Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Fiberverbindingen van de aanvullende motorruimte herzien: Methode van vezeldissectie, DTI en driedimensionale documentatie

11.2K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/55681

⸱

23 mei 2017

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Neurosurgery, University of Minnesota, 2Department of Neurosurgery, Barrow Neurological Institute, St. Josephs Hospital and Medical Center, 3Department of Radiology, University of Alabama at Birmingham, 4Department of Radiology, University of Minnesota, 5Department of Neurosurgery, Tepecik Training and Research Hospital, 6Department of Neurosurgery, Cerrahpasa Medical School, University of Istanbul

In dit artikel

Samenvatting

Het doel van deze studie is om elke stap van de vezeldissectietechniek te tonen op menselijke cadaverische hersenen, de 3D-documentatie van deze dissecties en de diffusie-tensorbeelden van de anatomisch gedissendeerde vezelwegen.

Samenvatting

Het doel van deze studie is om de methodologie voor het onderzoek van de witte stofverbindingen van het SMA-complex (SMA en SMA) te laten zien met behulp van een combinatie van vezeldissectietechnieken op cadaverische monsters en magnetische resonantie (MR ) Tractografie. Het protocol beschrijft ook de procedure voor een witte materiaaldissectie van een menselijk brein, diffusie tensor tractografie beeldvorming en driedimensionale documentatie. De vezeldissecties op menselijke hersenen en de 3D documentatie werden uitgevoerd bij de Universiteit van Minnesota, Microchirurgie en Neuroanatomie Laboratorium, Afdeling Neurochirurgie. Vijf postmortem humane hersenmonsters en twee hele koppen werden bereid volgens Klingler's methode. Hersenen hemisferen werden stap voor stap gesplitst van zijdelings naar mediaal en mediaal naar lateraal onder een operationele microscoop, en in elke fase werden 3D beelden opgenomen. Alle dissectie resultaten werden ondersteund door diffusie tensorin beeld brengen. Onderzoek naar de verbindingen in lijn met Meynert's vezelwegen classificatie, inclusief vereniging vezels (korte, superieure longitudinale fasciculus I en frontale aslanten), projectie vezels (corticospinale, claustrocortical, cingulum en frontostriatale tracten) en commissurale vezels (callosal vezels) waren Ook uitgevoerd.

Inleiding

Van de 14 frontgebieden die door Brodmann worden afgebakend, is het voor- en prefrontale gebied voor de precentrale motorcortex al lang beschouwd als een stille module, ondanks het feit dat de frontale lobe een belangrijke rol speelt in cognitie, gedrag, leren, En spraakverwerking. Naast het SMA-complex (SMA), bestaande uit de voor-SMA en de SMA (Brodmann Area, BA 6) die mediaal uitstrekt, omvat de voormotor / frontmodule de dorsolaterale prefrontale (BA 46, 8, En 9), frontopolar (BA 10) en ventrolaterale prefrontale (BA 47) cortices, evenals een deel van de orbitofrontale cortex (BA 11) op het laterale oppervlak van de hersenen 1 , 2 .

Het SMA-complex is een belangrijk anatomisch gebied dat wordt gedefinieerd door zijn functies en de verbindingen ervan. De resectie en schade van deze regio veroorzaakt significante klinische tekorten, bekend als de SMAsyndroom. Het SMA syndroom is een belangrijke klinische aandoening die vooral bijgevoelig is voor frontale gliomen die het SMA complex 3 bevatten . Het SMA-complex heeft verbindingen met het limbische systeem, basale ganglia, cerebellum, thalamus, contralaterale SMA, superieure parietale lobe en delen van de frontale lobben via vezelkanalen. Het klinische effect van schade aan deze witte stofverbindingen kan ernstiger zijn dan de cortex. Dit komt omdat de gevolgen van schade aan de cortex gedurende de tijd kunnen worden verbeterd door hoge corticale plasticiteit 4 , 5 , 6 , 7 , 8 , 9 , 10 , 11 , 12 ,. Daarom moet de regionale anatomie van SMA en de witte materiepaden diep zijnJ begrepen, met name voor gliomoperatie.

