Methodenartikel

Primaire Outcome Assessment in een Varken Model acuut myocardinfarct

11.2K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/54021

⸱

14 oktober 2016

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Experimental Cardiology, University Medical Center Utrecht, 2Department of Cardiology, University Medical Center Utrecht, 3Department of Clinical Chemistry and Hematology, University Medical Center Utrecht, 4Interuniversity Cardiology Institutes of the Netherlands (ICIN)

In dit artikel

Samenvatting

Betrouwbare en nauwkeurige uitkomst evaluatie is de sleutel voor de vertaling van preklinische therapieën in de klinische behandeling. De huidige paper beschrijft hoe drie klinisch relevante primaire uitkomstmaten van cardiale prestaties en de schade op te nemen in een varken acuut hartinfarct model.

Samenvatting

De mortaliteit na een acuut myocardinfarct blijft aanzienlijk en is geassocieerd met significante morbiditeit, zoals hartfalen. Nieuwe therapeutische benaderingen zijn daarom noodzakelijk om hartschade te beperken, overleving te bevorderen en de ziektelast van hartfalen te verminderen. Experimenten met grote dieren zijn een essentieel onderdeel in het translationele proces van experimentele naar klinische therapieën. Om klinische translatie te optimaliseren, zijn robuuste en representatieve meetmethoden verplicht. Het huidige manuscript streeft ernaar deze behoefte aan te pakken door de beoordeling van drie klinisch relevante uitkomstmaten in een varkensmodel voor acuut myocardinfarct (AMI) te beschrijven: infarctgrootte in relatie tot het risicogebied (IS/AAR) kleuring, 3-dimensionale transoesofageale echografie (TEE) en admittance-gebaseerde druk-volume (PV) lussen. Infarctgrootte is de belangrijkste factor die de overgang van AMI naar hartfalen bepaalt en kan worden gekwantificeerd door IS/AAR kleuring. Echocardiografie is een betrouwbaar en robuust hulpmiddel bij de beoordeling van de globale en regionale hartfunctie in de klinische cardiologie. Hier wordt een methode voor driedimensionale transoesofageale echografie (3D-TEE) bij varkens gepresenteerd. Uitgebreide inzichten in de hartfunctie kunnen worden verkregen door admittance-gebaseerde druk-volume (PV) lussen, inclusief intrinsieke parameters van de myocardiale functie die onafhankelijk zijn van pre- en afterload. Gecombineerd met een klinisch haalbaar experimenteel studieprotocol, bieden deze uitkomstmaten onderzoekers essentiële informatie om te bepalen of nieuwe therapeutische strategieën veelbelovende doelen kunnen opleveren voor toekomstige testen in klinische studies.

Inleiding

Hartfalen met verminderde ejectiefractie (HFrEF) is goed voor ongeveer 50% van alle gevallen van hartfalen, die naar schatting 1-2% van de mensen in de westerse wereld 1. De meest voorkomende oorzaak is acuut myocardinfarct (AMI). Als acute mortaliteit na AMI aanzienlijk is gedaald door de toegenomen bewustwording en een betere behandeling opties, is de nadruk verschoven naar haar chronische gevolgen; de meest prominente wezen HFrEF 2,3. Samen met de toenemende kosten van de gezondheidszorg 4, de groeiende epidemie van hartfalen benadrukt de noodzaak voor nieuwe diagnostica en therapieën, die in een sterk translationeel varkens model van negatieve remodeling kan worden bestudeerd nadat AMI zoals eerder beschreven 5.

Zowel determinanten (bijvoorbeeld infarct grootte) en functionele evaluaties (bijvoorbeeld echocardiografie) van bijwerkingen remodeling worden vaak gebruikt voor de werkzaamheid testen van nieuwe therapieën, met vermelding van de noodzaak van een reliable en relatief goedkope methodes. Het doel van dit artikel is om deze behoefte door het introduceren belangrijke en betrouwbare meetinstrumenten op werkzaamheid testen in een varkensmodel van acuut myocardiaal infarct. Deze omvatten infarctgrootte (IS) met betrekking tot risicogebied (AAR), 3D transesophagale echocardiografie (TEE-3D) en gedetailleerde admittantie gebaseerde druk-volume (PV) loop acquisitie.

