Methodenartikel

Ovine Lumbar Intervertebrale Disc Degeneratie Model Gebruik maken van een laterale retroperitoneale boorbitschade

11.6K weergaven

⸱

DOI:

10.3791/55753

⸱

25 mei 2017

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Surgery, Monash University, 2Department of Neurosurgery, Monash University, 3The Ritchie Centre, Hudson Institute of Medical Research, 4Proteobioactives, Pty Ltd, 5Department of Neurosurgery, St Vincent's Hospital, 6Australian Institute for Bioengineering and Nanotechnology, University of Queensland, 7School of Chemical Engineering, University of Queensland, 8Department of Neurosurgery, Monash Health

* These authors contributed equally

In dit artikel

Samenvatting

Intervertebrale schijfdegeneratie is een belangrijke bijdrage aan rugpijn en een belangrijke oorzaak van handicap wereldwijd. Er zijn talrijke diermodellen van de tussenwervelschijfdegeneratie. Wij tonen een schaap model van intervertebrale disc degeneratie, met behulp van een boorboor, die een consistente schade verwonding en reproduceerbare niveau van schijf degeneratie bereikt.

Samenvatting

Intervertebrale schijfdegeneratie is een belangrijke bijdrage aan de ontwikkeling van rugpijn en de belangrijkste oorzaak van handicap wereldwijd. Er zijn talrijke diermodellen ontwikkeld van intervertebrale schijfdegeneratie. Het ideale diermodel moet de menselijke intervertebrale schijf nauw nabootsen met betrekking tot morfologie, biomechanische eigenschappen en de afwezigheid van notochordale cellen. Het schapen lumbale intervertebrale schijfmodel voldoet aan deze criteria. Wij presenteren een schaap model van de wervelkolomvorming van de wervelkolom door gebruik te maken van een boorbeschadiging door een laterale retroperitoneale aanpak. De laterale aanpak vermindert de insnijding en de potentiële morbiditeit die verband houdt met de traditionele anterior benadering van de ruggegraat. Gebruik van een boring-bit methode van letsel biedt de mogelijkheid om een ​​consequente en reproduceerbare verwonding te produceren, met nauwkeurige afmetingen, die een consistente mate van intervertebrale schijfdegeneratie initiëren. De focale aard van de ringvormigeEn nucleus pulposus defect naderen nauwkeuriger de klinische conditie van focal intervertebrale schijfherniatie. Schapen herstellen snel na deze procedure en zijn meestal mobiel en eten binnen het uur. Intervertebrale schijfdegeneratie komt tot gevolg en schapen ondergaan necropsy en daaropvolgende analyse in perioden van acht weken. Wij zijn ervan overtuigd dat het boorbeschadigingsmodel van de vertekening van de intervertebrale schijf voordelen biedt tegen meer conventionele ringvormige schade modellen.

Inleiding

Rugpijn is de belangrijkste oorzaak van handicap wereldwijd 1 . Lumbar intervertebrale disc degeneratie geassocieerde discogene pijn wordt beschouwd als een belangrijke bijdrage aan de rugpijn 2 . Er is een toenemende vraag naar betrouwbare diermodellen van intervertebrale schijfziekte om het begrip van het degeneratieve proces te vergroten en voor het onderzoek naar mogelijke therapieën.

Talrijke diermodellen van de tussenwervelschijfdegeneratie bestaan ​​uit 3 . Dierenmodellen die in het onderzoek van degeneratieve schijfziekte werden gebruikt, variëren in grootte van muizen 4 , naar grotere zoogdieren, zoals honden 5 , schapen 6 en niet-menselijke primaten 7 . Methoden die worden gebruikt om de degeneratie van intervertebrale schijven te veroorzaken, kunnen in grote mate worden ingedeeld in de categorieën mechanische ( bijv. Intervertebrale schijfcompressie N 8 of chirurgisch letsel 6 ), chemisch ( bijv. Chemische nucleolyse 5 ) of minder spontane degeneratie ( bijv. De zandrat 9 ).

