Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Capillaire Elektroforese Scheiding van monoklonaal antilichaam isovormen gebruiken een neutrale capillair

12.5K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/55082

⸱

16 januari 2017

 ,  ,  ,  , 
1Unidad de Investigación y Desarrollo, Probiomed S.A. de C.V.

* These authors contributed equally

In dit artikel

Samenvatting

Hier presenteren we een uitgebreid capillaire zone-elektroforeseprotocol voor de beoordeling van intrinsieke fysisch-chemische heterogeniteit van monoklonale antilichamen als een kwaliteitskenmerk.

Samenvatting

Biotherapeutische eiwitten, zoals monoklonale antilichamen (mAbs), zijn haalbare alternatieven voor de behandeling van chronische-degeneratieve ziekten. De biologische activiteit van deze eiwitten hangt af van hun fysisch-chemische eigenschappen. Het gebruik van hoogwaardige technieken zoals chromatografie en capillaire elektroforese is beschreven voor de analyse van fysisch-chemische heterogeniteit van mAbs. Tegenwoordig vormt de capillaire zone-elektroforese (CZE) techniek een van de meest resolutieve en gevoelige analyses voor de analyse van biomoleculen. Bovendien wordt de elektro-gedreven scheiding in CZE beheerst door uitgebreide eigenschappen van materie en biedt het het voordeel van het analyseren van eiwitten in de buurt van hun natuurlijke toestand. Echter, de succesvolle implementatie van deze techniek voor routinematige analyse hangt af van de vaardigheden van de analist in de kritische stappen tijdens de voorbereiding van monsters en systemen. Het doel van deze tutorial is om de stappen te detailleren om te slagen in de CZE-analyse van mAbs. Verder kan dit protocol worden gebruikt voor de ontwikkeling en verbetering van de vaardigheden van het personeel dat betrokken is bij laboratoria voor analytische eiwitchemie.

Inleiding

Monoklonale antilichamen (mAbs) zijn biotherapeutic eiwitten met toenemende belangstelling als gevolg van hun vermogen om op te treden tegen verschillende chronische en degeneratieve ziekten 1. Net als andere biomoleculen, mAb's zijn gevoelig voor verschillende fysicochemische modificaties ondergaan in alle stadia van hun levenscyclus (dat wil zeggen, van biosynthese het eindproduct). Dergelijke modificaties omvatten, maar zijn niet beperkt tot: deamidatie, glycosylering, oxidatie, cyclisatie, isomerisatie, aggregatie en proteolytische splitsing 2. Vandaar, analytische technieken in staat om intrinsieke isovormen op te lossen zijn nodig om mAb's heterogeniteit en stabiliteit te monitoren om de kwaliteit specificaties vast te stellen.

Capillaire elektroforese (CE) is een krachtige scheidingstechnologie uitgevoerd outinside een smalle kwartsglas buis (um bereik) gevuld met een achtergrondelektrolyt (BGE). Bij toepassing van een elektrisch veld (tot 30.000 V), geladen molecuuls migreren naar de elektrode met tegengestelde lading (bijvoorbeeld elektro-driven scheiding). Het gebruik van hoge spanningen CE toelaat snel en analyses van doelmatigheid die hoger dan klassieke gelelektroforese zijn. Capillaire zone elektroforese (CZE) is een CE-gebaseerde techniek routinematig gebruikt in de biofarmaceutische industrie voor de kwaliteit van het product beoordelen 3-9. In tegenstelling tot andere vormen van CE (bijvoorbeeld, capillaire gelelektroforese, capillaire iso-elektrische focussering) of chromatografie gebaseerde werkwijzen kunnen CZE worden uitgevoerd zonder denatureringsmiddelen of vaste-fase-interfaces, waardoor de analyse van de inherente heterogeniteit van mAbs dichtbij hun natieve toestand 10 . CZE scheiding van mAb isovormen plaatsvindt in een gesmolten-silica capillaire bedekt met een hydrofiel polymeer (neutrale capillair) en is gebaseerd op hun verschillende elektroforetische mobiliteit die wordt geregeerd door lading, massa, grootte en vorm (of hydrodynamisch volume) 11. mAb resten gedetecteerd wanneerze gemobiliseerd en door het detectievenster, die wordt waargenomen door een ultraviolet (UV) detector bij 214 nm 4.

