Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Extractie van organische chloride pesticiden uit plastic pellets en plastic type analyse

11.4K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/55531

⸱

1 juli 2017

 ,  ,  , 
1Laboratory for Environmental Research, University of Nova Gorica, 2Sector for Marine Waters, Institute for Water of the Republic of Slovenia

In dit artikel

Samenvatting

Microplastica fungeren als vector van potentieel toxische organische verontreinigingen met onvoorspelbare effecten. Dit protocol beschrijft een alternatieve methodologie voor het beoordelen van de niveaus van organische chloorpesticiden die geadsorbeerd zijn op plastic pellets en de polymerische chemische structuur identificeren. De focus ligt op drukvluchtige extractie en verzwakte totale reflectie Fourier transform infrarood spectroscopie.

Samenvatting

Plastische harspellets, gecategoriseerd als microplastics (≤5 mm in diameter), zijn kleine korrels die onbedoeld in de productie kunnen worden vrijgegeven tijdens het vervaardigen en transporteren. Vanwege hun ecologische persistentie, worden ze wijd verspreid in de oceanen en op stranden over de hele wereld. Ze kunnen fungeren als een vector van potentieel toxische organische verbindingen ( bijv. Polychloorbifenylen) en kunnen daarom ook Negatieve effecten op mariene organismen. Hun mogelijke impact langs de voedselketen is nog niet goed begrepen. Om de gevaren in verband met het voorkomen van plastic pellets in het mariene milieu te beoordelen, is het nodig methodologieën te ontwikkelen die het mogelijk maken om snel te bepalen van de bijbehorende organische verontreinigingsniveaus. Het onderhavige protocol beschrijft de verschillende stappen die nodig zijn voor het bemonsteren van harspellets, het analyseren van geadsorbeerde organochloorpesticiden (OCP's) en het identificeren van het plastic type. De nadruk ligt opDe extractie van OCP's uit plastic pellets door middel van een drukvloeibare extractor (PFE) en op de polymeercemische analyse die Fourier Transform-InfraRed (FT-IR) spectroscopie toepast. De ontwikkelde methodologie richt zich op 11 OCP's en verwante verbindingen, waaronder dichloordifenyltrichloorethaan (DDT) en zijn twee hoofdmetabolieten, lindaan en twee productie-isomeren, evenals de twee biologisch actieve isomeren van technisch endosulfan. Dit protocol vormt een eenvoudig en snel alternatief voor bestaande methodologie voor het evalueren van de concentratie van organische verontreinigingen geadsorbeerd op plastic stukken.

Inleiding

De wereldwijde productie van kunststoffen stijgt voortdurend sinds de jaren 1950 tot 311 miljoen ton in 2014, met ongeveer 40% in verpakkingen 1 . Tegelijkertijd stijgen de toenemende hoeveelheden van deze materialen in het milieu, wat een ernstige bedreiging voor de ecosystemen kan veroorzaken 2 . Hoewel in de jaren zeventig al is gerapporteerd, is het voorbije decennium al meer aandacht besteed aan het optreden van plastic puin in het mariene milieu. Vooral microplastics, plastic fragmenten met een diameter van ≤ 5 mm, worden nu herkend als een van de belangrijkste kwesties voor mariene waterkwaliteit 3 .

Plastische harspellets zijn kleine korrels in het algemeen in de vorm van een cilinder of een schijf en met een diameter van een paar mm ( bijvoorbeeld 2 tot 5 mm) 4 , 5 . Ze vallen in de categorie microplastica. Deze plastic korrels zijnIndustrieel grondstof waarvan de eindproductie door middel van hersmelting en gietvorming bij hoge temperatuur 6 vervaardigd wordt. Ze kunnen onbedoeld worden vrijgegeven aan het milieu tijdens fabricage en transport. Bijvoorbeeld, ze kunnen direct in de oceaan worden geïntroduceerd door toevallige stortingen tijdens verzending 4 , 7 , 8 . Ze kunnen van land tot oceaan worden vervoerd door oppervlakteafloop, stromen en rivieren. Vanwege hun ecologische persistentie worden plastic pellets in de oceanen verspreid en op stranden over de hele wereld gevonden 4 . Ze kunnen mariene organismen negatief beïnvloeden en kunnen de voedselketen binnengaan, waar hun effecten onvoorspelbaar zijn 6 , 7 . Bovendien hebben verschillende studies de aanwezigheid van milieuverontreinigingen geadsorbeerd op plastic pellets die in een coasta zijn verzameld, onthuldL milieu, die fungeren als vector van deze potentieel toxische chemicaliën 4 , 9 , 10 . In feite zijn er laboratorium bewijsmateriaal dat suggereert dat deze chemicaliën kunnen bioaccumuleren in weefsels van organismen nadat ze zijn vrijgelaten uit ingevoerde plastic fragmenten 11 , 12 .