Infarctgrootte is de belangrijkste determinant van ongunstige remodeling en overleving na AMI 6. Hoewel tijdige reperfusie van ischemisch myocard kan omkeerbaar gewonden hartspiercellen te redden en te beperken grootte van het infarct, reperfusie zelf veroorzaakt extra schade door het genereren van oxidatieve stress en een onevenredige ontstekingsreactie (ischemie-reperfusie schade (IRI)) 7. Derhalve is IRI geïdentificeerd als een veelbelovend therapeutisch doelwit. Het vermogen van nieuwe therapieën voor de infarctgrootte te verminderen wordt gekwantificeerd door het bepalen van infarctgrootte in relatiehet risicogebied (AAR). AAR kwantificering is verplicht om te corrigeren voor de inter-individuele variabiliteit in de coronaire anatomie van diermodellen, zoals een grotere AAR leidt tot een grotere absolute grootte van het infarct. Sinds infarctgrootte is direct gerelateerd aan de prestaties van hart en myocardcontractiliteit, kunnen variaties in AAR beïnvloeden bestuderen uitkomstmaten ongeacht behandelingsmethoden 8.

Driedimensionale transesophageal echocardiografie (3D-TEE) is een veilige, betrouwbare en, belangrijker nog, klinisch toepasbare goedkope methode voor het meten van de hartfunctie niet-invasief. Overwegende transthoracale echocardiografie (TTE) beelden worden beperkt tot 2D parasternale lange en korte as uitzicht bij varkens 9, kan 3D-TEE worden gebruikt voor het volledige 3-dimensionale beelden van de linker hartkamer te verkrijgen. Daarom is het niet wiskundige benaderingen van de linker ventrikel (LV) volumes, zoals de regel van de gewijzigde Simpson 10 vereisen. De laatste lager dan dat van correctly schatten LV volumes na LV remodeling gevolg van het ontbreken van cilindrische geometrie 11. Bovendien 3D-TEE voorkeur boven epicardiale echocardiografie omdat het geen chirurgische ingrepen, die zijn waargenomen cardioprotectieve effecten in dit model 12 uitoefenen vereisen. Hoewel het gebruik van 2D-TEE voor de beoordeling van myocardiale functie eerder beschreven 13,14, beperkingen ten aanzien ventriculaire geometrie vergelijkbaar met die waargenomen in 2D-TTE en afhankelijk van de mate van LV remodeling. Dus hoe groter de infarct (en dus hoe groter de kans op hartfalen), hoe waarschijnlijker 2D metingen worden ontsierd door onjuiste geometrische aannames en des te groter de 3D technieken.

Desalniettemin zijn de meeste beeldvormende modaliteiten beperkt in hun vermogen om de intrinsieke functionele eigenschappen van het myocard te beoordelen. PV lussen, deze relevante aanvullende informatie en de verwerving ervan is daaromhieronder in detail beschreven.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Alle dierproeven werden goedgekeurd door de Ethische Commissie inzake dierproeven van het Universitair Medisch Centrum Utrecht (Utrecht, Nederland) en voldoen aan de 'Gids voor de zorg en het gebruik van proefdieren.

OPMERKING: Het protocol het uitvoeren van een gesloten kist ballon occlusie is geen deel van de huidige manuscript en elders in detail beschreven 5. In het kort, varkens - zijn (60 70 kg) onderworpen aan 75 min transluminale ballon occlusie van het middengedeelte van de linker anterior dalende slagader (LAD).

Beide kunnen drie-dimensionale transesophageal echocardiografie (3D-TEE) en de druk-volume (PV) lus metingen worden verricht op baseline, op korte termijn en lange termijn follow-up. Merk op dat deze metingen onbetrouwbaar in het eerste uur na myocardiaal infarct worden toegeschreven aan frequent aritmieën in deze fase. Infarctgrootte (IS) en het gebied-at-risk (AAR) metingen preferably geraamd op korte termijn follow-up (24-72 uur) 15,16, aangezien veranderingen in microvasculatuur en secundaire littekenweefsel dunner uitmonden in minder betrouwbare resultaten. Infarctgrootte kleuring wordt uitgevoerd met 2,3,5-trifenyltetrazoliumchloride (TTC) (LET, irriterend), die als zeer reproduceerbaar en relatief goedkoop. TTC is een wit poeder dat colorlessly oplost in een zoutoplossing. Bij contact met diverse dehydrogenase, wordt deze omgezet in een rode tegel. Daarbij is het onderscheid tussen de levensvatbare (rood) en dode hartspierweefsel (wit). Voor een overzicht van zowel invasieve en niet-invasieve infarctgrootte bepalen, wordt de lezer doorverwezen naar een uitgebreide recensie over dit onderwerp 17.

Figuur 1 toont de tijdlijn zoals anesthesie chirurgisch voorbereiding en primaire eindpunt metingen die in deze studie.

