Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Methoden om te studeren epitheliale Transport Protein functie en de expressie in Inheemse darm en Caco-2-cellen gekweekt in 3D

16.2K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/55304

⸱

16 maart 2017

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Medicine, University of Illinois at Chicago, 2Department of Research, Jesse Brown VA Medical Center

* These authors contributed equally

In dit artikel

Erratum-melding

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Samenvatting

We beschrijven eenvoudige methoden de regulering van intestinale serotonine transporter (SERT) functie en expressie onder toepassing van een in vitro celkweek model van Caco-2-cellen gekweekt in 3D en een ex vivo model van muis darmen bestuderen. Deze methoden zijn geschikt voor de studie van andere epitheliale transporters.

Samenvatting

Het darmepitheel heeft belangrijke transport en barrière functies die een belangrijke rol spelen in de normale fysiologische functies van het lichaam, terwijl het verstrekken van een barrière voor vreemde deeltjes. Verminderde epitheliale transport (ionen, nutriënten of drugs) is geassocieerd met vele ziekten en kan gevolgen die verder gaan dan de normale fysiologische functies van de transporteurs, zoals door beïnvloeding van epitheliale integriteit en de darmen microbiome hebben. Inzicht in de functie en regulatie van transporteiwitten is cruciaal voor de ontwikkeling van verbeterde therapeutische interventies. De grootste uitdaging in de studie van epitheliale transport ontwikkelt een geschikt modelsysteem dat belangrijke kenmerken van de natieve darmepitheelcellen recapituleert. Verscheidene in vitro celkweekmodellen, zoals Caco-2, T-84, en HT-29-cellen Cl.19A worden doorgaans gebruikt in epitheliale vervoersonderzoek. Deze cellijnen zijn een reductionistische benadering van het modelleren van de epithelium en zijn gebruikt in tal van mechanistische studies, met inbegrip van hun onderzoek van epitheliale-microbiële interacties. Echter, celmonolagen geen nauwkeurige weergave van cel-cel interacties en in vivo micro-omgeving. Cellen gekweekt in 3D blijkt veelbelovend modellen permeabiliteit studies. We laten zien dat Caco-2-cellen in 3D kan worden gebruikt voor epitheliale transporters bestuderen. Het is ook belangrijk dat studies in Caco-2-cellen worden aangevuld met andere modellen uitsluiten celspecifieke effecten en rekening houdend met de complexiteit van de natieve darm. Verscheidene werkwijzen zijn eerder gebruikt om de functionaliteit van transporteurs, zoals eversie sac en opname in geïsoleerde epitheelcellen of geïsoleerde plasmamembraan vesikels beoordelen. Rekening houdend met de uitdagingen op ten opzichte van modellen en het meten van transportfunctie, tonen we hier een protocol voor Caco-2 cellen groeien in 3D en beschrijven het gebruik van een Ussing kamer alseffectieve aanpak serotonine transport, zoals in intacte gepolariseerde intestinale epitheel te meten.

Inleiding

Het darmepitheel is voorzien van diverse transporteiwitten (kanalen, ATPasen, co-transporters en wisselaars) dat talrijke functies variërend van de opname van voedingsstoffen, elektrolyten voeren, en middelen om de uitscheiding van vocht en ionen in het lumen. Transporteiwitten genereren elektrochemische gradiënt die de beweging van ionen of moleculen toestaan ​​in een vectoriële wijze. Dit wordt bereikt door de asymmetrische verdelingen van de transportsystemen van de apicale en basolaterale membranen van gepolariseerde epitheliale cellen. Bovendien tight junctions die tegen epitheelcellen tether, spelen een belangrijke rol in dit proces door als een barrière voor het intramembraan diffusie van componenten tussen de apicale en basolaterale membraan domeinen. Geschikte modelsystemen bootsen deze kenmerken van de natieve darm (bijvoorbeeld polariteit, differentiatie en tight junction integriteit) zijn essentieel voor de studie van de functionaliteit van epitheliale transportsystemen.