Gezien de complexiteit van menselijke intervertebrale schijfdegeneratie bestaat er geen perfect diermodel. Belangrijke overwegingen bij het kiezen van een geschikt diermodel om deze conditie nauwkeurig na te bootsen zijn echter geïdentificeerd 3 . Dergelijke overwegingen omvatten de afwezigheid van notochordale cellen (primitieve cellen met mogelijke stamcellenfunctie 10 die afwezig zijn van de volwassen nucleus pulposus bij mensen, schapen, geiten en chondrodystrofe honden, maar aanwezig in de meeste zoogdieren), overeenkomsten in dierlijke en intervertebrale schijfgrootte ten opzichte van mensen, Vergelijkbare biomechanische krachten naar de klinische conditie, mechanistische en ethische overwegingen 3 .

Jove_content "> Niet-menselijke primaten voldoen aan veel van de bovenstaande criteria. Bonen- en macaque modellen van spontane intervertebrale schijfdegeneratie zijn beschreven 11 , 12 , 13. Beide soorten besteden grote hoeveelheden tijd in rechte of semi-oprechte houdingen - een duidelijk voordeel Ten opzichte van andere diermodellen. Ethische en praktische overwegingen (bijvoorbeeld kosten, huisvesting, vertraagde aanvang van spontane degeneratie) beperken hun gebruik in veel instellingen.

De ruggegraat is een gevestigd model van intervertebrale schijfdegeneratie, met voordelen waaronder cellulaire, biomechanische en anatomische overeenkomsten met de menselijke ruggengraat 10 , 14 , 15 . Ondanks de quadrupedale gestalte van schapen wordt de lendene tussenwervelschijf blootgesteld aan soortgelijke spanningen aan de menselijke schijfS = "xref"> 14. Het schaapmodel wordt ook vanuit een ethisch perspectief meer algemeen aanvaard dan niet-menselijke primaatmodellen. Gevarieerde methoden zijn beschreven om het degeneratieve proces te starten, waarvan veel directe toegang tot de intervertebrale schijf nodig heeft. Door de beëindiging van het ruggenmerg in het sacrale gebied en de bekisting van het achterste longitudinale ligament in de lumbale wervelkolom, zijn de achterste benaderingen van de intervertebrale schijf technisch uitdagend en minder vaak gebruikt in de schapen 16 . De traditionele toegangsroutes naar de lumbale wervelkolom, dwz via anterior of anterolaterale benaderingen, vereisen grote buikinfecties, zijn gevoed met risico's van hernia en schade aan inwendige viscera en neurovasculaire structuren 16 . Het gebruik van een relatief kleine zijdelings incisie weg van afhankelijke buikgebieden kan dergelijke risico's verminderen 17 .

Wij presenteren een schaap moDeel van degeneratieve lumbale intervertebrale schijfziekte met boorbitsletsel, uitgevoerd door een minimaal invasieve laterale benadering, en geïnspireerd door het werk van Zhang et. Al 18 Het doel van dit protocol is het inschakelen van een betrouwbaar lumbale schijfbeseringsmodel dat gemakkelijk reproduceerbaar is, een consequente schade veroorzaakt en is veilig en goed verdragen. Deze aanpak is goed geschikt voor onderzoekers die een mildere graad van lumbale intervertebrale schijfdegeneratie willen induceren dan die waargenomen bij traditionele chirurgische annulotomie (ongepubliceerde data) voor het onderzoeken naar tussenwervelschijfdegeneratie of regeneratieve therapieën. Deze bevindingen worden beschreven in een volgende publicatie.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

Het in dit manuscript gedetailleerde protocol volgt de richtlijnen voor dierenwelzijn van de Monash Universiteit Animal Ethics. Dierethiek goedkeuring voor dit protocol is verleend door Monash University Animal Ethics. Etiek goedkeuringsnummer: MMCA / 2014/55

1. Schapenvoorbereiding

OPMERKING: Ouden van twee tot vier jaar werden gebruikt.

