Een abonnement op JoVE is vereist om deze inhoud te bekijken. Log in of start vandaag met uw gratis proefperiode.

Methodenartikel

Hoog vet dieet voeding en High Throughput triglyceride test bij Drosophila Melanogaster

11.3K weergaven

DOI:

10.3791/56029

13 september 2017

In dit artikel

Samenvatting

Dit is een hoog vet dieet voeding protocol om zwaarlijvigheid in Drosophila, een model voor begrip fundamentele moleculaire mechanismen betrokken bij lipotoxicity. Het biedt ook een hoge doorvoersnelheid triglyceride assay voor het meten van vet accumulatie in Drosophila en mogelijk andere (insect) modellen onder verschillende voeding, milieu, genetische of fysiologische omstandigheden.

Samenvatting

Hart-en vaatziekten is de nummer een doodsoorzaak menselijke wereldwijd. Talrijke studies hebben aangetoond sterke verbindingen tussen obesitas en cardiale storing bij de mens, maar meer tools en onderzoeksinspanningen zijn nodig beter het ophelderen van de mechanismen die betrokken zijn. Voor meer dan een eeuw, het genetisch zeer hanteerbare model van Drosophila behulpzaam geweest bij de ontdekking van belangrijke genen en moleculaire trajecten die bleek te sterk over soorten worden behouden. Veel biologische processen en mechanismen van de ziekte zijn functioneel bewaard in de vlieg, zoals ontwikkeling (b.v., lichaam plan, hart), kanker en neurodegeneratieve ziekte. Onlangs, heeft de studie van obesitas en secundaire ziekten, zoals hart-en vaatziekten in modelorganismen, een zeer cruciale rol gespeeld bij de identificatie van belangrijke regelgevende instanties die betrokken zijn bij metabool syndroom bij de mens.

Wij stellen hier, met deze model-organisme als een doeltreffend instrument te induceren van obesitas, dat wil zeggen, buitensporige accumulatie van vet en het ontwikkelen van een efficiënt protocol voor het controleren van vetgehalte in de vorm van TAGs accumulatie. Naast de zeer geconserveerde, maar minder complex genoom heeft de vlieg ook een korte levensduur voor snelle experimenten, gecombineerd met de kosteneffectiviteit. Dit witboek biedt een gedetailleerd protocol voor hoog vet dieet (HFD) voeding in Drosophila voor het opwekken van obesitas en een kwantitatieve analyse van hoge-doorvoer, triglyceride (TAG) voor het meten van de bijbehorende stijging van het vetgehalte, met het oog op het zeer reproduceerbaar zijn en efficiënt voor grootschalig onderzoek voor genetische of chemische. Deze protocollen bieden nieuwe mogelijkheden om efficiënt regulerende mechanismen die betrokken zijn bij obesitas te onderzoeken, evenals een gestandaardiseerd platform te bieden voor Drugsonderzoek van de ontdekking voor snelle testen van het effect van drugkandidaten op de ontwikkeling of preventie van obesitas, diabetes en verwante metabole ziekten.

Inleiding

We zijn in een tijd waar obesitas, en de bijbehorende economische lasten, is een wereldwijd probleem1. Twee uit elke drie Amerikanen zijn overgewicht of obesitas met verwante hart pathologieën, de belangrijkste doodsoorzaak in de volwassen bevolking2. Nieuwe efficiënte methoden zijn nodig om de genetische en moleculaire componenten betrokken bij de regulering van metabool syndroom met behulp van modelorganismen adequaat te onderzoeken. Om deze reden kiezen wij de fruitvlieg Drosophila model omdat het de meest elementaire biologische processen met zoogdieren, waaronder muizen en mensen3,4,5,6. Drosophilagenoom is zeer geconserveerde tijdens de evolutie, maar over het algemeen veel kleiner met minder gene duplicatie en metabole complexiteit, waardoor hij ideaal is voor het begrip van de fundamentele mechanismen betrokken bij vele ziekten bij de mens4 , 7 , 8. ook karakteristieke processen uitgevoerd door adipeus weefsel, de darm en pancreas zijn vertegenwoordigd in de vlieg en bemiddelen van regelgevende taken in glucose en lipide metabolisme, bijvoorbeeld, die vergelijkbaar met de mens9, zijn 10,11. Bovendien, de fundamentele moleculaire pathways betrokken bij de bestrijding van zwaarlijvigheid, insulineresistentie en diabetes bij de mens zijn functioneel bewaard in Drosophila melanogaster12,13,14 , 15 , 16. als hogere organismen, Drosophila heeft een kloppend hart die tijdens de ontwikkeling wordt gevormd door soortgelijke processen met die van de zoogdieren hart3,17. Dus, de ontwikkeling van een betrouwbare HFD voeding protocol en hoge doorvoer TAG assay, aangepast voor efficiënte screening doeleinden gebruik van de genetische gereedschapskist van Drosophila, bieden een belangrijk middel te bestuderen en begrijpen van de fundamentele genetische basis onderliggende complexe metabole ziekten.

