Transient mCaO (60 min) werd geïnduceerd door toevoeging van een siliconen gecoat filament in de externe halsslagader. Het filament werd vervolgens doorgedrukt het uiteinde van de interne halsslagader tot de oorsprong van de MCA, onder LD monitoring. Halsslagader en pterygopalatin slagader werden tijdelijk afgesloten tijdens de chirurgische inbrengen van het filament. Een schematische weergave van de chirurgische procedure is weergegeven in figuur 1A.
De craniale coördinaten voor het positioneren van de twee LD probes zijn gekozen volgens de onderliggende arteriële gebied. Voorlopige experimenten met gelatine-inkt perfusie (Figuur 1B) was de ischemische kern wordt in de centrale MCA territorium (bregma -1 mm, 5 mm middellijn, Probe 1), terwijl de collateralen wordt verwacht in het gebied tussen de borderzone corticale takken van middelste en anterieur cerebrale slagaders (bregma +2 mm, 2 mm van middellijn; Probe 2).
Cerebrale hemodynamiek werd bestudeerd met multi-site Laser Doppler probes tijdens de gehele duur van de chirurgische procedure, dat wil zeggen vóór, tijdens en na mCaO (figuur 2). De hersendoorbloeding deficit mCaO kleiner en toonden een hogere mate van variabiliteit in Probe 2 in vergelijking met Probe 1, suggereert interindividuele verschillen in de functionele performantie van intracraniale collateralen onder ischemische aandoeningen. De multi-site Laser Doppler controle maakt het ook mogelijk om de cerebrale hemodynamische veranderingen te bestuderen tijdens de occlusie van proximale extra-craniale cerebrale slagaders (arteria carotis communis, interne halsslagader, pterygopalatin slagader).
Stroke resultaat werd vastgesteld 24 uur na reperfusie door infarctvolume, berekend op 19 opeenvolgende secties gekleurd met cresyl violet (figuur 3), en Garcia functionele neuroscore 11. Immunohistochemie op specifieke markers assohorende met ischemische hersenletsel werd uitgevoerd, om een topografische verdeling van neuronaal verlies (microtubule geassocieerd proteïne 2, MAP2) en ischemische penumbra (heat shock protein-70, Hsp70) ten opzichte krijgen tot de multi-site hemodynamische bewaking van intracraniale verkeer (Figuur 4).

Figuur 1. Cerebrale perfusie monitoring tijdens de intraluminale mCaO bij de rat. A. Schematische weergave van de chirurgische procedure voor transiënte mCaO. Een silicone beklede filament werd gebruikt om de oorsprong van de MCA af te sluiten, na te zijn ingebracht in de externe halsslagader en geduwd door de interne halsslagader. Proximale cervicale slagaders werden ofwel geligeerd (externe halsslagader) of tijdelijk afgesloten (pterygopalatin slagader en gemeenschappelijke halsslagader) tijdens de proceduredure. B. Een vertegenwoordiger hersenen wordt getoond na gelatine-inkt kleuring. Transcardiale perfusie van gelatine-inktoplossing uitgevoerd 60 min na het begin van ischemie zonder reperfusie. De normaal doorbloed brein werd gekleurd door gelatine-inkt en verscheen als grijs-gekleurd met zwart gebeitst schepen, terwijl de ischemische (niet-geperfundeerde) gebied bleef onbesmet (roze-gekleurd). Craniale coördinaten voor het positioneren van de twee probes LD getoond. Probe 1 = 1 mm uit bregma, 5 mm van middellijn; Probe 2 = +2 mm van bregma, 2 mm van middellijn.

Figuur 2. Cerebrale hemodynamische opnamen met behulp van multi-site Laser Doppler probes. Een typisch hemodynamische patroon dat functioneel actief intracraniële collateralen suggereert onder ischemische omstandigheden wordt getoond. In dit dier LD traceringen vertoonde eener perfusie tekort in Probe 2 kanalen, in vergelijking met 1 kanaal, zowel tijdens CCA occlusie en MCA occlusie Probe. MCA-O = midden cerebrale slagader occlusie. CCA-O = gemeenschappelijke occlusie van de halsslagader. PU = perfusie-eenheden.

Figuur 3. Representatieve hersencoupes voor de berekening van infarctvolume Histologische coronale secties (50 um, n = 19 met 250 pm interval; bregma +2,5 mm tot -3,0 mm). Worden gefixeerd in 4% paraformaldehyde en gekleurd met cresyl violet 0,1%. Infarct volume wordt berekend met behulp van ImageJ software voor beeldverwerking, gecorrigeerd voor inter-hemisferische asymmetrie als gevolg van hersenoedeem, en uitgedrukt in mm 3. Klik hier om een grotere afbeelding te bekijken
Figuur 4. Immunokleuring van moleculaire markers van neuronaal verlies en penumbra Representative opeenvolgende hersencoupes getoond die werden gekleurd met cresyl violet 0,1% (A) of immunogekleurd met markers van neuronaal verlies (microtubule geassocieerd proteïne 2, MAP2; B). Ischemische penumbra en (heat shock protein-70, Hsp70, C).