Methodenartikel

Zachte lithografische Procedure voor de productie van kunststof Microfluidic apparaten met weergave-poorten transparant voor zichtbaar en infrarood licht

DOI:

10.3791/55884

⸱

17 augustus 2017

 ,  ,  , 
1Mechanobiology Institute (MBI), National University of Singapore

In dit artikel

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Een protocol voor de fabrikatie van kunststof microfluidic apparaten met transparante weergave-poorten voor zichtbaar en infrarood licht beeldvorming wordt beschreven.

Samenvatting

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Infrarood (IR) spectro-microscopie van levende biologische monsters wordt belemmerd door de absorptie van water in het midden-IR-bereik en door het ontbreken van geschikte microfluidic apparaten. Hier, een protocol voor de fabrikatie van kunststof microfluidic apparaten wordt aangetoond, waar zachte lithografische technieken zijn gebruikt om te sluiten van transparante calciumfluoride (CaF2) weergave-poorten in verband met de observatie kamer (s). De methode is gebaseerd op een replica gieten aanpak, waar een Polydimethylsiloxaan (PDMS) mal is geproduceerd door middel van lithografische standaardprocedures en vervolgens gebruikt als sjabloon voor de productie van een kunststof apparaat. Het kunststof apparaat beschikt over ultraviolet/zichtbaar/infrarood (UV/Vis/IR) - transparante vensters van CaF,2 te voorzien van directe observatie met zichtbaar gemaakt en IR licht. De voordelen van de voorgestelde methode omvatten: een verminderde behoefte aan toegang tot een cleanroom micro-fabricage faciliteit, meerdere weergave-poorten, een gemakkelijke en veelzijdige verbinding met een externe pompsysteem via de plastic lichaam, flexibiliteit van het ontwerp, bv , open/gesloten kanalen configuratie, en de mogelijkheid geavanceerde functies zoals nanoporeuze membranen toe te voegen.

Inleiding

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fourier Transform Infrared Spectro-microscopie (FTIR) is uitgebreid gebruikt als een etiket-vrije en niet-invasieve beeldvormende techniek gedetailleerde chemische informatie van een monster te verstrekken. Hierdoor is de winning van biochemische informatie te bestuderen van de chemie van biologische monsters, met een minimum bedrag van voorbereiding omdat het absorptiespectrum van het specimen de intrinsieke vingerafdrukken van haar chemische samenstelling1 draagt , 2. onlangs, FTIR is steeds meer toegepast op de studie van de levende biologische monsters, bijvoorbeeld, cellen3. Water, dat het medium voor de levende cellen in de meeste gevallen is, blijkt echter een sterke absorptie in de regio Midden-IR. Zelfs als een dunne laag, kan haar aanwezigheid volledig overweldigen de belangrijke structurele informatie van de specimens.

Jarenlang, was de gemeenschappelijke benadering vaststelling of drogen van de monsters om volledig uitsluiten het water absorptie signaal in het spectrum. Echter, deze aanpak staat geen voor real-time metingen op levende cellen, die is van essentieel belang om te bestuderen van de verandering van hun chemische samenstelling en cellulaire processen met de tijd. Een manier voor het verkrijgen van betrouwbare absorptiespectra van levende biologische monsters, is het beperken van de totale optische weglengte in het medium van de IR-straal tot minder dan 10 µm4.

Een gevestigde aanpak in levende cel experimenten geweest tot nu toe verzwakte totale reflectie (ATR)-FTIR imaging, waardoor metingen onafhankelijk van de dikte van het monster, waardoor cellen worden volgehouden in een dikkere laag van waterig medium. Metingen van de monsters wordt echter van het oppervlak van de ATR kristal5de kleine diepte van de penetratie van de vluchtig Golf beperkt tot alleen de eerste paar microns.

U kunt ook de water absorptie beperking heeft omzeild met de opkomst van verschillende systemen van de microfluidic, die zijn over het algemeen ingedeeld in twee grote groepen: open kanaal (waar één van de vloeistof oppervlakken wordt blootgesteld aan de atmosfeer) en gesloten kanaal (waar twee IR-transparante vensters worden gescheiden door een spacer met een gedefinieerde dikte).

