Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Kwantificering van de Immunosuppressieve tacrolimus op opgedroogd bloed Spots Met behulp van LC-MS / MS

16.4K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/52424

⸱

8 november 2015

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1iC42 Clinical Research and Development, University of Colorado, Anschutz Medical Campus, 2Division of Clinical Pharmacology, Cincinnati Children's Hospital Medical Center, 3Food and Drug Administration (FDA), Center of Drug Evaluation Research - Office of Generic Drugs, 4Transplant Clinical Research, University of Cincinnati

In dit artikel

Samenvatting

Hier beschrijven we een hoogwaardige vloeistofchromatografie-gekoppelde massaspectrometrie (HPLC-MS/MS) test om het immunosuppressivum tacrolimus in gedroogde bloedvlekken te kwantificeren met behulp van een eenvoudige handmatige eiwitprecipitatiestap en online kolomextractie.

Samenvatting

De calcineurineremmer tacrolimus is de hoeksteen van de meeste immunosuppressieve behandelprotocollen na solide orgaantransplantatie in de Verenigde Staten. Tacrolimus is een smalle therapeutische index geneesmiddel en als zodanig vereist therapeutische controle van geneesmiddelen en aanpassing van de dosis op basis van haar volbloed dalconcentraties. Naar huis therapeutische geneesmiddelen en therapietrouw monitoring te vergemakkelijken, de verzameling van gedroogde bloedvlekken is een aantrekkelijk concept. Na een vingerprik, de patiënt verzamelt een druppel bloed op filterpapier thuis. Nadat het bloed is gedroogd, wordt deze verzonden naar het analytische laboratorium waar tacrolimus wordt gekwantificeerd met behulp van high-performance vloeistofchromatografie-tandem massaspectrometrie (HPLC-MS / MS) in combinatie met een eenvoudige handmatige eiwitten neerslaan en online extractiekolom.

Voor tacrolimus analyse is een 6-mm schijf gestanst uit de verzadigde centrum van het bloed ter plaatse. Het bloed spot wordt gehomogeniseerd met behulp van een kogel een blendernd dan eiwitten worden geprecipiteerd met methanol / 0,2 M ZnSO 4 met interne standaard D 2, 13 C-tacrolimus. Na vortexen en centrifugeren, wordt 100 ul supernatant geïnjecteerd in een online extractiekolom en gewassen met 5 ml / min van 0,1 mierenzuur / acetonitril (7: 3, v: v) gedurende 1 min. Hierna wordt de schakelklep geactiveerd en de analyten worden teruggespoeld op de analytische kolom (en gescheiden met een 0,1% mierenzuur / acetonitril gradiënt). Tacrolimus wordt gekwantificeerd in de positieve meerdere reactiewijze (MRM) met een tandem massaspectrometer.

De assay is lineair 1-50 ng / ml. Inter-assay variabiliteit (3,6% -6,1%) en de nauwkeurigheid (91,7% -101,6%) zoals bepaald meer dan 20 dagen te voldoen acceptatiecriteria. Gemiddelde extractie herstel is 95,5%. Er zijn geen relevante carry-over, matrix storingen en matrixeffecten. Tacrolimus is stabiel in gedroogde bloedvlekken bij kamertemperatuur en bij 4 ° C gedurende 1 week. Onttrokken monsters in deautosampler stabiel bij 4 ° C gedurende ten minste 72 uur.

Inleiding

Tacrolimus is een krachtige immonosuppressant 1-7 die een macrolide structuur 8 (figuur 1) heeft. Vanwege cis - trans isomerie GN bindingen vormt twee rotameren in oplossing 9 die kunnen worden gescheiden door omgekeerde fase hoge prestatie vloeistofchromatografie (HPLC) Tacrolimus lipofiel en oplosbaar in alcoholen (methanol: 653 g / L, ethanol: 355 g / l), gehalogeneerde koolwaterstoffen (chloroform: 573 g / l) en ether. Het is slecht oplosbaar in alifatische koolwaterstoffen (hexaan: 0,1 g / l en water (pH 3. 0,0047 g / L) 9 Het molecuul bevat geen chromofoor en UV-absorptiemaximum bevat is 192 nm Tacrolimus werkt via inhibitie van calcineurine. . Het werkingsmechanisme is beoordeeld in de referenties 10,11. Het wordt momenteel gebruikt in meer dan 80% van de vaste-orgaantransplantatie patiënten in de Verenigde Staten 12.

De therapeutische index van tacrolimus is gezioend te zijn smalle 13. Bovendien is de correlatie tussen tacrolimus en bloedconcentraties is slecht en farmacokinetiek variabel 14,15. Therapeutische drug monitoring tacrolimus dosering bij transplantatie patiënten is daarom de algemene klinische praktijk 16-20. Het doel is om de tacrolimus bloedconcentraties binnen een vooraf bepaalde therapeutische bereik te houden. Tacrolimus bloed concentraties beneden het therapeutisch bereik kan leiden tot verhoogde activiteit van chronische of acute allo-immuunreactie, terwijl concentraties boven het therapeutisch verhogen het risico van over- immunosuppressie, kanker en toxiciteit, bijvoorbeeld nefrotoxiciteit, neurotoxiciteit, hypertensie en diabetes. Hoge farmacokinetische intra-individuele variabiliteit van tacrolimus kan schadelijk zijn voor zowel de transplantatie van organen en overleving van patiënten 21,22 zijn. Terwijl de inter-individuele variabiliteit van tacrolimus farmacokinetiek wordt vooral veroorzaakt door CYP3A5 polymorfismen, redenen voor intra-individuelevariabiliteit omvatten, maar zijn niet beperkt tot, drug-drug, ziekte-geneesmiddel en food-geneesmiddelinteracties 14,15. Ook gebrek aan naleving van de immunosuppressieve therapeutische drug regime is een bijdragende factor en een belangrijke reden voor transplantaat verlies 23,24.