Een uitgebreid begrip van de anatomie van witte materiepaden is belangrijk voor de brede spectrumbehandeling van neurochirurgische letsels. Recente studies van de driedimensionale documentatie van de anatomische resultaten die in microchirurgie werden verkregen, werden gebruikt om een ​​beter begrip te krijgen van de topografische anatomie en de onderlinge relatie tussen hersenwitstofwegen 13 , 14 . Daarom was het doel van deze studie om de witte materieverbindingen van het SMA-complex (voor SMA en SMA) te onderzoeken door gebruik te maken van een combinatie van vezeldissectietechnieken op cadaverische monsters en magnetische resonantiebeeldvorming (MRI) en om alle methoden te verklaren En principes van beide technieken en hun gedetailleerde documentatie.

Planning en strategie van de studie

Voorafgaand aan het uitvoeren van de experimenten, een literOnderzoek naar de basisprincipes van vezeldissecties, de procedures die moeten worden toegepast op specimens vóór en tijdens dissecties en alle verbindingen tussen SMA-regio's die zijn geopenbaard met dissectie en DTI. De eerdere studies over de anatomische lokalisatie en afscheiding van pre-SMA- en SMA-juiste regio's en op de topografische anatomie van hun verbindingen werden beoordeeld.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

De overledene is hier als populatie opgenomen, hoewel overleden personen niet technisch menselijke onderwerpen zijn; Menselijke onderwerpen worden gedefinieerd door 45 CF 46 als "levende mensen 15 , 16. "

1. Bereiding van specimens

  1. Onderzoek 5 formaline-vaste hersenen (10 hemisferen) en 2 hele menselijke hoofden.
  2. Bevestig de monsters in een 10% formalinoplossing gedurende minstens 2 maanden volgens Klingler's methode 17 .
  3. Vries alle specimens gedurende 2 weken bij -16 ˚C in overeenstemming met Klinger's methode 17 .
  4. Doe de exemplaren in kraanwater.
  5. Voer een uitgebreide frontotemporale craniotomie op het cadaverische hoofd om de hersenen bloot te stellen.
    1. Plaats het kadaverische hoofd in een driepuntsschedelklem (Materiaaltafel).
    2. Maak een frontotemporale huid incisie met een scalpel.
    3. Verwijder de huid en spieren met behulp van een scalpel, pincet en een schaar.
    4. Maak een of meer burrgaten in de schedel totdat de dura mater is bereikt; Gebruik een boormachine met een compacte snelheidsmeter en een 14 mm kraniale perforatorbevestiging bij 79.000 rpm (Materiaaltafel).
    5. Knip de botsklep en open de schedel met een 2 mm x 15,6 mm geribbelde router met een 2,1 mm pinvormige burrbeugel bij een boorsnelheid van 80.000 rpm (Materiaaltafel).
  6. Verwijder de dura, arachnoid en pia mater en dissecteer met behulp van een microdissector onder een microscoop bij 6X tot 40X vergroting 5 , 18 (Materiaal Tabel ).

2. Fiber Dissection Technique

OPMERKING: Voer alle dissecties uit onder 6X tot 40X vergroting op een chirurgische microscoop.

  1. Voer de vezeldissecties op een stapsgewijze manier uit op elke hemispheRe, van lateraal naar mediaal en mediaal naar lateraal.
    1. Decorteer de cerebrale cortex met behulp van een paneldissector (Materiaal Tabel ) en verwijder alle frontale corticale weefsels om de korte vereniging vezelwegen te onthullen, welke zijn U-vezels of intergirale vezels die de naburige Gyri 5 , 13 verbinden.
    2. Verwijder de korte vereniging vezels met een panfield dissector en een chirurgische micro haak door voorzichtig te snijden onder de microscoop (Materiaal Tabel ) om de lange verenigingsvezels te bereiken en bloot te leggen, die verre gebieden in hetzelfde halfrond verbinden.
    3. Ga diep in de lange vereniging vezels om de oppervlakkige vereniging vezels te verwijderen met behulp van een chirurgische micro haak en een panfield dissector; Verwijder elke vezelbundel onder een microscoop (Materiaaltafel) om de projectiecommissieve vezels bloot te leggen.
    4. Bekijk elk van de verbindingen van het SMA-complexVolgens de topografische anatomie die eerder werd gedefinieerd in de literatuur 2 , 8 , 18 , 19 , 20 , 21 .
  2. Bewaar alle exemplaren (hele koppen en hersenen) die tijdens de dissecties in 10% formaldehyde oplossing (Materiaal Tabel ) werden gebruikt tussen de dissectieperiodes.