Met betrekking tot de modellen, de typische cellijnen die momenteel worden gebruikt in intestinale epitheliale transport onderzoek zijn Caco-2, een model van volledig gedifferentieerde, absorberend dunne darm epitheelcellen; en T84 cellen of HT-29 subklonen, modellen of-crypt afgeleide grote darmepitheelcellen 1. Gewoonlijk worden deze cellijnen gekweekt als monolagen in kunststofoppervlakken of beklede Transwell inzetstukken. Trans-well celcultuur inserts enigszins lijken op de in vivo omgeving doordat gepolariseerde cellen basolateraal voeden. Echter een beperking in conventionele 2D kweeksystemen is dat de cellen moeten aanpassen aan een kunstmatige, vlak en stijf oppervlak. Aldus wordt de fysiologische complexiteit van de natieve epitheel niet correct in een 2D systeem. Deze beperking overwonnen door werkwijzen om cellen groeien in 3D in een bepaald micro-omgeving, zoals gelatineuze eiwit Mixture, met een verscheidenheid van extracellulaire matrixcomponenten 2, 3. Niettemin kan het in vitro kweken van de complexiteit van het darmepitheel, die meerdere celtypes en regiospecifieke architectuur in de darm niet simuleren. Zo, de studies met behulp van celkweek modellen vereisen verdere validering in de moedertaal darm. Met behulp van de in vitro 3D celcultuur en muis darmslijmvlies, beschrijven we hier eenvoudige methoden om de regulatie van de intestinale serotonine transporter (SLC6A4, SERT) te bestuderen.

De SERT transporteur regelt de extracellulaire beschikbaarheid van een belangrijke hormoon en neurotransmitter 5-hydroxytryptamine (5-HT) door het snel transporteren door een Na + / Cl - afhankelijke proces. SERT is een bekend doelwit van antidepressiva en recentelijk naar voren gekomen als een nieuw therapeutisch doelwit van maag-darmaandoeningen, zoals diarree en darmontsteking.Werkwijzen onderzoeken 5-HT opname in intestinale epitheliale cellen zijn eerder beschreven. Bijvoorbeeld zijn Caco-2-cellen gekweekt op plastic dragers of doorlatende inzetstukken aangetoond dat fluoxetine-gevoelige 3H-5-HT opname vertonen zowel apicale en basolaterale domeinen 4. De meting van SERT functie in geïsoleerde Brush membraanblaasjes (BBMVs) bereid uit menselijk orgaan donor dunne darm is ook beschreven door 5 ons. 3H-5-HT opname in humane BBVMs bleek fluoxetine-gevoelige en Na + / Cl zijn - afhankelijke en vertoonde verzadigingskinetiek met een Km van 300 nM 5. Met behulp van vergelijkbare methoden, hebben we ook eerder gemeten SERT functie als 3H-5-HT opname in de muis intestinale BBMVs 6. De bereiding van zuivere plasmamembraan vesikels vereist een grote hoeveelheid weefsel mucosa. Andere methoden, zoals radiographic visualisatie van 3H-5-HT opname plaatsen, ook eerder aangetoond in cavia en rat dunne darm 7.

De Ussingkamer een meer fysiologisch systeem voor het transport van ionen, nutriënten en geneesmiddelen in verschillende epitheliale weefsels te meten. Het belangrijkste voordeel van de Ussingkamer techniek is dat daardoor de nauwkeurige meting van de elektrische en transportparameters van intacte, gepolariseerde darmepitheel. Verder de invloed van de intrinsieke neuromusculaire systeem te minimaliseren, kan seromuscular strippen van intestinale mucosa worden uitgevoerd om de regulering van transporters onderzoeken het epitheel 8.

