuur bij 37,5 ° C met 60% vochtigheid. Na incubatie gedurende het gewenste aantal dagen, kan de embryo worden gebruikt voor electroporatie.
2. Voorbereiding voor ex ovo Elektroporatie
- Trek glazen capillairen met een micro-elektrode trekker (PUL-100 Micropipet Puller; Wereld precisie-instrumenten, Berlijn, Duitsland) met behulp van glazen buizen van 1,0 mm diameter (TW100F-4; Wereld precisie-instrumenten) en breek de top van de glazen capillairen in een geschikte diameter.
- Stel de juiste parameters (dwz verschillende voltages voor de verschillende weefsels en de grootte van embryo's) voor elektroporatie en sluit elektroden op een electroporator (CUY21-Edit; Nepa Gene, Chiba, Japan) op basis van de te onderzoeken weefsels en de grootte van embryo's.
- Bereid een plasmide oplossing die plasmiden pCAGGS coderend voor een doelwitgen, bijvoorbeeld cadherin7 (Cad7; pCAGGS-Cad7 met een concentratie van 2,0 pg / pl) en een marker gen,bijvoorbeeld green fluorescent protein (GFP; pCAGGS-GFP in een concentratie van 0,25 pg / pl). Voeg Fast Green met een eindconcentratie van 0,1% (Sigma) het plasmide oplossing labelen met de groene kleur.
- Plaats de glazen capillair met het plasmide oplossing om met een mond pipet.
3. Gentransfer in Chicken Optic Tectum door ex ovo Elektroporatie
- Na ex ovo cultuur, bijvoorbeeld door incubatie dag (E) 6, worden de kippen embryo's die voor ex ovo elektroporatie.
- Scheur de vitelline en amnion membranen over de optische tectum met fijne pincet en voeg 3 druppels steriele 0,9% natriumchloride-oplossing op het oppervlak van het tectum.
- Injecteer het plasmide oplossing in de holte van de tectum door glazen capillair met de mond pipet.
- Plaats de elektroden met een wolfraam naald kathode en een rechthoek plaat anode (CUY 661-3x7, Nepa Gene) naast de tectum, enonmiddellijk ten elektrische pulsen (zes pulsen, 25 V, 60 ms pulslengte, 100 ms tussenpozen telkens) door de electroporator de tectum.
- Dek de grote petrischaal met het deksel en terug te sturen in de incubator. Na incubatie gedurende geschikte dag (bijvoorbeeld 2 tot 3 dagen na elektroporatie), de tectum verzameld en vastgesteld immunokleuring (figuur 1) en biologische detectie.
4. Representatieve resultaten
Succesvolle overexpressie van exogene eiwitten en Cad7 GFP door ex ovo elektroporatie is in figuur 1 als voorbeeld. Wanneer Cad7 plasmide met GFP plasmide werd geëlektroporeerd in de tectum op E6, twee of drie dagen na elektroporatie van de embryo's en gefixeerd. Bij E8 wordt het GFP-eiwit sterk tot uitdrukking in de tectum geheel houder beelden (figuur 1A-C). Bovendien is in de delen van het tectum op E9,GFP-eiwit (groen in figuur 1D) en Cad7 eiwit (rood in figuur 1E) zijn coexpressed (geel in figuur 1F), wat suggereert dat ex ovo elektroporatie is een succesvolle methode voor gentransfer in de oudere kippen embryo's in vivo.

Figuur 1. Wanneer de plasmiden coderen GFP en Cad7 worden gecotransfecteerd in de kip tectum op E6, twee of drie dagen na ex ovo elektroporatie wordt GFP-eiwit (groen) sterk tot expressie, zoals in wholemount beelden (AC) op E8. In delen van het tectum op E9, GFP-eiwit (groen in D) en Cad7 eiwit (rood in E) zijn coexpressed (geel in F). BF, helderveld afbeelding. Schaal bar: 200 pm in A voor AC; 100 micrometer op D voor DF.