De succesvolle implementatie van deze analysetechniek is afhankelijk van de juiste aandacht voor details voor en tijdens het experiment. anderszins handelen zullen de kosten en tijd te verhogen om de analyse uit te voeren, wat uiteindelijk leidt tot constante mislukking en frustratie.

Hier presenteren we een stap-voor-stap handleiding voor een succesvolle analyse van mAb heterogeniteit voeren door CZE door de uitgebreide uitleg over de bereiding van oplossingen en monsters, de voorbereiding van de CE-systeem, het instrument methoden opgericht, de data-acquisitie en de verwerking. Ten behoeve van deze oefening een recombinant volledig menselijke anti-tumor necrosis factor alpha (anti-TNFa) mAb gebruikt als model eiwit; echter kan dit protocol gemakkelijk worden aangepast voor de analyse van andere eiwitten gezien korte modificaties. EENdditionally, een aantal aanbevelingen om te verzachten mogelijke problemen worden voorgesteld. De lezer wordt aangemoedigd om strikt volgen van het voorgestelde protocol, als de kans om te slagen zal toenemen.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

1. Voorbereiding van de Solutions

  1. Bereid de BGE-oplossing.
    1. Bereid 100 ml van een oplossing bestaande uit 0,05% (m / v) hydroxypropylmethylcellulose (HPMC), 200 mM ε-amino n-capronzuur (EACA) en 30 mM lithium acetaat.
      OPMERKING: HPMC is een veerkrachtig polymeer, giet het poeder in een glazen beker, voeg 80 ml water en tenslotte de voeg roerstaaf. Ga door het toevoegen van de resterende reagentia als normaal. Draag een veiligheidsbril bij het hanteren van lithium-acetaat als het irritatie van de ogen kan veroorzaken.
    2. Breng de pH waarde 4,8 ± 0,1 met 50% (v / v) azijnzuur. Laat de oplossing stabiliseren 5 min en indien nodig aan.
    3. Voeg water toe tot een totaal van een eindvolume van 100 ml volumetrische kolf.
    4. Filtreer door een hydrofiel membraan met een 0,2 micrometer poriegrootte.
    5. Bewaar bij 2-8 ° C gedurende maximaal 7 dagen.
  2. Bereid de interne standaard.
    1. Bereid 1 mlvan een oplossing bestaande uit 1% (m / v) histamine.
    2. Filtreer door een hydrofiel membraan met een 0,2 micrometer poriegrootte.
    3. Bewaar bij 2-8 ° C tot 1 dag.

2. Monstervoorbereiding

  1. Bereid 180 pi mAb monster verdund met Tris buffer (50 mM tris (hydroxymethyl) aminomethaan, pH 8,0) tot een uiteindelijke concentratie van 1 mg / ml.
  2. Voeg 20 pl 1% (m / v) histamine.
  3. Mengen en centrifugeren bij 1000 xg gedurende 5 sec.
  4. Plaats een micro flesje in een universele flacon.
  5. Breng het monster in de micro flesje en de dop op de universele flacon. Verdeel het monster naar boven om te voorkomen dat de invoering van eventuele luchtbellen.
  6. Bewaar bij 2-8 ° C tot 1 dag.
  7. Plaats de universele flacon (met micro injectieflacon met monsteroplossing) in het monster inlegbak.