  1. Snel schaap voor 18 uur voor verdoving. Geef dieren toegang tot water tot 6-12 uur voor gebruik 19 .
  2. Sedate dieren door intraveneuze injectie van medetomidine hydrochloride (0,015-0,020 mg / kg) om de overdracht naar de operationele suite te vergemakkelijken.
    OPMERKING: Het medetomidine hydrochloride dient ter vermindering van de dierspanning en de agitatie in verband met de scheiding van andere dieren voor overdracht naar de operationele suite.
  3. Injecteer thiopenton (10-13 ml / kg) voor inductie van anesthesie bij aankomst naar de operatie suite.
  4. Administreer profylactische intraVeneuze antibiotica (amoxicilline 1 g IV) onmiddellijk na de thiopentoninjectie.
  5. Intubate schaap met behulp van een endotracheale buis 20 van grootte 7,5-9 mm (inwendige diameter).
  6. Anesthesie onderhouden met inhalatie van isofluraan (2-3%) in 100% zuurstof bij een stromingssnelheid van 2 L / min. Bevestig een pulsoximeter aan het schapenbeen.
  7. Volg de vitale tekenen van de schaap nauwlettend (hartslag, ademhalingssnelheid en zuurstofverzadiging via pulsoximeter en waarneming) en het bewustzijnsniveau.
    OPMERKING: Indicatoren van lichte anesthesie, zoals spontane kauwen, actieve regurgitatie en spontane bewegingen, dienen de anesthesie te verhogen. Rode vlagtekens die aanduidend zijn van dringende verlichting van verdoving omvatten ademhalingscompromie en ernstige bradycardie. Rotatie van het oog is niet een consistente indicator van diepte van verdoving bij schapen 19 .

2. Schijfniveau en incisie

  1. Verzamel de sDringende gereedschappen die nodig zijn voor deze procedure: veterinaire knipsels, 20 ml luer-lock spuit, 21G IV Naald, # 4 scalpel handvat, # 22 scalpel bladen, Gillies weefselpincet, Metzenbaum gebogen dissecterende schaar, Deaver retractor, Hohmann retractorblad, 3,5 mm Brad Punt boorpunt, boorstop stop, boren, autoclaveerbare veterinaire boortas, naaldhouder, 2-0 absorbeerbare synthetische gevlochten hechtingen, 3-0 absorbeerbare synthetische gevlochten hechting en Mayo suture schaar.
  2. Bereid de operationele suite voor. Maak de werktafel en de instrumentstand schoon met 70% ethanol. Autoclaaf alle chirurgische instrumenten voorafgaand aan de operatie. Voer de pre-operatieve verdoving uit.
  3. Plaats de schaap op de werktafel in de rechter zijdelingse positie.
  4. Met behulp van elektronische knippers scheer het gebied superieur door de onderste ribben, inferiorly door het iliac bot, scherp door de contralaterale lumbale transversale processen en ongeveer 10 cm lateraal naar de ipsilaterale lumbale transversale processen.
  5. Palpate de iliac kam, lumbale transversale processen (L1-6) en costo-vertebrale hoek voor de landmarks voor chirurgische incisie site. Merk deze landmarks met een steriele pen.
  6. Bereid de laterale buik door desinfectie met chloorhexidine en alcohol-jodide antiseptische was.
  7. Let op de standaard chirurgische aseptische technieken gedurende de operatie. Het chirurgische team scoort voor de operatie. Plaats een steriele geventreerde vierkante draperie over de chirurgische plaats en een grote steriele vierkante draperie op de overheadtafel.
    1. Steriliseer alle items die vóór de operatie binnen de operatieve plaats moeten worden gebruikt. Monitor de steriliteit van de chirurgische plaats gedurende de hele operatie. Zorg ervoor dat alle items die in het steriele veld zijn ingevoerd steriel zijn en steriel worden overgedragen.
  8. Gebruik chirurgische loupe vergroting en een koplamp om visualisatie tijdens de chirurgische procedure te vergemakkelijken.
  9. Maak een longitudinale incisieMet behulp van het # 22 scalpelblad bevestigd aan het # 4 scalpel handvat parallel aan en 1 cm voorste van een tot twee lumbale transversale processen boven en onder de intervertebrale schijf niveaus van belang.
    OPMERKING: Meer informatie over incisieplanning vindt u in de discussie.
  10. Gebruik de monopolaire diathermie om het onderliggende subcutane weefsel en het laterale aspect van de buikwandmuskulatuur te verdelen; Direct de dissectie naar de uiteinden van de lumbale transversale processen boven en onder de intervertebrale schijven van belang.
  11. Verdeel de thoracolumbar fascia longitudinaal bij de bevestiging ervan aan de transversale processen.
  12. Visualiseer en behoud de onderliggende kwadratus lumborum , psoas spieren en de traverserende neurovasculaire bundels.
  13. Handhaving van hemostase via de procedure met behulp van diatermie.
  14. Veeg de vingers tussen het vlak van de peritoneum en de posterior buikwandmuskulatuur bij de blootgestelde intervertebrale diSc niveaus om digitale stompe dissectie uit te voeren.
  15. Zet de quadratus lumborum en psoas spieren terug met een Deaver-retractor, om de intervertebrale schijven verder bloot te stellen.
  16. Palpate voor de concave intervertebrale lichamen en de convexe intervertebrale schijven.
  17. Plaats de retractors direct over de schijven en zorg ervoor dat de lumbale vaten niet beschadigd raken.
  18. Met behulp van chirurgische loupe vergroting met een koplamp, identificeer de lumbale vaten die zich ongeveer 1 cm caudale bevinden aan de inferieure eindplaat.
  19. Voer een intraoperatieve laterale röntgen uit om het schijfniveau te bevestigen. 21
    Opmerking: Radiograph instellingen: 47kV; 4 mAs 21
  20. Afhankelijk van de gewenste discsniveaus, laat de intervertebrale schijf blootstellen door de omliggende structuren en bijlagen als hieronder te scheiden.
    1. Voor niveaus L3 / 4 en hoger, veeg de gespierde bijlagen over de diSc met behulp van digitale stompe dissecties.
    2. Voor niveaus L4 / 5 en onder, verdeel de dikker tendense spierhulpstukken over de schijf door middel van bipolaire diathermie en schaar.
      OPMERKING: L6 / S1-schijf kan moeilijk worden toegankelijk door obstructie door de iliac-kam. Als toegang niet via de laterale aanpak kan worden bereikt, kan een anterior benadering worden gebruikt.

