Methodenartikel

MicroRNA expressie profielen van de Mens iPS cellen, retinale pigment epitheel Derived From iPS en Foetale retinale pigment epitheel

10.9K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/51589

⸱

24 juni 2014

 ,  ,  ,  , 
1Ocular Trauma, U.S. Army Institute of Surgical Research, JBSA Fort Sam Houston

In dit artikel

Samenvatting

De microRNA (miRNA) profielen van humane geïnduceerde pluripotente stamcellen (iPS) cellen, retinale pigment epitheel (RPE) afgeleid van menselijk geïnduceerde pluripotente stamcellen (iPS) cellen (iPS-RPE), en foetale RPE, werden vergeleken.

Samenvatting

Het doel van dit rapport is om de protocollen te beschrijven voor het vergelijken van de microRNA (miRNA) profielen van humane geïnduceerde pluripotente stamcellen (iPS) cellen, retinale pigment epitheel (RPE), afkomstig van menselijke iPS cellen (iPS-RPE), en foetale RPE. De protocollen omvatten collectie van RNA voor analyse door middel van microarray, en de analyse van microarray data te miRNAs een differentiële expressie tussen drie soorten cellen te identificeren. De methoden voor de cultuur van iPS cellen en foetale RPE worden toegelicht. Het protocol voor differentiatie van RPE uit menselijke iPS wordt ook beschreven. De RNA-extractie techniek beschrijven we geselecteerd om maximale terugwinning van zeer kleine RNA voor gebruik in een miRNA microarray mogelijk. Tenslotte wordt cellulaire weg en netwerk analyse van microarray data toegelicht. Deze technieken zullen de vergelijking van de miRNA profielen van drie verschillende celtypen vergemakkelijken.

Inleiding

Stamcellen hebben het vermogen om te repliceren zonder beperking en kunnen differentiëren in een somatische celtype. De ontwikkeling van technieken om somatische cellen te herprogrammeren in pluripotente stamcellen heeft uitgelokt grote opwinding in de onderzoekswereld en onder clinici, zoals de komst van gepersonaliseerde weefselregeneratie is aan de horizon 1. Geïnduceerde pluripotente stamcellen (iPS) cellen vertonen dezelfde kenmerken van onbegrensde replicatieve potentieel en pluripotency als embryonale stamcellen (ES) cellen, terwijl het omzeilen van de ethische dilemma's in verband met SER. Bovendien zal-patiënt afgeleide stamcellen geen immuunrespons stimuleren aanzienlijke verhoging van de kans op succesvolle therapeutische toepassingen 2-3. Onder specifieke kweekomstandigheden, zijn iPS cellen is aangetoond differentiëren in verschillende celtypes in vitro, zoals cardiomyocyten, neuronen, pancreatische beta-cellen, hepatocyten en retinale pigmentepitheel (RPE) 4-12.

De RPE is een gespecialiseerde laag van gepigmenteerde epitheelcellen aan de achterkant van het netvlies dat verschillende functies die essentieel zijn voor visuele gezondheid en functioneren zoals absorptie van strooilicht, fagocytose van de fotoreceptor buitenste segmenten voert en verwerking van retinoïden voor de productie van visuele chromofoor. Disfunctie van de RPE als gevolg van schade of ziekte beïnvloedt diepgaand gezondheid photoreceptor en visuele functie, zoals blijkt uit de verblindende ziekten die het gevolg zijn van onderliggende RPE pathologie zoals leeftijdsgebonden maculaire degeneratie (AMD), de ziekte van Stargardt, en retinitis pigmentosa (RP) zijn 13. Echt effectieve behandelingen die visie kan herstellen niet zijn verwezenlijkt, en de vervanging van zieke RPE met gezonde RPE kan de beste optie om het verlies van het gezichtsvermogen 14-15 voorkomen. RPE afgeleid van iPS (iPS-RPE) is een mogelijke bron van cellen om de beschadigde RPE vervangen. iPS-RPE uitdrukt kenmerkentic RPE eiwitten LRAT, CRALBP, PEDF en RPE65; geeft de klassieke hoog gepigmenteerde zeshoekig RPE morfologie; RPE en voert functies uit zoals fagocytose, retinoid verwerking en secretie van 11 - cis retinal 5,16. Echter, voordat iPS-RPE therapeutisch kan worden gebruikt, de iPS-RPE moet grondig worden gekarakteriseerd. Inzicht in de factoren die RPE differentiatie regelen moet de opbrengst en zuiverheid van de cellen worden gebruikt voor klinische toepassingen te verbeteren.