We laten zien dat Caco-2-cellen gekweekt in 3D op gelatineachtige eiwitten vormen een hol lumen expressie afzonderlijke apicale en basolaterale markers. Deze cellen vertonen hogere expressie van SERT dan 2D Caco-2 cellen. Werkwijzen groeien 3D cellen en perform immunokleuring of RNA en eiwit extractie beschreven. Daarnaast beschrijven we methoden om SERT functie en regulatie bestuderen door TGF-β1, een pleiotrope cytokine, in kleine darmmucosa door toepassing van een Ussingkamer techniek.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

1. Studie van Intestinale Transporters in een 3D-cultuur systeem van Caco-2: Groeiende 3D Caco-2 Cell Culture op een Gelatineachtig eiwitmengsel

  1. Dooi groeifactor verminderde gelatineuze proteïnemengsel op ijs gedurende 8 uur (of O / N) bij 4 ° C. Eenmaal ontdooid, maak 1 ml of 500 ul porties voor gebruik of op te slaan bij -20 ° C voor later gebruik.
  2. Op de dag van de cultuur, te koelen de kweekplaten (voor RNA en eiwit extractie) of chambered dia's (voor immunokleuring) op ijs. Voeg 30 ul van geleiachtige eiwit mengsel aan elk putje van een acht-well chambered-glasplaatje (of 120 ul per putje van een 6-wells plaat) en gelijkmatig verdelen. Zorg ervoor dat luchtbellen niet te genereren tijdens het proces.
  3. Plaats de objectglaasjes / platen in een cel incubator bij 37 ° C gedurende 15-30 minuten en laat het gelatineuze eiwitmengsel te stollen.
  4. Terwijl het gelatineuze eiwitmengsel wordt stollen, trypsinize een confluente kolf van Caco-2 cellen.
  5. Tel het aantalcellen en draaien ze bij 500 xg in een tafelblad centrifuge gedurende 5 minuten. Resuspendeer de cel pellet in 3D Caco-2 Medium als dat nodig is.
  6. Het zaad van de glazen kamer dia's bij 4.000 cellen per putje (voor borden, 20.000 per putje). Laat de cellen groeien in een 5% CO2 bevochtigde incubator bij 37 ° C. Verander medium om de 3 - 4 d.

2. Immunofluorescentie kleuring voor epitheliale Transporters in 3D Caco-2-cellen: Dag 1

  1. Zuig het medium en vast de cellen met 400 ul van 2% paraformaldehyde (PFA) (in PBS met pH bijgesteld tot 8,5 met NaOH) gedurende 30 minuten bij kamertemperatuur.
    OPMERKING: PFA oplossing niet bewaren langer dan 1 week bij 4 ° C, en vers gemaakte oplossing kan worden gebruikt. LET OP: PFA is zeer giftig en een mogelijke kankerverwekkende stof. omgaan altijd met de nodige voorzichtigheid in een chemische kap en het gebruik van persoonlijke beschermingsmiddelen.
  2. Spoel de putjes tweemaal met 1x PBS en de glijbanen bewaren bij 4 ° C in PBS (400 ul /goed). Eenmaal vastgesteld, bewaar ze bij 4 ° C gedurende maximaal een week.
  3. Verwarm de kamer dia's RT (dit zal de geleiachtige eiwitmengsel bed verharden en maken het gemakkelijk om aspireren tijdens het wassen stappen).
  4. Permeabilize de cellen met 0,5% Triton in PBS gedurende maximaal 15 minuten.
  5. Bereid PBS-glycinebuffer (130 mM NaCl, 7 mM Na 2 HPO 4, 3,5 mM NaH 2PO 4 en 100 mM glycine). 3x spoelen met 1x PBS-glycine gedurende 10 min elk bij kamertemperatuur.
  6. Bereid immunofluorescentie buffer (IF): 130 mM NaCl, 7 mM Na 2 HPO 4, 3,5 mM NaH 2PO 4, 100 mM glycine, 7,7 mM NaN3, 0,1% BSA, 0,2% Triton X-100 en 0,05% Tween-20 .
  7. Was 3x in IF-buffer gedurende 10 minuten elk bij kamertemperatuur. Blok in 5% Normaal Geit Serum (NGS) in IF-buffer. Incubeer met primaire antilichaam verdund in IF + 1% geit serum, 200 ul / putje, gedurende 1-2 uur bij kamertemperatuur. Wassen met IF-buffer 3x gedurende 10 minuten elk.
  8. Incubate met secundaire antibody (1: 200) verdund in IF + 1% NGS, 200 ul / putje, gedurende 1 uur bij kamertemperatuur.
  9. Wassen met IF-buffer driemaal gedurende 10 minuten elk. Houd de dia's in het donker van deze stap op. Til de plastic kamers van de glaasjes door het plaatsen van de kamer dia in een zwarte houder schuiven en een witte lifter door de houder totdat de rand contact maakt met de rand van de putjes. Trek de kamers (de houder en lifter moet komen met de cultuur dia's).
  10. Monteer met trage anti-fade medium en laat ze drogen gedurende 10 minuten bij RT.
  11. Eenmaal volledig opgedroogd, sluit de dia's met nagellak en beeld ze met confocale microscopie. Bewaar de objectglaasjes bij 4 ° C gedurende twee weken bij -20 ° C gedurende enkele maanden.