1. Medicatie en Anesthesie

  1. Zorg ervoor dat het dier niet eten ofdrink minstens 5 uur voorafgaand aan de procedure. Voorbehandeling, anesthesie en postoperatieve pijnbehandeling protocollen zijn elders in detail beschreven 5.
  2. Kortom, de dag voorafgaand aan de operatie een buprenorfine patch (5 ug / uur) wordt aangebracht op de huid die actief is gedurende zeven dagen post-operatieve pijn beperken. Op de dag van de operatie, rustiger varkens door intramusculaire injectie van 0,4 mg / kg midazolam, 10 mg / kg ketamine en 0,014 mg / kg atropine. Wacht ongeveer 10 - 15 min. Plaats een 18 G canule in een van het oor aderen en toedienen 5 mg / kg natrium thiopental anesthesie induceren.
  3. Intuberen het varken met behulp van een endotracheale tube (grootte 8.5 voor varkens van 60 - 70 kg). Indien nodig, het uitvoeren van ballon-ventilatie (frequentie 12 / min) en de varkens vervoeren naar de operatiekamer.
  4. Bij aankomst in de operatiekamer, beginnen mechanische ventilatie met positieve druk FiO 0,50 2, 10 ml / kg ademvolume en een frequentie van 12 / min met een continuecapnografie opname.
  5. Begin evenwichtige anesthesie door continue intraveneuze infusie van een combinatie van midazolam (0,5 mg / kg / uur), sufentanil (2,5 ug / kg / uur) en pancuronium (0,1 mg / kg / uur).
  6. Bevestig verdoving door het testen van de cornea reflex en bewaken van de ademhaling (bijv spontane ademhaling in combinatie met mechanische ventilatie geeft incomplete anesthesie). Gebruik dierenarts zalf op de ogen tot droog voorkomen terwijl het dier onder narcose.

2. 3D Transesophageal echocardiografie (TEE)

  1. Met het oog op de hartslag en data-acquisitie, sluit het dier aan de 5 leidt ECG op de echocardiografie machine.
  2. Plaats het dier in de rechter laterale positie. Zorg ervoor dat de sonde is recht en flexibel aan het uiteinde door het ontsluiten van de operationele stuk.
  3. Open de mond van het varken en voorzichtig steek de echo sonde in de slokdarm. Gebruik indien nodig een laryngoscoop voor Visuabiliseren. Wees voorzichtig om te voorkomen dat eindigt in de normale anatomische faryngeale zakje, die lijkt op een Zenker divertikel van 18.
  4. Plaats de probe 50 - 60 cm (meten van de punt van de snuit). Draai langzaam de sonde en buig het hoofd naar links anterolaterale positie om het hart (Figuur 2A - B) te visualiseren. Controleer alle wanden zijn duidelijk zichtbaar.
  5. Gebruik de optie '3D volledige volume "op het display van de machine echocardiografie twee loodrechte afbeeldingen van de linker hartkamer, zoals weergegeven in figuur 2C -. D maximaliseren vervolgens de breedte sector die wordt door" FV Opt Volume "wordt verkregen. Pauze ventilatie door middel van mechanische ventilatie en druk op de "Acquire" tijdelijk uitschakelen om vol volume metingen verrichten.
  6. Na echo overname, zorg ervoor dat de tip is flexibel door het ontsluiten van de operationele stuk. Vervolgens langzaam de probe verwijderd uit het dier.
    OPMERKING: th geen reactiee dier onbeheerd totdat het voldoende bewustzijn heeft herwonnen om borstligging handhaven. Heeft een dier dat een operatie heeft ondergaan om het gezelschap van andere dieren tot volledig hersteld niet meer terug.
  7. Voer offline analyse met gevalideerde software zoals eerder 19 beschreven.