Celdifferentiatie is het gevolg van de sterk gereguleerde genexpressie. Epigenetische hermodellering van het genoom en de coördinatie van transcriptiefactoren zijn vereist voor cellot beslissingen die optreden tijdens differentiatie en ontwikkeling 17. Regulering van bericht RNA (mRNA) vertaling door microRNA (miRNA) presenteert nog een ander niveau van regelgeving die cel lot 1 beïnvloedt. MiRNAs zijn kort, ~ 22 nt, lengtes van nucleotiden die ofwel onderdrukken vertaling doorbinden aan de 3 'UTR van mRNA of gewenste mRNA voor de afbraak. MiRNAs zijn ontdekt in vrijwel alle weefsels en tot op heden meer dan 2.000 unieke menselijke microRNAs hebben in de miRBase databank geregistreerd. Omdat miRNAs vereisen slechts gedeeltelijk complementair te binden aan de doelwit mRNA kan een miRNA mogelijk binden aan tientallen of honderden doelen, en vice versa, dat wil zeggen een mRNA kunnen worden gericht door verschillende miRNAs. Dit promiscue bindende eigenschap drastisch verhoogt het niveau van complexiteit van regelgeving, alsmede de moeilijkheidsgraad van het bepalen van de functies van de individuele miRNAs en de rol die elk speelt in cellulaire functies 18-21. Toch hebben studies aangetoond dat miRNA verfijnt genexpressie tijdens de differentiatie door het beïnvloeden van DNA-methylatie status van 17. In een studie specifieker voor het RPE, werd miR-204/211 getoond om de epitheliale fenotype van de RPE 22 bevorderen. Een andere groep analyseerde de miRNA profielvan RPE tijdens differentiatie van ES-cellen en onthulde verschillende sets van miRNA expressie tijdens de differentiatie proces 23. In feite kan miRNA profielen ondubbelzinnig onderscheid celtypen, waaronder ES-cellen, precursorcellen en terminaal gedifferentieerde cellen 24,25. Meer dan 250 miRNAs worden uitgedrukt in het netvlies. Op basis van deze studies, veronderstellen we dat miRNAs spelen een belangrijke rol tijdens de differentiatie van RPE van iPS.

Het doel van dit rapport is om de protocollen voor de differentiatie van RPE beschrijven uit IMR90-4 iPS cellen, de verzameling van RNA voor analyse door middel van microarray, en de analyse van microarray data te miRNAs een differentiële expressie tussen drie soorten cellen, iPS cellen te identificeren , iPS-RPE en foetale RPE. Totaal RNA werd geëxtraheerd uit kweken van elk celtype en gehybridiseerd met een miRNA microarray, probes specifiek voor menselijke miRNAs 1205 en 144 virale miRNAs. De microarray resultaten werden vergelijkend te bepalen welke miRNAs differentieel tot expressie tussen de verschillende celtypen. miRNAs met 2 keer of meer voudige verandering in expressie werden geselecteerd voor verdere analyse. Een miRNA analyse software programma werd gebruikt om potentiële doelwitten van de differentieel tot expressie miRNA's identificeren en mobiele netwerken gereguleerd door de geselecteerde miRNAs genereren.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