Deze overwegingen suggereren dat frequent thuis therapeutische geneesmiddelen en therapietrouw monitoring van tacrolimus volbloed-concentraties nuttig om ervoor te zorgen dat patiënten de blootstelling tacrolimus binnen de gewenste therapeutische raam te allen tijde kan worden. Echter, de logistiek en de kosten van frequentere therapeutic drug monitoring als het huidige klinische praktijk 15 is onbetaalbaar. Een van de redenen is dat de patiënt om te zien een phlebotomist de vereiste veneus bloedmonster getrokken hebben. Gedroogd bloed vlekken zijn onlangs naar voren gekomen als een aantrekkelijk concept van 25-28. Na een eenvoudige vinger stick de patiënt verzamelt een druppel bloed op een speciaal filter papier kaart en na het bloed spot heeft dried kan worden verzonden naar een centraal laboratorium voor analyse van tacrolimus en andere immunosuppressieve dat de patiënt nog kan nemen. Dit is mogelijk geworden door de ontwikkeling van zeer gevoelige en specifieke LC-MS / MS assays voor het kwantificeren van tacrolimus en andere immunosuppressiva in zeer kleine hoeveelheden bloed zoals gedroogde bloedvlekken (gewoonlijk 20 pl bloed) 25,29-43. Een ander voordeel is dat minimaal invasieve, een laag volume monstername strategieën zoals gedroogde bloedvlekken sterk therapeutische controle van geneesmiddelen en farmacokinetische studies bij kleine kinderen 28 vergemakkelijken.

Tacrolimus wordt meestal gemeten bij veneuze EDTA volbloed 15. Redenen zijn dat tacrolimus uitgebreid distribueert in bloedcellen en dat de klinische studies hebben gemeld betere correlatie tussen tacrolimus dalspiegels in het bloed dan in het plasma met klinische gebeurtenissen 15,18. In vergelijking, de analyse van tacrolimus in gedroogde bloedvlekken op basis van capillair bloed dat wordt gemengd met het filterpapier matrix. Dit biedt uitdagingen op het gebied van de solubilisatie van tacrolimus en mogelijke interferenties met de LC-MS / MS analyse. Hier presenteren we een gevestigde en gevalideerde test gebaseerd op homogenisering van de gedroogde bloedvlek met een kogel blender in combinatie met high-flow online column steekproef schoonmaak procedures en LC-MS / MS analyse. Met ingang van vandaag, heeft deze test met succes gebruikt voor de kwantificering van meer dan vijfduizend tacrolimus gedroogd bloed spot monsters voor de naleving bewaking in klinische studies.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

De geïdentificeerde bloedmonsters van gezonde personen waren van de University of Colorado Hospital (Aurora, Colorado). Het gebruik van de geïdentificeerde bloedbank monsters voor de validatie studies, alsook voor de voorbereiding van kalibrators en kwaliteitscontrole monsters werd "vrijgesteld" beschouwd door de Colorado Multi-institutionele Review Board (COMIRB, Aurora, Colorado).