3. Bereiding van CE System.

  1. CE-systeem schoonmaken.
    LET OP: th Conductis procedure ten minste eenmaal per week om elektrische lekstromen afgeleid van ophoping van stof en vuil te voorkomen. Afhankelijk van de toepassing (bijvoorbeeld, gebruik van een BGE met verhoogde viscositeit of hoge zoutconcentratie, monsters met verhoogde viscositeit) elektroden en Openingshefboom vereisen vaker worden gereinigd om kruisbesmetting sample overdracht te voorkomen.
    1. Schakel de schakelaar van de CE-instrument en open de voordeur.
    2. Reinig het oppervlak van het monster te dekken, monster houden systeem (monster en buffer trays), cartridgekap, klem bar, interface blok en elektroden met een met water bevochtigde geweven vegen. Herhaal de procedure met een met ethanol bevochtigd af te vegen en droog zijn voor gebruik.
    3. Spoel de opening hefbomen grondig met water. Reinig het oppervlak met een niet-geweven doekje. Herhaal de procedure met een met ethanol bevochtigd af te vegen en droog voor de installatie.
    4. Maak de twee uiteinden van de glasvezelkabel voorzichtigly met een met water bevochtigde microfiber doekje. Herhaal de procedure met een met ethanol vochtige doek.
  2. Cartridge montage.
    1. Neem een ​​nieuwe neutrale capillair (50 urn inwendige diameter) uit de verpakking.
    2. Band naar beneden één uiteinde van de capillaire beschermingsbuizen op de werkbank. Ontrollen, strek en trek de capillaire uit de slang.
    3. Plak een stukje plakband of papier naar de werkbank en voeg meting markeringen als volgt: lengte van de detector (30 cm), capillaire venster (0,2 cm) en lengte het uitlaateinde (10 cm) (dat wil zeggen 40,2 cm totale lengte, 30,0 cm effectieve lengte).
    4. Lijn de capillaire venster om het 0,2 cm meten merk in het referentiedocument. Bevestig het capillair met tape en markeer de capillaire eindigt op 2 mm buiten de meting merken.
    5. Snijd de beschermkap op de capillaire inlaat einde (het einde verst van het raam) in een enkele rechte beweging mbv de vlakke rand van het splitsen van steen.
      1. Dompel het capillaire uiteinde in een universele afgedekt flesje gevuld met water om permanente schade aan de capillaire binnenste bekleding voorkomen. Herhaal deze procedure telkens het capillairuiteinde is blootgesteld aan de omgevingstemperatuur langer dan 1 minuut.
    6. Plaats de capillaire inlaateinde naar de uitlaatzijde van de cartridge.
    7. Duw en trek de capillair door de patroon zolang tot de capillaire venster gecentreerd op het venster cartridge.
    8. Steek de stekker opening (100 urn x 200 pm) in het venster cartridge.
      OPMERKING: Controleer of wit licht door het raam bij blootstelling aan een witte lichtbron. Als het licht dat passeert een bruinig uiterlijk, zo nodig aanpassen.
    9. Plaats het capillair in de voorgevormde koelvloeistof buizen voor totaal capillaire lengte van 40,2 cm (met vooraf geïnstalleerde buis moer ferrule en O-ring aan beide einden in die volgorde).
    10. Duw de capillair door de coolant tubing zolang tot het capillair wordt aan de andere kant van de buis.
    11. Steek het uiteinde van de koelvloeistof slang in de uitlaatzijde van het patroon en draai de slang vast.
    12. Plaats de capillaire inlaateinde naar de inlaatzijde van de cartridge.
    13. Duw en trek de capillair door de patroon zolang tot het capillair aan de inlaatzijde van de cassette verschijnt.
    14. Steek het uiteinde van de koelvloeistof slang in de inlaatzijde van het patroon en draai de slang vast.
    15. Snijd de beschermkap op de capillaire uitlaat einde (het einde dichtstbijzijnde vanuit het raam) in een enkele rechte beweging mbv de vlakke rand van het splitsen van steen.
    16. Steek de seal-houder clips over de capillaire uiteinden en druk op om te breken in de juiste positie. Inspecteer de capillaire eindigt. Als ze niet eens, herhaal de procedure.
    17. Plaats de capillaire lengte sjabloon aan de rand van de werkbank.
    18. Plaats de cartridge naar beneden against de capillaire lengte template en lijn de capillaire eindigt met de referentie-lijnen op de mal. Als de capillaire meting merken (zie 3.2.4) niet af te stemmen op de referentie-lijnen, aan te passen als dat nodig is.
    19. Houd het capillair tegen de capillaire lengte template en snijd beide uiteinden van het capillair mbv de vlakke rand van het splitsen steen 2 mm onder de referentielijnen op de mal.
    20. Inspecteer de capillaire eindigt met een vergrootglas. Als capillaire uiteinden zijn niet glad, polijsten ze met behulp van de zachte gezicht van de klieven steen.
    21. Plaats de opening O-ring in de opening plug gat met behulp van de insertie gereedschap O-ring.
    22. Installeer afgedekt universele flesjes gevuld met water in de patroonhuls en plaats cartridge in geval onmiddellijk met capillaire uiteinden ingevoegd in flesjes. Voor korte en lange termijn opslag te houden bij 2-8 ° C.
  3. Bereiding van buffer trays.
    1. Vullen en plaats afgedekt universal flacons in de buffer en uitlaat trays (figuur 1). Herhalen flacon posities in banen 2, 3, 4 en 5 overeenkomstig het aantal monsters te analyseren, het plaatsen van een baan voor zes injecties monster.
      LET OP: Vermijd bevochtigen van de flacon caps om de huidige lekkage te voorkomen.