1. Bereiding van Cultuur Reagentia en kweekplaten

  1. mTeSR1 media: Bereid mTeSR1 media volgens de aanwijzingen van de fabrikant. Dooi 100 ml mTeSR1 5x supplement overnacht bij 4 ° C. Voeg de 100 ml mTeSR1 5x supplement tot 400 ml mTeSR1 basale media en meng goed. Dit materiaal is stabiel bij 4 ° C gedurende maximaal 2 weken bij -20 ° C gedurende 6 maanden.
  2. Differentiatie media: Bereid differentiatie media DMEM/F12 tot 0,1 mM β-mercaptoethanol, 0,1 mM niet-essentiële aminozuren, 2,0 mM L-glutamine, 10% knockout serum en 10 ug / ml gentamicine verkregen.
  3. iPS-RPE media: Bereid iPS-RPE media in MEM om 1x N1 supplement, 0,1 mM niet-essentiële aminozuren, 250 ug / ml taurine, 13 ng / ml trijood-L-thyronine natriumzout, 20 ng / ml hydrocortison, 5 ug opleveren / ml gentamicine en 15% FBS 26.
  4. Trijood-L-thyronine natriumzout stamoplossing. Om stockoplossing te bereiden oplossen 1,0 mg trijood-L-thyroninenatriumzout in 1 N natriumhydroxide onder voorzichtig schudden. Voeg vervolgens 49,0 ml basismedium aan 50,0 ml van 20 ug / ml trijood-L-thyronine natriumzout maken. Aliquots en invriezen bij -20 ° C totdat het nodig is. Gebruik de juiste hoeveelheid om de gewenste concentratie te bereiken in de uiteindelijke kweekmedium.
  5. Hydrocortison voorraad oplossing: Om een ​​hydrocortison stockoplossing te bereiden, oplosbaar te maken 1 mg hydrocortison in 1 ml absolute ethanol door voorzichtig schudden. Voeg vervolgens 19,0 ml basismedium 20 ml hydrocortison voorraadoplossing van 50 ug / ml. hoeveelheid en bevriezen bij -20 ° C totdat het nodig is. Gebruik geschikte volume op de gewenste concentratie te bereiken in het uiteindelijke kweekmedium.
  6. Foetale RPE groeimedium. Bereid de groeimedia door mengen van alle reagentia in de kit RTEGM in de basale media, volgens de aanwijzingen van de fabrikant behalve de FBS.
  7. Foetale RPE plating media. Bereid plating media door overbrengen van een kleine hoeveelheid groeimedium een ​​steriele houder en eendd FBS tot een uiteindelijke concentratie van 2%.
  8. Dispase: Bereid werkende oplossing van dispase van 1 mg / ml in DMEM/F12.
  9. Matrigel beklede platen: Bereid matrigel in DMEM/F12 tot 0,08 mg / ml.
  10. Coat elk putje van een 6-wells plaat met 1,0 ml van het matrigel oplossing.
  11. Incubeer de beklede platen bij kamertemperatuur gedurende 1,0 uur.
  12. Na de 1,0 uur incubatie, zuig het overtollige DMEM/F12.
  13. Voeg 0,5 ml mTeSR1 media om uitdrogen te voorkomen. De matrigel beklede platen zijn nu klaar voor gebruik.

2. IPS Cultuur

  1. Voorafgaand aan iPS cel zaaien hebben alle buizen, warm mTESR1 media tot kamertemperatuur en de matrigel beklede platen klaar.
  2. Snel ontdooien de IMR90-4 iPS cellen in een 37 ° C waterbad. Verwijder vervolgens de cryovial uit het waterbad en steriliseer het gebruik 70% ethanol.
  3. Breng de cellen om een ​​15 ml conische buis met een pipet 2 ml tot breken van cel aggregaten minimaliseren.
  4. Druppelsgewijs voeg 5 ml warm mTeSR1 media om de cellen en meng. Centrifugeer de cellen bij 300 g gedurende 5 minuten bij kamertemperatuur en verwijder het supernatant.
  5. Resuspendeer zorgvuldig de cel aggregaten in 2 ml mTeSR1 media en zaad van de cellen op een putje van een zes goed plaat.
  6. Plaats de plaat in een 37 ° C incubator cultuur met 5% CO2, 95% vochtigheid.
  7. Verander dagelijks de iPS celcultuur media. Ongedifferentieerde kolonies verschijnen 5-7 dagen na het zaaien. Controleer voor ongedifferentieerde kolonies die klaar zijn voor passage (kolonies met een dichte centrum) zijn.