Het HFD voedsel zelf is gemaakt van een standaard laboratorium vliegen voedsel aangevuld met kokosolie, die meestal uit verzadigde vetzuren bekend bestaat te worden geassocieerd met het metabool syndroom18. Terwijl inducerende obesitas in modellen, zoogdieren, zoals knaagdieren, maanden19,20 duren kan, verhoogt onze geoptimaliseerde HFD voeding protocol in Drosophila effectief en reproducibly organisch vetgehalte in een kwestie van dagen12,14. Dit protocol, kunt in combinatie met een hoge doorvoersnelheid TAG assay, u efficiënt mass screening voor de gevolgen van genetische factoren, milieu-invloeden en drugkandidaten te ontdekken van nieuwe modulatoren van vetstofwisseling. Als gevolg hiervan zijn deze protocollen waarschijnlijk relevant zijn voor het begrijpen en/of bestrijding van obesitas en obesitas-geassocieerde menselijke pathologie.

De voeding protocol is veelzijdig en kan worden toegepast om te bestuderen van de metabole en functionele gevolgen van enkele verzadigde of onverzadigde vetzuur. Het gebruik van deze hoge doorvoer TAG assay is niet beperkt tot D. melanogaster, maar kan worden aangepast aan een verscheidenheid van kleine modelorganismen met Cuticula of taai extracellulaire matrices (b.v., andere soorten Drosophila , C. elegans en andere opkomende ongewervelde modelorganismen) voor het meten van vetgehalte onder verschillende ecologische, genetische of fysiologische omstandigheden, in elk stadium van ontwikkeling, volwassenheid of fase van metabole ziekte. De TAG-bepaling is gebaseerd op een colorimetrische meting van een reeks enzymatische reacties dat degraderen de TAGs in vrije vetzuren, glycerol, Glycerol-3-fosfaat en ten slotte H2O2 die met 4-aminoantipyrine (4-AAP) en 3,5 reageert- dichloorethaan-2-hydroxybenzene sulfonaat (3,5 DHBS) om een rood gekleurde product dat wordt gemeten met een spectrofotometer 96-Wells te produceren.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Protocol

1. HFD voeding Protocol

figure-protocol-1
tabel 1. Vliegen eten recept.
Deze tabel bevat een overzicht van de verschillende ingrediënten gebruikt onze controle om voedsel te bereiden. Zodra gemaakt, 10 mL van het levensmiddel wordt gegoten in flesjes, gekoeld en opgeslagen bij 4 ° C voor lange termijn opslag.

  1. HFD voorbereiding
    1. om 1 kg vet voedsel, weeg 700 g van pre-en-klare normale vliegen voedsel (Zie tabel 1) en 300 gram kokos olie in twee aparte containers met behulp van een analytische balans.
    2. Warmte elke container individueel in de magnetron, totdat de inhoud volledig smelten. Giet de kokosolie in de container vliegen voedsel. Roer met een garde totdat de olie goed wordt gemengd in de vliegen voedsel.
      Opmerking: Geen brokken voedsel of olie zichtbaar moeten zijn. Wanneer het vliegen voedsel in de magnetron smelt, stoppen met tussenpozen van 1 minuut mengen van het voedsel te voorkomen kokend over.
    3. Wegen opnieuw het hoge vet eten. Als het totale gewicht is minder dan 1 kg (700 g van voedsel + 300 g kokosolie), voeg water (ongeveer 10 mL) ter compensatie van verdamping tijdens verwarming en terug te brengen het gewicht naar 1 kg.
    4. Pour ongeveer 10 mL goed gemengde hoge vet voedsel per flacon (ongeveer 25% van flacon volume). Vervolgens dek af met kaasdoek om te voorkomen dat vliegen ' besmetting. Gedurende 1 uur bij kamertemperatuur afkoelen dan overdracht van de flesjes tot 4 ° C voor opslag van tot 4 weken.
      Opmerking: Het normale eten (NF) wordt gebruikt als een controle-voedsel. Ook giet 10 mL (ongeveer 25% van flacon volume) voor NF per flacon. Voor de HFD voedsel, wordt 30% van de NF-voedsel vervangen door kokosolie. Voor controle en proefomstandigheden, de vliegen werden gegeven evenveel NF en HFD (10 mL voeding per flacon).