3. 3D fotografie techniek

  1. Gebruik tijdens het fotograferen van de exemplaren een zwart kleurplatform.
  2. Volg een 3D fotografie techniek 22 .
    1. Plaats elk exemplaar in een ontworpen zwart kleurplatform.
    2. Selecteer een scène met een volledig vooraanzicht van het monster en neem één opname door de camera op elk punt op het voorbeeld te concentreren nabij het middelpunt op het camera scherm (instrument table). Gebruik een 18- tot 55 mm f / 3.5-5.6 SLR-lens of een 100 mm f / 2.8L macro lens en stel de diafragma op op F29, ISO 100.
    3. Draai de camera een beetje naar links totdat het rechterste punt op het camerascherm hetzelfde is als het bovenstaande focuspunt. Schuif de camera naar rechts totdat het middenpunt op het scherm het oorspronkelijke focuspunt op het exemplaar overlapt. Focus de camera op dit punt en neem een ​​andere opname.
    4. Bewaar de afstand en as van de camera om het monster te fotograferen met constante waarden.
  3. Maak een 3D-afbeelding met behulp van een 3D-beeldgeneratorprogramma (Materiaaltafel).
    1. Open het 3D-softwareprogramma.
    2. Kies 'Open stereo beelden van Bestand'.
    3. Selecteer de twee afbeeldingen (links en rechts) en zorg ervoor dat het linker beeld in de linker gleuf staat en het juiste beeld in de rechter gleuf staat.
    4. Selecteer de optie "Half kleur anaglyph RL / 2" en genereer de anaglyph in jpeg-formaat.