3. RNA en eiwit extractie van 3D Caco-2 cellen

  1. Behandel de cellen gekweekt op gelatineuze eiwitmengsel voor 12 - 14 met een testmiddel, zoals TGF- β1 (10 ng / ml, 1 h).
  2. Na de behandeling, was de cellen met 1x PBS. Houd de cellen op ijs gedurende 30 min om het gelatineuze proteïnemengsel vloeibaar.
  3. Was de putjes met gekoelde PBS en verzamelen van de cellen in de verschillende centrifugebuizen. Verzamel de cellen door lage snelheid centrifugatie bij 500 xg en 4 ° C gedurende 10 minuten. Extraheer het RNA met behulp van standaardprocedures en gebruik real time RT-PCR.
  4. Voor eiwitextractie lyseren van de cellen met behulp 1x cellysis buffer aangevuld met 1x protease inhibitor cocktail. Na toevoeging cellysis buffer om de pellet lyseren de cellen door sonificatie en verwijder de celresten door centrifugatie bij 7500 xg en 4 ° C gedurende 10 minuten.

4. Meting van de 5-HT opname in Mouse Ileum Gebruik makend van een Ussing Kamer: Intestinale Voorbereiding en Seromuscular Strippen

  1. Naar aanleiding van euthanasie, ontleden de muizen en verwijder de dunne darm (na de maag en voor de blindedarm). Verdeel de dunne darm in drie delen. Gooi het middelste derde, gebruik maken van de proximale derdeals jejunum, en gebruik maken van de distale derde als ileum. Vermijd trekken de darm van de mesenteriale gehechtheid aan beschadiging van het epitheel te voorkomen. Houd het weefsel sectie kou door te bedekken met ijskoud Krebs-Ringer bicarbonaat (KBR) buffer.
  2. Open de darm longitudinaal met een schaar. Incubeer vers uitgesneden intestinale secties in ijskoude, gassing KBR met 1 uM indomethacine gedurende 10 min voor het seromuscular strippen.
  3. Speld de intestinale sectie (~ 1 cm in lengte) mucosale naar beneden om een ​​plaat met 7% agarose of siliconen elastomeer (0,5 cm dik).
  4. Strip de seromuscular lagen onder een dissectie stereomicroscoop met een bottom-verlichting. Snijd de seromuscular laag met behulp van een veer scalpel. Gebruik fijne tang om de rand van de laag langs de lengteas van de darm te verkrijgen.
    LET OP: Tijdens het strippen procedure, de onderkant verlichting van de stereomicroscoop helpt om gebieden aan te wijzen en te voorkomen dat met de patch Peyer'ses.
  5. Na de voltooiing van de seromuscular strippen, zet de mucosa voorzichtig op de pinnen van een Ussing halve kamer. Gedurende het hele proces, zorg om de gestripte mucosale weefsel te houden aan de randen om scheuren te voorkomen.

