In een eerdere publicatie 18, gescreend we een bibliotheek van 640 FDA goedgekeurde geneesmiddelen in een pilot scherm om de prestaties van de Grizly test geëvalueerd. Deze bibliotheek bevatte 12 bonafide GC, waardoor wij de kwaliteit ervan vast inzake gevoeligheid en specificiteit van de test.
Figuur 2 toont typische voorbeelden van de ruwe data-analyse en normalisatie uit dit scherm. Een typisch resultaat van een dexamethason controle goed is weergegeven in figuur 2a, ter illustratie van de temporele informatie van de gegevens. Een piek in bioluminescentie die optreedt bij ongeveer 12 uur na de behandeling langzaam af gedurende de volgende 36 uur van de meting. Figuur 2a 'benadrukt de onderlinge aanpassing van de AUC-waarde met de trapeziumvormige methode. Deze berekening wordt uitgevoerd voor alle bronnen en elke technische herhaling uitgevoerd. Het resultaat van de log transformatie is weergegeven in figuren 2b </ Strong> en b '. Hier het gemiddelde van de positieve controles worden weergegeven in een normale QQ plot. Log transformatie leidt tot een grotere aanpassing van de gegevenspunten met de theoretische normaal verdeelde waarden aangegeven door de rode diagonalen. Een transformatie naar normaliteit van de gegevens te verkrijgen verhoogt de statistische power van de latere analyses. Tenslotte figuren 2c en 2c 'tonen het effect van robuuste Z-score normalisatie op plaat-to-plate variabiliteit: De verschillende uitgangswaarden verkregen met verschillende platen (figuur 2c) zijn genormaliseerd in de robuuste Z-score plot in figuur 2c'.
De robuuste Z-score waarden kunnen worden gebruikt voor systematische fouten in de data te identificeren door het visualiseren van de verdeling van de treffers in de platen. Figuur 3a toont een voorbeeld van een heatmap van een bibliotheek plaat, waarbij de stabielere Z-score valwaarden zijn uitgezet kleurcodering in de put posities. Men gemakkelijk identificeert kolom 12 met de in-plaat positieve controles. Positief scorende bibliotheek verbindingen worden gezien in goed F8 en, zij het zwakker, E2. Figuur 3b toont een plaat waarin een systematische fout aanwezig is. Men observeert een reeks verbindingen met afnemende Z-score waarden in rijen A en E over meerdere kolommen. Geen van de verbindingen in deze putjes positief getest in de hertest. Omdat de putten met deze afnemende Grizly testactiviteit langs het pad de pipettering robot neemt wanneer aliquoting de bibliotheek platen worden geplaatst, dit patroon is een indicatie van versleping van een positieve verbinding tijdens het geautomatiseerde pipetteren proces.
De robuuste Z-score normalisatie samen met de aanwezigheid van bekende GC in de bibliotheek ook ons in staat om een receiver operating characteristic (ROC) curve voor het scherm 18 te berekenen. Figuur 3c een plot van de schatting blijktgedekt echt positief ten opzichte van de geschatte valse meldingen voor verschillende robuuste Z-score cut-off-waarden. De geschatte ware positief wordt gedefinieerd als het percentage terecht positieve resultaten (hier, de bekende glucocorticoïden aanwezig in de bibliotheek) die zijn gevonden op een gegeven robuuste Z-score cut-off waarde. Het daarmee overeenkomende geschatte valse meldingen geeft het percentage van niet-positieve verbindingen hit op deze cut-off waarde. De AUC van deze curve is 0,95, wat wijst op een hoge gevoeligheid en specificiteit van het scherm en de uitstekende test prestaties. De AUC-curve werd ook gebruikt om de optimale grenswaarde voor hit identificatie te schatten door het berekenen van de Youden index voor verschillende robuuste Z-scores. We identificeerden de robuuste Z-score van 1.49 als het hebben van de hoogste Youden index. Deze cut-off waarde wordt aangegeven in figuur 2c 'als een zwarte lijn tussen de hits van het grootste deel van de verbindingen.