3. Passage van iPS cellen

  1. Vóór begin tot de passage iPS cellen hebben alle buizen, dispase oplossing DMEM/F12 en mTERS1 media opgewarmd tot kamertemperatuur en de Matrigel beklede platen klaar.
  2. Vóór passage van iPS cellen, verwijder alle gebieden van differentiatie door schrapen het gebied en het opzuigen van de media. Differentiatie dient beneden 20% van de put blijven hoogkwaliteit culturen. Roer voorzichtig de iPS-cel die goed met 2 ml DMEM/F12 en voeg 1 ml van 1 mg / ml dispase aan elk putje.
  3. Incubeer bij 37 ° C gedurende 7 minuten. Zuig het dispase en voorzichtig spoel de cel kolonies met 2 ml DMEM/F12 tweemaal.
  4. Na spoelen, voeg 2 ml mTSER1 aan elk putje.
  5. Met behulp van een pipet 5 ml voorzichtig schrapen de kolonies van de plaat om aggregaten te vormen.
  6. Breng de vrijstaande kolonies om een ​​15 ml conische buis. Voeg voldoende mTeSR1 media naar de volgende passage van cellen zaad.

4. Differentiatie van iPS cellen om iPS-RPE

  1. Plate de iPS cellen op een nieuw bedekt plaat in mTESR1 media.
  2. Laat iPS cel kolonies om uit te breiden voor 4-5 dagen in de cultuur.
  3. Plaatsvervanger mTeSR1 media met 4 ml differentiatie media. Wijzig de helft van de media om de 3 dagen.
  4. Laat gepigmenteerde foci te groot genoeg om handmatig worden ontleed uit de cultuur (40-50 dagen) groeien.
  5. Gebruik een200 ul pipet tip om rond te snijden en til de gepigmenteerde kolonies.
  6. Verzamelen en bundelen de ontleed kolonies in een 15 ml conische buis.
  7. Voeg vervolgens 5 ml DMEM/F12 de gepoolde RPE cellen en centrifugeer bij 300 xg gedurende 5 minuten tweemaal.
  8. Bereid een enkele cel oplossing door incubatie van de gepoolde iPS-RPE met 0,25% trypsine-EDTA.
  9. Spoel de iPS-cellen RPE met iPS-RPE media en het bord van de verzamelde cellen op een verse-matrigel gecoat goed in 4 ml van iPS-RPE media.
  10. Kweek van de cellen gedurende 3 weken voorafgaand aan passage. Wijzig de media om de 3 dagen. Voor het experiment, plaat iPS-RPE bij 100.000 cellen / cm 2. Verzamel cellen op dag 17. Tel de dag van het zaaien als dag 0.

5. Monsterneming

  1. iPS Cell Collection
    1. De cultuur van de iPS cellen tot ongedifferentieerde kolonies worden waargenomen dicht bij het centrum te zijn.
    2. Spoel de kolonies in DMEM/F12.
    3. Scheiden in afzonderlijke cellen met behulp accutas e. Verzamel de cellen in een 15 ml conische buis en centrifugeer bij 300 xg gedurende 5 minuten. Aspireren supernatant. Resuspendeer in 2 ml DMEM/F12.
  2. Foetale RPE Collection
    1. Spoel Foetale RPE celculturen met DMEM/F12 en dissocieren in enkele cellen met behulp van 0,25% trypsine-EDTA.
    2. Verzamel de cellen in een 15 ml conische buis. Centrifugeer bij 300 xg gedurende 5 minuten. Aspireren supernatant. Resuspendeer in 2 ml DMEM/F12.
  3. iPS-RPE Cell Collection
    1. Wanneer de iPS-RPE bereiken doorgang 3 en doorgang 5, het verzamelen van de cellen op dag 17 na passage. Spoel iPS-RPE tweemaal in PBS en bereiden een enkele celsuspensie door incubatie met 1,0 ml van 0,25% trypsine.
    2. Neutraliseren trypsine met 2 ml ijskoud iPS-RPE media.
    3. Verzamel de cellen in een 15 ml conische buis en centrifugeer bij 300 xg gedurende 5 minuten. Aspireren supernatant.
    4. Resuspendeer de cel suspensie in 3 ml kleurbuffer van microbead kit.
ve_title "> 6. negatieve selectie van iPS-RPE om ongedifferentieerde cellen verwijderen