figure-protocol-2
Figuur 1 . HFD voederen in Drosophila.
De regeling bevat de diverse voeding stappen om vliegen op een besturingselement levensmiddel (normale voeding zonder toevoeging van kokosolie-NF) of HFD (met de toevoeging van kokosolie). Het hele proces duurt 10 dagen na de eerste collectie van volwassen vliegen. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

  1. HFD voederen van D. melanogaster
    Opmerking: dit protocol omvat controle voedsel en HFD voederen van procedures die compatibel met een vlieg lijn zijn. Controle en experimentele vliegen komen in flesjes met hetzelfde bedrag voedsel (NF of HFD).
    1. Gebruik CO 2 aan de vliegen anesthetize.
      Opmerking: Voor neophytes, lees Raadpleeg 21 voor een overzicht van de verhoging en de behandeling van D. melanogaster.
    2. Verzamelen 0-5 dag oud vliegt vanaf flesjes en – overdracht (door spiegelen) de vliegen in nieuwe flesjes met NF (voorheen opgewarmd bij kamertemperatuur). Laat de leeftijd van de vliegen voor 5 extra dagen bij 21 ° C.
    3. Aan het eind van de 5 dagen, nemen de flesjes met HFD en NF van 4 ° C.
      Opmerking: zoals koude temperaturen kunnen stress leven vliegen, laat de flesjes zitten gedurende 30 minuten bij kamertemperatuur te warmen vóór gebruik.
    4. Gebruikend afveegt, reinigen en verwijderen van de overtollige vocht van de zijden van de flesjes.
    5. Invoegen een klein stukje filtreerpapier, over 1 cm x 3 cm, in de hoge vet voedsel te absorberen alle overtollige vloeistof.
      Opmerking: Deze stap is van cruciaal belang voor het voorkomen van de vliegen vastplakken aan het voedsel dat HFD.
    6. Breng vervolgens de vliegen op het hoge vet voedsel (door spiegelen). Leg de flesjes horizontaal aan hun kant, (niet permanent) op 21-22 ° C gedurende 5 dagen.
      Opmerking: Vermijd hogere temperaturen zoals dit gedeeltelijk van de hoge vet voedsel smelten kan, waardoor de vliegen te houden aan de voedsel en sterven.
    7. Na 5 dagen, transfer (door spiegelen) de vliegt vanaf NF en HFD in nieuwe flesjes zonder voedsel dat hun lef om leeg voor 30 min. Vervolgens gaat u verder met het gewicht van de vliegen.
      Opmerking: Een van de cruciale stappen in deze HFD voeding protocol is te bereiden een goed gemengde HFD, vrij van eventuele brokken vliegen voedsel of verkorte olie. Homogeen mengen en koeling van de HFD tot 45-30 ° C is raadzaam, voordat gieten in flesjes en op te slaan het voedsel op de juiste leeftijd van de 4 ° C. afstemming van controle- en experimentele vliegen is het belangrijk evenals gecontroleerde voedings- en milieu-omstandigheden voorafgaande voor het vervoederen van HFD. Tijdens de voeding fase, moeten controle en experimentele vliegen krijgen hetzelfde bedrag van NF en HFD. Nooit verzamelen vliegen van overvolle flacons of flessen (transgenerationele om effecten te voorkomen). Zet altijd een maximum van 25 vliegen per flacon tijdens NF en HFD voeding om te voorkomen dat dieet beperking of andere omvangrijke effecten. De HFD bestaat uit 30% kokosolie, aldus temperaturen boven de 22 ° C zou gedeeltelijk smelten de HFD, waardoor de vliegen te houden op de olieachtige voedsel en sterven. Reinig de flesjes verwijderen van alle resterende olie en steekt een filtreerpapier te absorberen alle overtollige vocht in het voedsel alvorens het vliegen op de HFD. Tijdens de incubatie van de vliegen op HFD, worden de flesjes op hun zijden ernaar een vetvrij horizontaal oppervlak voor de vliegen gelegd.
  2. Met een gewicht van de vliegen
    1. voor elk genotype en geslacht te beproeven, een ultra gevoelige schaal te gebruiken om de gewichten van vooraf gelabelde, lege 1,7 mL tubes.
    2. Met vliegen verdoving of CO 2, anesthetize en verzamelen van 36 vliegen met genotype dezelfde, geslacht, en voeding status met een penseel in een vooraf gewogen tube van 1,7 mL.
    3. Wegen van de buis met vliegen met dezelfde ultra gevoelige schaal.
    4. Bepalen het gemiddelde vliegen gewicht na deze formule:
      figure-protocol-3
      Opmerking: het aantal vliegen in dit protocol is 36.
    5. Flash bevriezen de 1,7 mL tubes vliegen bevattende storten in vloeibare stikstof voor 2 min. verzamelen en zet de buizen in vakken. Vervolgens overbrengen in de vakken-80 ° C (voorkeur temperatuur) voor opslag tot gebruik met de TAG-assay.
      Let op: Vloeibare stikstof is bij een zeer lage temperatuur. Gebruik de juiste persoonlijke beschermende uitrusting.