5. Evenwicht en Tissue Treatment

  1. Bereid Krebs oplossing: 115 mM NaCl, 25 mM NaHCO 3, 2,4 mM K 2 HPO 4, 1,2 mM CaCl2, 1,2 mM MgCl2 en 0,4 mM KH 2PO 4 bij pH 7,4, begast met 95% O2 / 5% CO 2 bij 37 ° C. Voeg 10 mM glucose aan de serosale bad om te dienen als een energie substraat en 10 mM mannitol aan het mucosale bad om de osmotische evenwicht.
    OPMERKING: Krebs oplossing wordt aangevuld met L-ascorbinezuur (100 uM) en pargyline (100 uM, monoamine oxidase inhibitor) intracellulaire 5-HT afbraak voorkomen.
  2. Plaats de schuifknop in de kamer om zowel de apicale (lumen) si blooten de basolaterale (serosale) zijde van het weefsel Krebs oplossing.
  3. Na een equilibratieperiode van 10 minuten, voorbehandelen ileale weefsel met fluoxetine (10 uM) gedurende 30 min aan de apicale kant voor J ms (mucosaal naar serosaal flux).
  4. Behandelen van het weefsel met TGF-β1 (10 ng / ml) gedurende 1 uur op basolaterale kant en incubeer vervolgens met 3 [H] -5-HT (20 nM) gedurende 30 min aan de apicale kant.

6. Kwantificering van mucosale tot serosale Flux (J ms) en 3 [H] -5-HT accumulatie in het weefsel

  1. Verzamel 0,75 ml porties van de serosale reservoir (totaal 5 ml) om de radioactiviteit in een vloeistofscintillatieteller en mucosale naar serosaal (J ms) flux berekenen; fluoxetine-gevoelige flux representeert SERT-gemedieerde 3 [H] -5-HT opname.
  2. Om hydrostatische druk verschillen tussen het slijmvlies tijdens een flux periode te voorkomen, nemen monsters uit de sereuze kant en replaats ze met identieke volumes badmedium.
    OPMERKING: De flux berekening gecorrigeerd voor de verdunning van het eindmonster (4,25 ml / 5 ml = 0,85).
  3. Voor de kwantificering van 3 [H] -5-HT geaccumuleerd in het weefsel, demonteer de slijmvlies van de slider, was het eens met ijskoude KRB buffer, en plaats het in glascultuur buizen.
  4. Incubeer de mucosa in 0,5 ml 10% KOH nacht bij 37 ° C. Meet de radioactiviteit in 150 pl hoeveelheden van de lysaten (in triplo) met een vloeistofscintillatieteller.
  5. Gebruik aliquots (3-5 ui) van de lysaten eiwitconcentratie gemeten met de Bradford methode.
    OPMERKING: 10 ml incubatiemedium met radioactieve serotonine wordt gebruikt als een standaard. 5-HT in het weefsel vastgehouden wordt uitgedrukt als pmol / mg proteïne / min.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Immunokleuring in 3D Caco-2 cysten weergegeven in figuur 1. Een representatief beeld van een XY-vlak toont goed afgebakende lumen in de 3D cyste gekleurd met falloïdine actine is in Figuur 1A. De kant van het lumen geeft de apicale kant. Epitheelcellen gekweekt in een 3D-omgeving resulteren in een robuuste epitheliale fenotype. Verschillende Caco-2 cysten op dag 12, als actine en SERT werden samen gekleurd, worden getoond in Figuur 1B. I...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Volledig gedifferentieerde Caco-2-celmonolagen werden uitgebreid gebruikt als gepolariseerde epitheliale monolagen intestinale transport 10, 11, 12, 13, 14, 15 bestuderen. Echter, de fysiologische organisatie van darmepitheelcellen na te bootsen, is er aanzienlijke belangstelling voor de ontwikkeling van een Caco-2 cultuur i...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