1. Voorbereiding van referenties en oplossingen

  1. Kopen van tacrolimus en de interne standaard D 2, 13 C-tacrolimus uit de in de materialen opgesomd leveranciers.
    1. Bereid voorraadoplossingen in zuivere methanol bij een concentratie van 1 mg / ml voor tacrolimus en een concentratie van 10 ug / ml voor D 2, 13 C-tacrolimus. Maak voorraad oplossingen van referentiematerialen gebaseerd op drie onafhankelijke wegingen. Aliquot voorraadoplossingen en bewaar bij -70 ° C of lager.
  2. Bereid oplossing eiwitten precipiterenen extract tacrolimus gebruik van methanol / 0,2 M ZnSO 4 in water (7: 3, v: v). Deze oplossing bevat ook de interne standaard D 2, 13 C-tacrolimus in een concentratie van 2,5 ng / ml en wordt gebruikt voor de extractie van alle monsters behalve voor de extractie van blanco monsters (zie 1.3.3).
    1. Bereid dit eiwit precipitatieoplossing vers op elke extractie dag en stel het verstrijken van de oplossing bij 12 uur.
  3. Bereiding van ijklijn en kwaliteitscontrole (QC) monsters
    1. Bereid voorraad oplossingen van tacrolimus door het uitvoeren van geschikte verdunningen van de voorraad oplossing met behulp van pure methanol.
    2. Om ijk- en kwaliteitscontrolemonsters bereiden spike 20 pl geschikt verdund voorraadoplossing in EDTA volbloed, incubeer bij 37 ° C onder zacht schudden in een waterbad te zorgen voor homogene verdeling van tacrolimus in het cellulaire bloedproducten 20 min en aliquot in 1,5 ml poliepropylene buizen met conische bodem en snap-on deksels. Zorg ervoor dat de relatieve omvang van organische oplosmiddelen niet meer dan 5%.
    3. Spot 50 ul van het verrijkte bloed in het midden van elke cirkel op de filterkaarten met een pipet.
    4. Droog de bloedvlekken op filterkaarten bij kamertemperatuur gedurende 3 uur.
    5. Bereid tacrolimus calibratiestandaarden in menselijk EDTA volbloed bij tacrolimus concentraties van 1, 2,5, 5, 10, 25 en 50 ng / ml. Bereid een blanco monster voor de extractie als de kalibratiestandaarden met het eiwit precipitatie met interne standaard D 2, 13 C-tacrolimus ("zero sample").
    6. Bereid QC monsters humaan volbloed EDTA in concentraties van 0, 2, 4, 20, 40 ng / ml. Bereid een blanco monster. In tegenstelling tot de QC-monsters die zijn geëxtraheerd met neerslag met interne standaard D 2, 13 C-tacrolimus, pakt deze lege monster met eiwitprecipitatie oplossing doetde interne standaard D 2, 13 C-tacrolimus ("blanco monster") bevatten.
  4. Verzameling van klinische monsters
    1. Verzamel gedroogd bloed vlekken zoals beschreven in 43,44.

2. Winning van tacrolimus opgedroogd bloed Spot Steekproeven

  1. Inspecteer de gedroogd bloed plek aanvaardbaar monster kwaliteit en volume 45 te waarborgen.
  2. Punch centrum van het bloed vlek op het filter kaart met een 6-mm perforator.
    Opmerking: De kwaliteit van stempels kan worden gevolgd door weging. Een geperforeerd verzadigd filter schijf weegt gemiddeld 5,02 mg ± 0,09 mg (range: 4.83- 5.14 mg, n = 12).
  3. Plaats schijven in 1,5 ml polypropyleen buizen met conische bodem en snap-on deksels.
  4. Voeg 20-30 kogels aan elke buis.
  5. Voeg 500 pi van het eiwit precipitatie-oplossing (methanol: 0,2 M ZnSO 4, 7: 3, v: v met 2,5 ng / ml interne standaard) in elke buis. Voor het extractie van blanco monsters, gebruiken eiwitprecipitatie oplossing zonder de interne standaard.
  6. Homogeniseren van de schijven in de kogel blender gedurende 1 min (maximale snelheid, de instelling "10").
  7. Schud monsters bij RT op multi-tube vortex (maximale snelheid, de instelling "10") gedurende 10 min.
  8. Centrifugeer de monsters bij 16.000 xg en 4 ° C gedurende 10 min.
  9. Breng de bovenstaande vloeistoffen in glas HPLC-flesjes uitgerust met een 300 ul insert. Gebruik pre-split Teflon afdichtingen.
    Opmerking: De geëxtraheerde monsters worden bewaard bij -20 ° C of lager totdat LC-MS / MS analyse.

3. LC-MS / MS Analyse

  1. Belasting 100 pi van het supernatant van de geëxtraheerde monster in de extractiekolom C8 cartridge en wassen met een 7: 3 verhouding van 0,1% mierenzuur in water: acetonitril bij een stroomsnelheid van 5 ml / min gedurende 1 min. De aansluitingen van de schakelklep worden getoond in figuur 2 en het verloop gerund door de extractie pomp in Tabel 1 .
  2. Hierna activeert de schakelklep waardoor terugspoeling van de analyten uit de pre-kolom op de analytische kolom.
  3. Stel de kolom thermostaat op 65 ° C.
  4. Elueer de analyten uit de analytische kolom met de stroomsnelheden en verloop weergegeven in tabel 1.
  5. Sluit de analytische kolom om een tandem massaspectrometer via de turbo elektrosprayionisatie bron. Pas de belangrijkste parameters van de massaspectrometer volgens tabel 2.
  6. Detect positieve ionen ([M + Na] +) in de meervoudige reactiewijze (MRM). Gebruik de volgende ion transities voor de kwantificering: tacrolimus: m / z (massa / lading) = 826,6 → 616,2 en D 2, 13 C-tacrolimus: m / z = 829,6 → 619,2.
    Opmerking: De totale looptijd is 4,6 min.

4. kwantificering

  1. Voor elke run, het genereren van een ijkkromme gebaseerd op het bereid in 1.3.5 en kalibratorenomvatten in elke analytische run.
    1. Genereer een ijkcurve door nominale concentraties versus respons factor analyt (Peak Area [Analyte] / Peak Area [interne standaard]) met behulp van de massaspectrometer software.
    2. Monteer de kalibratoren met een kwadratische fit in combinatie met 1 / X weging.
  2. De hoeveelheid tacrolimus in de gedroogde bloedvlekken integreren tacrolimus en de interne standaard in de uitgepakte MRM chromatogrammen. Bereken de responsfactor voor tacrolimus (Peak Area [Analyte] / Peak Area [interne standaard]) en vergelijken met de kalibratiecurve met behulp van de massaspectrometrie software.