Om de gevaren die verband houden met het optreden van plastic pellets in het mariene milieu beter te beoordelen, is het nodig methodes te ontwikkelen die georiënteerde organische verontreinigingen kunnen bepalen. Een belangrijke stap is de extractie van de chemicaliën uit de plastic matrices, die heterogene fysisch-chemische eigenschappen kunnen voordoen, afhankelijk van het polymeer type, het afbraakstadium en de pre-behandelingen. De meeste van de in de literatuur gerapporteerde onderzoeken gebruiken maceratie- of Soxhlet-technieken 4 ,5 , 6 , 9 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 , die oplosmiddel en / of tijdrovend zijn. Met betrekking tot de groeiende belangstelling voor dit probleem, moeten alternatieven worden ontwikkeld voor een snellere evaluatie van organische verontreinigingen geadsorbeerd op plastic stukken. Daarnaast geeft plastic chemische analyse informatie over de chemische structuur van de microplastica. Als gevolg hiervan kunnen de overheersende typen polymeren en copolymeren die aanwezig zijn in het milieu worden geëvalueerd. Hoewel plastic fragmenten gewoonlijk gemaakt zijn van polyethyleen (PE) en polypropyleen (PP) 5 , kunnen sommige steekproeflocaties een bepaald profiel presenteren waar andere categorieën significant vertegenwoordigd zijn ( bijv. Ethyleen / vinylacetaat copolymeerEn polystyreen (PS)). FT-IR spectroscopie is een betrouwbare en gebruiksvriendelijke techniek voor polymeeridentificatie die vaak gebruikt wordt om microplastics 19 , 20 te identificeren.

Het hoofddoel van het huidige werk is om een ​​snelle en eenvoudige optie te bieden voor het onttrekken van OCP's en verwante verbindingen uit plastic pellets door middel van een PFE. Het ontwerp van het protocol omvat echter alle stappen die leiden tot de bepaling van gesorbeerde OCP's, van de bemonstering van de harspellets tot de analyse van de verbindingen. De werkwijze voor het identificeren van het plastic type wordt ook beschreven. De ontwikkelde methodologie richt zich op 11 OCP's en aanverwante verbindingen: i) DDT (2,4'- en 4,4'-dichloordifenyltrichloorethaan) en zijn twee hoofdmetabolieten DDE (2,4'- en 4,4'-dichloordifenyldichloorethyleen) en DDD (2,4'- en 4,4'-dichloordifenyldichloorethaan); Ii) het isomeer gamma-hexachloorcyclohexaan (y-HCH) als hoofdbestanddeel oF het pesticide lindaan en de twee isomeren a-HCH en P-HCH die tijdens de productie 15 vrijkomen; Iii) en de twee biologisch actieve isomeren endosulfan I (Endo I) en II (Endo II) aanwezig in het technische endosulfan. De bestudeerde bestrijdingsmiddelen zijn brede spectrum insecticiden, chemisch stabiel, hydrofoob en geclassificeerd als persistente organische verontreinigende stoffen (POP's) door het Verdrag van Stockholm 21 .