  1. Houd alle reagentia bij 4 ° C tot gebruik, maar werken niet op ijs. Centrifugeer celsuspensie uit stap 5.3.4 bij 300 xg gedurende 5 minuten. Aspireren supernatant.
  2. Resuspendeer cellen in 100 ul vlekken buffer van microbead set per 2 x 10 6 cellen.
  3. Voeg 10 ul van anti-TRA-1-60-PE antilichaam per 2 x 10 6 cellen.
  4. Goed mengen en incuberen bij 4 ° C gedurende 10 minuten.
  5. Was de cellen in 1-2 ml buffer per 2 x 10 6 cellen. Centrifugeer gedurende 10 minuten bij 300 x g. Aspireren supernatant.
  6. Resuspendeer cellen in 80 ui kleurbuffer per 2 x 10 6 cellen. Voeg 20 ul van anti-PE gelabelde microbolletjes (vanaf kit) per 2 x 10 6 cellen. Meng goed. Incubeer gedurende 15 minuten bij 4 ° C.
  7. Voeg 1-2 ml vlekken buffer per 2 x 10 6 cellen. Centrifugeer gedurende 10 minuten bij 300 x g. Aspireren supernatant.
  8. Resuspendeer cellen in 500 & #956, l vlekken buffer.
  9. Magnetische celscheiding:
    1. Plaats kolom in magnetische cel sorteerder. Kolom spoelen met 3 ml vlekken buffer.
    2. Solliciteer celsuspensie van 6,8 op kolom.
    3. Plaats een buis aan de negatieve haven naar de TRA-1-60 negatieve cellen te verzamelen.

7. Totaal RNA extractie

  1. Lyseren van de cellen door het uitvoeren van de monsters met een in de handel verkrijgbaar microcentrifuge homogenisator mini spinkolom ontworpen voor nucleïnezuur minipreps.
  2. Extract totaal RNA van iPS cellen, iPS-RPE, en foetale RPE met de commercieel verkrijgbare RNA-extractie kit ontworpen om kleine RNA-moleculen 27 te behouden.
  3. Bepaal totaal RNA-concentraties met een Nanodrop spectrofotometer.

8. Bioanalyzer en Microarray Assay

  1. Controleer de RNA integriteit met Bioanalyzer in combinatie met commercieel verkrijgbare RNA kwaliteit kit.
  2. Incubate 100 ngtotaal RNA met kalf intestinaal fosfatase bij 37 ° C gedurende 30 min
  3. Denatureren het RNA met 100% DMSO bij 100 ° C gedurende 5 minuten.
  4. Label de monsters met PCP-Cy3 met T4 ligase door incubatie bij 16 ° C gedurende 1 uur.
  5. Hybridiseren op een 8_x_15K formaat menselijke miRNA array.
  6. Was de arrays volgens de instructies van de fabrikant en scannen met een resolutie van 5 urn met een scanner.
  7. Verwerven van gegevens met behulp van microarray feature extractie software die compatibel is met de miRNA microarray.
  8. Verwerk de miRNA signalen naar het relatieve expressieniveau in elk monster te bepalen.
  9. Vergelijk de expressieniveaus van elk miRNA tussen de monstergroepen. Selecteer miRNAs met tenminste tweevoudig differentiële expressie voor verdere analyse.
  10. Met behulp van in de handel verkrijgbare software voor data-analyse, volgt u de instructies om warmte kaarten voor visualisatie van differentieel tot expressie miRNAs 28 genereren.

9. Pathway Analysis

  1. Gegevens op te slaan van de gekozen 8.9 in Excel-formaat miRNAs.
  2. Log in op de online RNA pathway-analyse programma. Upload het Excel-bestand. Selecteer "Flexibele Format" voor bestandsindeling en selecteer "Agilent" uit de keuzelijst voor het type identifier.
  3. Onder ruwe gegevens post, toewijzen "ID" naar ID-kolom sonde en wijs "Observatie 1" en "log-ratio" naar de kolom log rantsoen. Selecteer "negeren" voor alle andere kolommen.
  4. Selecteer de parameters voor de analyse als volgt: Vertrouwen: alleen experimenteel waargenomen; omvatten directe en indirecte relaties; en omvatten endogene chemicaliën; Selecteer de Ingenuity Kennisbank als referentie set. Kies de database van referentie-moleculen die gegevens van alle soorten, alle cellijnen en weefsels en alle mutaties omvat.
  5. Run netwerk en pathway-analyses.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

iPS-cellen (Figuur 1A) werden gekweekt in differentiatie voorwaarden om differentiatie te induceren in iPS-cellen RPE. De iPS-RPE tentoongesteld klassieke RPE fenotype van zeshoekige gepigmenteerde cel morfologie (Figuur 1B), vergelijkbaar met foetale RPE (figuur 1C).