5. Validatie Procedures

  1. Ondergrens van detectie (LLOD) en de ondergrens van kwantificering (LLOQ).
    1. Beschouw de laagste tacrolimus concentratie met een piek-tot-ruis verhouding van 4: 1 als de onderste detectielimiet (LLOD). Definieer de ondergrens van kwantificering (LLOQ) alslaagste concentratie van de kalibratiecurve met een nauwkeurigheid gelijk aan of beter dan ± 20% afwijking van de nominale concentratie en nauwkeurigheid gelijk aan of beter dan 20% (variatiecoëfficiënt).
  2. Intra- en inter-dag nauwkeurigheid en precisie.
    1. Test de nauwkeurigheid en de precisie op vier concentraties van 2 ng / ml (QC1), 4 ng / ml (QC2), 20 ng / ml (QC3) en 40 ng / ml (QC4).
    2. Bereid de QC-monsters op elke dag validatie in menselijk EDTA volbloed droog filter cards, extract en geanalyseerd zoals hierboven beschreven.
    3. Bepaal intra-day nauwkeurigheid en precisie met 6 monsters per QC concentratie.
    4. Evalueren inter-dag nauwkeurigheid en precisie van meer dan 20 dagen. Meet elke QC-niveau met 4 monsters per dag.
    5. Analyseer twee kalibratiecurves met de QC-monsters op elke dag.
    6. Bereken intra-day nauwkeurigheid als% van de nominale concentratie (zes monsters per concentratie, zie 5.2.2). CalcUlate precisie als de coëfficiënt van variatie (CV%).
    7. Overweeg intra-day nauwkeurigheid aanvaardbaar indien zij onder de acceptatiegrenzen 85% tot 115% van de nominale concentratie. Overweeg intra-day precisie aanvaardbaar als deze gelijk is aan of beter dan een CV (variatiecoëfficiënt) van 15%.
    8. Bereken inter-dag nauwkeurigheid en precisie als het gemiddelde voor elke QC concentratieniveau boven de 20 validatie dagen geanalyseerd.
    9. Beschouw gemiddelde nauwkeurigheid inter-dag aanvaardbaar indien zij onder de acceptatiegrenzen 85% tot 115% van de nominale concentratie. Overweeg inter-dag nauwkeurig aanvaardbaar als deze gelijk is aan of beter dan een CV (variatiecoëfficiënt) van 15%.
  3. Uitsluiting van matrix storingen.
    1. Voor de uitsluiting van storingen, veroorzaakt door de matrix signalen analyseren lege gedroogde bloedvlekken (8 verschillende individuen, bij voorkeur 4 mannetjes en 4 vrouwtjes).
    2. Visueel te inspecteren ion chromatogrammen. Als pieken binnen de retentietijdraam van tacrolimus worden gedetecteerd, te integreren en hun gebieden te vergelijken onder de curve met die van tacrolimus pieken in blanco monsters verrijkt met tacrolimus op het LLOQ. Het gebied van pieken in de blanco monsters worden niet verondersteld om meer dan 15% van die van tacrolimus op de LLOQ.
  4. Ion onderdrukking / ion toebehoren.
    1. Gebruik een infusie post-column protocol zoals beschreven 45 om mogelijke storing van ion onderdrukking / ion verbetering veroorzaakt door de co-eluerende matrixbestanddelen beoordelen.
    2. Infuseren tacrolimus bij een concentratie van 10 ug / ml opgelost in 0,1% mierenzuur: methanol (30:70, v / v) na de kolom met een snelheid van 10 pl / min.
      1. Sluit een injectiepomp via T-stuk tussen de analytische kolom en de electrospray bron van de massaspectrometer.
      2. Controleer de MS / MS signaalintensiteit van MRM-overgangen van tacrolimus en de interne standaard (m / z = 826,6 → 616,2 en m / z = 829,6 → 619,2) na injectie van winningted blanco monsters (n = 8 monsters van verschillende individuen).