Loutherback et al. ontwikkelde een open-kanaal membraan-apparaat waarmee lange termijn IR continumetingen van levende cellen voor maximaal 7 dagen-6. De methode vereist hoge luchtvochtigheid in de omgeving om te voorkomen dat de verdamping van het medium van het celoppervlak. Het systeem werkt het best met cellen die natuurlijk bij air-liquide interfaces, zoals epitheliale weefsels van de huid, longen, en ogen of microbiële biofilms7 groeien.

Een gesloten-kanaal configuratie beoogt te creëren van een uniform, dunne laag tussen twee parallelle IR-transparante vensters, waar cellen worden bijgehouden in hun waterige media. De dikte van deze holte is zodanig dat het water absorptie signaal hieronder verzadiging is. Water achtergrond kan vervolgens worden afgetrokken om te verkrijgen van de juiste monster spectra. Allermeest naar de gesloten-kanaal methoden maken gebruik van een plastic spacer scheiden van de twee vensters te vormen van een afneembare vloeibare kamer3,8,9. Een voordeel van deze methode is dat het niet nodig microfabrication; structuren die meer complex dan een meetkamer met in - en uitgaand - let kanalen zijn echter moeilijk te realiseren in de dunne spacer. Er is ook een probleem met de reproduceerbaarheid van de weglengte tussen IR metingen als gevolg van de afhankelijkheid van de mechanische klemmen. Met het oog op een meer nauwkeurige controle van de afstand voor een meer betrouwbare spectrum verwerving, optische lithografie methoden doorgevoerd naar patroon fotoresist bovenop het IR-substraat te definiëren van de spacer9,10 , 11 , 12. Hoewel dit het mogelijk voor meer complexe structuren worden gedefinieerd in de spacer maakt, de methode vereist toegang tot een microfabrication faciliteit voor de productie van het patroon op elke ondergrond.

In deze paper presenteren wij een eenvoudige productie-techniek van een IR-compatibele microfluidic apparaat, met als doel om de productie kosten en de eis van de toegang tot een microfabrication faciliteit. De methode hier gepresenteerd (Zie Figuur 1) gebruikt een gevestigde proces dat bekend staat als zachte lithografie. In dit geval zijn twee mallen vereist. De primaire mal bestaat uit een 4-inch silicium wafer met behulp van een standaard UV lithografie proces. De secundaire schimmel is de replica gemaakt van PDMS, die heeft een omgekeerde polariteit van het patroon in de primaire mal van silicium en fungeert als de meester mal voor latere apparaat fabricage.

Het apparaat heeft twee afzonderlijke lagen: een eerste laag met de lay-out voor een microfluidic (die in de voorgelegde geval bestaat uit het microfluidic-kanaal en in-laat/out-let een kamer observatie met een viewport CaF2 ), en een tweede laag met een vlakke ondergrond () die bestaat uit alleen een CaF2 viewport).

Hier is een UV-uithardende optische lijm, Norland optische lijm 73 (NOA73, afgekort als NOA voortaan), gebruikt om te vormen de belangrijkste kunststof behuizing van het apparaat. Er zijn verschillende voordelen van het gebruik van deze optische lijm: lage productie kosten, gemak van connectiviteit met externe systemen, goede optische transparantie, lage viscositeit en bovenal biocompatibiliteit13. CaF2 is een geschikte keuze als de viewport als gevolg van de biocompatibiliteit en een uitstekende IR-transparantie14.

Met deze nieuwe aanpak is toegang tot een microfabrication faciliteit strikt alleen vereist voor de fabricage van de primaire schimmel. Latere fabricage processen voor het kunststof microfluidic-apparaat kunnen worden uitgevoerd in een laboratorium dat uitgerust met een UV-verlichting-bron.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. voorbereiding van silicium primaire schimmel

Opmerking: een photomask is vereist voor de voorbereiding van de primaire schimmel. De photomask kan worden gekocht van onafhankelijke leveranciers of in-house vervaardigd door middel van standaard optische masker fabricage procedures. Een photomask met lichte veld polariteit wordt gebruikt in dit geval ( Figuur 2 een).