figure-protocol-1
Figuur 1: Positie en vul niveau van universele flacons in de buffer inlaat en uitlaat trays. Vul niveaus: 1/1 = 1400 pi, 3/4 = 1300 pi en 1/2 = 1000 pi. Afkortingen: W = water, HCl = 0,1 M zoutzuur. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

  1. CE systeemcomponenten montage.
    1. Installeer de UV-detector.
    2. Installeer de opening van hefbomendoor te drukken tot in de interface blok.
    3. Installeer de glasvezelkabel. Steek de corresponderende einde te maken aan de klem en bar, terwijl beide uiteinden, draai met de klok mee. Sluit het andere uiteinde aan de UV-detector.
      LET OP: Behandel de glasvezelkabel met zorg tijdens deze procedure, omdat het buigen kon haar breuk veroorzaken.
    4. Het monster en de buffer trays in de sample houder systeem en vastklikken.
    5. Plaats de capillaire cartridge in de interface blok en, terwijl u de klem bar aan beide uiteinden, draai de knoppen.

4. Instrument Methoden Set-up

  1. Maak de conditionering, hardlopen en afsluiten instrument werkwijzen volgens de volgende parameters en Tabel 1: Spanning, max: 30,0 kV; Huidige, max: 300,0 uA; Cartridge temperatuur: 20,0 ° C; Sample bewaartemperatuur: 10,0 ° C; UV-detector oorspronkelijke voorwaarden: Golflengte: 214 nm; Data rate: 4 Hz; Filter: Normaal; Piekbreedte (points): 16-25; Absorptie signaal: Direct.
    LET OP: Data acquisitie percentage kan worden verhoogd tot 25 Hz met het oog op de dekking van de smalle scheiding zones te verbeteren.
Conditioning methode time programma
Tijd (min) Evenement Waarde Duur Inlet flacon Outlet flacon Overzicht Comments
- Spoel - Pressure 2068 mbar 1,0 min BI: C1 BO: C1 vooruit HCl 0,1 M
- Spoel - Pressure 2068 mbar 2,0 min BI: B1 BO: C1 vooruit Water
- Spoel - Pressure 2068 mbar 10,0 min BI: E1 BO: C1 vooruit BGE
0.00 Aparte - Voltage 15,0 KV 10,0 min BI: D1 BO: D1 0,17 Min ramp, normale polariteit Scheiden
10.00 Spoel - Pressure 2758 mbar 10,0 min BI: E1 BO: C1 vooruit BGE
20.01 Wacht - 0.0 min BI: A1 BO: A1 - Rinse tips
Running methode time programma
Tijd (min) Evenement Waarde Duur Inlet flacon Outlet flacon Overzicht Comments
- Spoel - Pressure 2068 mbar 1,0 min BI: C1 BO: C1 Vooruit, In / Out flacon inc 6 HCl 0,1 M
- Spoel - Pressure 2068 mbar 2,0 min BI: B1 BO: C1 Vooruit, In / Out flacon inc 6 Water
- Spoel - Pressure 2068 mbar 4.0 min BI: E1 BO: C1 Vooruit, In / Out flacon inc 6 BGE
- Injecteren - Pressure 34 mbar 20,0 sec SI: A1 BO: B1 Override, Forward sample Injection
- Wacht - 0,4 min BI: A1 BO: A1 In / Out flacon inc 6 wash tips
0 Aparte - Voltage 15,0 KV 30,0 min BI: D1 BO: D1 0,17 Min ramp, normale polariteit, In / Out flacon inc 6 sample Scheiding
0.5 Autozero - - - - - -
30.01 stop data - - - - - -
30.02 Spoel - Pressure 2068 mbar 2,0 min BI: B1 BO: C1 Vooruit, In / Out flacon inc 6 Water
32.03 Wacht - 0.0 min BI: A1 BO: A1 In / Out flacon inc 6 Rinse tips
32.04 Einde - - - - - Einde
Shutdown methode time programma
Tijd (min) Evenement Waarde Duur Inlet flacon Outlet flacon Overzicht Comments
- Spoel - Pressure 2068 mbar 1,0 min BI: E6 BO: E6 vooruit HCl 0,1 M
- Spoel - Pressure 2068 mbar 6.0 min BI: F6 BO: F6 vooruit Water
- Lamp - Off - - - - - -
- Wacht - 0.0 min BI: A1 BO: A1 - Rinse tips