        Opmerking: Bij afwezigheid van ion onderdrukking / ion enhancement het continu signaal veroorzaakt door infusie van de analyten niet worden beïnvloed door injectie van de lege matrix, terwijl ion onderdrukking veroorzaakt een daling van het signaal en een verbetering ion piek.
  5. Overdragen.
    1. Evalueren mogelijke carry-over door het analyseren van gewonnen blanco monsters na de hoogste kalibratoren (50 ng / ml, n = 6).
    2. Visueel te inspecteren ion chromatogrammen. Als pieken binnen de retentietijd raam van tacrolimus worden gedetecteerd, te integreren en hun gebieden te vergelijken onder de curve met die van tacrolimus pieken in blanco monsters verrijkt met tacrolimus op het LLOQ. Het gebied van pieken in de blanco monsters worden niet verondersteld om meer dan 15% van die van tacrolimus op de LLOQ.
  6. Extractie terugvorderingen.
    1. Bepaal herstel door vergelijking van de signalen van de analyten na extractie van QC samselen op alle vier concentraties (n = 6 per concentratie) met die van lege gedroogde bloedvlekken verrijkt met de overeenkomstige bedragen van tacrolimus na de extractie.
    2. Bereid vier sets van KC (concentratie: 2, 4, 20, 40 ng / ml).
    3. Bereid eens 4 sets van de overeenkomstige "recovery proefmonsters" door het spotten van 50 pi leeg EDTA volbloed op het filter papieren kaarten en drogen gedurende 2 uur.
    4. Hierna, zowel voor de QC en blanco "recovery proefmonsters", knip de hele bloed vlek op het filter kaart met een schaar en plaats de resulterende schijven in een polypropyleen buis met conische bodem en snap-on deksel.
    5. Extract alle monsters.
    6. Breng de supernatanten (400 pi) in glas HPLC-flesjes.
    7. Voeg tacrolimus voorraadoplossing naar de lege "recovery geëxtraheerde monsters" concentraties van 2, 4, 20 en 40 ng / ml (4 pl 200, 400, 2000, 4000 ng / ml tacrolimus stock sol bereikenutions tot 400 pl supernatant).
    8. Na LC-MS / MS analyse, vergelijk de signalen in zowel QC samples en "recovery proefmonsters" van de desbetreffende concentratie (recovery% = signaalmonsters spiked voordat extractie / signaalmonsters spiked na extractie x 100).
  7. Verdunning integriteit.
    1. Vaststellen verdunning integriteit behulp monsters verrijkt met de analyten 500, 250 en 100 ng / ml.
    2. Na extractie, verdunnen monsters met behulp eiwitprecipitatie oplossing (01:10, n = 3 per concentratie).
    3. Bereken afwijkingen van de nominale concentratie. Overweeg resultaten die binnen 85% -115% van de nominale aanvaardbare vallen.
  8. Stabiliteiten.
    1. Onderzoek stabiliteiten met de QC-monsters bij vier concentraties (n = 4 per concentratie) geanalyseerd op verschillende tijdstippen en onder verschillende opslagomstandigheden.
    2. Vergelijk resultaten na opslag van de nominale waarden. Overweeg resultaten dat binnen 85% -115% van de nominale aanvaardbare vallen.
    3. Vaststellen monsterstabiliteit gedurende 1 week bij kamertemperatuur, 1 week bij 4 ° C, 1 maand bij -20 ° C en 1 maand bij -80 ° C.
    4. Test vries-dooi-stabiliteit via drie cycli (-20 ° C). Test geëxtraheerde monster en autosampler stabiliteit door het plaatsen van monsters in de autosampler thermostatisch ingesteld op 4 ° C. Injecteren monsters na 72 uur.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Representatieve ion chromatogrammen van een blanco monster een monster op de ondergrens van kwantificering en een patiëntmonster spiked zijn weergegeven in figuur 3.

