Erratum: Protocollen voor monstervoorbereiding, beeldvorming en analyse voor knife-edge scanning microscopie

518 weergaven

7 april 2013

In dit artikel

Samenvatting

Er is een correctie aangebracht in Specimen Preparation, Imaging, and Analysis Protocols for Knife-edge Scanning Microscopy. Er zijn belangrijke wijzigingen doorgevoerd in het Nissl-kleuringsprotocol.

Samenvatting

Er is een correctie aangebracht in Specimen Preparation, Imaging, and Analysis Protocols for Knife-edge Scanning Microscopy. Er zijn belangrijke wijzigingen aangebracht in het protocol voor de Nissl-kleuring.

Protocol

Er is een correctie aangebracht in Specimen Preparation, Imaging, and Analysis Protocols for Knife-edge Scanning Microscopy. Het Nissl-kleuringsprotocol is gewijzigd van:

2. Monstervoorbereiding: Nissl

  1. De muis wordt diep geanestheseerd met intraperitoneel geïnjecteerde ketamine en xylazine en vervolgens transcardiaal geperfuseerd met 50 mL fosfaatgebufferde zoutoplossing (pH 7.4) op kamertemperatuur, gevolgd door 250 mL 10% neutraal gebufferde formaline (pH 7.4) op kamertemperatuur, en tot slot met 3.0 cc onverdunde India-inkt.
  2. Perfusie van het gehele lichaam met zoutoplossing en fixatief is noodzakelijk om het bloed uit het cardiovasculaire systeem te verwijderen en de weefsels te fixeren. Perfusie met India-inkt is noodzakelijk om de vasculatuur van het cardiovasculaire systeem volledig te vullen.
  3. De resulterende hersenen worden vervolgens gedehydrateerd via een reeks graduele ethylalcoholen (25%{}-100%) en daarna ingebed in araldite-plastic volgens het protocol in 1.8-1.9 hierboven. Indien LR white het inbeddingsmedium is, wordt het protocol in 1.10 hierboven gevolgd.
  4. De muis wordt diep geanestheseerd met intraperitoneel geïnjecteerde ketamine en xylazine en vervolgens transcardiaal geperfuseerd met 50 mL fosfaatgebufferde zoutoplossing (pH 7.4) op kamertemperatuur, gevolgd door 250 mL 10% neutraal gebufferde formaline (pH 7.4) op kamertemperatuur, en tot slot met 3.0 cc onverdunde India-inkt.
  5. Perfusie van het gehele lichaam met zoutoplossing en fixatief is noodzakelijk om het bloed uit het cardiovasculaire systeem te verwijderen en de weefsels te fixeren. Perfusie met India-inkt is noodzakelijk om de vasculatuur van het cardiovasculaire systeem volledig te vullen.
  6. De resulterende hersenen worden vervolgens gedehydrateerd via een reeks graduele ethylalcoholen (25%{}-100%) en daarna ingebed in araldite-plastic volgens het protocol in 1.8-1.9 hierboven. Indien LR white het inbeddingsmedium is, wordt het protocol in 1.10 hierboven gevolgd.
  7. De muis wordt diep geanestheseerd met intraperitoneel geïnjecteerde ketamine en xylazine en vervolgens transcardiaal geperfuseerd met 50 mL fosfaatgebufferde zoutoplossing (pH 7.4) op kamertemperatuur, gevolgd door 250 mL 10% neutraal gebufferde formaline (pH 7.4) op kamertemperatuur, en tot slot met 3.0 cc onverdunde India-inkt.
  8. Perfusie van het gehele lichaam met zoutoplossing en fixatief is noodzakelijk om het bloed uit het cardiovasculaire systeem te verwijderen en de weefsels te fixeren. Perfusie met India-inkt is noodzakelijk om de vasculatuur van het cardiovasculaire systeem volledig te vullen.
  9. De resulterende hersenen worden vervolgens gedehydrateerd via een reeks graduele ethylalcoholen (25%{}-100%) en daarna ingebed in araldite-plastic volgens het protocol in 1.8-1.9 hierboven. Indien LR white het inbeddingsmedium is, wordt het protocol in 1.10 hierboven gevolgd.

naar:

2. Specimenpreparatie: Nissl

  1. Dit protocol volgt nauwgezet het protocol van Mayerich et al.7
  2. De muis wordt diep geanestheseerd met intraperitoneel geïnjecteerde ketamine en xylazine en vervolgens transcardiaal geperfuseerd met 50 mL fosfaatgebufferde zoutoplossing (pH 7,4) op kamertemperatuur, gevolgd door 250 mL koude 4% fosfaatgebufferde paraformaldehyde (pH 7,4).
  3. De muis wordt vervolgens geperfuseerd met 100 mL van een oplossing van 0,1% thionine-kleurstof in gedeïoniseerd water, waarna het lichaam gedurende 24 uur in de koelkast (4 °C) wordt geplaatst.
  4. Na 24 uur wordt het brein uit de schedel verwijderd, geplaatst in een verse oplossing van 0,1% thionine en 7 dagen op 4 °C bewaard. De lange duur van deze procedure was bedoeld om volledige infiltratie van thionine in de en bloc preparatie te waarborgen.
  5. Het brein wordt vervolgens ontkleurd en gedehydrateerd via een reeks oplopende ethanolconcentraties, beginnend bij 50% ethanol in water en toenemend tot 100% ethanol over een periode van 6 weken. De ethanolwisselingen van 50% naar 70% worden in de koelkast (4 °C) bewaard en alle ethanolwisselingen boven de 70% worden bij kamertemperatuur bewaard.
  6. Na drie wisselingen van aceton (2-4 dagen in elke oplossing bij kamertemperatuur) wordt het brein ingebed in araldite-plastic volgens het protocol in 1.8-1.9 hierboven. Indien LR white als inbeddingsmedium wordt gebruikt, wordt het protocol in 1.10 hierboven gevolgd.

Openbaarmakingen

Geen belangenverstrengeling gedeclareerd.

Herprints en machtigingen

Tags

BeeldvormingsprotocollenNissl-kleuringmicroscopietechniekenmonstervoorbereidingbiologische beeldvormingmicroscopische analyseweefselpreparatie