Tabel 1: Conditioning, hardlopen en shutdown tijd programma's.

5. Data Acquisition en Processing

  1. Programmeer de sample set.
    1. Programmeer de capillaire voor het conditioneren van het gebruik van de meetversterker methode. Wanneer de capillair voor het eerst programma vier herhalingen; anders programmeren slechts twee herhalingen van de voorbereidende werkwijze.
    2. Programmeer de monsters worden geanalyseerd met behulp van de lopende instrument methode.
    3. Programmeer het capillair voor opslag met behulp van de shutdown instrument methode en herhaal de procedure aangegeven in paragraaf 3.2.22.
  2. Voer het experiment.
  3. Exporteer de electroferogrammen.
  4. Bereken de migratie tijd en het percentage inhoud van de elementaire, de belangrijkste eennd zure isovormen behulp hoogteverschil lijn integratie van de elektroferogram profiel.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Figuur 2 toont de typische elektrische stroom profiel van een 200 mM EACA, 30 mM lithium acetaat, pH 4,8 BGE met anti-TNFa mAb monster verdund met Tris buffer (50 mM, pH 8,0). Zoals kan worden waargenomen, de huidige is stabiel tijdens de analyse en kan oscilleren tussen waarden van 30 tot 35 uA. Figuur 3 toont de CZE elektroferogram van een blanco monster waarin de gedetecteerde piek overeenkomt met de histamine interne standaard. Het wordt verwacht voo...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

In deze tutorial, benadrukken we het belang van goede praktijken bij het uitvoeren van CZE analyses van mAb's om de kans te vergroten om te slagen. Echter, wanneer CZE wordt gebruikt op een routine-basis, problemen ontstaan onvermijdelijk 12.

Voor het beste resultaat, is het belangrijk om de noten die in het hele protocol werden opgenomen te volgen, omdat ze de analist om te overwinnen en het oplossen van moeilijke stappen zal helpen. Een belangrijke overweging om optimale res...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs Carlos E. Espinosa-de la Garza, Rodolfo D. Salazar-Flores, Néstor O. Pérez, Luis F. Flores-Ortiz en Emilio Medina-Rivero zijn werknemers van Probiomed S.A. de C.V., dat biosimilare producten ontwikkelt, produceert en op de markt brengt. Alle auteurs zijn betrokken bij de ontwikkeling van biosimilare producten voor Probiomed.

Dankbetuigingen

De auteurs danken Wiley voor de toegestane toestemming om de concepten van de volgende publicatie te gebruiken voor deze tutorial. Carlos E. Espinosa-de la Garza, Francisco C. Perdomo-Abúndez, Jesús Padilla-Calderón, Jaime M. Uribe-Wiechers, Néstor O. Pérez, Luis F. Flores-Ortiz, Emilio Medina-Rivero: Analyse van recombinante monoklonale antilichamen door capillaire zone-elektroforese. Electrophoresis. 2013. 34. 1133-1140. Copyright Wiley-VCH Verlag GmbH & Co. KGaA. Dit werk werd ondersteund door CONACyT, Mexico, subsidie 230551.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Glacial azijnzuurTecsiquimAT0035-7
ACS-kwaliteit zoutzuurJ.T. Baker9535-05
Histamine dihydrochlorideFluka53300
(Hydroxypropyl)methylcellulose Fluka09963
LithiumacetaatSigma-Aldrich517992
6-aminocaproïnezuurSigma-AldrichA2504
eCAP Tris Buffer, 50,0 mM,  pH 8Beckman Coulter477427
PA 800 Plus Farmaceutisch AnalysesysteemBeckman CoulterA66528
eCAP Neutral capillair Beckman Coulter477441
Vial, Micro, 200 µlBeckman Coulter144709
Universele viaalkappenBeckman CoulterA62250
Universele vlaaskjesBeckman CoulterA62251
Kabel, optiek, UV/VisBeckman Coulter144093
UV/Vis Detector ModuleBeckman Coulter144733
Cartridge Assembly Kit, BlankBeckman Coulter144738