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

1. Plastic Pellet Steekproef

  1. Voordat u naar het veld gaat, spoelt u alle benodigde bemonsteringsmaterialen ( bijv. Pincet en aluminiumfolie) met aceton of ethanol (99%). Als het materiaal niet kan worden gespoeld met oplosmiddelen, verwarm het de nacht bij 450 ° C in een oven ( bijv. Glaswerk).
    OPMERKING: In toeristische gebieden kunt u informatie verkrijgen over mogelijke strandreinigingsactiviteiten die het grootste deel van het mariene rommel inclusief microplastics zouden verwijderen. Bepaal indien mogelijk de bemonstering voor deze operatie. Als u tijdens het schoonmaakseizoen steekproef opneemt, geef de details van deze activiteit op in het identiteitsformulier ( bijv. Data, opruimingsmethode, enz. )
  2. Draag handschoenen, verzamel plastic pellets van het strand met oplosmiddel-gespoeld roestvrij stalen pincet.
  3. Steek 50 tot 100 pellets per locatie, die overeenkomt met 5 tot 10 replicaten per locatie (10 pellets per replicaat). Als het vereiste aantal pellets niet kan worden obtaIn, verzamel de maximale pellets mogelijk en geef het op in het identiteitsstrandvorm.
  4. Aan het eind van de steekproef, pak de verzamelde pellets in oplosmiddel gespoeld aluminiumfolie. Glasflessen kunnen als alternatief of zelfs papieren zakken gebruikt worden.
  5. Vul de identiteitsvorm van het geselecteerde strand in met de ontbrekende informatie ( dwz strandlocatie, weersomstandigheden, details over pellets, enz. ).
  6. Vervoer de monsters naar het laboratorium in een ijskast indien de omgevingstemperatuur meer dan 25 ° C bedraagt. Deze stap kan worden overschreden bij korte uitstapjes ( bijv. <1 uur).
  7. Verwijder voorzichtig afneembare deeltjes ( bijv. Zand) van de pellets in het laboratorium. Droog de monsters indien nodig in een desiccator voorafgaand aan de opslag (duisternis, T <25 ° C). Vermijd kamers waar OCP's in gebruik kunnen zijn ( bijv. Opslag van standaardoplossingen).
  8. Bewaar de pellets in de koelkast (4 ° C) gedurende korte perioden ( dwz enkele dagen) ofIn de vriezer (-18 ° C) gedurende langere perioden in oplosmiddel gespoeld aluminiumfolie.
  9. Vermijd blootstelling van monsters aan kunstlicht of zonlicht. Hanteer de monsters zo weinig mogelijk voor analyse om het risico op verontreiniging te verminderen.