3. Toegang-gebaseerde Pressure-volume Loop Acquisition

  1. Bevochtig de detectie van de uiteinden 7 F tetra-polaire admittantie katheter in 0,9% zoutoplossing (kamertemperatuur tot 37 ° C) gedurende ten minste 20 minuten om een goede hydratatie en minimale basislijndruk drift waarborgen tijdens het experiment 20.
  2. Dien medicatie en verdoving zoals beschreven in paragraaf 1.
  3. Voer chirurgische voorbereiding en het verkrijgen van toegang tot de bloedbaan, zoals eerder 5 beschreven.
    1. Kortom, scheren en reinigen van de nek. Ontsmet de chirurgische gebied met jodium 2% en hebben betrekking op de niet-steriele delen van de varkens met steriele chirurgische gordijnen.
    2. Makeneen mediale incisie in de nek tot de interne halsslagader en halsader bloot. Plaats een huls 8 F in de halsslagader en 9 F huls in de halsader.
  4. Plaats een Swan-Ganz (SG) katheter door de mantel 9 F in de jugulaire ader en wig in een kleine longslagader door het opblazen van de ballon aan de tip van de katheter. Na een passende plaatsing in het randdeel van de long, de ballon leeglopen. Sluit de SG een extern cardiac output apparaat.
  5. Bevestig een 20 ml spuit met 0,9% steriele zoutoplossing aan de injectiepoort die is verbonden met het lumen bij het proximale uitmonding. Meet hartminuutvolume door snelle infusie van 5 ml 0,9% zoutoplossing (kamertemperatuur) en het verkrijgen van hartslag tot slagvolume (SV) berekenen. Herhaal deze procedure drie keer en het berekenen van de gemiddelde SV.
    OPMERKING: hartminuutvolume (automatisch) berekend met de Stewart-Hamilton thermodilution vergelijking en is gebaseerd op temperatuurveranderingen in delongslagader na infusie van kamertemperatuur zoutoplossing 21.
  6. Verwijder de SG katheter. Plaats een 8 F Fogarty katheter door de mantel 9 F in de halsader en plaats deze in de inferieure vena cava.
  7. Kalibreren de druk signaal van de PV-lus katheter met behulp van de "Course" en "Fijn" knop, terwijl de tip in 0,9% zoutoplossing blijft. Voer vervolgens de gemeten SV in het systeem.
  8. Schuif de PV lus katheter door de huls 8 F in de halsslagader en centreren de tip in de linker ventrikel (LV) onder fluoroscopie.
  9. Selecteer de grootste adequaat geplaatst-segment door het uitzetten van het ruwe geleiding signaal tegen de druk signaal. Zorg ervoor dat de druk-geleiding loops zijn rechthoekige vorm. Fasesignaal wordt verwacht dat een sinus spoor met waarden tonen tussen 3 en 5 graden. Pauze ventilatie en het uitvoeren van een baseline scan om de geleiding te converteren naar Volume.
    1. Accepteer de basisgegevens doorAls u op "Doorgaan" wanneer de signalen stabiel zijn (geen aritmie), hartslag is gelijk aan ECG of de druk afgeleid hartslag en end-systolische (ES) / eind-diastolische (ED) geleiding afdoende worden gedetecteerd door het systeem 20.
      OPMERKING: De laatste kan worden geverifieerd door het uitzetten van het ruwe conductantiesignaal tegen het druksignaal en vergelijking ES / ED geleiding afgeleide waarden van de basislijn scan realtime geleiding. Als een van de bovenstaande eisen niet wordt voldaan, de procedure herhalen.
  10. Acquire basislijn druk-volume lussen door het opnemen van 10-12 opeenvolgende beats tijdens apneu door pauzeren ventilatie.
  11. Pomp de Fogarty katheter onder fluoroscopische begeleiding voorbelasting verminderen en opnemen 10-12 opeenvolgende slagen zoals hierboven beschreven. Controleer systolische bloeddruk blijft> 60 mmHg en geen aritmieën verstoren de metingen.
  12. Verwijder de Fogarty en PV loop katheters. Houd het opnemen arteriële pressure vóór en tijdens het verwijderen van de PV lus katheter inschakelen corrigeren van afwijking druk (dwz ex vivo voor en na de procedure basislijn drukverschil).
    OPMERKING: het dier onbeheerd achter, totdat het voldoende bewustzijn heeft herwonnen om borstligging handhaven. Heeft een dier dat een operatie heeft ondergaan om het gezelschap van andere dieren tot volledig hersteld niet meer terug.
  13. Voer offline analyse van geometrische metingen en functionele parameters met gevalideerde software 22.