Referenties

  1. Bruno, V., Battaglia, G., Nicoletti, F. The advent of monoclonal antibodies in the treatment of chronic autoimmune diseases. Neurol. Sci. 31, 283-288 (2011).
  2. Liu, H., Gaza-Bulseco, G., Faldu, D., Chumsae, C., Sun, J. Heterogeneity of monoclonal antibodies. J. Pharm. Sci. 97 (7), 2426-2447 (2008).
  3. Creamer, J. S., Oborny, N. J., Lunte, S. M. Recent advances in the analysis of therapeutic proteins by capillary and microchip electrophoresis. Anal. Methods. 6 (15), 5427-5449 (2014).
  4. Fekete, S., Guillarme, D., Sandra, P., Sandra, K. Chromatographic, Electrophoretic, and Mass Spectrometric Methods for the Analytical Characterization of Protein Biopharmaceuticals. Anal. Chem. 88 (1), 480-507 (2016).
  5. He, Y., et al. Analysis of identity, charge variants, and disulfide isomers of monoclonal antibodies with capillary zone electrophoresis in an uncoated capillary column. Anal. Chem. 82 (8), 3222-3230 (2010).
  6. He, Y., Isele, C., Hu, W., Ruesch, M. Rapid analysis of charge variants of monoclonal antibodies with capillary zone electrophoresis in dynamically coated fused-silica capillary. J. Sep. Sci. 34 (5), 548-555 (2011).
  7. Zhao, S. S., Chen, D. D. Y. Applications of capillary electrophoresis in characterizing recombinant protein therapeutics. Electrophoresis. 35 (1), 96-108 (2014).
  8. Štěpánová, S., Kašička, V. Determination of impurities and counterions of pharmaceuticals by capillary electromigration methods. J. Sep. Sci. 37 (15), 2039-2055 (2014).
  9. Štěpánová, S., Kašička, V. Recent applications of capillary electromigration methods to separation and analysis of proteins. Anal. Chim. Acta. 933, 23-42 (2016).
  10. Espinosa-de la Garza, C. E., et al. Analysis of recombinant monoclonal antibodies by capillary zone electrophoresis. Electrophoresis. 34 (8), 1133-1140 (2013).
  11. Staub, A., Guillarme, D., Schappler, J., Veuthey, J. L., Rudaz, S. Intact protein analysis in the biopharmaceutical field. J. Pharm. Biomed. Anal. 55 (4), 810-822 (2011).
  12. Altria, K. D. Troubleshooting. Methods in Molecular Biology, Vol 52. Capillary Electrophoresis Guidebook: Principles, Operation and Applications. Altria, K. D. , Chapter 10 (1996).
  13. Ma, S., Nashabeh, W. Analysis of protein therapeutics by capillary electrophoresis. Chromatographia. 53 (5), 75-89 (2001).
  14. Jaccoulet, E., Smadja, C., Prognon, P., Taverna, M. Capillary electrophoresis for rapid identification of monoclonal antibodies for routine application in hospital. Electrophoresis. 36 (17), 2050-2056 (2015).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Trefwoorden

Analyse van monoclonale antilichamencapillaire zone elektroforesemonstervoorbereidingconditioneren van het systeemscheiding van prote ne isoformenelektroforetische mobiliteitbufferbereidinginstrumentinstelling
Capillaire Elektroforese Scheiding van monoklonaal antilichaam isovormen gebruiken een neutrale capillair
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleid

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.