3. Borrelschade boorgeven

OPMERKING: Pre-operatieve planning omvat de toewijzing van letsels / behandelingsniveaus en controle niveaus. Meer informatie over de toewijzing van de niveaus is te vinden in de discussie.

  1. Definieer het ingangspunt van de boorbit door de linkerzij- en voorste ledematen van de intervertebrale schijf in acht te nemen.
    OPMERKING: Het ingangspunt is gelegen in het midden van dit linker anterolaterale kwadrant (gedefinieerd door de voorste en laterale uiteinden van de schijf). Het boorpunt wordt bij dit ingangspunt ingevoegd met een baan gerichtNaar het midden van de intervertebrale schijven en licht iets krans naar loodrecht gericht.
  2. Breng een Brad-Point Boor-bit in de machineboor. Zorg ervoor dat de diameter van het boorpunt iets minder is dan de tussenwervelschijfhoogte dwz ~ 3,5 mm voor de lumbale tussenwervelschijf in 60-70 kg schapen.
    1. Breng een boorstop aan om een ​​onbeschermde boorlengte van ongeveer de helft van de lumbale tussenwervelschijf te geven, dwz ~ 12 mm voor lumbale tussenwervelschijven in 60-70 kg schapen.
  3. Breng het boorstuk aan op het ingangspunt en steek het in een baan licht kraniaal naar het midden van de intervertebrale schijf. De kleine kraniale angulatie is om het risico op endplate letsel te minimaliseren.
  4. Voorzichtig de boorbit langzaam in de intervertebrale schijf met de boor op lage vermogen gedurende 1 s. Pas het traject op een lichte kraniale of caudale manier aan als er te veel weerstand wordt aangetroffen
    OPMERKING: ZulkBuitensporige weerstand geeft waarschijnlijk contact met de eindplaat aan.

4. Sluiting

  1. Zodra hemostase is bereikt, irrigeren de wond met Ringers 'oplossing.
  2. Doe een gelaagde sluiting, bij voorkeur met 2-0 absorbeerbare synthetische gevlochten hechtingen aan de laterale buikwandweefsels en continue 3-0 onontdekte absorbeerbare synthetische gevlochten subcuticulaire hechting aan de huid.