2. Extractie van OCP's uit plastic pellets

  1. Om het risico op verontreiniging te verminderen, werk in een schoon laboratorium met gebruik van zorgvuldig gewassen glazen als volgt: 2 spoeltjes met analytisch aceton, dichloormethaan en n-hexaan. Droog de glaswerk onder stikstofstroom en bescherm het tegen contact met de omgevingslucht ( bijv. Deksel met schoongemaakte aluminiumfolie). Pas deze reinigingsprocedure toe in de verdere stappen van het protocol ( dwz secties 3 en 4).
  2. Met behulp van oplosmiddel gespoelde pincetten, sorteer de pellets per kleur in de volgende categorieën: wit / transparant, witachtig / geelachtig, geel / oranje, amber / bruin, en gepigmenteerd ( bijv. Rood, groen, blauw, enz. )
  3. Verzamel 10 pelletjesS van soortgelijke kleur willekeurig ( dwz plastic type niet overwogen), die een replicaat zal vormen.
  4. Weeg het monster op een analytisch evenwicht en teken de massa op. In dit stadium kunnen de monsters terug in de koelkast of vriezer worden geplaatst.
  5. Om rekening te houden met de achtergrondverontreiniging, voer een blanco monster uit met elke set replicaten ( bijvoorbeeld 1 blanco voor 5 replicaten). Doe hiervoor hetzelfde protocol als hierboven beschreven, maar voeg geen plastic pellets toe in de extractiecel. Dit blanco monster zal de verdere stappen van het protocol ondergaan en worden samen met de monsters geanalyseerd.
  6. Schakel de PFE in. Download de extractiemethode en verwarm het instrument op tot 60 ° C. De details van de methode zijn als volgt:
    1. Stel de temperatuur in op 60 ° C en druk op 100 bar.
    2. Selecteer een cyclus met opwarmtijd van 1 minuut, een houdtijd van 25 minuten en een ontslagstijd van 2 minuten.
    3. Stel het oplosmiddel inEn gas (N 2 ) spoel tijden tot 3 min elk.
    4. Selecteer n-hexaan als extractie oplosmiddel.
  7. Terwijl het instrument opwarmen, bereidt u de extractiecel op zoals hieronder beschreven. Pas indien nodig het protocol aan op de instructies van de leverancier van uw instrument:
    1. Plaats het onderste filter en de frit in de extractiecel. Sluit het en draai het om.
    2. Vul ongeveer de helft van de cel met schoongemaakt kwartszand met een trechter.
    3. Voeg het gewogen monster toe (dat wil zeggen een replicaat van 10 pellets). Bevroren plastic pellets moeten voor de extractie in de koelkast worden geplaatst.
    4. Voeg kwartszand tot 1 cm van de bovenkant van de cel. Wees voorzichtig met het gebruik van Ultra Clean Quartszand (of alternatief glaskrullen), aangezien het aan dezelfde extractieomstandigheden als de monsters blootstaat. Om het zand schoon te maken, haal het achtereenvolgens uit in het PFE in analytisch gehalte dichloormethaan en n-hexaan, waarbij 2 of 2Meer cycli per oplosmiddel ( bijv. 30 min bij 100 ° C onder 100 bar). Alternatief, gebruik een ultrasone bad en / of roterende verdamper. Herhaal de schoonmaakprocedure indien nodig.
    5. Plaats het bovenste filter in de cel en plaats de cel in het instrument.
  8. Plaats de verzamelvaten in het instrument en start de extractiemethode (totale looptijd van ongeveer 35 minuten).
  9. Wanneer de methode is voltooid, leid de extractiecel in een gereinigd glasvat ( bijv. Beker, glascelcultuurschotel) en haal de 10 pellets in het zand. Bewaar ze in een container tot verdere analyse voor het identificeren van plastic ( bijv. Ritssluiting of glazen flesje).

3. Concentratie en opruiming van het extract

  1. Breng het verkregen extract (ongeveer 40 ml) van het verzamelvat naar een glazen buis en verdamp het op 1 ml in een roterende concentrator die gedurende 20 minuten op 35 ° C is ingesteld. Alternatieve methoden kunnen gebruikt wordenCh als verdamping onder stikstofstroom of roterende verdamper. De temperatuur en duur moeten dienovereenkomstig worden geoptimaliseerd.
  2. Ondertussen bereidt u de vaste-fase-extractor (SPE) op door een afvalbuis in het rek te plaatsen en een patroon gevuld met geactiveerd magnesiumsilicaat sorbent (1 g) op de verdeelstuk in de buurt van de klep. De opruiming is gebaseerd op de EPA methode 3620C 22 als volgt:
    1. Zet het vacuüm aan bij de bron en voeg 4 ml hexaan in de patroon toe om het sorbent te activeren.
    2. Open de klep en laat het oplosmiddel door het gehele sorbentbed gaan. Sluit vervolgens de klep en laat het sorbent 5 minuten in hexaan weken.
    3. Open de klep en laat het oplosmiddel doorgaan, maar sluit de klep voordat het sorbent afdroogt.
    4. Wanneer het monster geconcentreerd is, breng het over naar de cartridge met een Pasteur pipette. Open de klep voorzichtig en laat het langzaam doorlopen. 1-2 druppels per seconde isEen passende snelheid.
    5. Spoel de glazen buis die het uittreksel bevat met 0,5 ml hexaan en voeg het toe aan de patroon als het extract doorheen is gegaan.
    6. Wanneer het volledige oplosmiddel doorgaat, sluit de klep en zet het vacuüm uit.
    7. Vervang de afvalbuis met een verzamelbuis en gebruik een leidingsnål voor schoon oplosmiddel.
    8. Voeg 9 ml aceton / hexaan (10/90, v / v) aan de patroon toe en zet het vacuüm bij de bron aan. Laat het sorbent gedurende 1 minuut in het oplosmiddel weken.
    9. Open de klep en haal het volledige eluaat in de verzamelbuis.
  3. Plaats de verzamelbuis in de concentrator en verdamp het oplosmiddel gedurende 9 minuten bij 35 ° C om 1 ml eluaat te bereiken.
  4. Breng het geconcentreerde eluaat in een amber autosampler flesje met een Pasteur pipette. In dit stadium kunnen de monsters vóór de analyse in de vriezer worden opgeslagen.