Om een ​​beter inzicht in de rol die miRNA kan spelen tijdens het proces van differentiatie van iPS iPS-RPE, microarray analyse van miRNA expressie werd uitgevoerd. Totaal RNA ...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Kortom, dit rapport beschrijft de methoden die worden gebruikt om de cultuur iPS cellen, iPS-RPE, en foetale RPE. RPE afgeleid van iPS zijn morfologisch en functioneel vergelijkbaar met foetale RPE. De iPS-RPE spreekt ook kenmerkend RPE genen waaronder RPE65, CRALBP, PEDF en LRAT 16. Om verder te karakteriseren deze cellen, werd RNA geëxtraheerd en gebruikt om microarray-analyse uit te voeren om differentieel tot expressie miRNA identificeren. Analyse van het signaal intensiteiten bleek dat het grootste aanta...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

De meningen of beweringen hierin zijn de particuliere standpunten van de auteurs en zijn niet te worden opgevat als ambtenaar of als een afspiegeling van de opvattingen van het Ministerie van het Leger of het ministerie van Defensie.

Dit onderzoek werd uitgevoerd terwijl de auteurs Whitney A. Greene, Alberto Muñiz en Ramesh R. Kaini hield een National Research Council Postdoctoraal Research Associate bij de USAISR.

Microarray testen werden uitgevoerd door de Greehey Children's Cancer Research Institute Microarray Core Facility en Bioinformatica afdeling UT Health Science Center in San Antonio.

Dit werk werd ondersteund door de US Army Klinische Revalidatie Geneeskunde Research Program (CRMRP) en Militaire Operationele Medicine Research Program (MOMRP).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
mTeSR1 media + 5X supplementStem Cell Technologies5850
DMEM/F12Life Technologies11330-032
2-β-mercaptoethanolSigmaM-7154
Non essential amino acidsHyclone(Fisher)SH30853.01
Knockout serum replacementLife Technologies10828-028
Gentamicin Life Technologies15750-060
MEM mediaLife Technologies10370-021
N1 supplementSigmaN-6530-5ML
TaurineSigmaT-8691-25G
HydrocortisoneSigmaH0888-1G
Fetal bovine serumHyclone(Fisher)SH3008803HI
Triiodo-l-thyronine sodium saltSigmaT6397
Sodium hydroxideSigmaS5881
Fetal RPE media RTEGM kitLife Technologies195406
DispaseLife Technologies17105-041
MatrigelBD Biosciences354277
Phosphate buffered salineHyclone(Fisher)10010-023
TrypsinHyclone(Fisher)25200-072
Miltenyi Biotec washing bufferStemGent130-092-987
Miltenyi Biotec rinsing bufferStemGent130-092-222
Anti-TRA-1-60 microbead kitStemGent130-095-816
Miltenyi Biotec cell sorter columnStemGent130-021-101
RNeasy micro kitQiagen74004
QIA shredderQiagen79654
RNA 6000 Pico LabChip kitAgilentG2938-90046
Human miRNA microarray v16AgilentG4471A