5. Post-operatief management

  1. Plaats een fentanyl transdermale pleister (75 μg / u) in het inguinsgebied voor post-chirurgische analgesie gedurende 3 dagen.
  2. Gebruik bovendien intraveneuze buprenorfine (0,005-0,01 mg / kg) voor aanvullende analgesie indien nodig.
  3. Stop de inhalatie-anesthetica. Wanneer spontane ademhaling optreedt, verwijder de endotracheale buis.
  4. Laat het dier in constante observatie in een vasthoudkooi herstellen.
    OPMERKING: Het dier mag niet onbeheerd blijven totdat het voldoende conscio heeft behaaldBruikbaarheid om sternale recumbency te behouden.
  5. Zodra het dier volledig alert en sta is, voer het voedsel en water opnieuw in. Zodra het volledig is hersteld, geef het dier terug naar de operatieve faciliteit die pen met andere dieren houdt.
  6. Controleer 24 uur lang en blijf de observatie gedurende een week volgen. Monitor voor bewijs van post-chirurgische pijn of nood.
    OPMERKING: Postoperatieve transdermale fentanyl patch die gedurende drie dagen wordt toegepast, moet voldoende analgesie bieden. Aanvullende pijnstillende eisen zouden de beoordeling van dieren moeten veroorzaken.
  7. Voer het schaap normaal en laat het schaap zonder beperking normale activiteiten uitvoeren. Let op het schaap voor elk bewijs van neurologisch tekort, zoals lameness.
    OPMERKING: Het door de boorbeschadigingsmethode veroorzaakte intervertebrale schijffout is aan het anterolaterale aspect van de schijf en de schadediepte wordt beperkt door de boorbalk stop naar de middenkern. Aangezien de neurale elementen posterior / posterolateraal zijn op de intervertebrale schijf,Het risico op neurale compromissen die secundair zijn tegen de symptomatische nucleus pulposus is afgelegen. Dit anatomische karakteristiek van het model voorkomt het gebruik van neurologisch onderzoek om de degeneratie van intervertebrale schijven te onderscheiden met en zonder nucleus pulposus herniatie.
  8. Keer het schaap terug naar de universiteitsboerderij om af te wachten aan euthanasie en necropsy aan het einde van de experimentele periode.

6. Euthanasie

  1. Voer schapen-euthanasie uit bij een passend tijdsinterval na de boorbreking tussen de wervelschijf.
  2. Spuit intraveneus pentobarbitonnatrium (> 100 mg / kg) voor euthanasie.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

Pre-operatief, schaap onderging baseline 3T magnetische resonantiebeeldvorming (MRI) voor de beoordeling van de onderliggende intervertebrale schijfmorfologie en degeneratie. Schapen ondergaan extra intra-operatieve laterale radiografie voor bevestiging van intervertebrale schijfniveau en berekening van schijfhoogte-index. Een pre-operatieve sagittale vliegtuigschijf van 3T MRI en een intraoperatieve röntgenfoto worden getoond in figuur 1 .

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Deze minimaal invasieve laterale toegang benadering is efficiënt en veilig zonder postoperatieve breuk, buikwondontsteking of infectie waargenomen in deze serie. Het gebruik van het boorbeenbeschadigingsmodel met een diepte-stop biedt een reproduceerbare methode om een ​​consistent intervertebrale schijfbeschadiging van bekende dimensie te veroorzaken ( dwz een 3,5 mm diameter x 12 mm diepteverwonding in deze studie). In onze ervaring produceert deze methode een minder ernstige mate van degeneratie van de schij...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs verklaren dat ze geen concurrerende financiële belangen hebben om te onthullen.