4. DTI-techniek

  1. Verwerving van vooraf verwerkte diffusiegegevens met behulp van de Human Connectome Project diffusie data 23 door het downloaden van de verwijzende website.
    OPMERKING: De gegevens worden voorafverwerkt en bestonden uit de volgende procedures: De diffusiegegevens werden bij normale vrijwilligers verworven door gebruik te maken van een aangepast 3 T MRI-apparaat (instrumenttabel) met behulp van een EPI-sequentie met echo-echo-echo (EPI) met multi- Bandbeeldversnelling 24 , 25 , 26 , 27 , 28 . Relevante sequentieparameters omvatten: TR = 5.520 ms; TE = 89,5 ms; FOV = 210 x 180 mm; Matrix = 168 x 144; Plak dikte = 1,25 mm (voxel maat 1.25 x 1.25 x 1.25 mm); Multiband factor = 3; En b-waarden = 1.000 s / mm 2 (95 richtingen), 2.000 s / mm 2 (96 richtingen) en 3.000 s / mm2 (97 richtingen). De gegevens werden vervolgens verwerkt met behulp van FreeSurfer 29 en FSL 30 ; Het proces omvatte wervelstroomcorrectie, bewegingscorrectie, normalisatie van b0-intensiteit, correctie van gevoeligheidsvervorming en correctie van de gradiënt-nonlineariteit 28 , 31 , 32 , 33 . Corresponderende T1-gewogen MP-RAGE beelden zijn ook opgenomen in het downloadpakket. Procedures worden gedocumenteerd in de handleiding 23 van de Human Connectome Project.
  2. De diffusiegegevens post-verwerken met behulp van Diffusion Spectrum Imaging (DSI) Studio 34 om een ​​geschatte voxel-achtige diffusie-oriëntatieverdelingsfunctie (ODF) te genereren die een genummerd q-bemonsteringsbeeldvorming (GQI) algoritme 35 gebruikt .
    1. Laad de gedownloade dataset in de software door selEcting "STEP1: Open source images" en het bestand data.nii.gz selecteren.
    2. Selecteer de knop "STEP2: Reconstructie". Nadat u het breinmasker hebt geverifieerd, gaat u verder naar "Stap 2" en selecteert u "GQI" als de reconstructiemethode. Selecteer "r ^ 2 weighting" met een "lengteverhouding" van "1.0". Laat de resterende selecties als de standaard.
    3. Selecteer 'Herstructureren uitvoeren'.
  3. Plaats passende zaden voor regio's die van belang zijn om de vezelopsporing te stroomlijnen.
    1. Klik in het venster 'Regio' op de knop 'Atlas' om zaden te plaatsen voor de superieure longitudinale fasciculus (SLF) I. Selecteer 'Brodmann' en voeg 'Regio 6' en 'Regio 7.' toe. Stel in het regio venster het type 'Regio 6' op 'zaad' en het 'Regio 7' type in 'regio-van-inclusies' (ROI).
      1. Selecteer 'Nieuwe regio' in het regio venster en teken een ROI handmatigIn het meest achterste aspect van de superieure frontale gyrus in het koronale vlak. Voer vezelopsporing uit zoals beschreven in stap 4.4.
    2. Plaats zaden voor SLF II op soortgelijke wijze door gebruik te maken van de "Nieuwe Regio" in het regio venster en trek het "zaad" gebied in het achterste gedeelte van de middelste frontale gyrus witte stof in het koronale vlak. Kies een ROI met behulp van "Atlas" (zoals in stap 4.3.1) en Brodmann-regio's 9, 10, 46, 39 en 19. Voer vezelopsporing uit zoals beschreven in stap 4.4.
    3. Plaats zaden voor SLF III met een "zaad" -gebied, met behulp van "Atlas" (zoals in stap 4.3.1) in het regio venster en kies "Regio 40" van de atlas Brodmann en de ROI van "Atlas ..." in "Regio 40 "En" Regio 44. " Voer vezelopsporing uit zoals beschreven in stap 4.4.
    4. Plaats zaden voor callosalvezels met behulp van "New Region" in het regio venster en teken een "zaad" in het sagittale vlak dat omvatE corpus callosum. Voer vezelopsporing uit zoals beschreven in stap 4.4.
    5. Plaats zaden voor cingulate vezels met behulp van "New Region" in het regio venster en teken een "zaad" regio in het midden-cingulate gyrus op de koronale weergave. Gebruik 'Nieuwe regio' om twee ROI's te tekenen, een in de meer anterior cingulaat en een in de posterior cingulate gyrus onder de koronale weergave. Voer vezelopsporing uit zoals beschreven in stap 4.4.