Referenties

  1. Yu, Z., et al. miRNAs regulate stem cell self-renewal and differentiation. Front Genet. 3, 191 (2012).
  2. Romano, G., et al. A commentary on iPS cell biology: Potential applications in autologous tissue and cell transplantation, development of new models for the study of human pathological conditions and drug screening. J Cell Physiol. 229, 148-152 (2014).
  3. Almeida, P. E., et al. Immunogenicity of pluripotent stem cells and their derivatives. Circ Res. 112, 549-561 (2013).
  4. Buchholz, D. E., et al. Derivation of functional retinal pigmented epithelium from induced pluripotent stem cells. Stem Cells. 27, 2427-2434 (2009).
  5. Kokkinaki, M., et al. Human induced pluripotent stem-derived retinal pigment epithelium (RPE) cells exhibit ion transport, membrane potential, polarized vascular endothelial growth factor secretion, and gene expression pattern similar to native RPE. Stem Cells. 29, 825-835 (2011).
  6. Bharti, K., et al. The new paradigm: retinal pigment epithelium cells generated from embryonic or induced pluripotent stem cells. Pigment Cell Melanoma Res. 24, 21-34 (2011).
  7. Park, I. H., et al. Reprogramming of human somatic cells to pluripotency with defined factors. Nature. 451, 141-146 (2008).
  8. Pera, M. F. Stem cells. A new year and a new era. Nature. 451, 135-136 (2008).
  9. Subba Rao, M., et al. Thinking outside the liver: Induced pluripotent stem cells for hepatic applications. World J Gastroenterol. 19, 3385-3396 (2013).
  10. Yoshida, Y., Yamanaka, S. iPS cells: a source of cardiac regeneration. J Mol Cell Cardiol. 50, 327-332 (2011).
  11. Lee, K. S., et al. Human sensory neurons derived from induced pluripotent stem cells support varicella-zoster virus infection. PLoS One. 7, (2012).
  12. Alipio, Z., et al. Reversal of hyperglycemia in diabetic mouse models using induced-pluripotent stem (iPS)-derived pancreatic beta-like cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 107, 13426-13431 (2010).
  13. la Cour, M., Tezel, T. The retinal pigment epithelium. Adv Organ Biol. 10, 253-272 (2005).
  14. Carr, A. J., et al. Protective effects of human iPS-derived retinal pigment epithelium cell transplantation in the retinal dystrophic rat. PLoS One. 4, (2009).
  15. Schwartz, S. D., et al. Embryonic stem cell trials for macular degeneration: a preliminary report. Lancet. 379, 713-720 (2012).
  16. Muniz, A., et al. Retinoid uptake, processing and secretion in human iPS-RPE support the visual cycle. Invest Ophthalmol Vis Sci. 55, 198-209 (2014).
  17. Leonardo, T. R., et al. The functions of microRNAs in pluripotency and reprogramming. Nat Cell Biol. 14, 1114-1121 (2012).
  18. Arora, A., et al. Prediction of microRNAs affecting mRNA expression during retinal development. BMC Dev Biol. 10, (2010).
  19. Huntzinger, E., Izaurralde, E. Gene silencing by microRNAs: contributions of translational repression and mRNA decay. Nat Rev Genet. 12, 99-110 (2011).
  20. Mallanna, S. K., Rizzino, A. Emerging roles of microRNAs in the control of embryonic stem cells and the generation of induced pluripotent stem cells. Dev Biol. 344, 16-25 (2010).
  21. Guo, H., et al. Mammalian microRNAs predominantly act to decrease target mRNA levels. Nature. 466, 835-840 (2010).
  22. Adijanto, J., et al. Microphthalmia-associated transcription factor (MITF) promotes differentiation of human retinal pigment epithelium (RPE) by regulating microRNAs-204/211 expression. J Biol Chem. 287, 20491-20503 (2012).
  23. Hu, G., et al. Identification of miRNA signatures during the differentiation of hESCs into retinal pigment epithelial cells. PLoS One. 7, (2012).
  24. Wilson, K. D., et al. MicroRNA profiling of human-induced pluripotent stem cells. Stem Cells Dev. 18, 749-758 (2009).
  25. Neveu, P., et al. MicroRNA profiling reveals two distinct p53-related human pluripotent stem cell states. Cell Stem Cell. 7, 671-681 (2010).
  26. Maminishkis, A., et al. Confluent monolayers of cultured human fetal retinal pigment epithelium exhibit morphology and physiology of native tissue. Invest Ophthalmol Vis Sci. 47, 3612-3624 (2006).
  27. Qiagen, miRNeasy Mini Handbook. Sample and Assay Technologies. , (2013).
  28. Microarray System with miRNA Complete Labeling and Hyb Kit. Agilent Technologies. , (2011).
  29. Maintenance of hESCs and hiPSCs in mTESR1 and mTESR2. Stem Cell Technologies. , (2010).
  30. The Analysis of DNA or RNA using its wavelengths: 230 nm, 260 nm, 280 nm. About Biotechnology. , (2013).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Foetaal RPERNA extractiemicroarray analysepathway analyseceldifferentiatiecelkweekflowcytometrie

Gerelateerde artikelen