4. Analyse van de Cleaned en ConcentraTed Extract

  1. Download de analysemethode op de besturingssoftware van het GC-μECD-instrument (gaschromatograaf uitgerust met een micro-elektronenopvangdetector). De details van de methode zijn als volgt:
    1. Stel de injector in de splitsloze modus, de temperatuur tot 250 ° C en de reinigingstijd tot 1 min.
    2. Stel de stroom van het draaggas (He) in op 1,5 ml min -1 .
    3. Programmeer de kolomoven met de volgende temperatuurgradiënt: 60 ° C vasthouden gedurende 1 minuut, helling van 30 ° C min -1 tot 200 ° C, oprit van 5 ° C min -1 tot 230 ° C, helling van 3 ° C min -1 tot 250 ° C, houd deze temperatuur gedurende 5 minuten.
    4. Stel de detector temperatuur in op 300 ° C en de back-up gasstroom (N2) tot 60 mL min -1 .
  2. Plaats de injectieflacon met het monster (gereinigd en geconcentreerd) in het autosampler rek en voer de methode (looptijd van 23,3 minuten). ik Injecteer 2 μL monster.
  3. Identificeer na de analyse de verschillende verbindingen op het chromatogram door hun retentietijden en teken de corresponderende piekgebieden aan.
  4. Rekening houdend met de terugvorderingen (R) en de piekgebieden (A 1 ), bereken de concentratie (C 1 ) van elke OCP in het extract met behulp van de vergelijkingen van de kalibratiekrommen als volgt:
    figure-protocol-1
    Waar b de onderschepping bij de oorsprong is en a de helling van de kalibratievergelijking is,
    figure-protocol-2
  5. Rekening houdend met de massa (m) van het replicaat (dat wil zeggen 10 pellets, zie paragraaf 2.4) en het volume (V) van het uiteindelijke extract (dat wil zeggen 1 ml), bereken de concentratie (C 2 ) van elke OCP geadsorbeerde op De plastic pellets ( dwz ng OCP per g plastic pellet):
    /ftp_upload/55531/55531eq3.jpg "/>

5. Identificatie van de plastic type

  1. Breng de pellets over in een glas Petri-schotel en plaats deze in een plastic zak.
  2. Houd een pellet met pincetjes en snijd een plakje pellet met een scalpel. De plastic zak voorkomt het verlies van pellets tijdens het snijden.
  3. Reinig het verzwakte totale reflectie (ATR) kristal van het FT-IR instrument met ethanol.
  4. Teken een achtergrond spectrum op.
  5. Plaats het fragment op het ATR-kristal en schroef de monsterhouder. De binnenkant van het stuk moet in contact zijn met het kristal.
  6. Scan het monster en record het spectrum.
  7. Identificeer het polymeer dat de plastic pellet vormt door het verkregen spectrum te vergelijken met een spectrumbibliotheek. Hoewel meer tijdrovend, zou de interpretatie van de verkregen spectra ook handmatig kunnen worden uitgevoerd, maar waarschijnlijk zonder de mate van specificiteit te bereiken die is bereikt met een bibliotheekzeerch.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Plastic pellets worden meestal gevonden langs de hoge en laagwaterlijnen van zandstranden ( Figuur 1A ). Ze kunnen ook vasthouden aan zeegras, die pas gestrand is op stranden, na een storm bijvoorbeeld. Ze kunnen af ​​en toe worden gevonden op kiezelstenen en steenachtige stranden in accumulatiegebieden van gestrand materiaal.