2. TAG Assay

  1. voorbereiding van de TAG standaard concentraties
    1. bereiden 500 mL PBT (PBS 1 X 0.05% Triton).
    2. Met 0,5 mL buizen en de TAG-oplossing (Tabel of Materials), bereiden 100 µL van blanco (PBT alleen) en 100 µL van zes standaard TAG concentraties (2 µg/µL 1 µg/µL 0,5 µg/µL; 0,25 µg/µL; 0,125 µg/µL; 0.0625 µg/µL) met de PBT.
    3. Plaatsen van de buizen op ijs en ga verder met het slijpen van de vliegen.
  2. Slijpen de vliegen
    1. nemen de bevroren vliegt vanaf-80 ° C (stap 1.3). Overdracht van de buisjes met het vliegen op ice.
    2. Ten eerste plaats 2 mm metaal slijpen ballen in een bal van de 96-Wells-dispenser, een klein penseel gebruiken voor het verwijderen van extra ballen.
    3. Plaats het slijpen van de 96-wells-plaat ondersteboven op de top van de bal dispenser en flip over te dragen van de metalen ballen rechtstreeks in de schuurmachine plaat. Er moet één bal per putje.
    4. Met behulp van een precisiepipet meerkanaals, voeg 600 µL van PBT in elke rij van de schuurmachine 96-wells-plaat.
    5. Met een tang, voeg 3 vliegt per putje. De voorwaarde van het genotype, geslacht en voedsel van de vliegen in elke rij per putje van de schuurmachine 96-wells-plaat geven.
    6. Plaats strak de doppen op de schuurmachine 96-wells-plaat. Tape kan worden geplaatst op de top om ervoor te zorgen dat er geen lekkage.
    7. Plaats goed de schuurmachine 96-wells-platen in de slijpmachine. De machine ingesteld op de hoogste snelheid en druk op " uitvoeren " te slijpen de vliegen voor 3 min.
    8. Na 3 min, stoppen met het slijpen en ga verder met plaat centrifugeren: centrifuge gedurende 15 minuten bij 4000 x g, 4 ° C. Na het centrifugeren, beheren de schuurmachine plaat zorgvuldig om te voorkomen dat het supernatant mengen met de pellet.
  3. Monster laden en de bepaling van de inhoud van de TAG
    1. nemen een nieuwe spectrofotometer 96-wells-plaat. Met behulp van een precisiepipet meerkanaals, 200 µL van het TAG-reagens in elke rij van de plaat geladen.
    2. Load 20 µL van PBT in het eerste putje van de eerste rij, een leeg maken. Meng door pipetteren omhoog en omlaag. Vermijden van de vorming van luchtbellen.
    3. Load 20 µL van elke standaard verdunning (uit stap 2.1.2) in de overige wells van de eerste rij en meng door pipetteren omhoog en omlaag. Vermijden van de vorming van luchtbellen.
    4. Met behulp van een precisiepipet meerkanaals, breng 20 µL van supernatant van elke rij van de schuurmachine plaat naar de overeenkomstige rij in de spectrofotometer 96-wells-plaat. Pipetteer omhoog en omlaag om meng goed. Vermijden van de vorming van luchtbellen.
    5. Vervolgens het plaatsen van een gas-permeabele folie over de bovenkant van de 96-wells-plaat.
    6. Broeden de plaat bij 37 ° C gedurende 10 minuten
      Opmerking: Als er bubbels in de putten, centrifugeer de plaat gedurende 2 minuten bij 2.000 x g alle bubbels verwijderen. De aanwezigheid van bubbels zal interfereren met de absorptie lezing.