    6. Plaats zaden voor claustrocortische vezels met behulp van de "Nieuwe Regio" in het regio venster en teken een "zaad" in de claustrum met een ROI in de corona radiata met behulp van de functie "Atlas ...". Selecteer de atlas als "JHU-WhiteMatter-labels-1mm."
      1. Selecteer en voeg de "Anterior_corona_radiata", "Posterior_corona_radiata" en "Superior_corona_radiata" toe. Teken een regio-van-vermijding voor alle vezels die door een vliegtuig gaan, die lager liggen dan het niveau van de claustrum in het axiale vlak met behulp van "New Region"In het regio venster. Voer vezel tracking zoals beschreven in stap 4.4.
    7. Plaats zaden voor het corticospinale kanaal met behulp van een "zaad" van de functie "Atlas ..." in het regio venster; Selecteer "JHU-WhiteMatter-labels-1mm" en voeg de "Corticospinal_tract" regio toe. Voer vezelopsporing uit zoals beschreven in stap 4.4.
    8. Plaats zaden voor het frontale aslantkanaal (FAT) met behulp van een "zaad" gebied van de functie Atlas ... in het regio venster en selecteer de Brodmann-atlas en Regio 6-ROI's in "Regio 44" en "Regio 45. " Voer vezelopsporing uit zoals beschreven in stap 4.4.
    9. Plaats zaden voor het frontostriatale kanaal (FST) met een "zaad" in "Regio 6" met behulp van de functie "Atlas ...". Plaats nieuwe gebieden in de 'caudate', 'putamen' en 'globus pallidus' van de atlas 'HarvardOxfordSub' en stel het type in het regio venster in om te stoppen."
      OPMERKING: Vezelopsporing voor FST wordt uitgevoerd door het Region 6-zaad te selecteren en slechts één van de subcortische zaden per tracking-sessie ( dwz regio 6 en de caudate, gevolgd door regio 6 en de putamen en ten slotte regio 6 en de globus pallidus).
      1. Voer vezel tracking zoals beschreven in stap 4.4 voor elke combinatie.
  4. Voer vezelopsporing voor elk van de bovenstaande combinaties uit.
    1. Stel in het venster 'Opties' de volgparameters als: beëindigingsindex van qa van 0,08, hoekdrempel van 75, stapgrootte 0.675, gladingen van 0,2, minimumlengte 20 mm en maximale lengte 200 mm. Selecteer de zaadrichtlijn als "All", de zaadpositie als "Subvoxel" en randomiseer zaaien als "Aan". Gebruik trilineaire richtinginterpolatie met een streamline (Euler) tracking algoritme. Voor elke combinatie van regio's hierboven, kies 'Volg tracking' in de & #34; Fiber Tracts "venster.
      OPMERKING: Vanwege de gerandomiseerde aard van het volgen, worden duidelijke "valsvezels" geïdentificeerd en selectief verwijderd, waarbij de regio's van vermijding met de hand worden getekend als een "Nieuwe Regio".
  5. Affine registreer de hersengezuiverde T1-gewogen 3D MP-RAGE scan die in de Human Connectome Project dataset leverbaar is op de diffusiedata met behulp van de functie "Snijden -> Insert T1 / T2 Images" van DSI-Studio. Genereer een oppervlakweergave van de hersenen door "Plakjes -> Isosurface toevoegen" te selecteren. Gebruik een "drempel" van 665.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Het SMA-complex bevindt zich in het achterste gedeelte van de superieure frontale gyrus. De grenzen van het SMA-complex zijn de achterzijde van de precentrale sulcus, de superieure frontale sulcus inferior-lateraal, en de cingulatulcus inferior-medially 18 . Het SMA-complex bestaat uit twee delen: de voor-SMA anterior en de SMA behoorlijk posterior 18 . Er zijn verschillen in termen van witte materiaansluitingen en functie tussen deze twee ...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Het belang van en studietheorieën voor de wegenwegen