In ons scherm18, waren we in staat om bijna alle bekende GC aanwezig in de bibliotheek te identificeren. Slechts drie van de 12 bonafide GC werden niet gedetecteerd. Bij melengestrolacetaat, was dit een vals negatief bevinding, omdat deze verbinding testte positief in de hertest bij een hogere concentratie dan die in de bibliotheek. De andere twee GC negatief waren ook in de re-test. Corticosteron is de belangrijkste GC in knaagdieren maar niet in vissen of mensen 1, terwijl de prodrug prednison niet goed kan worden gemetaboliseerd door het larvale systeem. Interessant ook twee drugs geannoteerd als GC werden in het scherm, waarvan een niet in de hertest (spironolacton, een mineralocorticoïde receptor antagonist) kan worden bevestigd. De andere verbinding, pregnenolon, is een precursor van biosynthese, dat wordt omgezet in cortisol door de bijnieren. Inderdaad, de behandeling met pregnenolon gestimuleerd cortisol productie in de larven 18. Al deze resultaten bevestigen de hoge performance van de test: slechts een vals-negatieve en een vals positief verbinding behoorden tot de resultaten primaire scherm, en 10 van de 11 bevestigde verbindingen met GC signalering stimulerende activiteit werden reeds in het primaire scherm.

Figuur 1. Algemeen principe van de test en de workflow van de screening procedure. A) Regeling van de Grizly assay reporterconstruct. Luciferase (geel) expressie wordt aangestuurd door een minimale promoter (P min, oranje) en vier concatemerized GRE elementen ((GRE) 4, wit), die gebonden zijn door ligand geactiveerde GR homodimeren (GR, blauw). Rode vakjes geven Tol2 transposase plaatsen dat integratie van het construct in het genoom te vergemakkelijken. De roze doos is een poly-adenylatie website (Pa). Transgene larven voortzetting van deze construct worden in ondoorzichtige 96 microtiterplaten geplaatst voor bioluminescentie metingen. b) Regeling van de luciferasereactie. Luciferase katalyseert de oxidatie van luciferine tot oxyluciferine, wat leidt tot lichtemissie (hv). De reactie vereist ook ATP en Mg2 +, welke door de larve. PP i, pyrofosfaat. C) Workflow van het scherm. Werkvoorraad verdunningen bereid uit een FDA goedgekeurde geneesmiddelenbibliotheek in 96 putjes, een kolom die een negatieve in-plate controle (alleen DMSO, groen) en een kolom die een positieve controle (dexamethason, rood) (bibliotheekontwerp). GRE: Luc larven worden verdeeld in 96 putjes platen (5-11 replicaten) en behandeld met de bibliotheekverbindingen (geneesmiddeltoediening). Bioluminescentie sporen worden opgenomen met een bioluminescentie lezer voor twee dagen (het verzamelen van gegevens). Bioluminescentie sporen zijn geïntegreerd (AUC berekeningen), log getransformeerd en robuuste Z-score genormaliseerd (normalisatie). Genormaliseerde gegevens worden gebruikt voor het bepalen van de kwaliteit en metrics voor hit identificatie (data-analyse). Gekozen hits opnieuw getest voor dosis-afhankelijke activiteit in de assay (hertest). Klik hier om een grotere afbeelding te bekijken .

Figuur 2. Data-analyse geïllustreerd met gegevens uit een scherm van een FDA goedgekeurde geneesmiddel bibliotheek. a) Vertegenwoordiger spoor van een positieve controle goed. a) Het oppervlak onder de curve (AUC) wordt benaderd met de trapezium regel. De trapeziums gebruikt voor de berekening zijn weergegeven in verschillende tinten rood. B) normale QQ plot van rauwe AUC-waarden van voor de positieve controles (y-as) versus een standaard normale populatie (x-as) voor logtransformatie. B ' ) Normale QQ plot van de AUC-waarden na log transformatie. Een normale verdeling wordt aangegeven door de lineariteit van de log-getransformeerde gegevenspunten. C) plot van log-getransformeerde ruwe gegevens voor alle geteste verbindingen op het scherm. Blauw, bonafide glucocorticoïden;. Grijs, alle andere verbindingen c ') Plot van het scherm gegevens na robuuste Z-score normalisatie. Systematische fouten zoals tussen platen variaties zijn verwijderd uit de data. Rode lijnen geven het gemiddelde ± SEM van positieve binnen-plaat controles. Zwarte lijn: hit identificatie cut-off waarde zoals bepaald door Youden-Index optimalisatie (figuur 3). Overgenomen met toestemming van 14, 2012 ACS. Klik hier om een grotere afbeelding te bekijken .