    7. Lees de extinctie van elk putje van de plaat bij 550 nm met behulp van een compatibel microplate-lezer. Vervolgens de standaard curve traceren en bepaal de concentratie [µg/µL] van de onbekende monsters.
    8. Om te bepalen van de hoeveelheid TAG inhoud per gemiddelde vliegen gewicht, gebruik de volgende formule:
      figure-protocol-4
      Opmerking: In dit protocol 3 vliegen werden gehakt in 600 µL van PBT; bijgevolg het gemiddelde volume per fly is 200 µL.
  4. Analyse van Bradford en normalisering van TAG inhoud met eiwitgehalte
    1. bereiden zeven 100 µL bovien serumalbumine (BSA) standaard verdunningen (75 µg/mL, 100 µg/mL, 150 µg/mL; 200 µg/mL; 250 µg/mL; 500 µg/mL; 1000 µg/mL) met de PBT.
    2. Nemen een nieuwe 96-wells-plaat en 200 µL van 1 X Bradford reagens in elke rij van de plaat geladen.
    3. In het eerste putje van de eerste rij, voeg 10 µL van PBT een leeg maken. Meng door pipetteren omhoog en omlaag. Vermijden van de vorming van luchtbellen.
    4. Voeg toe 10 µL van elke standaard verdunning in de overige wells van de eerste rij en meng door pipetteren omhoog en omlaag. Vermijden van de vorming van luchtbellen.
    5. 10 µL van de vlieg supernatant van elke rij van de schuurmachine plaat met behulp van een precisiepipet meerkanaals, overboeken naar de overeenkomstige rij in de 96-wells-plaat. Pipetteer omhoog en omlaag om meng goed. Vermijden van de vorming van luchtbellen.
    6. Plaats van een gas-permeabele folie over de bovenkant van de 96-wells-plaat.
    7. Laat de plaat bij kamertemperatuur gedurende 5 minuten inwerken. Als er belletjes in de putten, centrifugeer de plaat gedurende 2 minuten bij 2.000 x g om ze te verwijderen.
      Opmerking: De aanwezigheid van bubbels zal interfereren met de absorptie lezing.
    8. Gebruik van een spectrofotometer aan Lees de extinctie van de blanco, normen en onbekende monsters op 595 nm. Gebruik de standaard curve om te bepalen van de concentraties [µg/µL] van de monsters in elke rij.
    9. Normaliseren de TAG inhoud met eiwit niveau met de volgende formule:
      figure-protocol-5

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Resultaten

In D. melanogaster, zoals het geval met andere soorten, is er seksueel dimorfisme tussen mannetjes en vrouwtjes22. Het is algemeen bekend dat de vrouwtjes groter, met meer vet in hun buikjes, dan mannetjes22 zijn. Om te testen van de effectiviteit van ons protocol, we uitgevoerd TAG testen om te bepalen van de verschillen in-TAG inhoud tussen mannetjes en vrouwtjes van standaard laboratorium wildtype (w1118) vlie...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Discussie

Obesitas inductie in muizen kun je maanden19,20. In vliegen voorziet deze HFD voeding protocol inductie van overtollige vet accumulatie in een kwestie van dagen of minder, waardoor verhogingen in vet ophoping pas na 18 h (Zie Figuur 2). HFD vervoederen van het beschreven protocol verhoogt glucose inhoud 12 en vermindert Bmm lipase en PGC-1 expressie24. Dit is in tegenstelling t...