De cerebrale cortex wordt geaccepteerd als een hoofd neurale structuur in verband met 2,5 miljoen jaar van het menselijk leven. Ongeveer 20 miljard neuronen zijn gescheiden in verschillende delen op basis van morfologische en cellulaire specificatie 40 . De architectuur van elk van deze corticale delen is functioneel gesubdelegeerd, zoals sensorimotorisch gevoel en beweging, emotionele ervaring en complexe redenering. ...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs verklaren geen concurrerende financiële belangen en geen bronnen van financiering en ondersteuning, met inbegrip van apparatuur en medicijnen.

Dankbetuigingen

De gegevens werden gedeeltelijk verstrekt door het Human Connectome Project, WU-Minn Consortium (Hoofdonderzoekers: David Van Essen en Kamil Ugurbil; 1U54MH091657), gefinancierd door de 16 NIH Instituten en Centra die de NIH Blueprint voor Neuroscience Research ondersteunen; En door het McDonnell Center for Systems Neuroscience aan de Universiteit van Washington. Figuren 2A en 2D werden gereproduceerd met toestemming van de Rhoton-collectie 57 (http://rhoton.ineurodb.org/?page=21899).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
%4 Paraformaldehyde SolutionAFFYMETRIX, Inc.2046C208gebruikt voor fixatie
FreezerINSIGNANS-CZ70WH6gebruikt voor bevriezing
Panfield DissectorAESCULAPFD305gebruikt voor dissectie
Surgical Micro ScissorW. Lorenz04-4238gebruikt voor microdissectie
Surgical Micro HookV. MuellerNL3785-009gebruikt voor microdissectie
MICRO VESSEL STRETCHER/DILATORW. Lorenz04-4324gebruikt voor microdissectie
Emax2 SC 2000 Electric ConsoleAnspach CompaniesSC2102gebruikt voor craniatomie
Drill SetAnspach CompaniesNS-CZ70WH6gebruikt voor craniatomie
20-1000 operating microscopeMoeller-Wedel, GermanyFS 4-20gebruikt voor microdissectie
Canon EOS 550D 18 MP CMOS APS-C Digital SLR CameraCanon Inc.DS126271gebruikt om foto's te maken
EF 100 mm f/2.8L IS USM Macro LensCanon Inc.4657A006gebruikt om foto's te maken
MR-14EX II Macro Ring Lite (Flash)Canon Inc.9389B002gebruikt om foto's te maken
TripodLino Manfrotto322RC2gebruikt om foto's te maken
MAYFIELD Infinity Skull ClampIntegra Inc.A0077gebruikt om het hoofd te fixeren
Modified Skrya 3T "Connectome" ScannerSiemens Company, Inc.A911IM-MR-15773-P1-4A00gebruikt om DTI te scannen
XstereO PlayerYury GolubinskyVersion 3.6(22)gebruikt om anaglifen te maken
EF-S 18-55mm f/3.5-5.6 IS II SLR LensCanon Inc.2042B002gebruikt om foto's te maken
Scalpel6B INVENT7-104-Lgebruikt om incisies te maken
Compact Speed ReducerAnspach CompaniesCSR60gebruikt om een boorgat te maken
14 mm Cranial PerforatorAnspach CompaniesCPERF-14-11-3Fgebruikt om een boorgat te maken
2 mm x 15.6 mm Fluted RouterAnspach CompaniesA-CRN-Mgebruikt om een craniotomie uit te voeren
2.1 mm Pin-shaped BurrsAnspach Companies03.000.130Sgebruikt om een craniotomie uit te voeren