  1. Patroon definitie
    1. Spin jas een 4 inch silicium wafer met SU-8 3010 negatieve fotoresist op 2,300 tpm voor 30 s.
    2. Soft-bak de fotoresist op een hete plaat bij 65 ° C gedurende 2 min en vervolgens bij 95 ° C gedurende 8 minuten
    3. Bloot de fotoresist aan UV-licht (i-lijn, 365 nm) via de photomask onder het masker aligner voor een totale energie dosis van 100-120 mJ/cm 2; de hard contact modus heeft de voorkeur om een betere resolutie.
    4. Verwijderen van de wafer en toepassen van een post blootstelling bak bij 65 ° C gedurende 1 min en vervolgens bij 95 ° C gedurende 2 minuten
    5. Ontwikkelen de fotoresist met behulp van een SU-8 ontwikkelaar bij kamertemperatuur, dan spoel met isopropyl alcohol, en zachtjes blazen droog met stikstof; de dikte gemeten patroon moet 10 µm en hieronder. Zie Figuur 2, b voor het beeld van de werkelijke siliconen mal.
  2. Silanization van silicium schimmel
    1. behandelen de siliconen mal met zuurstof plasma op 60 W voor 30 s met 20 sccm van zuurstof stroom. De kamer druk ingesteld op 1-10 mbar tijdens de.
    2. Plaats van de schimmel in een vacuüm pot met 50 µL van silane en laat de pot in de vacuümtoestand (1-10 mbar) voor ten minste 2 h.
      Opmerking: Het silanization-proces maakt een hydrophobic oppervlakte coating waardoor PDMS vastplakken aan de schimmel 15. Opmerking dat het primaire schimmel ook kan worden vervaardigd met behulp van een alternatieve methode, waarbij droge ETS van het silicium. In dit geval de photomask zullen van tegenovergestelde polariteit (donkere gebied), en de definitie van de patroon in stap 1.1 zal gebruik maken van een positieve fotoresist.

2. Voorbereiding van PDMS secundaire schimmel

  1. PDMS mengen
    1. Meng de PDMS elastomeer en genezen agent, 10:1; het totale bedrag is zodanig dat de resulterende PDMS dikte ongeveer 1 tot 1,5 mm is.
    2. Na homogenisatie van het mengsel, ontgas het mengsel door het verlaten van het in een vacuüm pot in de vacuümtoestand (1-10 mbar) gedurende ongeveer 15 minuten of zolang er niet geen zichtbare bellen zijn; dit is het verwijderen van eventuele ingesloten lucht in het mengsel.
  2. Schimmel replicatie
    1. giet het PDMS mengsel op de siliconen mal vervaardigd in stap 1 en ontgas het mengsel te verwijderen van elk ingesloten lucht met dezelfde instellingen als in stap 2.1.2. Warmte bij 70 ° C gedurende 2 uur op een hete plaat om te genezen van het mengsel.
    2. Verwijder de uitgeharde PDMS uit de hete plaat en laat het afkoelen tot kamertemperatuur. Met een scheermesje, snijden de PDMS langs de randen van de mal silicon.
    3. Met een pincet, knijp een hoek van de snede PDMS en zorgvuldig schil de PDMS replica uit de siliconen mal; het resulterende patroon van de microfluidic op deze secundaire mal is een uitsteeksel, oftewel de tegenovergestelde polariteit van de primaire schimmel ( Figuur 2 c).
  3. Silanization van de PDMS replica (hetzelfde als in stap 1.2)
    1. behandelen de PDMS schimmel met zuurstof plasma op 60 W voor 30 s met 20 sccm van zuurstof stroom. De kamer druk ingesteld op 1-10 mbar tijdens de.
    2. Plaats de schimmel in een vacuüm jar met 50 µL van silane en laat de pot in de vacuümtoestand (1-10 mbar) gedurende ten minste 2 h.