4. Area At Risk (AAR) en de grootte van het infarct (IS) Kwantificering

  1. Ontbinden 1,00 g Evans blauw (NB 23, toxisch) in 50 ml 0,9% zoutoplossing, vul twee 50 ml Luer lock spuiten met 20 ml en 30 ml van 2% Evans blauwe oplossing respectievelijk en laten kamertemperatuur.
    LET OP: Het werk in een zuurkast en draag een stofmasker om de blootstelling aan gevaarlijke stoffen en het gebruik van handschoenen en een veiligheidsbril om contact fr te voorkomen beperkenOM huid en ogen.
  2. Vertaald nemen voorzorgsmaatregelen, oplossen 1% 2,3,5-trifenyl-tetrazoliumchloride (TTC) (LET, irriterend) bij 37 ° C 0,9% zoutoplossing en laten 37 ° C.
  3. Chirurgisch voorbereiding het dier vasculaire toegang tot beide halsslagaders verkrijgen. Voer een sternotomie om directe visualisatie van het effect van in vivo Evans blauw infusie 5.
  4. Plaats een 7 F en een 8 F inbrenghuls in de respectieve halsslagader. Als alternatief, sluit beide inbrenger hulzen in één halsslagader of gebruik maken van een van de dij slagaders voor een van beide het begeleiden van katheters.
  5. Sluit twee standaard Y-connectors naar een 7 F JL4 en een 8 F JL4 respectievelijk geleidekatheter. Voor een femorale benadering, gebruik dan een JR4 voor de rechter kransslagader (RCA) en een JL4 voor de linker belangrijkste coronaire (LCMA). Sluit een extra drie-weg kraan met 10 cm verlenging van beide Y-connectors.
  6. Dien 100 IE / kg heparine. Plaats de 8 F JL4 begeleiden catheter in het ostium van de LMCA via één van twee inbrenghulzen.
  7. Met een 0,014 "voerdraad, vooraf een coronaire dilatatie katheter door de katheter LCMA en plaats de ballon op de plaats waar coronaire occlusie uitgevoerd storingsindicator inductie. Nog niet te blazen.
  8. Plaats de tweede 8 F JL4 geleidingskatheter in het ostium van de RCA via de tweede inbrenghuls.
  9. Voer een coronaire angiografie (CAG) door infusie van contrastmiddel fluoroscopie correcte positionering van zowel geleidingskatheters en de ballon in de kransslagaders, met behulp achterwaartse en LAO 30 ° uitzicht bevestigen.
  10. Bevestig de twee 50 ml spuiten met 30 ml (LCMA) en 20 ml (RCA) 2% Evans blauw aan de respectievelijke drie-weg taps bevestigd aan de Y-connectoren op geleidingskatheters.
  11. Blaas de ballon en bevestigen occlusie van de kransslagader door CAG. Alleen wanneer de ballon volledig blokkeert de doorgang van elke contrastmiddel te injecteren Evans blue dgij door beide geleidekatheters (5 ml / s) terwijl de ballon is opgeblazen.
  12. Direct na voltooiing van Evans blauw infusie induceren ventriculaire fibrillatie door een 9 V batterij in de niet-geïnfarceerde deel van het hart.
  13. Incise de vena cava om druk te verminderen en ervoor te zorgen dat een zuigkracht unit is beschikbaar om voor de afvoer van bloed.
  14. Leeglopen van de ballon, trekken deze samen met zowel het begeleiden van katheters en explantatie het hart door het ontleden van omliggende membranen. Een dwarse dwars door de grote schepen (dat wil zeggen, aorta, longslagader / aderen) zorgt voor volledige explantatie. Snel wassen bloed en overtollige kleurstof op het buitenoppervlak en de cardiale holten middels 0,9% zoutoplossing.
  15. ontleden voorzichtig de linker ventrikel en bezuinigen in 5 gelijke 10 mm dikke panelen van apex tot basis, in een vlak evenwijdig aan de atrioventriculaire (AV) groef.
  16. Fotograferen beide zijden van alle vijf segmenten afzonderlijk onder omgevingslicht,als mogelijke Evans blauwe uitwasperiode optreden in de volgende stap. Voor de kalibratie, zorg ervoor dat een heerser in het beeld aanwezig is.
  17. Incubeer gedurende 10 min in 1% TTC oplossing bij 37 ° C, draaien de delen rond na 5 min gelijke kleuring.
  18. Nogmaals, fotograferen beide zijden van alle vijf segmenten afzonderlijk onder omgevingslicht en zorg ervoor dat een heerser is zichtbaar in het beeld voor de kalibratie.
  19. Weeg alle segmenten. Gebruik software geschikt voor de analyse 5. Bij het gebruik van ImageJ (versie 1.47), klikt u op de knop "rechte lijn". Nu, trek een rechte lijn met een bekende afstand met de liniaal in de afbeelding (bijvoorbeeld 5 cm). Klik op "Analyseren" -> "Set schaal" en voer de afstand in het vak "bekende afstand". Deze procedure maakt het mogelijk voor de kalibratie van de afstand in pixels op SI-eenheden van lengte.
  20. Met de knop "Polygon selecties", selecteert u de totale oppervlakte die overeenkomt met het LV myocard in de huidige imleeftijd, klikt u op "Analyze" -> "Measure" om metingen te verwerven. Voer deze procedure voor beide zijden van elk stuk myocardium en gemiddelde per segment.
    1. Vermenigvuldigd met het gewicht van het deel in verhouding tot het totale gewicht van alle vijf segmenten en het gemiddelde van deze metingen voor alle segmenten.
  21. Voer vergelijkbare metingen voor risicogebied (AAR) en de grootte van het infarct (IS). Divide IS / AAR, AAR / LV en IS / LV en vermenigvuldig met 100% aan de respectievelijke uitkomstmaten 5 te verkrijgen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