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Openbaarmakingen

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dankbetuigingen

We zouden graag bedanken Erika Taylor voor het bewerken van dit manuscript. Dit werk werd gefinancierd door subsidies van de National Institutes of Health (P01 HL098053, P01 AG033561 en R01 HL054732) naar R.B., een post-doctoraal onderzoek supplement (R01 HL085481) en fellowship (AAUW) aan S.B.D. en subsidies van de American Heart Association aan S.B.D. en R.T.B.

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Materialen

Lijst van materialen gebruikt in dit artikel
NaamBedrijfCatalogusnummerOpmerkingen
Talboys Ball dropper/bead DispenserTalboys#: 930150
Talboys High Throughput HomogenizerTalboys#: 930145
Grinding Balls, Stainless Steel OPS Diagnostics, LLC# GBSS 156-5000-015000 balls
Masterblock 96 Well deep MicroplatesGreiner Bio-One# T-3058-1case of 80 plates
Greiner  96 well microplate flat bottomSigma Aldrich# M443640 plates
Greiner CapMat for sealing multiwell platesSigma Aldrich# C360650 sealing plates
Reagent Reservoirs Thomas Scientific# 1192T7112/PK
Thermo Scientific Finnpipette 4661040Thermo Scientific# 46610401-10 ul multipipette
Thermo Scientific Finnpipette 4661070Thermo Scientific# 466107030-300ul multipipette
Thermo Scientific Finnpipette 4661020Thermo Scientific#466102010-100ul multipipette
Multichannel tipsDenville Scientific Inc# P3131-Sfor 10 uL pipette
Multichannel tipsDenville Scientific Inc# P3133-Sfor 200 uL pipette
Multichannel tipsDenville Scientific Inc#P1125for 100 uL pipette
Forceps Roboz Surgical# 5 DumontsSuper fine forceps
Mettler Toledo Excellence XS Analytical Balance Mfr# XS64Cole-Parmer scientific experts# EW-11333-00
Metler Toledo Excellence XS Toploading BalanceCole-Parmer scientific experts# EW-11333-49
96-Well microplate CentrifugeHettich Zentrifugen# Rotina 420R
Microplate ReaderMolecular devices# SpectraMax 190
Lab-Line Bench Top Orbit Environ Shaker IncubatorBiostad# 3527
Infinity Triglycerides reagentThermo Scientific# TR22421
Triglyceride StandardStanbio#2103 - 030
Quick Start Bradford Protein AssayBio-RAD# 500-02051x dye Reagent
Coconut oilNutiva# 69275220001415 0z jar
PBS 10XThermo Scientific# AM9625500 ml
Triton X-100Sigma Aldrich# 9002-93-1
Gas-permeable FoilMacherey-Nagel# 74067550 pieces
filter PaperVWR# 28317-241Pack of 100
Drosophila vialsGenesee ScientificCat #: 32-116SB
Quick Start Bovine Serum Albumin StandardBio-Rad# 5000206
FlyNap AnestheticCarolina# 173025100 mL
Kimwipes Low-LintUline# S-81151-Ply, 4.4 x 8.4"