3. Voorbereiding van PDMS sjablonen

Opmerking: op de standaardisering van de vorm en grootte van de uiteindelijke apparaten en te vergemakkelijken van de uitlijning van de hoofdlijnen in de twee helften, twee aparte PDMS sjablonen werden gebruikt, richtsnoeren vaststellen waarin de geometrie van het apparaat, de plaatsing van het transparante venster en de in - en uitgaand - let verbindingen. De eerste PDMS sjabloon helpt de fabricage van de patroon helft van het apparaat, terwijl de tweede helpt te verlichten de fabricage van de platte helft van het apparaat.

  1. De ontwerpsjablonen met behulp van een computer aided design (CAD) software. Figuur 3 een toont de lay-out en de afmetingen van de sjabloon naar het fabriceren van de patroon helft van het apparaat. Om de platte helft van het apparaat, de 1.5 mm diameter gaatjes te verwijderen uit het ontwerp.
  2. Verwerven de sjablonen van een externe provider of via een interne mechanische werkplaats, indien beschikbaar.
    Opmerking: Acryl werd gebruikt als de sjabloon materiaal als gevolg van fabricage gebruiksgemak en lage kosten haalbaar in een standaard workshop. Er zijn alternatieven, zoals 3D printen.
  3. Meng de PDMS elastomeer en genezen agent 10:1; Zorg ervoor dat een voldoende hoeveelheid PDMS te volledig dompelen de sjablonen bereiden.
  4. Na homogenisatie van het mengsel, ontgas het mengsel door het verlaten van het in een vacuüm pot in de vacuümtoestand (1-10 mbar) gedurende ongeveer 15 minuten of zolang er geen zichtbare bellen (indien dit wordt verderop) niet zijn; dit is het verwijderen van eventuele ingesloten lucht in het mengsel.
  5. Giet het PDMS mengsel op de acryl sjablonen tot hun bovenste oppervlak is ongeveer 1 mm onder het vloeistofoppervlak ondergedompeld. Ontgas het PDMS weer te verwijderen van elk ingesloten lucht met dezelfde instellingen als in 3.4. Verwarm dit bij 60 ° C gedurende 2 uur op een geëgaliseerd verwarmingsplaat om te genezen van het mengsel.
  6. Verwijder de uitgeharde PDMS uit de hete plaat en laat het afkoelen tot kamertemperatuur. Met een scheermesje, snijden de PDMS langs de randen van de acryl sjablonen.
  7. Met een pincet, een hoek van de snede PDMS knijpen en zorgvuldig schil de PDMS uit de acryl sjablonen.
    Opmerking: Figuur 3 b toont de lay-out en de afmetingen van de replica van de PDMS gebruikt voor het fabriceren van de patroon helft van het apparaat.
  8. Voor te bereiden de tweede replica van het PDMS fabriceren van de flat de helft van het apparaat door herhaalt u stap 3.3 tot en met 3.7 maar met behulp van de acryl sjabloon zonder de gaten van de diameter van 1.5 mm.