Plastic pellets zijn meestal herkenbaar door hun vorm, grootte en kleur...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

De meeste studies die zich richten op organische verontreinigingen geassocieerd met plastic pellets hebben gebaseerd op klassieke extractiemethoden van geadsorbeerde chemicaliën. Het Soxhlet apparaat is de meest gebruikte techniek met typische extractietijden van 12 tot 24 uur en met een hoog verbruik van organische oplosmiddelen ( dwz 100 tot 250 ml per extractie) 23 . Maceratie-extracties vereisen een lange contacttijd tussen het monster en het organische oplosmiddel ( bijvoo...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

Dit werk is gefinancierd door het IPA Adriatisch Grensoverschrijdend Samenwerkingsprogramma 2007-2013, binnen het DeFishGear project (1 ° str / 00010).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Alpha–HCHDr. Ehrenstorfer, Augsburg, GermanyDRE-C14071000H301, H351, H400, H410, H312
Beta–HCHFluka, Sigma-Aldrich, St. Louis, USA33376-100MGH301, H312, H351, H410
LindaneFluka, Sigma-Aldrich, St. Louis, USA45548-250MGH301, H312, H332, H362, H410
Endosufan ISupleco, Sigma-Aldrich Bellefonte, PA, USA48576-25MGH301, H410
Endosulfan IISupleco, Sigma-Aldrich, Bellefonte, PA, USA48578-25MGH301, H410
2,4'–DDDFluka, Sigma-Aldrich, St. Louis, USA35485-250MGH351
4,4’–DDDDr. Ehrenstorfer, Augsburg, GermanyDRE-C12031000H301, H351, H400, H410, H312
2,4’–DDEDr. Ehrenstorfer, Augsburg, GermanyDRE-C12040000H351, H400, H410, H302
4,4’-DDEFluka, Sigma-Aldrich, St. Louis, USA35487-250MGH302, H351, H410
2,4’–DDTDr. Ehrenstorfer, Augsburg, GermanyDRE-C12081000H301, H311, H330, H351, H400, H410
4,4’–DDTNational Institute of Standards and Technology, Gaithersburg, USARM8469-4,4'-DDTH301, H311, H351, H372, H410
n-Hexane VWR International GmbH, Graumanngasse, Viena, Austria83992.320H225, H315, H336, H373, H304, H411
Acetone for HPLCJ.T.Baker, Avantor performance Materials B.V., Teugseweg, Netherlands8142H225, H319, H 336
FL-PR Florisil 1000mg/6mLPhenomenex, Torrance, CA, USA8B-S013-JCH
Fat free quartz sand 0.3-0.9 mmBuchi, Flawil, Switzerland37689
Gas chromatograph Hawlett Packard HP 6890 Series gas chromatograph with GERSTEL MultiPurpose Sampler MPS 2XL with ECD and FID detectorAgilent technologies, Santa Clara USA
Presure fluid extractor, Speed Extractor E-916Buchi, Flawil, Switzerland
Solid phase extractorSupleco, Sigma-Aldrich Bellefonte, PA, USA
Concentrator miVac DUOGenevac SP Scientific, Suffolk UK
GC capillary column Zebron ZB-XLB (30 x 0.25 x 0.25)Phenomenex, Torrance, CA, USA122-1232
ATR FT-IR Spectrometer, Spectrum-TwoPerkin Elmer