3D Transesophageal echocardiografie

3D transesofagale echocardiografie (TEE-3D) kan worden gebruikt voor de beoordeling van globale hartfunctie. Na AMI, globale hartfunctie verschilt van gezonde uitgangswaarden. Met name de linker ventrikel ejectiefractie (LVEF) afneemt vanaf 59 ± 4% tot 37 ± 6% na één week van reperfusie (n = 10) (GPJ van Hout, 2015). Een verhoging eindsystolisch volume (51 ± 7-82 ± 13 ...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Remodellering is grotendeels afhankelijk van myocardiale infarctgrootte en de kwaliteit van myocardiaal infarct repareren 6,26. Aan de voormalige op een gestandaardiseerde manier te beoordelen, de huidige manuscript biedt een elegante methode van in vivo infusie van Evans blauw gecombineerd met ex vivo TTC vlekken, die is gevalideerd en veelvuldig gebruikt 8,16,27,28. Deze methode maakt kwantificering van het risicogebied (AAR) en infarctgrootte in relatie tot AAR 16. D...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

De auteurs danken Marlijn Jansen, Joyce Visser, Grace Croft, Martijn van Nieuwburg, Danny Elbersen en Evelyn Velema voor hun uitstekende technische ondersteuning tijdens de dierproeven.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
3-dimensional Transesophageal Echocardiography
iE33 echografieapparaatPhilips-
X7-2t transducerPhilips-
Aquasonic® 100 echografiegelParker Laboratories Inc.01-34Alternatief product kan worden gebruikt
Batterijhandvat type C (laryngoscoophandvat)Riester12303
Ri-Standard Miller blade MIL 4 (laryngoscoopblad)Riester12225
Qlab 10.0 (3DQ Advanced) analysesoftwarePhilips-
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Druk-volumelus acquisitie
Cardiac defibrillatorPhilips
0,9% SalineBraun
8 F Percutane Sheath Introducer SetArrowCP-08803Alternatief product kan worden gebruikt
9 F Radifocus® Introducer II Standard Kit TerumoRS*A90K10SQAlternatief product kan worden gebruikt
8 F Fogarty katheterEdward Life Sciences62080814FAlternatief product kan worden gebruikt
7 F Criticath™ SP5107H TD katheter (Swan-Ganz)Becton Dickinson (BD)680078Alternatief product kan worden gebruikt
Ultraview SL Patient Monitor en Invasive Command Module (extern cardiale outputapparaat)Spacelabs Healthcare91387Alternatief product kan worden gebruikt
ADVantage system™Transonic SciSense-
7 F Tetra-polaire admittance katheter (7,0 VSL Pigtail / geen lumen)Transonic SciSense-
Multi-kanaals acquisitiesysteem (Iworx 404)Iworx-
Labscribe V2.0 analysesoftwareIworx-Alternatief product kan worden gebruikt
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Infarctgrootte / area-at-risk kwantificering
Diathermie-Alternatief product kan worden gebruikt
Lebsch mes-Alternatief product kan worden gebruikt
Hamer-Alternatief product kan worden gebruikt
BeenmergwaxSynetureAlternatief product kan worden gebruikt
Klinkenberg schaar-Alternatief product kan worden gebruikt
Retractor-Alternatief product kan worden gebruikt
Chirurgische schaar-
7 F Percutane Sheath Introducer Set ArrowCP-08703Alternatief product kan worden gebruikt
8 F Percutane Sheath Introducer Set ArrowCP-08803Alternatief product kan worden gebruikt
7 F JL4 begeleidende katheter Boston ScientificH749 34357-662Alternatief product kan worden gebruikt
8 F JL4 begeleidende katheter Boston ScientificH749 34358-662 Alternatief product kan worden gebruikt
COPILOT Bleedback Control Valves Abbott Vascular1003331Alternatief product kan worden gebruikt
BD Connecta™ Franklin Lakes394995Alternatief product kan worden gebruikt
ContrastmiddelTelebrix
Persuader 9 Steerable Guidewire 9 (0,014", 180 cm, rechte punt), hydrofiele coatingMedtronic Inc.9PSDR180HSAlternatief product kan worden gebruikt
SAPPHIRE™ Coronaire dilatatiekatheter (PTCA-ballon geschikt voor de grootte van de specifieke coronaire slagader (2,75 - 3,25 mm))OrbusNeich103-3015Alternatief product kan worden gebruikt
Evans Blue Sigma-AldrichE2129-100GToxisch. Alternatief product kan worden gebruikt
2,3,5-trifenyl-tetrazoolchloride (TTC)Sigma-AldrichT8877-100GIrriterend. Alternatief product kan worden gebruikt
9 V Batterij--
Liniaal--
FotocameraSony-
ImageJNational Institutes of Health-Alternatief product kan worden gebruikt