4. Microfluidic apparaat fabricage

  1. fabricage van de patroon helft van het apparaat (dat wil zeggen, met de indeling van het apparaat)
    1. traktatie het CaF 2 venster met zuurstof plasma op 60 W voor 30 s met 20 sccm van zuurstof stroom. Dit wordt gedaan om verbetering van de informatiestroom van NOA tijdens de volgende fabricage.
      Opmerking: Deze stap is niet verplicht.
    2. Plaats zorgvuldig de eerste PDMS sjabloon (één met de 1.5 mm diameter pijlers) op een vlakke ondergrond, bijvoorbeeld, een ademkalk plaat ( Figuur 4 een). Plaats een CaF 2 venster gecentreerd bovenop de PDMS stekker en druk zachtjes op het venster zodanig dat het in goed contact met de stekker ( Figuur 4 b).
    3. Nemen de PDMS mal gemaakt in stap 2 en plaats een dunne UV-transparante plaat (in dit geval, een kwarts plaat, 500 µm dik en 1,5 cm x 1.5 cm groot) op de achterkant van de schimmel, afgestemd op de locatie van de centrale kamer ( Figuur 4 c). Zorg ervoor dat de plaat kwarts in goed contact met de PDMS mal is.
      Opmerking: The kwarts plaat voorkomt dat ongewenste inzake de mal gemakkelijk komen in contact met het CaF 2 venster.
    4. Voorzichtig plaats deze PDMS schimmel gezicht naar beneden richting het CaF 2 venster met de fluidic kamer uitgelijnd op het midden van de CaF 2 venster. Zorg ervoor dat alle elementen (sjabloon-, schimmel- en venster) in goed contact zijn en uitgelijnd ( Figuur 4 c-4 d).
    5. Geleidelijk afzien van NOA druppels op de in-laat van de PDMS sjabloon en laat het langzaam vullen van de spouw. Zodra de hars in contact met de rand van het venster komt, de capillaire stroom zal de leemte dunne (~ 10 µm) tussen de PDMS schimmel en CaF 2 venster ( Figuur 4 e-4f).
    6. Nadat de spouw volledig is gevuld, genezen de NOA door blootstelling aan UV-licht (bijvoorbeeld met een UV-LED blootstelling systeem, Figuur 4 g).
      Opmerking: De belichtingstijd kan variëren dienovereenkomstig met de energie van de UV-bron. Het UV-LED blootstelling systeem, waarmee een vermogensdichtheid van 24 mW/cm 2, vereist ongeveer 90 s op 100% vermogen en voortdurende blootstelling modus.
    7. Verwijder voorzichtig de dunne kwarts plaat vanaf de achterkant van de schimmel PDMS en vervolgens schil voorzichtig de mal PDMS vanaf de bovenkant van de NOA-laag ( Figuur 4 h). Tot slot, het verwijderen van de NOA laag uit de PDMS-sjabloon ( Figuur 4 ik).
      Opmerking: De resulterende indeling van het apparaat op de uitgeharde NOA hadden de zelfde polariteit van het patroon in de primaire siliconen mal.
  2. Fabricage van de platte helft van het apparaat (dat wil zeggen, zonder apparaat lay-out)
    1. behandelen het CaF 2 venster met zuurstof plasma op 60 W voor 30 s met 20 sccm van zuurstof stroom.
      Opmerking: Deze stap is niet verplicht.
    2. Plaats zorgvuldig de tweede sjabloon voor PDMS (een zonder de pijlers van 1,5 mm diameter) op een vlakke ondergrond, bijvoorbeeld, een ademkalk plate. Plaats een CaF 2 venster gecentreerd bovenop de PDMS stekker en druk zachtjes op het venster zodanig dat het in goed contact met de stekker.
    3. Plaats een 1 mm dikke PDMS blad met 5 x 3,5 cm grootte op de top van de CaF 2 in het venster met het PDMS blad uitgelijnd met het middelpunt van de PDMS sjabloon. Zorg ervoor dat het PDMS blad in goed contact met de raam.
    4. Geleidelijk afzien van NOA druppels op de in-laat van de PDMS sjabloon en laat het langzaam vullen van de spouw.
    5. Nadat de spouw volledig is gevuld, genezen de NOA door blootstelling aan UV-licht (bijvoorbeeld met een UV-LED blootstelling systeem).
      Opmerking: De belichtingstijd kan variëren dienovereenkomstig met de UV-energiebron. Met de UV-LED blootstelling systeem, waarmee een vermogensdichtheid van 24 mW/cm 2, vereist dit ongeveer 50 s op 100% vermogen en voortdurende blootstelling modus.
    6. Peel off van het PDMS blad vanaf de bovenkant van de NOA-laag en verwijder voorzichtig de uitgeharde laag NOA uit de sjabloon PDMS.
  3. Verlijmen van de twee helften van het apparaat
    1. Uitlijnen van de twee helften van het apparaat zodanig dat beide CaF 2 Vensters worden uitgelijnd. Zachtjes vinger-druk op beide helften op de hoek van de NOA lagen zodanig dat de positie van de twee helften worden opgelost.
    2. Knippen van twee ronde schijven uit een 1 mm dikke PDMS blad met behulp van een 8 mm diameter perforatie ( Figuur 5 een).
    3. Knip twee rechthoeken met dezelfde grootte van het apparaat (4 cm x 2,5 cm) van een 1 mm dikke PDMS blad. Op beide PDMS rechthoeken, gesneden openingen die overeenkomt met de kanalen en de in-laat/uitgaand-let van het apparaat.
      Opmerking: De voorgesneden openingen in de PDMS rechthoeken zijn bedoeld om te verhinderen dat de kanalen instort tijdens dringende.
    4. Stack in de volgende volgorde vanaf de onderkant: één PDMS rechthoek met voorgesneden openingen, één PDMS disc (in contact met het bodemvenster, gesneden in stap 4.3.2), de twee vinger geperste helften van het apparaat, de tweede PDMS schijf (zittend op het bovenste venster), en tot slot de tweede PDMS rechthoek met voorgesneden openingen ( Figuur 5 b).
    5. Plaats van deze vergadering in de vacuüm druk op setup, zodanig dat het wordt ingeklemd tussen 2 platen en verzegel de plastic zak ( Figuur 5 c). Zet de vacuümpomp en evacueren van de vergadering. Laat de vacuümpomp bereiken de basis druk of het vacuüm voor ten minste 10 min. van toepassing
      Opmerking: De basis druk bereikt hangt af van de vacuümpomp gebruikt en de kwaliteit voor het verzegelen van de kunststofzak.
    6. De geëvacueerd vergadering UV-met een breed-band Hg gas lamp 270 W voor 15 min. Turn off the vacuümpomp en laat de vergadering langzaam aan de atmosferische druk vent voor het verwijderen van het laatste apparaat van de vergadering bloot.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Figuur 6 presenteert de spectra doorlating van een gloednieuwe CaF2 in het venster de patroon helft van het apparaat, en de complete inrichting. Alle drie spectra vertonen uitstekende transparantie tot mid IR met doorlating groter zijn dan 80%. Het interferentiepatroon zichtbaar in het spectrum van het volledige apparaat (gele kromme in de afbeelding) wordt veroorzaakt door de luchtopening in het bereik van 9-10 µm tussen de twee vensters. Deze spe...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Om te beoordelen en optimaliseren van het protocol van de fabricage, gebruikten we een eenvoudige lay-out voor het patroon van de microfluidic met een grote rechthoekige kamer (5 x 2,5 mm grootte) in het centrum, twee kleine rechthoekige kamers (5,5 x 0,75 mm grootte) gescheiden van de belangrijkste circuit op het bovenste en onderste zijden, en 300 µm breed in-laat/uitgaand-let kanalen. De centrale kamer wordt gebruikt voor het zaaien en observatie van de cellen, terwijl de twee gescheiden kleinere kamers worden gebruik...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