Referenties

  1. Nieuwenhuys, R., Voogd, J., Huijzen, C. V. The Human Central Nervous System. , 4th edi, 620-649 (2008).
  2. Catani, M., Acqua, F., Vergani, F., Malik, F., Hodge, H. Short frontal lobe connections of the human brain. Cortex. 48, 273-291 (2012).
  3. Duffau, H., Capelle, L. Preferential brain locations of low-grade gliomas. Cancer. 100 (12), 2622-2626 (2004).
  4. Yasargil, M. G., Türe, U., Yasargil, D. C. Impact of temporal lobe surgery. J Neurosurg. 101 (05), 725-738 (2004).
  5. Türe, U., Yasargil, M. G., Friedman, A. H., Al-Mefty, O. Fiber dissection technique: lateral aspect of the brain. Neurosurgery. 47 (2), 417-427 (2000).
  6. Burger, P. C., Heinz, E. R., Shibata, T., Kleihues, P. Topographic anatomy and CT correlations in the untreated glioblastoma multiforme. J Neurosurg. 68 (5), 698-704 (1998).
  7. New concepts in surgery of WHO grade II gliomas: Functional brain mapping, connectionism and plasticity-a review. J Neurooncol. 79 (1), 77-79 (2006).
  8. White matter connections of the supplementary motor area in humans. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 85 (12), 1377-1385 (2014).
  9. Luppino, G., Matelli, M., Camarda, R., Rizzolatti, G. Corticocortical connections of area F3(SMA-proper) and area F6(pre-SMA)in the macaque monkey. J. Comp.Neurol. 338, 114-140 (1993).
  10. Akkal, D., Dum, R. P., Strick, P. L. Supplementary motor area and presupplementary motor area: targets of basal ganglia and cerebellar output. J. Neurosci. 27, 10659-10673 (2007).
  11. Behrens, T. E. Non-invasive mapping of connections between human thalamus and cortex using diffusion imaging. Nat. Neurosci. 6, 750-757 (2003).
  12. Potgieser, A. R. E., de Jong, B. M., Wagemakers, M., Hoving, E. W., Groen, R. J. M. Insights from the supplementary motor area syndrome in balancing movement initiation and inhibition. Frontiers in Human Neuroscience. 28 (8), 960(2014).
  13. Yagmurlu, K., Vlasak, A. L., Rhoton Jr, A. L. Three-Dimensional Topographic Fiber Tract Anatomy of the Cerebrum. Neurosurgery. 2, epub 274-305 (2015).
  14. Fernández-Miranda, J. C., Rhoton Jr,, L, A., Álvarez-Linera, J., Kakizawa, Y., Choi, C., de Oliveira, E. P. Three-dimensional microsurgical and tractographic anatomy of the white matter of the human brain. Neurosurgery. 62 (6 Suppl 3), 989-1026 (2008).
  15. Couzin, J. Crossing a frontier: Research on the dead. Science. 299 (5603), 29-30 (2003).
  16. University of Minnesota. Research Ethics. , Available from: https://www.ahc.umn.edu/img/assets/26104/Research Ethics/pdf (2016).
  17. Ludwig, E., Klingler, J. Der innere Bau des Gehirns dargestellt auf Grund makroskopischer Präparate. The inner structure of the brain demonstrated on the basis of macroscopical preparations. Atlas cerebri humani. , 1-36 (1956).
  18. Bozkurt, B. The Microsurgical and Tractographic Anatomy of the Supplementary Motor Area Complex in Human. J World Neurosurg. 95, 99-107 (1956).
  19. Lehericy, S. 3-D diffusion tensor axonal tracking shows distinct SMA and pre-SMA projections to the human striatum. Cereb Cortex. 14, 1302-1309 (2004).
  20. Duffau, H. Intraoperative mapping of the cortical areas involved in multiplication and subtraction: an electrostimulation study in a patient with a left parietal glioma. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 73 (6), 733-738 (2002).
  21. Kinoshita, M. Role of fronto-striatal tract and frontal aslant tract in movement and speech: an axonal mapping study. Brain Struct Funct. 220 (6), 3399-3412 (2015).
  22. Shimizu, S. Anatomic dissection and classic three-dimensional documentation: a unit of education for neurosurgical anatomy revisited. Neurosurgery. 58 (5), E1000(2006).
  23. Connectome Database. , Available from: https://db.humanconnectome.org (2016).
  24. Moeller, S. Multiband multislice GE-EPI at 7 tesla, with 16-fold acceleration using partial parallel imaging with application to high spatial and temporal whole-brain fMRI. Magn Reson Med. 63 (5), 1144-1153 (2010).
  25. Feinberg, D. A. Multiplexed Echo Planar Imaging for sub-second whole brain fMRI and fast diffusion imaging. PLoS One. 5, e15710(2010).
  26. Setsompop, K. Blipped-controlled aliasing in parallel imaging for simultaneous multislice echo planar imaging with reduced g-factor penalty. Magn Reson Med. 67 (5), 1210-1224 (2012).
  27. Xu, J. Highly accelerated whole brain imaging using aligned-blipped-controlled-aliasing multiband EPI. In Proceedings of the 20th Annual Meeting of ISMRM. 20, 2306(2012).
  28. Glasser, M. F. The minimal preprocessing pipelines for the Human Connectome Project. Neuroimage. 80, 105-124 (2013).
  29. Free Surfer Software Suite. Harvard University. , Available from: http://surfer.nmr.mgh.harvard.edu (2016).
  30. FSL. Software Library. , Available from: http://fsl.fmrib.ox.ac.uk (2016).