Kalibratie Curves

De onderste detectiegrens was 0,5 ng / ml en de onderste bepalingsgrens was 1,0 ng / ml. Vijftig ng / ml werd gekozen als de kalibrator hoogste hogere concentraties onwaarschijnlijk onder normale omstandigheden in de kliniek te bereiken.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Hoewel, zoals hierboven vermeld, het begrip therapeutische geneesmiddel en hechting monitoring van tacrolimus basis van gedroogde bloedvlekken aantrekkelijk, er analytische uitdagingen die verder gaan dan die kenmerkend zijn voor de LC-MS / MS analyse van tacrolimus in veneus EDTA volbloedmonsters. Deze omvatten, maar zijn niet beperkt tot, het feit dat de matrix capillair volbloed gedrenkt in de katoenlinters materiaal van het filter kaartmateriaal hier gebruikt en de lage bloedvolume (20 ui). Niettemin high-throughput...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

Dit werk werd ondersteund door de United States Federal Drug Administration (FDA) contract HHSF223201310224C en de United States National Institutes of Health/FDA-subsidie 1U01FD004573-01.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
TacrolimusU.S. Pharmacopeial Convention1642802
D2,13C-TacrolimusToronto Research Chemicals Inc.F370002
Rode bloedcellenUniversity of Colorado HospitalW20091305500 V
PlasmaUniversity of Colorado HospitalW2017130556300Q
Aceton CHROMASOLV, HPLC, ≥99,9%Sigma-Aldrich439126-4 L
Acetonitril Optima LC/MS, UHPLC-UVThermo Fisher ScientificA955-4
Isopropanol 99.9%, HPLCFisher ScientificBP2632-4
Methanol Optima LC/MSThermo Fisher ScientificA452-4
Water Optima LC/MS, UHPLC-UVThermo Fisher ScientificW6-4
MierenzuurThermo Fisher ScientificA118P-500
Fosfaatgebufferd zout (PBS)Sigma-AldrichD8537
ZinksulfaatThermo Fisher ScientificZ68-500
0,5 – 10 µl pijp, VoluMate LIQUISYSTEMSMettler Toledo17008649
1,5 ml Eppendorf tubeThermo Fisher Scientific02-682-550
10 – 100 µl pijp, VoluMate LIQUISYSTEMSMettler Toledo17008651
10 μl pijptips met filter, sterielNeptuneBT 10XLS3
100 – 1.000 µl pijp, VoluMate LIQUISYSTEMSMettler Toledo17008653
100 μl pijptips met filter, sterielNeptuneBT 100
1.000 μl pijptips met filter, sterielMultimax2940
2 – 20 µl pijp, VoluMate LIQUISYSTEMSMettler Toledo17008650
2 ml Eppendorf tubeThermo Fisher Scientific02-681-258
20 – 200 µl pijp, VoluMate LIQUISYSTEMSMettler Toledo17008652
20 μl pijptips met filter, sterielGeneMateP-1237-20
200 μl pijptips met filterMultimax2938T
200 μl pijptips met filter, sterielMultimax2936J
50 ml Falcon tubeBD Falcon352070
300 μl inzetstukken voor HPLC-violenPhenomenexARO-9973-13
Balance PR2002Mettler Toledo1117050723
Balances AX205 Delta RangeMettler Toledo1119343379
Bullet Blender HomogenizerNext AdvanceBBX24
Centrifuge Biofuge FrescoHeraeus290395
wegwerp doekjesPDIQ55172
Glasbuisjes, 4 mlThermo Fisher Scientific14-955-334
Glasbuisjes, 20 mlThermo Fisher ScientificB7800-20
Handschoenen, nitrilTitan Brand Gloves44-100S
HPLC-buisjes, 9 mm, 2 ml, helderPhenomenexARO- 9921-13
Doppen voor HPLC-violenPhenomenexARO- 8952-13-B
Naald, 18 G 1,5Precision Glide305196
Rack voor EppendorfbuisjesThermo Fisher Scientific03-448-11
Rack voor HPLC-violenThermo Fisher Scientific05-541-29
Stalen bolletjes 0,9 – 2 mmNext AdvanceSSB14B
Opslagdozen voor diepvriezers / koelkastenThermo Fisher Scientific03-395-464
Standaard multi-buis vortexerVWR Scientific Products658816-115
Whatman Paper, 903 Protein Saver US 100/PKGE Whatman 2016-05
AutosamplerCTC PAL PAL.HTCABIx1
Binaire pomp, Agilent 1260 InfinityAgilent Technologies1260 G1312B
Binaire pomp, Agilent 1290 InfinityAgilent Technologies1290 G4220A
Microvacuümdegasser, Agilent 1260Agilent Technologies1260 G13798
Kolom oven,  Agilent 1290 met 2 posities Agilent Technologies1290 G1216C
Gethermostaseerde kolomcompartiment met geïntegreerde 6-poorts schakelklepAgilent Technologies1290 G1316C
HPLC-voorkolomcartridge, Zorbax XDB C8 (5 µm deeltjesgrootte), 4,6 · 12,5 mmPhenomenex820950-926
HPLC-analytische kolom, Zorbax Eclipse-XDB-C8 (5 µm deeltjesgrootte), 4,6 · 150 mmPhenomenex993967-906
Tandem-massaspectrometer
API5000 MS/MS met TurboIonspray-bronAB Sciex4364257
MassaspectrometriesoftwareAB SciexAnalyst 1.5.1