Referenties

  1. Mosterd, A., Hoes, A. W. Clinical epidemiology of heart failure. Heart. 93 (9), 1137-1146 (2007).
  2. Nichols, M., et al. European Cardiovascular Disease Statistics. , Brussels. (2012).
  3. Krumholz, H. M., et al. Reduction in Acute Myocardial Infarction Mortality in the United States. JAMA. 302 (7), 767-773 (2010).
  4. Go, A. S., et al. Heart disease and stroke statistics - 2013 update: A Report from the American Heart Association. Circulation. 127 (1), (2013).
  5. Koudstaal, S., et al. Myocardial infarction and functional outcome assessment in pigs. J. Vis. Exp. (86), e51269(2014).
  6. Chareonthaitawee, P., Christian, T. F., Hirose, K., Gibbons, R. J., Rumberger, J. A. Relation of initial infarct size to extent of left ventricular remodeling in the year after acute myocardial infarction. J. Am. Coll. Cardiol. 25 (3), 567-573 (1995).
  7. Yellon, D. M., Hausenloy, D. J. Myocardial reperfusion injury. N. Engl. J. Med. 357 (11), 1221-1235 (2007).
  8. Suzuki, Y., Lyons, J. K., Yeung, A. C., Ikeno, F. In vivo porcine model of reperfused myocardial infarction: In situ double staining to measure precise infarct area/area at risk. Catheter Cardiovasc. Interv. 71 (1), 100-107 (2008).
  9. Weidemann, F., et al. Myocardial function defined by strain rate and strain during alterations in inotropic states and heart rate. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 283 (2), H792-H799 (2002).
  10. Mercier, J. C., et al. Two-dimensional echocardiographic assessment of left ventricular volumes and ejection fraction in children. Circulation. 65 (5), 962-969 (1982).
  11. De Jong, R., et al. Cardiac Function in a Long-Term Follow-Up Study of Moderate and Severe Porcine Model of Chronic Myocardial Infarction. Biomed. Res. Int. 2015, 1-11 (2015).
  12. Van Hout, G. P. J., et al. Invasive surgery reduces infarct size and preserves cardiac function in a porcine model of myocardial infarction. J. Cell. Mol. Med. , 2655-2663 (2015).
  13. Meybohm, P., et al. Assessment of left ventricular systolic function during acute myocardial ischemia: A comparison of transpulmonary thermodilution and transesophageal echocardiography. Minerva Anestesiol. 77 (2), 132-141 (2011).
  14. Gruenewald, M., et al. Visual evaluation of left ventricular performance predicts volume responsiveness early after resuscitation from cardiac arrest. Resuscitation. 82 (12), 1553-1557 (2011).
  15. Bolli, R., Becker, L., Gross, G., Mentzer, R., Balshaw, D., Lathrop, D. A. Myocardial protection at a crossroads: The need for translation into clinical therapy. Circ. Res. 95 (2), 125-134 (2004).
  16. Timmers, L., et al. Exenatide reduces infarct size and improves cardiac function in a porcine model of ischemia and reperfusion injury. J. Am. Coll. Cardiol. 53 (6), 501-510 (2009).
  17. Csonka, C., et al. Measurement of myocardial infarct size in preclinical studies. J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 61 (2), 163-170 (2010).
  18. Law, R., Katzka, D. A., Baron, T. H. Zenker's Diverticulum. Clin. Gastroenterol. Hepatol. 12 (11), 1773-1782 (2014).
  19. Philips Healthcare. QLAB 10.0 Quick Card: 3DQ and 3DQ Adv measurements guide. , (2013).
  20. Transonic. ADV500 Pressure-Volume Measurement System Use and Care Manual, version 5. , (2006).
  21. Schramm, W. Is the cardiac output obtained from a Swan-Ganz catheter always zero? J. Clin. Monit. Comput. 22 (6), 431-433 (2008).
  22. iWorx. LabScribe 3: Software Manual for Pressure-Volume Analyses. , (2014).
  23. Hueper, W. C., Ichniowski, C. T. Toxicopathologic studies on the dye T-1824. Arch. Surg. 48 (1), 17-26 (1944).
