Method Article

Een efficiënt en flexibel Cel aggregatie voor 3D Sferoïde Production

DOI:

10.3791/55544

March 27th, 2017

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Here, we describe a rapid and flexible protocol for the formation of 3D cell spheroids through cell aggregation. This is easily adapted to multiple cell types and is suitable for use in a variety of applications including cell migration, invasion, or anoikis assays, and for imaging and quantifying cell-matrix interactions.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Monolaag celcultuur niet adequaat model van de in vivo gedrag van weefsels, die complexe cel-cel en cel-matrix interacties omvat. Driedimensionale (3D) celkweektechnieken een recente innovatie ontwikkeld om de tekortkomingen van hechtende celkweek pakken. Hoewel verschillende technieken voor het genereren van weefsel analogen in vitro ontwikkeld, deze werkwijzen zijn vaak complex, duur om, vereisen gespecialiseerde apparatuur en meestal beperkt door verenigbaarheid met slechts bepaalde celtypen. We beschrijven hier een snelle en flexibele protocol voor het aggregeren cellen tot multicellulaire sferoïden 3D consistente grootte die compatibel is met een groei van verschillende tumor en normale cellijnen. Wij gebruiken variërende concentraties serum en methylcellulose (MC) om verankering-onafhankelijke sferoïde generatie bevorderen en op zeer reproduceerbare wijze de vorming van celmonolagen. Optimale omstandigheden voor individual cellijnen kunnen worden verwezenlijkt door de MC of serumconcentraties in het bolvormige formatie medium. De 3D sferoïden gegenereerd kan worden verzameld voor gebruik in een breed scala van toepassingen, waaronder cell signaling of gene expression studies, testgeneesmiddel screening, of de studie van cellulaire processen zoals tumorcel invasie en migratie. Het protocol wordt ook direct aangepast om klonale sferoïden van enkelvoudige cellen genereren, en kan worden aangepast om verankering-onafhankelijke groei en anoikis weerstand beoordelen. Overall, ons protocol bevat een gemakkelijk aanpasbaar werkwijze voor het genereren en gebruik 3D cellen sferoïden om de 3D micromilieu van weefsels recapituleren en het model van de in vivo groei van normale en tumorcellen.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Biologisch relevante beoordeling van het gedrag van tumorcellen is een uitdaging met behulp van traditionele tweedimensionale (2D) celcultuur methoden, deels omdat deze niet voldoende afgestemd op het cel micro-omgeving gevonden in vivo. Alternatieve benaderingen waarin extracellulaire matrixcomponenten in de cultuur (bijvoorbeeld Boyden kamer assays) zijn fysiologisch representatief voor de in vivo weefselomgeving. Echter kunnen deze worden beperkt tot beoordeling van individuele gedrag van cellen en kan het complex in vivo combinaties van cel-matrix en cel-cel interacties die bijdragen aan weefsel of tumorgroei ....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

LET OP: Alle reagentia en hulpstoffen worden opgenomen in de Materials List.

1. Sferoïde productie door Cell Aggregation

  1. Methylcellulose oplossing: Bereid 100 ml 100 mg / ml methylcellulose.
    1. Warmte 50 ml ultrapuur H 2 O tot 80 ° C. Voeg 10 g methylcellulose poeder en schud totdat de deeltjes gelijkmatig worden verspreid.
    2. Breng eindvolume met koude ultrapuur H 2 O en roer bij 4 ° C totdat de oplossing helder wordt, stro gekleurd en bevat geen zichtbare vaste stoffen.
    3. Passeren door een 0,45 urn filter om onopgeloste vaste stoffen te verwijderen. ....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

We beschrijven een flexibele en efficiënte methode om discrete bolletjes met behulp van mobiele-afstotende platen en sferoïde vorming media waaraan MC genereren. Onder de geschikte omstandigheden MC en serum, individuele cellen regelen en klonteren in het midden van de put sferoïden met minimale hechting aan de putbodem vormen. Met dit protocol werden sferoïden gevormd uit verschillende cellijnen (figuur 2B). Titratie van MC serumconcentratie is vereist voor elke cellijn.......

