1. Genomisch DNA Fragmentation
Fragment genomisch DNA met sonificatie om een gewenst groottebereik geschikt voor genoomwijde sequencing platform. (We meestal ultrasone trillingen ~ 300 bp.) Controleer de grootteverdeling van de gefragmenteerde genomisch DNA op 1% agarose gel (figuur 1).
2. DNA Bereiding
Bepaal het uitgangs-DNA bedragen op basis van de overvloed van 5-HMC in genomisch DNA. Aangezien 5-HMC niveaus variëren sterk in verschillende weefseltypen, uitgangs-DNA hoeveelheden hangen af van de 5-HMC niveau van de monsters. Zie tabel 1 voor voorbeelden.
3. β-GT gekatalyseerde reactie (Glucose Transfer Reaction)
- Mix door pipetteren het mengsel zoals uiteengezet in tabel 2 en incubeer in een 37 ° C waterbad gedurende 1 uur.
- Na incubatie schoonmaken van de reactie met QIAquick Nucleotide Removal Kit, met 10 ug DNA perkolom. Elueer met 30 pi water per kolom en combineren.
4. Biotinylatie Reactie (Instructies Chemie)
- Voeg DBCO-SS-biotine conjugaat PEG3-werkoplossing (1 mM) in het geëlueerde DNA (uit stap 3) tot een eindconcentratie van 150 uM (dwz 5 pi werkoplossing per 30 ul DNA oplossing).
- Meng door pipetteren en incubeer in een 37 ° C waterbad gedurende 2 uur.
- Het schoonmaken van de reactie met QIAquick Nucleotide Removal Kit. Het ideale totale elutievolume is 100 pl.
- Kwantificeer de herstelde DNA hoeveelheid met behulp van microliter schaal spectrofotometer (bijv.., NanoDrop).
5. Vangst van 5-HMC-bevattend DNA
- Wassen 50 pi Dynabeads MyOne Streptavidin C1 3 keer met 1 ml 1X B & W buffer volgens de fabrikant. Scheid de kralen met een magnetische standaard.
- Voeg gelijk volume 2 x B & W buffer de herstelde gebiotinyleerde DNA (100 ul) aan de gewassen korrels.
- Incubeer gedurende 15 minuten bij kamertemperatuur onder zacht rotatie op een rotator.
- Scheid de kralen met een magnetische standaard en was de kralen 3 maal met 1 ml 1X B & W buffer.
- Elueer het DNA door het incuberen van de parels in 100 pl vers bereide 50 mM DTT gedurende 2 uur bij kamertemperatuur onder zacht rotatie op een rotator.
- Scheid de kralen met een magnetische standaard. Zuig het eluent en de belasting op een Micro Bio-Spin Column 6 volgens de instructie aan de vervaardiging DTT verwijderen. Het doelwit DNA in de oplossing nu.
- Zuiver het geëlueerde DNA van de vorige stap Qiagen MinElute PCR Purification Kit en elueer DNA in 10 pl EB buffer. Kwantificeren DNA met Qubit Fluorometer of NanoDrop indien de concentratie hoger dan 20 ng / ul. Het DNA is klaar voor downstream genoom-wijde sequencing bibliotheek voorbereiding.
6. Representatieve resultaten
Indien de kwaliteit of genomisch DNA is hoog, de typische hersteltijden opbrengsten na de β-GT en biotinylatie reacties zijn ~ 60-70%. De afvangrendement sterk verschillen met verschillende weefseltypes afhankelijk van de 5-HMC niveau van de monsters. Kenmerkend voor de afvangrendement hersenen genomisch DNA ~ 4-9% en in sommige extreme gevallen de efficiency kan oplopen tot 12%. Voor ES cellen was de gemiddelde afvangrendement is ~ 2-4%, in tegenstelling tot ~ 0,5% voor neurale stamcellen. Het zien laagste rendement tot nu toe was voor genomisch DNA van kankercellen. Alle verrijkte DNA is klaar voor standaard de volgende generatie bibliotheek voorbereiding protocollen. Bovendien kan de vastgelegde DNA worden gebruikt als template voor real-time PCR voor de verrijking van bepaalde fragmenten vergeleken met de uitgangs-DNA, detecteren of de desbetreffende primers beschikbaar.

Figuur 1. Gesoniceerd humane genomische DNA-fragmenten in1% agarose gel. 10 ug genomisch DNA geïsoleerd uit menselijke iPS cellen in 120 pi 1X TE buffer werd gesoniceerd met een sonicatie apparaat (Covaris). Na sonicatie, werd 2 pi van de gesoniceerd DNA geladen 1% agarose gel met 100 bp van DNA marker van de afmetingen van de gesoniceerd DNA fragmenten te vergelijken.
| Bestanddeel | Volume | Eindconcentratie |
| Water | _ Pl | |
| 10 X β-GT Reaction Buffer | 2 pi | 1 X |
| Tot 10 ug genomisch DNA | _ Pl | Tot 500 ng / pl |
| UDP-6-N 3-Glc (3 mM) | 0,67 ul | 100 uM |
| β-GT (40 uM) | 1 pi | 2 uM |
| Totaal volume | 20 pi | |
i) Voor weefsel genomisch DNA (hoog 5-HMC gehalte> 0,1%)
| Bestanddeel | Volume | Eindconcentratie |
| Water | _ Pl | |
| 10 X β-GT Reaction Buffer | 10 pi | 1 X |
| Tot 20 ug genomisch DNA | _ Pl | Tot 500 ng / pl |
| UDP-6-N3-Glc (3 mM) | 1,33 ul | 100 uM |
| β-GT (40 uM) | 2 pi | 2 uM |
| Totaal volume | 40 pi | |
ii) Voor stamceltransplantatie genomisch DNA (mediaan 5-HMC gehalte ~ 0,05%)
| Bestanddeel | Volume | Eindconcentratie |
| Water | _ Pl | |
| 10 X β-GT Reaction Buffer | 10 pi | 1 X |
| Tot 50 ug genomisch DNA | _ Pl | Tot 500 ng / pl |
| UDP-6-N3-Glc (3 mM) | 3,33 ul | 100 uM |
| β-GT (40 uM) | 5 pi | 2 uM |
| Totaal volume | 100 pi | |
iii) Voor kankercel genomisch DNA (lage 5-HMC gehalte ~ 0,01%)
Tabel 1. Voorbeelden van hoeveelheden input-DNA en labelingsreacties met de monsters met verschillende 5-HMC niveau van de selectieve chemische labelingsmethode.
| Monster | 5-HMC niveau | Uitgangs-DNA (ug) | Herstel na labeling (dwz in beads) (ug) | Herstel rendement | Pull-down DNA (ng) | Pull-down opleveren |
| Volwassen muis cerebellum | 0,4% | 10 | 7,5 | 75% | 236 | 3,1% |
| Postnatale dag 7 muis cerebellum | 0,1% | 11 | 9 | 82% | 140 | 1,6% |
| Muis ES-cel E14 | 0,05% | 60 | 42 | 70% | 350 | 0,8% |
Tabel 2. Representatieve resultaten van muizenhersenen weefsels en embryonale stamcellen.