De auteurs erkennen dankbaar MBI financiële steun.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

```html

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Chemisch
Trichloro(1H,1H,2H,2H-perfluorooctyl)silaan 97%Sigma Aldrich448931-10G
Sylgard 184 Siliconen Elastomer KitDow CorningPolydimethylsiloxaan of kortweg, PDMS
Norland Optical Adhesive 73Norland Products Inc.7304
SU8 3010 fotoresistMicroChemY311060
SU8 ontwikkelaarMicroChemY020100
Materiaal
Silicion wafer, 4 inch, prime gradeBonda Technology Pte Ltd
CaF2 IR-grade ramenCrystran, UKCAFP10-110 mm diameter, 1 mm dikte
Acrylic templatesOp maat gemaakt
Utrusting
UV-KUB 2 (UV LED belichtingssysteem)KLOEEmissiespectrum 365nm ± 5nm
Newport UV lampNewportModel 6690250-500 Watt Hg booglaser
CEE Spin coaterBrewer ScienceModel 200x
MJB4 mask alignerSUSS MicroTec
Precisie digitale hotplateHarry Gestigkeit GmbH2860SR
Plasma Surface TechnologyDiener Electronic GmbH + Co. KGVoor O2 plasma behandeling
IDP-3 Dry Scroll VacuümpompAgilent TechnologiesUiteindelijke druk 3,3 x 10-1 mbar
Bruker IFS 66v/s FTIR SpectrometerBruker
```