0439fig3.jpg "/>
Figuur 3. Screen resultaten. a) Heatmap van het scherm resultaten. Robuuste Z-score waarden van bibliotheek verbindingen worden uitgezet in de betreffende put posities. De positieve controles in kolom 12 en twee positieve hit verbindingen in putten F8 en E2 zijn zichtbaar. B) Heatmap van een plaat toont overdracht van een positieve verbinding tijdens bibliotheek voorbereiding met een pipetteren robot. Een gradiënt van activiteit zichtbaar langs het pipetteren weg die de robot. C) Receiver operating characteristic (ROC) curve voor het scherm. De geschatte ware positieve tarieven (linker y-as) en fout-positieve (x-as) wordt uitgezet voor het verhogen van robuuste Z-score cut-off-waarden (kleurcode, rechter y-as). De AUC-waarde van de resulterende curve dicht bij 1, wat aangeeft goede testprestaties. Overgenomen met toestemming van 14, 2012 ACS. D) Tabel met verbindingen actief (yellow) of inactief (blauw) in de primaire scherm (Prim.) of in de hertest. Bona fide glucocorticoïden werden niet altijd opnieuw getest (wit). Opnieuw getekend met toestemming van 14, 2012 ACS. Klik hier om een grotere afbeelding te bekijken .
| Algemene instellingen: |
| Stap 1.1 |
| Procedure | Type: | enkele vloeistof |
| modus: | opblazen |
| doseert per aspireren: | 1 |
| optimaliseren voor snelheid: | Ja |
| luchtspleten systeem: | 10 gl |
| vervoer: | 0 |
| Flush / Wash | Geen |
| Aspireren | Type instelling | Waarde | opmerkingen |
| Positie | B7, B10, B13, B16 | |
| Aspireren Vol. | 10 gl | |
| Snelheid | 200 ul / sec | |
| Vloeistof volgen | 60% | |
| Aspireren Hoogte | Labware default | 22.28 |
| Uitdelen | Type instelling | Waarde | opmerkingen |
| Posities | D7, D10, D13, D16 | |
| Afzien Vol. | 10 gl | |
| Snelheid | 200 ul / sec | |
| Vloeistof volgen | 100 pl | |
| Afzien Hoogte | Labware default | 17.01 |
| Stap 1.2 |
| Procedure | Type: | reagens |
| modus: | afval |
| doseert per aspireren: | 3 |
| optimaliseren voor snelheid: | Ja |
| luchtspleten systeem: | 15 pl |
| vervoer: | 0 |
| Flush / Wash | Geen |
| Aspireren | Type instelling | Waarde | opmerkingen |
| Positie | A4 | |
| Aspireren Vol. | 3 x 490 gl | |
| Luchtspleten | 15 en 0 | |
| Snelheid | 200 ul / sec | |
| Vloeistof volgen | 400% | |
| Aspireren Hoogte | Vloeistofoppervlak | |
| Uitdelen | Type s etting | Waarde | opmerkingen |
| Positie | D7, D10, D13, D16 | |
| Afzien Vol. | 490 pl | |
| Luchtspleten | 15 en 0 | |
| Snelheid | 200 ul / sec | |
| Vloeistof volgen | 100% | |
| Afzien Hoogte | Labware default | 17.01 |
Tabel 1. Instellingen voor Multiprobe II. Het protocol in Tabel 1 beschrijft de bereiding van 4 platen (per 96 putjes). De platen liggen op plaat adapters in het werkgebied op de posities die door de robot (bijv. B7, B10, B13, B16).
1 "fo: keep-together.within-page =" altijd ">
Algemene instellingen: Aantal assay herhalingen afhankelijk van de lengte van de run Aantal platen onbeperkt Temperatuurregeling 28 ° C
Protocol Berekeningen US Lum 96 (CPS) lezen Meettijd 2.5 sec Crosstalk correctie Afstand tussen plaat en de detector 0 mm Glow (CT2) correctiefactor 0% inhoud ">
Tabel 2. EnVision instellingen gebruikt voor het scherm.