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

We presenteren een snelle en flexibele werkwijze voor het vervaardigen van 3D cel sferoïden de architectuur van weefsels in vivo met behulp van goedkope en algemeen verkrijgbare reagentia modelleren. Ons protocol maakt gebruik van de niet-cytotoxische en adhesie-bevorderende eigenschappen van MC 8, 9 naar cel aggregatie bemiddelen en cel monolaag de vorming van een minimum te beperken. Unlike eiwit gebaseerde matrices geïsoleerd uit dierlijke bronnen, M.......

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

The authors thank M. Gordon of the Queen's University Biomedical Imaging Centre for assistance. This work was supported by operating grants from the Cancer Research Society of Canada (19439) and the Canadian Institutes for Health Research (MOP-142303) (LMM), and by Ontario Graduate Scholarships and studentships from the Terry Fox Research Institute Training Program in Transdisciplinary Cancer Research (SMM, EYL), and by a Craig Jury Summer Studentship (SMM).

....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Buffers
10x Phosphate buffered salineThermo Fisher Scientific AM9625
Calcium Chloride SolutionSigma-Aldrich21114Used for PBS+ wash buffer; Do not autoclave PBS+ wash buffer upon addition of calcium chloride
Magnesium Chloride SolutionSigma-AldrichM1028Used for PBS+ wash buffer; Do not autoclave PBS+ wash buffer upon addition of magnesium chloride
NameCompanyCatalog numberComments
For Spheroid Formation
96-well U-bottom Cell-Repellent PlateGreiner Bio-One650970
Dulbecco's Modified Eagle's MediumSigma-AldrichD5546For culturing SH-SY5Y, PANC-1, TPC-1 cell lines
F12K MediumThermo Fisher Scientific2112722For culturing TT cell line
Fetal Bovine SerumSigma-AldrichF1051Filter prior to use to remove particulate contaminants
Methyl celluloseSigma-AldrichM7027Prepare in water to 100 mg/mL
Roswell Park Memorial Institute MediumSigma-AldrichR8758For culturing HCT-116, BxPC-3 cell lines
TrypLE ExpressThermo Fisher Scientific12605028Dissociation buffer
NameCompanyCatalog numberComments
For Invasion Assay
Bovine Type I CollagenCorning Incorporated354231Stock 3.1 mg/mL; Maintain on ice when in use
DMEM Phenol Red Free Low Glucose Thermo Fisher Scientific11054-20Less background fluorescence compared to Phenol Red supplemented medium
Glial Cell Line Derived Neurotrophic FactorPeprotech450-10Chemoattractant
NameCompanyCatalog numberComments
For Immunofluorescence Microscopy
#1.5 CoverglassElectron Microscopy Sciences72225-01For mounting excised spheroids
Alexa-Fluor 488 PhalloidinThermo Fisher ScientificA12379Used to stain actin at 1:200
Bovine Serum AlbuminBioshop Canada IncorporatedALB001Used in BSA blocking buffer
Dabco 33-LVSigma-Aldrich290734Antifade
Glycerol Bioshop Canada IncorporatedGLY001Used in MOWIOL mounting medium
ImageJ SoftwareFreeware, NIH-Used for image analysis 
MicroslidesVWR International48312-024For mounting excised spheroids
MOWIOL 4-88EMD-Millipore475904Used in MOWIOL mounting medium
Paraformaldehyde EMD-MilliporePX0055-3Used in fixation buffer
Triton X-100Bioshop Canada IncorporatedTRX777Used in permeabilization buffer

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Zimmermann, M., Box, C., Eccles, S. A. Two-dimensional vs. three-dimensional in vitro tumor migration and invasion assays. Methods Mol Biol. 986 (986), 227-252 (2013).
  2. Albini, A., Noonan, D. M.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

3D Spheroid ProductionCell Aggregation MethodMethylcellulose MediumSerum ConcentrationU bottom PlatesCollagen EmbeddingSpheroid FormationAnchorage independent GrowthCell Line CompatibilityTumor Cell Invasion

Related Articles