Referenties

  1. Goto, T., et al. Discovery of FK506, a novel immunosuppressant isolated from Streptomyces Tsukubaensis. Transplant Proc. 19 (5 Suppl 6), 4-8 (1987).
  2. Kino, T., Hatanaka, H., Miyata, S. FK506, a novel immunosuppressant isolated from a streptomyces. I: Fermentation, isolation and physico-chemical and biological characteristics. J. Antibiotics. 40 (9), 1249-1255 (1987).
  3. Starzl, T. E., et al. FK506 for liver, kidney and pancreas transplantation. Lancet. 2 (8670), 1000-1004 (1989).
  4. Randomised trial comparing tacrolimus (FK506) and cyclosporin in prevention of liver allograft rejection. European FK506 Multicentre Liver Study Group. Lancet. 344 (8920), 423-428 (1994).
  5. A comparison of tacrolimus (FK 506) and cyclosporine for immunosuppression in liver transplantation. The U.S. Multicenter FK506 Liver Study Group. N. Engl. J. Med. 331 (17), 1110-1115 (1994).
  6. Mayer, A. D., et al. Multicenter randomized trial comparing tacrolimus (FK506) and cyclosporine in the prevention of renal allograft rejection: a report of the European Tacrolimus Multicenter Renal Study Group. Transplantation. 64 (3), 436-443 (1997).
  7. Pirsch, J. D., Miller, J., Deierhoi, M. H., Vincenti, F., Filo, R. S. A comparison of tacrolimus (FK506) and cyclosporine for immunosuppression after cadaveric renal transplantation. FK506 Kidney Transplant Study Group. Transplantation. 15 (7), 977-983 (1997).
  8. Tanaka, H., et al. Physicochemical properties of FK506 a novel immunosuppressant isolated from Streptomyces Tsukubaensis. Transplant Proc. 14 ((5 Suppl 6)), 11-16 (1987).
  9. Spencer, C. M., Goa, K. L., Gills, J. C. Tacrolimus. An update of its pharmacology and clinical efficacy in the management of organ transplantation. Drugs. 54 (6), 925-975 (1997).
  10. Clipstone, N. A., Crabtree, G. R. Identification of calcineurin as a key signalling enzyme in T-lymphocyte activation. Nature. 357 (6380), 695-697 (1992).
  11. Barbarino, J. M., Staatz, C. E., Venkataramanan, R., Klein, T. E., Altman, R. B. PharmGKB summary: cyclosporine and tacrolimus pathways. Pharmacogenet. Genomics. 23 (10), 563-585 (2013).
  12. Annual Data Report. , Department of Health and Human Services, Health Resources and Services Administration, Healthcare Systems Bureau, Division of Transplantation. Available from: http://optn.transplant.hrsa.gov/data/annualreport.asp (2014).
  13. Draft Guidance on Tacrolimus. , Food and Drug Administration, Office of Generic Drugs. Available from: http://www.fda.gov/downloads/Drugs/GuidanceComplianceRegulatoryInformation/Guidances/UCM181006.pdf (2012).
  14. Christians, U., Benet, L. Z., Lampen, A. Mechanisms of clinically significant drug interactions associated with tacrolimus. Clin. Pharmacokinet. 41 (11), 813-851 (2002).
  15. Christians, U., Pokaiyavananichkul, T., Chan, L. Tacrolimus In: Pharmacokinetics and Pharmacodynamics. Principles of Therapeutic Drug Monitoring. Burton, M. E., Shaw, L. M., Schentag, J. J., Evans, W. ebb , 4th Edition, Lipincott, Wiliams, and Wilkins. =Baltimore. 529-562 (2005).
  16. Holt, D. W., et al. International Federation of Clinical Chemistry/ International Association of Therapeutic Drug Monitoring and Clinical Toxicology working group on immunosuppressive drug monitoring. Ther. Drug Monit. 24 (1), 59-67 (2002).
  17. Holt, D. W., Jones, K., Lee, T., Stadler, P., Johnston, A. Quality assessment issues of new immunosuppressive drugs and experimental experience. Ther. Drug Monit. 18 (4), 362-367 (1996).
  18. Jusko, W. J., et al. Consensus document: therapeutic drug monitoring of tacrolimus (FK-506). Ther. Drug Monit. 17 (6), 606-614 (1995).
  19. Oellerich, M., et al. Therapeutic drug monitoring of cyclosporine and tacrolimus. Update on Lake Louise Conference on cyclosporine and tacrolimus. Clin. Biochem. 31 (5), 309-316 (1998).
  20. Wong, S. H. Therapeutic drug monitoring for immunosuppressants. Clin. Chim. Acta. 313 (1-2), 241-253 (2001).
  21. Kahan, B. D., et al. Low intraindividual variability of cyclosporin A exposure reduces chronic rejection incidence and health care costs. J. Am. Soc. Nephrol. 11 (6), 1122-1131 (2000).
  22. Kahan, B. D., et al. Variable oral absorption of cyclosporine. A biopharmaceutical risk factor for chronic renal allograft rejection. Transplantation. 62 (5), 599-606 (1996).
  23. Kelly, D. A. Current issues in pediatric transplantation. Pediatr. Transplant. 10 (6), 712-720 (2006).
  24. Spivey, C. A., Chisholm-Burns, M. A., Damadzadeh, B., Billheimer, D. Determining the effect of immunosuppressant adherence on graft failure risk among renal transplant recipients. Clin. Transplant. 28 (1), 96-104 (2014).
  25. Taylor, P. J., Tai, C. H., Franklin, M. E., Pillans, P. I. The current role of liquid chromatography-tandem mass spectrometry in therapeutic drug monitoring of immunosuppressant and antiretroviral drugs. Clin. Biochem. 44 (1), 14-20 (2011).
  26. Edelbroek, P. M., van der Heijden, J., Stolk, L. M. Dried blood spot methods in therapeutic drug monitoring: methods, assays, and pitfalls. Ther. Drug Monit. 31 (3), 327-336 (2009).
  27. Meesters, R. J., Hooff, G. P. State-of-the-art dried blood spot analysis: an overview of recent advances and future trends. Bioanalysis. 5 (17), 2187-2208 (2013).
  28. Pandya, H. C., Spooner, N., Mulla, H. Dried blood spots, pharmacokinetic studies and better medicines for children. Bioanalysis. 3 (7), 779-786 (2011).
