$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
De extracellulaire matrix (ECM) in weefsels bestaat uit multifunctionele proteïnen betrokken bij fysische en chemische regulatie van verschillende celprocessen zoals hechting, proliferatie, differentiatie en apoptose 1-3. De ECM wordt gesynthetiseerd, geassembleerd, en georganiseerd door de cellen en de samenstellende eiwitfibrillen hebben unieke composities, vezelgrootte, geometrieën en onderling verbonden architecturen die variëren met het type weefsel en het ontwikkelingsstadium. Recent onderzoek heeft aangetoond dat de ECM leerzame aanwijzingen kan geven aan cellen om gemanipuleerde weefsels maken 4, wat suggereert dat recapituleren de ECM in termen van samenstelling en structuur kan de ontwikkeling van biomimetische materialen zorgen voor tissue engineering en biotechnologische toepassingen leiden.
Een aantal fabricage methoden ontwikkeld polymere scaffolds die aspecten van de ECM kunnen nabootsen in weefsels ingenieur. Bijvoorbeeld, elektrospinnen en fase gescheidenatie hebben zowel vermogen gedemonstreerd poreuze matrices van vezels te vormen met een diameter van enkele tientallen micrometers tot tientallen nanometers 5-7. Beide technieken hebben ook aangetoond dat zeer poreuze matrices van nanovezels cel adhesie en infiltratie in de scaffold 8 kan ondersteunen. Echter, deze aanpak beperkt in de mogelijke vezel geometrieën, oriëntaties en 3D-architecturen die kunnen worden gemaakt. Electrospinning geeft gewoonlijk steigers met ofwel willekeurig georiënteerde of zeer gerichte vezels terwijl fasescheiding produceert steigers met willekeurig georiënteerde vezels. Er zijn ook beperkingen op de materialen, met onderzoekers gewoonlijk gebruik van synthetische polymeren, zoals poly (ε-caprolacton) 8 en poly (melkzuur-co-glycolzuur) 9, die vervolgens worden bekleed met ECM eiwitten celadhesie bevorderen. Natuurlijke biopolymeren worden ook gebruikt, zoals collageen type I 10, 11 gelatine, fibrinogeen 12,chitosan 13, en zijde 14, maar vertegenwoordigen slechts een klein deel van de eiwitten in de eigen weefsel. De meeste weefsels bevatten een groter milieu van ECM eiwitten en polysacchariden zoals fibronectine (FN), laminine (LN), Type IV collageen en hyaluronzuur die moeilijk of onmogelijk te nanovezels Bestaande methoden fabriceren zijn.
Om deze uitdaging aan te pakken, hebben we onze onderzoeksinspanningen op het nabootsen van de manier waarop cellen synthetiseren, assembleren en te organiseren ECM eiwitfibrillen in hun omgeving gericht. Hoewel de specifieke fibrillogenese proces varieert voor verschillende ECM eiwitten typisch een conformationele verandering van de ECM eiwitmolecuul wordt veroorzaakt door een enzymatische of-receptor veroorzaakte interactie, die cryptische zelfassemblage plaatsen blootstelt. Hier gebruiken we FN als modelsysteem om beter inzicht in de fibrillogenese proces. Kort FN homodimeren binden aan integrine receptoren op het celoppervlak via de RGD aminozuursequentie in het 10e type IIIk herhaal eenheid. Eenmaal gebonden, de integrines uit elkaar via actomyosine contractie en vouw de FN dimeren cryptische zelfassemblage websites bloot. De blootstelling van deze FN-FN bindingsplaatsen kan de FN dimeren te monteren in een onoplosbare fibrillen direct aan het celoppervlak 15. Werk in cel-vrije systemen heeft aangetoond dat cryptische FN-FN bindingsplaatsen kunnen worden onthuld door ontvouwen behulp denatureermiddelen 16 of oppervlaktespanning bij een lucht-vloeistof-vaste stof grensvlak 17-19. De FN vezels die door deze technieken zijn beperkt tot specifieke vezels afmetingen en geometrieën en zijn meestal gebonden aan een oppervlak.
Hier beschrijven we een aanpak genoemd oppervlak geïnitieerd assemblage (SIA) 20 dat deze beperkingen overwint door gebruik te maken van eiwit-oppervlakte interacties tot vrijstaande onoplosbare nanovezels, nanofabrics (2D vellen) en andere nanostructuren bestaande uit een of meerdere ECM eiwitten (figuur 1 maken ). In dit process, worden ECM eiwitten geadsorbeerd uit een compacte, bolvormige conformatie in oplossing en gedeeltelijk gedenatureerd (uitgevouwen) op een patroon, hydrofoob polydimethylsiloxaan (PDMS) stempel. De ECM eiwitten worden dan overgebracht in deze toestand op een thermisch responsieve poly (N-isopropylacrylamide) (PIPAAm) oppervlak door microcontact afdrukken 22. Wanneer gehydrateerd met 40 ° C water de PIPAAm blijft solide, maar wanneer afgekoeld tot 32 ° C het door een lagere kritische oplostemperatuur (LCST) wanneer hydrofiel wordt geeft zwelt met water en vervolgens lost, loslaten van de geassembleerde ECM nanostructuren uit van het oppervlak. De SIA methode biedt controle over de afmetingen met nanometer-schaal precisie. Door het regelen van belangrijke parameters zoals de samenstelling, vezel geometrie en architectuur, is het mogelijk om vele eigenschappen van de ECM gevonden in vivo recapituleren en geavanceerde steigers voor tissue engineering en biotechnologische toepassingen te ontwikkelen.