Referenties

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Holman, H. -Y. N., et al. Synchrotron infrared spectromicroscopy as a novel bioanalytical microprobe for individual living cells: cytotoxicity considerations. BIOMEDO. 7 (3), 417-424 (2002).
  2. Liu, K. Z., Xu, M., Scott, D. A. Biomolecular characterisation of leucocytes by infrared spectroscopy. Br J Haematol. 136 (5), 713-722 (2007).
  3. Moss, D. A., Keese, M., Pepperkok, R. IR microspectroscopy of live cells. Vibrational Spectroscopy. 38 (1-2), 185-191 (2005).
  4. Rahmelow, K., Hubner, W. Infrared Spectroscopy in Aqueous Solution: Difficulties and Accuracy of Water Subtraction. Appl Spectrosc. 51 (2), 160-170 (1997).
  5. Kazarian, S. G., Chan, K. L. ATR-FTIR spectroscopic imaging: recent advances and applications to biological systems. Analyst. 138 (7), 1940-1951 (2013).
  6. Loutherback, K., Chen, L., Holman, H. Y. Open-channel microfluidic membrane device for long-term FT-IR spectromicroscopy of live adherent cells. Anal Chem. 87 (9), 4601-4606 (2015).
  7. Loutherback, K., Birarda, G., Chen, L., Holman, H. -Y. Microfluidic approaches to synchrotron radiation-based Fourier transform infrared (SR-FTIR) spectral microscopy of living biosystems. Protein Pept Lett. 23 (3), 273-282 (2016).
  8. Dousseau, F., Therrien, M., Pézolet, M. On the Spectral Subtraction of Water from the FT-IR Spectra of Aqueous Solutions of Proteins. Appl Spectrosc. 43 (3), 538-542 (1989).
  9. Tobin, M. J., et al. FTIR spectroscopy of single live cells in aqueous media by synchrotron IR microscopy using microfabricated sample holders. Vibrational Spectroscopy. 53 (1), 34-38 (2010).
  10. Birarda, G., et al. Infrared microspectroscopy of biochemical response of living cells in microfabricated devices. Vibrational Spectroscopy. 53 (1), 6-11 (2010).
  11. Vaccari, L., Birarda, G., Businaro, L., Pacor, S., Grenci, G. Infrared microspectroscopy of live cells in microfluidic devices (MD-IRMS): toward a powerful label-free cell-based assay. Anal Chem. 84 (11), 4768-4775 (2012).
  12. Mitri, E., et al. SU-8 bonding protocol for the fabrication of microfluidic devices dedicated to FTIR microspectroscopy of live cells. Lab Chip. 14 (1), 210-218 (2014).
  13. Birarda, G., et al. IR-Live: fabrication of a low-cost plastic microfluidic device for infrared spectromicroscopy of living cells. Lab Chip. 16 (9), 1644-1651 (2016).
  14. Wehbe, K., Filik, J., Frogley, M. D., Cinque, G. The effect of optical substrates on micro-FTIR analysis of single mammalian cells. Anal Bioanal Chem. 405 (4), 1311-1324 (2013).
  15. Helmut, S., et al. Controlled co-evaporation of silanes for nanoimprint stamps. Nanotechnology. 16 (5), 171(2005).
  16. Loewen, E. G., Popov, E. Diffraction Gratings and Applications. , Taylor, Francis. (1997).
  17. Technical Note: Optical Materials. , Available from: https://www.newport.com/n/optical-materials (2017).
  18. Cai, D., Neyer, A., Kuckuk, R., Heise, H. M. Raman, mid-infrared, near-infrared and ultraviolet-visible spectroscopy of PDMS silicone rubber for characterization of polymer optical waveguide materials. J Mol Struc. 976 (1-3), 274-281 (2010).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Toestemming aanvragen om de tekst of afbeeldingen van dit JoVE-artikel te hergebruiken

Toestemming aanvragen

Trefwoorden

Soft LithographyPDMS MoldingCalcium Fluoride WindowsUV Curable ResinReplica CastingMicrofluidic Device FabricationInfrared TransparencyPlasma TreatmentNOA CuringVacuum Degassing

Gerelateerde artikelen