Referenties

  1. Ng, M., et al. Global, regional, and national prevalence of overweight and obesity in children and adults during 1980-2013: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2013. Lancet. 384, 766-781 (2014).
  2. Murphy, S. L., et al. Mortality in the United States, 2014. NCHS data brief, no 229. , Available from: https://www.cdc.gov/nchs/products/databriefs/db229.htm (2015).
  3. Bodmer, R. Heart development in Drosophila and its relationship to vertebrates. Trends Cardiovasc Med. 5, 21-28 (1995).
  4. Brumby, A. M., Richardson, H. E. Using Drosophila melanogaster to map human cancer pathways. Nat Rev Cancer. 5, 626-639 (2005).
  5. Chan, H. Y., Bonini, N. M. Drosophila models of human neurodegenerative disease. Cell Death Differ. 7, 1075-1080 (2000).
  6. Levine, M., et al. Human DNA sequences homologous to a protein coding region conserved between homeotic genes of Drosophila. Cell. 38, 667-673 (1984).
  7. Bier, E. Drosophila, the golden bug, emerges as a tool for human genetics. Nat Rev Genet. 6, 9-23 (2005).
  8. Bier, E., Bodmer, R. Drosophila, an emerging model for cardiac disease. Gene. 342, 1-11 (2004).
  9. Noyes, B. E., et al. Identification and expression of the Drosophila adipokinetic hormone gene. Mol Cell Endocrinol. 109, 133-141 (1995).
  10. Rajan, A., Perrimon, N. Of flies and men: insights on organismal metabolism from fruit flies. BMC Biol. 11, 38(2013).
  11. Rulifson, E. J., et al. Ablation of insulin-producing neurons in flies: growth and diabetic phenotypes. Science. 296, 1118-1120 (2002).
  12. Birse, R. T., et al. High-fat-diet-induced obesity and heart dysfunction are regulated by the TOR pathway in Drosophila. Cell Metab. 12, 533-544 (2010).
  13. Musselman, L. P., et al. A high-sugar diet produces obesity and insulin resistance in wild-type Drosophila. Dis Models Mech. 4, 842-849 (2011).
  14. Diop, S. B., Bodmer, R. Gaining Insights into Diabetic Cardiomyopathy from Drosophila. Trends Endocrinol Metab. 26, 618-627 (2015).
  15. Williams, M. J., et al. The Obesity-Linked Gene Nudt3 Drosophila Homolog Aps Is Associated With Insulin Signaling. Mol Endocrinol. 29, 1303-1319 (2015).
  16. Morris, S. N., et al. Development of diet-induced insulin resistance in adult Drosophila melanogaster. Biochim Biophys Acta. 1822, 1230-1237 (2012).
  17. Bodmer, R. The gene tinman is required for specification of the heart and visceral muscles in Drosophila. Development. 118, 719-729 (1993).
  18. Erkkila, A., et al. Dietary fatty acids and cardiovascular disease: an epidemiological approach. Prog Lipid Res. 47, 172-187 (2008).
  19. Ganz, M., et al. High fat diet feeding results in gender specific steatohepatitis and inflammasome activation. World J Gastroenterol. 20, 8525-8534 (2014).
  20. Wang, C. Y., Liao, J. K. A mouse model of diet-induced obesity and insulin resistance. Methods Mol Biol. 821, 421-433 (2012).
  21. Stocker, H., Gallant, P. Getting started: an overview on raising and handling Drosophila. Methods Mol Biol. 420, 27-44 (2008).
  22. Mathews, K. W., et al. Sexual Dimorphism of Body Size Is Controlled by Dosage of the X-Chromosomal Gene Myc and by the Sex-Determining Gene tra in Drosophila. Genetics. 205, 1215-1228 (2017).
  23. Golay, A., Bobbioni, E. The role of dietary fat in obesity. Int J Obes Relat Metab Disord. 21, Suppl 3 2-11 (1997).
  24. Diop, S. B., et al. PGC-1/Spargel Counteracts High-Fat-Diet-Induced Obesity and Cardiac Lipotoxicity Downstream of TOR and Brummer ATGL Lipase. Cell Rep. 10, 1-13 (2015).
  25. Chatterjee, D., et al. Control of metabolic adaptation to fasting by dILP6-induced insulin signaling in Drosophila oenocytes. Proc Natl Acad Sci U S A. 111, 17959-17964 (2014).
  26. Palanker, L., et al. Drosophila HNF4 regulates lipid mobilization and beta-oxidation. Cell Metab. 9, 228-239 (2009).
  27. Heinrichsen, E. T., Haddad, G. G. Role of high-fat diet in stress response of Drosophila. PLoS One. 7, 42587(2012).
  28. Kitahara, C. M., et al. Association between class III obesity (BMI of 40-59 kg/m2) and mortality: a pooled analysis of 20 prospective studies. PLoS Med. 11, 1001673(2014).
  29. Reis, A., et al. A comparison of five lipid extraction solvent systems for lipidomic studies of human LDL. J Lipid Res. 54, 1812-1824 (2013).
  30. Turne, C., et al. Supercritical fluid extraction and chromatography for fat-soluble vitamin analysis. J Chromatogr A. 936, 215-237 (2001).
  31. Na, J., et al. Drosophila model of high sugar diet-induced cardiomyopathy. PLoS Genet. 9, 1003175(2013).

Toegang beperkt. Log in of start een proefperiode om deze inhoud te bekijken.

Herprints en machtigingen

Tags

Inductie van obesitasmeting van vetgehaltehigh-throughput screeningbereiding van vliegenvoedselultrasensitieve weegschaalmetalen maalballenspectrofotometerplaat