We danken de heer Christopher Manzella, MD/PhD-student in het RKG-laboratorium, voor het helpen bij het bewerken en lezen van ons manuscript.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
10x PBSATCCATCC® HTB­37™Cellen
10x PBSCarl ZeissMicroscoop voor confocale beeldvorming
3[H]-5-HT LabtekII152453Cellen kweken voor microscopie
5-HT Gibco70013-032Niet een gevaarlijke stof
95% O2- 5% CO2 cilinderKPL71-00-27Niet een gevaarlijke stof
Agar (voor Agar platen)FischerBP151-100Acute toxiciteit, Ora
Agar (voor elektrode)SigmaG7126-1KGNiet een gevaarlijke stof
Alexa Fluor PhalloidinSigmaC3867-1VLNiet een gevaarlijke stof
Bovine Serum Albumine (BSA)SigmaP6148-500GSchadelijk indien ingeslikt of ingeademd
CaCl2LifeTechnologiesA12380Niet een gevaarlijke stof
Caco-2 CellenSigmaA8806-5GNiet een gevaarlijke stof
Cell lysis BufferFischerBP337-100Niet een gevaarlijke stof
Chabered slidesSigmaS5886-1KGNiet een gevaarlijke stof
Collageen Type-1 OplossingSigmaS8045-500G
ElektrodenSigmaS-0876
EMEMGibco by Life Technologies25200-056
Foetaal bovien serum (FBS)Corning356234Wordt gebruikt als extracellulaire matrix
FluoxetineQiagen74104
GentamicineATCC30-2003Celkweekmedium
GlycineCell Signaling, Danvers, MA
Hepes Roche11836145001
IndomethacinGibco by Life Technologies15070-063
K2HPO4Gibco by Life Technologies15710-064
KOHGibco by Life Technologies15630-080
L-ascorbinezuur Gibco by Life Technologies10082147
Liquide scintillatieteller Gibco by Life Technologies70013--032
LSM710 MetaPhysiologic Instruments, San Diego, CA EM-CSYS-8
MannitolPhysiologic Instruments, San Diego, CA P2304
MatrigelPhysiologic Instruments, San Diego, CA VCC MC8
MgCl2Physiologic Instruments, San Diego, CA DM MC6
Multichannel Voltage/current ClampPhysiologic Instruments, San Diego, CA P2300
NaClPhysiologic Instruments, San Diego, CA P2023-100
NaClFisher Scientific, Hampton, NHBP1423
NaHCO3Sigma-Aldrich, St Louis, MOS5886
Normaal geitenserum (NGS, 10%)Fisher Scientific, Hampton, NHS233
Paraformaldehyde (PFA)Sigma-Aldrich, St Louis, MOP288
Pen-StrpSigma-Aldrich, St Louis, MOC3881
Eiwit analyse reagensSigma-Aldrich, St Louis, MO10420
Proteinase Inhibitor CocktailMEDOX, Chicago, IL style G- 12300
RNA easy Mini kitSigma-Aldrich, St Louis, MOM4125
Single Channel Electrode Input Module Sigma-Aldrich, St Louis, MOA92902
Sliders voor snapwell ChambersSigma-Aldrich, St Louis, MOH9523
Natriumfosfaat (Na2HPO4)Sigma-Aldrich, St Louis, MOF132
Natrium-Hydroxide (NaOH)Sigma-Aldrich, St Louis, MOT7039
TGF-β1Perkin-Elmer,Waltham, MANFT1167250UC
Triton X-100Packard Instruments, Downers Grove, ILB1600
Trypsine EDTASigma-Aldrich, St Louis, MO221473
Tween-20Bio Rad Laboratories, Hercules, CA5000006
Ussing Chamber (alleen de kamer)Sigma-Aldrich, St Louis, MOI7378
Ussing Chamber SystemenSigma-Aldrich, St Louis, MOA1296