Referenties

  1. Plastic Europe. Plastics - the Facts 2015. An analysis of European plastics production, demand and waste data. , Available on the website: http://www.plasticseurope.org (2017).
  2. Wang, J., Tan, Z., Peng, J., Qiu, Q., Li, M. The behaviors of microplastics in the marine environment. Mar Environ Res. 113, 7-17 (2016).
  3. UNEP. Marine plastic debris and microplastics - Global lessons and research to inspire action and guide policy change. , United Nations Environment Programme. Nairobi. Available on the website: http://www.unep.org (2016).
  4. Ogata, Y., et al. International Pellet Watch: Global monitoring of persistent organic pollutants (POPs) in coastal waters. 1. Initial phase data on PCBs, DDTs, and HCHs. Mar Pollut Bull. 58 (10), 1437-1446 (2009).
  5. Andrady, A. L. Microplastics in the marine environment. Mar Pollut Bull. 62 (8), 1596-1605 (2011).
  6. Antunes, J. C., Frias, J. G. L., Micaelo, A. C., Sobral, P. Resin pellets from beaches of the Portuguese coast and adsorbed persistent organic pollutants. Estuarine Coastal Shelf Sci. 130, 62-69 (2013).
  7. Cole, M., Lindeque, P., Halsband, C., Galloway, T. S. Microplastics as contaminants in the marine environment: A review. Mar Pollut Bull. 62 (12), 2588-2597 (2011).
  8. Takada, H. Call for pellets! International Pellet Watch Global Monitoring of POPs using beached plastic resin pellets. Mar Pollut Bull. 52 (12), 1547-1548 (2006).
  9. Teuten, E. L. Transport and release of chemicals from plastics to the environment and to wildlife. Phil Trans R Soc B. 364, 2027-2045 (2009).
  10. Heskett, M., et al. Measurement of persistent organic pollutants (POPs) in plastic resin pellets from remote islands: Toward establishment of background concentrations for International Pellet Watch. Mar Pollut Bull. 64 (2), 445-448 (2012).
  11. Besseling, E., Wegner, A., Foekema, E., Van Den Heuvel-Greve, M., Koelmans, A. A. Effects of microplastic on fitness and PCB bioaccumulation by the lugworm Arenicola marina (L.). Environ Sci Technol. 47 (1), 593-600 (2013).
  12. Rochman, C. M., Hoh, E., Kurobe, T. The SJ Ingested plastic transfers hazardous chemicals to fish and induces hepatic stress. Sci Rep. 3, 3263(2013).
  13. Endo, S., et al. Concentration of polychlorinated biphenyls (PCBs) in beached resin pellets: Variability among individual particles and regional differences. Mar Pollut Bull. 50 (10), 1103-1114 (2005).
  14. Frias, J. P. G. L., Sobral, P., Ferreira, A. M. Organic pollutants in microplastics from two beaches of the Portuguese coast. Mar Pollut Bull. 60 (11), 1988-1992 (2010).
  15. Karapanagioti, H. K., Endo, S., Ogata, Y., Takada, H. Diffuse pollution by persistent organic pollutants as measured in plastic pellets sampled from various beaches in Greece. Mar Pollut Bull. 62 (2), 312-317 (2011).
  16. Mizukawa, K., et al. Monitoring of a wide range of organic micropollutants on the Portuguese coast using plastic resin pellets. Mar Pollut Bull. 70 (1-2), 296-302 (2013).
  17. Gauquie, J., Devriese, L., Robbens, J., De Witte, B. A qualitative screening and quantitative measurement of organic contaminants on different types of marine plastic debris. Chemosphere. 138, 348-356 (2015).
  18. Yeo, B. G., et al. POPs monitoring in Australia and New-Zealand using plastic resin pellets, and International Pellet Watch as a tool for education and raising public awareness on plastic debris and POPs. Mar Pollut Bull. 101 (1), 137-145 (2015).
  19. Kovač Viršek, M., Palatinus, A., Koren, Š, Peterlin, M., Horvat, P., Kržan, A. Protocol for microplastics sampling on the sea surface and sample analysis. J Vis Exp. (118), e55161(2016).
  20. Löder, M. G. J., Kuczera, M., Mintenig, S., Lorenz, C., Gerdts, G. Focal plane array detector- based micro-Fourier-transform infrared imaging for the analysis of microplastics in environmental samples. Environ Chem. 12 (5), 563-581 (2015).
  21. Stockholm Convention on Persistent Organic Pollutants (POPs) as amended in 2009 . , available on the website: http://chm.pops.int/Home/tabid/2121/Default.aspx (2017).
  22. EPA - Environmental protection Agency. Method 3620C: Florisil Cleanup, part of Test Methods for Evaluating Solid Waste, Physical/Chemical Methods (2014). , available on the website: https://www.epa.gov (2017).
  23. Hirai, H., et al. Organic micropollutants in marine plastics debris from the open ocean and remote and urban beaches. Mar Pollut Bull. 62 (8), 1683-1692 (2011).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Meer artikelen verkennen

Gedrukt vloeistofextractiesysteemFT-IR-spectroscopievastefase-extractiegaschromatografieelektronenvangstdetectorpolymeeridentificatiemonstername op het strandmilieuverontreinigende stoffen
Extractie van organische chloride pesticiden uit plastic pellets en plastic type analyse
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan de bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleidsoverzicht

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.