Dankbetuigingen

Dr. Chris Daly is de ontvanger van de Stichting voor Chirurgie Richard Jepson Research Scholarship. De auteurs bedanken dr. Anne Gibbon, dr. Dong Zhang en het personeel van Monash Animal Services, Monash University voor hun hulp bij dierenchirurgie en zorg.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Medetomidine Hydrochloride (10 mL Injectie)Therapon/ZoetisPFIDOM10Meerdere leveranciers: Zoetis/Ilium
ThiopentoneTroyTriothiopentoneMeerdere leveranciers: Neon Laboratories, Jagsonphal Pharmaceuticals
Isoflurane (2 - 3 % in zuurstof)BaxterAHN3636Meerdere leveranciers: Baxter/VetOne
Amoxicillin parenteralGlaxoSmithKlineJO1CA04Meerdere leveranciers: GlaxoSmithKline/Merck
Bupivacaine (0.5% Injectie 20 mL)Pfizer005BUP001Meerdere leveranciers: Pfizer/AstraZeneca
PVD Jodium OplossingJurox61330Meerdere leveranciers: Jurox/Orion
Chlorhexidine 5%w/vJuroxChlorhex C 5L (SCRUB)Meerdere leveranciers: Jurox/Pfizer
Transdermaal Fental Patch (75 μg/h)Janssen-CilagS8-Dur7.5Meerdere leveranciers: Sandoz
Buprenorfine ivJurox504410Meerdere leveranciers: LGM Pharma
Atipamezole (Antisedan 0.06 mg/kg - 0.08 mg/kg)ZoetisPFIANT10Meerdere leveranciers: Ilium
Oster Golden A5 2-Speed ClippersOster078005-140-003Oster
20 mL luer lock spuitTerumo6SS+20LMeerdere leveranciers: Medshop Australia/Terumo
21 G IV naaldTerumoSG3-1225Meerdere leveranciers: Medshop Australia/Terumo
#4 scalpel handvatAustvetAD010/04Meerdere leveranciers: Austvet/SurgicalInstruments
#22 scalpel bladenAustvet
Gillies weefsel pincetAustvetAB430/15Meerdere leveranciers: Austvet/SurgicalInstruments
Metzenbaum gebogen dissectiescharenAustvetAC101/14Meerdere leveranciers: Austvet/SurgicalInstruments
Deaver retractorSurgical Instruments23.75.03Meerdere leveranciers: Surgical Instrument/Austvet
Hohmann retractorAustvetKA173/35Meerdere leveranciers: Austvet/SurgicalInstruments
Mayo hechtschaarAustvetAC911/14Meerdere leveranciers: Austvet/SurgicalInstruments
Naaldhouder 14 cmEliteMedical18-1030Meerdere leveranciers: EliteMedical/Austvet
CMT 3.5 mm Brad-Point BoorCarbatec516-035-51Meerdere leveranciers: Southeast Tool/Carbatec
Boorbit Stop 4 mmDrill Warehouse20121600Meerdere leveranciers: Amazon
Bosch 10.8 V Accu BoormachineGet Tools DirectGWB10.8V-LIBBMeerdere leveranciers: Bunnings/Get Tools Direct
Autoclaveerbare veterinaire boortasAustVetDRA043-AVAustVet
2-0 absorbeerbare synthetische gevlochten hechtdradenEthiconVCP335HEthicon
3-0 absorbeerbare synthetische gevlochten hechtdradenEthiconVCP232HEthicon
Siemens 3 Tesla Skyra Widebore MRISiemensN/ASiemens
9.4 Tesla Agilent (Varian) MRIAgilent TechnologiesN/AAgilent Technologies
Atomscope HF 200 A RadiografischeRadlink330003AMeerdere leveranciers: Radlink/DLC Australia
Veterinaire Puls OximeterDLC192500AMeerdere leveranciers: DLC Australi Pty Ltd/AustVet