  24. Van Hout, G. P. J., et al. Admittance-based pressure-volume loops versus gold standard cardiac magnetic resonance imaging in a porcine model of myocardial infarction. Physiol. Rep. 2 (4), 1-9 (2014).
  25. Burkhoff, D., Mirsky, I., Suga, H. Assessment of systolic and diastolic ventricular properties via pressure-volume analysis: a guide for clinical, translational, and basic researchers. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. Heart Circ. Physiol. 289 (2), H501-H512 (2005).
  26. Frangogiannis, N. G. The inflammatory response in myocardial injury, repair, and remodelling. Nat. Rev. Cardiol. 11 (5), 255-265 (2014).
  27. Fishbein, M., et al. Early phase acute myocardial infarct size quantification: validation of the triphenyl tetrazolium chloride tissue enzyme staining technique. Am. Heart. J. 101 (5), 593-600 (1981).
  28. Arslan, F., et al. Treatment with OPN-305, a humanized anti-toll-like receptor-2 antibody, reduces myocardial ischemia/reperfusion injury in pigs. Circ. Cardiovasc. Interv. 5 (2), 279-287 (2012).
  29. Meyns, B., Stolinski, J., Leunens, V., Verbeken, E., Flameng, W. Left ventricular support by Catheter-Mountedaxial flow pump reduces infarct size. J. Am. Coll. Cardiol. 41 (7), 1087-1095 (2003).
  30. Khalil, P. N., et al. Histochemical assessment of early myocardial infarction using 2,3,5-triphenyltetrazolium chloride in blood-perfused porcine hearts. J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 54 (3), 307-312 (2006).
  31. Gardner, B. I., Bingham, S. E., Allen, M. R., Blatter, D. D., Anderson, J. L. Cardiac magnetic resonance versus transthoracic echocardiography for the assessment of cardiac volumes and regional function after myocardial infarction: an intrasubject comparison using simultaneous intrasubject recordings. Cardiovasc. Ultrasound. 7, 38(2009).
  32. Santos-Gallego, C., et al. 3D-Echocardiography Demonstrates Excellent Correlation With Cardiac Magnetic Resonance for Assessment of Left Ventricular Function and Volumes in a Model of Myocardial Infarction. J. Am. Coll. Cardiol. 59 (13), E1564(2012).
  33. Keith Jones,, W,, et al. Peripheral nociception associated with surgical incision elicits remote nonischemic cardioprotection via neurogenic activation of protein kinase C signaling. Circulation. 120, Suppl 1. S1-S9 (2009).
  34. Gross, G. J., Baker, J. E., Moore, J., Falck, J. R., Nithipatikom, K. Abdominal Surgical Incision Induces Remote Preconditioning of Trauma (RPCT) via Activation of Bradykinin Receptors (BK2R) and the Cytochrome P450 Epoxygenase Pathway in Canine Hearts. Cardiovasc. Drugs Ther. 25 (6), 517-522 (2011).
  35. Van Hout, G. P. J., de Jong, R., Vrijenhoek, J. E. P., Timmers, L., Duckers, H. J., Hoefer, I. E. Admittance-based pressure-volume loop measurements in a porcine model of chronic myocardial infarction. Exp. Physiol. 98 (11), 1565-1575 (2013).
  36. Sunagawa, K., Maughan, W. L., Burkhoff, D., Sagawa, K. Left ventricular interaction with arterial load studied in isolated canine ventricle. Am. J. Physiol. 245 (5 Pt 1), H773-H780 (1983).
  37. Steendijk, P., Baan, J., Der Velde, E. T. V. an, Baan, J. Effects of critical coronary stenosis on global systolic left ventricular function quantified by pressure-volume relations during dobutamine stress in the canine heart. J. Am. Coll. Cardiol. 32 (3), 816-826 (1998).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Beoordeling van infarctgrootte3D transoesofageale echocardiografiedruk volumelussenkleuring van het risicogebiedevaluatie van de hartfunctieischemie reperfusieschadeevaluatie van therapeutische interventiesgrootdiermodel

Gerelateerde artikelen