  29. Koster, R. A., Alffenaar, J. W., Greijdanus, B., Uges, D. R. Fast LC-MS/MS analysis of tacrolimus, sirolimus, everolimus and cyclosporin A in dried blood spots and the influence of the hematocrit and immunosuppressant concentration on recovery. Talanta. 115 (Oct 15), 47-54 (2013).
  30. Hinchliffe, E., Adaway, J., Fildes, J., Rowan, A., Keevil, B. G. Therapeutic drug monitoring of ciclosporin A and tacrolimus in heart lung transplant patients using dried blood spots. Ann Clin. Biochem. 51 (Pt 1), 106-109 (2014).
  31. Koop, D. R., Bleyle, L. A., Munar, M., Cherala, G., Al-Uzri, A. Analysis of tacrolimus and creatinine from a single dried blood spot using liquid chromatography tandem mass spectrometry. J. Chromatogr. B Analyt. Technol. Biomed. Life Sci.. 926 ((May 1)), 54-61 (2013).
  32. Sadilkova, K., Busby, B., Dickerson, J. A., Rutledge, J. C., Jack, R. M. Clinical validation and implementation of a multiplexed immunosuppressant assay in dried blood spots by LC-MS/MS. Clin. Chim. Acta.. 421 ((Jun 5)), 152-156 (2013).
  33. Li, Q., Cao, D., Huang, Y., Xu, H., Yu, C., Li, Z. Development and validation of a sensitive LC-MS/MS method for determination of tacrolimus on dried blood spots. Biomed. Chromatogr. 27 (3), 327-334 (2013).
  34. Hinchliffe, E., Adaway, J. E., Keevil, B. G. Simultaneous measurement of cyclosporin A and tacrolimus from dried blood spots by ultra-high performance liquid chromatography tandem mass spectrometry. J. Chromatogr. B Analyt. Technol. Biomed. Life Sci.. 883-884 ((Feb 1)), 102-107 (2012).
  35. Webb, N. J., Roberts, D., Preziosi, R., Keevil, B. G. Fingerprick blood samples can be used to accurately measure tacrolimus levels by tandem mass spectrometry). Pediatr. Transplant. 9 (6), 729-733 (2005).
  36. Keevil, B. G., Fildes, J., Baynes, A., Yonan, N. Liquid chromatography-mass spectrometry measurement of tacrolimus in finger-prick samples compared with venous whole blood samples. Ann. Clin. Biochem. 46 (Pt 2), 144-145 (2009).
  37. Yonan, N., Martyszczuk, R., Machaal, A., Baynes, A., Keevil, B. G. Monitoring of cyclosporine levels in transplant recipients using self-administered fingerprick sampling. Clin. Transpl. 20 (2), 221-225 (2006).
  38. Keevil, B. G., et al. Simultaneous and rapid analysis of cyclosporin A and creatinine in finger prick blood samples using liquid chromatography tandem mass spectrometry and its application in C2 monitoring. Ther Drug Monit. 24 (6), 757-767 (2002).
  39. Hoogtanders, K., et al. Dried blood spot measurement of tacrolimus is promising for patient monitoring. Transplantation. 83 (2), 237-238 (2007).
  40. Heijden, J., et al. Therapeutic drug monitoring of everolimus using the dried blood spot method in combination with liquid chromatography-mass spectrometry. J. Pharm. Biomed. Anal. 50 (4), 664-670 (2009).
  41. Cheung, C. Y., et al. Dried blood spot measurement: application in tacrolimus monitoring using limited sampling strategy and abbreviated AUC estimation. Transpl. Int. 21 (2), 140-145 (2008).
  42. Hoogtanders, K., et al. Therapeutic drug monitoring of tacrolimus with the dried blood spot method. J. Pharm. Biomed. Anal. 44 (3), 658-664 (2007).
  43. Wilhelm, A. J., den Burger, C. J., Vos, R. M., Chahbouni, A., Sinjewel, A. Analysis of cyclosporin A in dried blood spots using liquid chromatography tandem mass spectrometry. J. Chromatogr. B Analyt. Technol. Biomed. Life Sci. 877 (14-15), 1595-1598 (2009).
  44. Ostler, M. W., Porter, J. H., Buxton, M. O. Dried blood spot collection of health biomarkers to maximize participation in population studies. J. Vis. Exp. (83), e50973(2014).
  45. Hannon, H. W., et al. Blood collection on filter paper for neonatal screening programs, approved standard LA4-A5. , Clinical Laboratory and Standards Institute. Available from: http://www.clsi.org (2007).
  46. Schäfer, P., Störtzel, M., Vogt, S., Weinmann, W. Ion suppression effects in liquid chromatography-electrospray-ionisation transport-region collision induced dissociation mass spectrometry with different serum extraction methods for systematic toxicological analysis with mass spectra libraries. J. Chromatogr. B. 773 (1), 47-52 (2002).
  47. Peck, H. R., Timko, D. M., Landmark, J. D., Stickle, D. F. A survey of apparent blood volumes and sample geometries among filter paper bloodspot samples submitted for lead screening. Clin. Chim. Acta. 400 (1-2), 103-106 (2009).
  48. Christians, U., et al. Automated, fast and sensitive quantification of drugs in blood by liquid chromatography-mass spectrometry with on-line extraction: immunosuppressants. J. Chromatogr. B. 748 (1), 41-53 (2000).
  49. Clavijo, C., et al. Development and validation of a semi-automated assay for the highly sensitive quantification of Biolimus A9 in human whole blood using high performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry. J. Chromatogr. B. Analyt. Technol. Biomed. Life Sci. 877 (29), 3506-3514 (2009).
  50. Mei, J. V., Alexander, J. R., Adam, B. W., Hannon, W. H. Use of filter paper for the collection and analysis of human whole blood specimens. J. Nutr. 131 (5), S1631-S1636 (2001).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Tags

Tacrolimus kwantificeringLC MS MS analyseeiwitprecipitatieonline kolomextractiemultiple reaction modekalibratiecurveinterne standaardblood spot punchinghomogenisatie met bullet blender
Kwantificering van de Immunosuppressieve tacrolimus op opgedroogd bloed Spots Met behulp van LC-MS / MS
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan de bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleidsoverzicht

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.