Referenties

  1. Hoy, D., March, L., et al. The global burden of low back pain: estimates from the Global Burden of Disease 2010 study. Ann Rheum Dis. 73 (6), 968-974 (2014).
  2. Luoma, K., Riihimäki, H., Luukkonen, R., Raininko, R., Viikari-Juntura, E., Lammine, A. Low back pain in relation to lumbar disc degeneration. Spine. 25 (4), 487-492 (2000).
  3. Daly, C., Ghosh, P., Jenkin, G., Oehme, D., Goldschlager, T. A Review of Animal Models of Intervertebral Disc Degeneration: Pathophysiology, Regeneration, and Translation to the Clinic. BioMed Res Int. 2016 (3), 5952165(2016).
  4. Sahlman, J., Inkinen, R., et al. Premature vertebral endplate ossification and mild disc degeneration in mice after inactivation of one allele belonging to the Col2a1 gene for Type II collagen. Spine. 26 (23), 2558-2565 (2001).
  5. Melrose, J., Taylor, T., Ghosh, P., Holbert, C. Intervertebral disc reconstitution after chemonucleolysis with chymopapain is dependent on dosage: An experimental study in beagle dogs. Spine. 21 (1), (1996).
  6. Oehme, D., Goldschlager, T., Shimon, S., Wu, J. Radiological, Morphological, Histological and Biochemical Changes of Lumbar Discs in an Animal Model of Disc Degeneration Suitable for Evaluating the potential regenerative capacity of novel biological agents. J Tiss Sci Eng. , (2015).
  7. Platenberg, R. C., Hubbard, G. B., Ehler, W. J., Hixson, C. J. Spontaneous disc degeneration in the baboon model: magnetic resonance imaging and histopathologic correlation. J Med Primatol. 30 (5), 268-272 (2001).
  8. Iatridis, J. C., Mente, P. L., Stokes, I. A. F., Aronsson, D. D., Alini, M. Compression-Induced Changes in Intervertebral Disc Properties in a Rat Tail Model. Spine. 24 (10), 996(1999).
  9. Silberberg, R., Aufdermaur, M., Adler, J. H. Degeneration of the intervertebral disks and spondylosis in aging sand rats. Arch Pathol Lab Med. 103 (5), 231-235 (1979).
  10. Alini, M., Eisenstein, S. M., et al. Are animal models useful for studying human disc disorders/degeneration. Eur Spine J. 17 (1), 2-19 (2007).
  11. Lauerman, W. C., Platenberg, R. C., Cain, J. E., Deeney, V. F. Age-related disk degeneration: preliminary report of a naturally occurring baboon model. J Spinal Disord. 5 (2), 170-174 (1992).
  12. Platenberg, R. C., Hubbard, G. B., Ehler, W. J., Hixson, C. J. Spontaneous disc degeneration in the baboon model: magnetic resonance imaging and histopathologic correlation. J Med Primatol. 30 (5), 268-272 (2001).
  13. Nuckley, D. J., Kramer, P. A., Del Rosario,, Fabro, A., Baran, N., S,, Ching, R. P. Intervertebral disc degeneration in a naturally occurring primate model: radiographic and biomechanical evidence. J Orthop Res. 26 (9), 1283-1288 (2008).
  14. Wilke, H. J., Kettler, A., Claes, L. E. Are sheep spines a valid biomechanical model for human spines. Spine. 22 (20), 2365-2374 (1997).
  15. Sheng, S. -R., Wang, X. -Y., Xu, H. -Z., Zhu, G. -Q., Zhou, Y. -F. Anatomy of large animal spines and its comparison to the human spine: a systematic review. Eur Spine J. 19 (1), 46-56 (2010).
  16. Oehme, D., Goldschlager, T., et al. Lateral surgical approach to lumbar intervertebral discs in an ovine model. Scientific World J. 2012 (8), 873726(2012).
  17. Youssef, J. A., McAfee, P. C., et al. Minimally invasive surgery: lateral approach interbody fusion: results and review. Spine. 35 (Suppl 26), S302-S311 (2010).
  18. Zhang, Y., Drapeau, S., An, H. S., Markova, D., Lenart, B. A., Anderson, D. G. Histological features of the degenerating intervertebral disc in a goat disc-injury model. Spine. 36 (19), 1519-1527 (2011).
  19. White, K., Taylor, P. Anaesthesia in sheep. In Practice. 22 (3), 126-135 (2000).
  20. Dart, C. Suggestions for Anaesthesia & Analgesia in Sheep. , Available from: http://www.nslhd.health.nsw.gov.au/AboutUs/Research/Office/Documents/ACEC_Guideline_Anaesthesia_Analgesia_Sheep.pdf (2005).
  21. Kandziora, F., Pflugmacher, R., et al. Comparison between sheep and human cervical spines: an anatomic, radiographic, bone mineral density, and biomechanical study. Spine. 26 (9), 1028-1037 (2001).
  22. Oehme, D., Ghosh, P., et al. Mesenchymal progenitor cells combined with pentosan polysulfate mediating disc regeneration at the time of microdiscectomy: a preliminary study in an ovine model. J Neurosurg Spine. 20 (6), 657-669 (2014).
  23. Hunter, C. J., Matyas, J. R., Duncan, N. A. Cytomorphology of notochordal and chondrocytic cells from the nucleus pulposus: a species comparison. J Anat. 205 (5), 357-362 (2004).
  24. Hoogendoorn, R. J., Helder, M. N., Smit, T. H., Wuisman, P. Notochordal cells in mature caprine intervertebral discs. Eur Cells Mater. 10 (Suppl 3), (2005).
  25. Pohlmeyer, K. Zur vergleichenden Anatomie von Damtier, Schaf und Ziege: Osteologie und postnatale Osteogenese. , (1985).
  26. Pfirrmann, C. W., Metzdorf, A., Zanetti, M., Hodler, J., Boos, N. Magnetic resonance classification of lumbar intervertebral disc degeneration. Spine. 26 (17), 1873-1878 (2001).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Schijf van de lendenwervels bij schapenlaterale retroperitoneale benaderinglumbale wervelkolom van schapenchirurgisch letselmodelletsel aan de annulus fibrosusdefect van de nucleus pulposusMRI analysepostoperatief herstel

Gerelateerde artikelen