  31. Jenkinson, M., Bannister, P. R., Brady, J. M., Smith, S. M. Improved optimization for the robust and accurate linear registration and motion correction of brain images. NeuroImage. 17 (2), 825-841 (2002).
  32. Andersson, J. L., Skare, S., Ashburner, J. How to correct susceptibility distortions in spin-echo echo-planar images: application to diffusion tensor imaging. NeuroImage. 20 (2), 870-888 (2003).
  33. Andersson, J., Xu, J., Yacoub, E., Auerbach, E., Moeller, S., Ugurbil, K. A comprehensive Gaussian process framework for correcting distortions and movements in diffusion images. In Proceedings of the 20th Annual Meeting of ISMRM. 20, 2426(2012).
  34. DSI Sudio. , Available from: http://dsi-studio.labsolver.org (2016).
  35. Yeh, F. C., Wedeen, V. J., Tseng, W. Y. Generalized q-sampling imaging. IEEE Trans Med Imaging. 29 (9), 1626-1635 (2010).
  36. Makris, N. Segmentation of subcomponents within the superior longitudinal fascicle in humans: a quantitative, in vivo DT-MRI study. Cereb Cortex. 15 (6), 854-869 (2005).
  37. Fernández-Miranda, J. C., Rhoton, A. L. Jr, Kakizawa, Y., Choi, C., Alvarez-Linera, J. The claustrum and its projection system in the human brain: a microsurgical and tractographic anatomical study. J Neurosurg. 108 (4), 764-774 (2008).
  38. Maier, M. A., Armand, J., Kirkwood, P. A., Yang, H. W., Davis, J. N., Lemon, R. N. Differences in the corticospinal projection from primary motor cortex and supplementary motor area to macaque upper limb motoneurons:an anatomical and electrophysiological study. Cereb. Cortex. 12, 281-296 (2002).
  39. Picard, N., Strick, P. L. Imaging the premotor areas. Curr. Opin. Neurobiol. 11, 663-672 (2001).
  40. Pakkenberg, B., Gundersen, H. J. G. Neocortical neuron number in humans: effect of sex and age. Journal of Comparative Neurology. 384 (2), 312-320 (1997).
  41. Geschwind, N. Disconnexion syndromes in animals and man. Brain. 88 (3), 237-294 (1965).
  42. Geschwind, N. Disconnexion syndromes in animals and man. Brain. 88 (3), 585-644 (1965).
  43. Goldman-Rakic, P. S. Topography of cognition: parallel distributed networks in primate association cortex. Annu Rev Neurosci. 11 (1), 137-156 (1988).
  44. Mesulam, M. M. From sensation to cognition. Brain. 121 (6), 1013-1052 (1998).
  45. Mesulam, M. Large-scale neurocognitive networks and distributed processing for attention, language, and memory. Ann Neurol. 28 (5), 597-613 (1990).
  46. Schmahmann, J. D., Pandya, D. N. Fiber pathways of the brain. 8, Oxford University Press. Oxford. 393-409 (2006).
  47. Bammer, R., Acar, B., Moseley, M. E. In vivo MR tractography using diffusion imaging. Eur J Radiol. 45 (3), 223-234 (2003).
  48. Catani, M., Howard, R. J., Pajevic, S., Jones, D. K. Virtual in vivo interactive dissection of white matter fasciculi in the human brain. Neuroimage. 17 (1), 77-94 (2002).
  49. Lin, C. P., Wedeen, V. J., Chen, J. H., Yao, C., Tseng, W. Y. I. Validation of diffusion spectrum magnetic resonance imaging with manganese-enhanced rat optic tracts and ex vivo phantoms. Neuroimage. 19 (3), 482-495 (2003).
  50. Bello, L., Acerbi, F., Giussani, C., Baratta, P., Taccone, P., Songa, V. Intraoperative language localization in multilingual patients with gliomas. Neurosurgery. 59 (1), 115-125 (2006).
  51. Bernstein, M. Subcortical stimulation mapping. J Neurosurg. 100 (3), 365(2004).
  52. Ackermann, H., Riecker, A. The contribution(s) of the insula to speech production: a review of the clinical and functional imaging literature. Brain Struct Funct. 214, 419-433 (2010).
  53. Krainik, A. Role of the healthy hemisphere in recovery after resection of the supplementary motor area. Neurology. 62, 1323-1332 (2004).
  54. Ford, A., McGregor, K. M., Case, K., Crosson, B., White, K. D. Structural connectivity of Broca's area and medial frontal cortex. Neuroimage. 52, 1230-1237 (2010).
  55. Catani, M., Mesulam, M. M., Jakobsen, E., Malik, F., Martersteck, A., Wieneke, C., Thompson, C. K., Thiebaut de Schotten, M., Dell'Acqua, F., Weintraub, S., Rogalski, E. A novel frontal pathway underlies verbal fluency in primary progressive aphasia. Brain. 136, 2619-2628 (2013).
  56. Rech, F., Herbet, G., Moritz-Gasser, S., Duffau, H. Disruption of bimanual movement by unilateral subcortical electrostimulation. Human Brain Mapping Annual Meeting. 35 (7), 3439-3445 (2014).
  57. The Rhoton Collection. Login page. , Available from: http://rhoton.ineurodb.org/?page=21899 (2016).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Tags

Diffusie tensorbeeldvormingwitte stofbanentractus frontalis aslantfasciculus longitudinalis superiorcommissurale vezelsprojectieve vezelsMRI vezeltracking
Fiberverbindingen van de aanvullende motorruimte herzien: Methode van vezeldissectie, DTI en driedimensionale documentatie
Neem contact met ons op
Aanbevelen aan de bibliotheek

Privacy

Gebruiksvoorwaarden

Beleidsoverzicht

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Alle rechten voorbehouden.