Referenties

  1. Simon-Assmann, P., Turck, N., Sidhoum-Jenny, M., Gradwohl, G., Kedinger, M. In vitro models of intestinal epithelial cell differentiation. Cell Biol Toxicol. 23 (4), 241-256 (2007).
  2. Shen, C., Meng, Q., Zhang, G. Design of 3D printed insert for hanging culture of Caco-2 cells. Biofabrication. 7 (1), 015003(2014).
  3. Jaffe, A. B., Kaji, N., Durgan, J., Hall, A. Cdc42 controls spindle orientation to position the apical surface during epithelial morphogenesis. J Cell Biol. 183 (4), 625-633 (2008).
  4. Martel, F., Monteiro, R., Lemos, C. Uptake of serotonin at the apical and basolateral membranes of human intestinal epithelial (Caco-2) cells occurs through the neuronal serotonin transporter (SERT). J Pharmacol Exp Ther. 306 (1), 355-362 (2003).
  5. Gill, R. K., et al. Function, expression, and characterization of the serotonin transporter in the native human intestine. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 294 (1), G254-G262 (2008).
  6. Esmaili, A., et al. Enteropathogenic Escherichia coli infection inhibits intestinal serotonin transporter function and expression. Gastroenterology. 137 (6), 2074-2083 (2009).
  7. Wade, P. R., et al. Localization and function of a 5-HT transporter in crypt epithelia of the gastrointestinal tract. J Neurosci. 16 (7), 2352-2364 (1996).
  8. Clarke, L. L. A guide to Ussing chamber studies of mouse intestine. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 296 (6), G1151-G1166 (2009).
  9. Debnath, J., Muthuswamy, S. K., Brugge, J. S. Morphogenesis and oncogenesis of MCF-10A mammary epithelial acini grown in three-dimensional basement membrane cultures. Methods. 30 (3), 256-268 (2003).
  10. Vedeler, A., Pryme, I. F., Hesketh, J. E. Insulin induces changes in the subcellular distribution of actin and 5'-nucleotidase. Mol Cell Biochem. 108 (1), 67-74 (1991).
  11. Botvinkin, A. D., Selimov, M. A., Zgurskaia, G. N., Kulikov, L. G., Aksenova, T. A. [Detection of rabies virus antibodies in human blood serum by an immunoenzyme method]. Vopr Virusol. 31 (3), 333-334 (1986).
  12. Woods, G. L., Mills, R. D. Effect of dexamethasone on detection of herpes simplex virus in clinical specimens by conventional cell culture and rapid 24-well plate centrifugation. J Clin Microbiol. 26 (6), 1233-1235 (1988).
  13. Chase, A. O. Acyclovir for shingles. Br Med J (Clin Res Ed. 295 (6603), 926-927 (1987).
  14. Churchill, P. F., Churchill, S. A., Martin, M. V., Guengerich, F. P. Characterization of a rat liver cytochrome P-450UT-H cDNA clone and comparison of mRNA levels with catalytic activity. Mol Pharmacol. 31 (2), 152-158 (1987).
  15. Steiner, M., Tateishi, T. Distribution and transport of calcium in human platelets. Biochim Biophys Acta. 367 (2), 232-246 (1974).
  16. McClelland, M., Nelson, M., Cantor, C. R. Purification of Mbo II methylase (GAAGmA) from Moraxella bovis: site specific cleavage of DNA at nine and ten base pair sequences. Nucleic Acids Res. 13 (20), 7171-7182 (1985).
  17. Chatterjee, I. shita, K, A., Gill, R. avinder K., Alrefai, W. addah A., Dudeja, P. radeep K. 3D Cell Culture of CaCo2: A Better Model to Study the Functionality and Regulation of Intestinal Ion Transporters. Gastroenterology. 146 (5, Supplement 1), S-654(2014).
  18. Fagg, R. H., Hyslop, N. S. Isolation of a variant strain of foot-and-mouth disease virus (type O) during passage in partly immunized cattle. J Hyg (Lond). 64 (4), 397-404 (1966).
  19. Shilkina, N. P. [The aspects of the problem of systemic vasculitis open to discussion]). Ter Arkh. 61 (12), 102-106 (1989).
  20. Derichs, N., et al. Intestinal current measurement for diagnostic classification of patients with questionable cystic fibrosis: validation and reference data. Thorax. 65 (7), 594-599 (2010).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Erratum


Formal Correction: Erratum: Methods to Study Epithelial Transport Protein Function and Expression in Native Intestine and Caco-2 Cells Grown in 3D
Posted by JoVE Editors on 1/01/1970. Citeable Link.

A correction was made to the Authors section in: Methods to Study Epithelial Transport Protein Function and Expression in Native Intestine and Caco-2 Cells Grown in 3D.

One of the authors' names was corrected from:

Arivarasu N. Anabazhagan

to:

Arivarasu N. Anbazhagan

Tags

3D-kweekUssing-kamerserotoninetransportintestinaal epitheelSERT-eiwitWestern blotimmunofluorescentiecelkweek
Methoden om te studeren epitheliale Transport Protein functie en de expressie in Inheemse darm en Caco-2-cellen gekweekt in 3D
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan de bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleidsoverzicht

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.